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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Desproteinización de muestras de suero y plasma para el estudio analítico de carbamazepinan]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The quantitative determination of carbamazepine in human serum and plasma, it requires of a previous treatment to eliminate the proteins. In this study were used methanol and trichloroacetic acid to 10 %, with the purpose of selecting the protein precipitant that guarantees the biggest effectiveness to remove the proteins. The proportions serum/plasma-protein precipitant 1:2 for the methanol and 1:0,2 for the trichloroacetic acid were used. The evaluation of the efficiency of protein precipitation was carried out applying UV spectrophotometry; the spectra of the precipitated samples were registering in the range of 200-340 nm. The selection approach was the decrease from the absorbance intensity to the wave lengths of maximum absorption of the proteins. The methanol guaranteed a reduction of the absorbance in the region near at 235 nm and 280 nm as much in the serum as in the plasma. The trichloroacetic acid 10% didn't show effectiveness to remove the proteins.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font face="Verdana" size="2"><b>ARTICULOS</b></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="left"><font face="Verdana" size="2"><b><font size="4"><strong> Desproteinizaci&oacute;n de muestras de suero y plasma para el estudio anal&iacute;tico de carbamazepinan</strong></font></b></font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b><font size="3"> Serum and plasma samples deproteinization for analytical studies of carbamazepine</font></b></font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2"><b>    MSc. Yamil&eacute; Heredia-D&iacute;az<sup>I</sup>, MSc. Roberto Machado-Garc&iacute;a<sup>I</sup>, Lic. Marllelyn Mendoza-Su&aacute;rez<sup>I</sup><sup>I</sup>, Lic. Deylis Jardines-Cala<sup>I</sup><sup>I</sup><sup>I</sup>, MSc. AlbisV&aacute;zquez-Dom&iacute;nguez<sup>I</sup><sup>V</sup></b></font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <sup>I</sup>Universidad de Oriente, Santiago de Cuba, Cuba,                     <a href="mailto:yherediad@uo.edu.cu">yherediad@uo.edu.cu</a>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <sup>II</sup>Direcci&oacute;n Municipal de Salud Manuel Tames, Jamaica, Guant&aacute;namo, Cuba    <br>       <sup>II</sup><sup>I</sup>Centro de Toxicolog&iacute;a y Biomedicina, Santiago de Cuba, Cuba    <br>       <sup>IV</sup>Hospital Docente Cl&iacute;nico Quir&uacute;rgico Ginecobst&eacute;trico &quot;Juan Bruno Zayas&quot;, Santiago de Cuba, Cuba    <br> </font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p> <hr>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> </font><font face="Verdana" size="2"> La determinaci&oacute;n cuantitativa de carbamazepina en muestras de suero y plasma, requiere de tratamiento previo para eliminar las prote&iacute;nas. Con el prop&oacute;sito de seleccionar el agente desproteinizante que garantice la mayor eficacia para removerlas se utilizaron metanol y &aacute;cido tricloroac&eacute;tico al 10 %. Las proporciones de suero/plasma-desproteinizante utilizadas fueron 1:2 para el metanol y 1:0,2 para el &aacute;cido tricloroac&eacute;tico. La evaluaci&oacute;n de la eficiencia de la desproteinizaci&oacute;n se realiz&oacute; aplicando la espectrofotometr&iacute;a UV, registr&aacute;ndose los espectros de las muestras desproteinizadas en un rango de absorbancia de 200-340 nm. El criterio de selecci&oacute;n fue la disminuci&oacute;n de la intensidad de absorbancia a las longitudes de onda de m&aacute;xima absorci&oacute;n de las prote&iacute;nas. El metanol garantiz&oacute; una reducci&oacute;n de la absorbancia en la regi&oacute;n espectral cercana a los 235 nm y 280 nm tanto en el suero como en el plasma. El &aacute;cido tricloroac&eacute;tico al 10 % no mostr&oacute; efectividad para eliminar las prote&iacute;nas</font><font face="Verdana" size="2">.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> Carbamazepina, determinaci&oacute;n cuantitativa, suero, plasma, espectrofotometr&iacute;a UV-Visible.</font></p> <hr>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <b>ABSTRACT</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> </font><font face="Verdana" size="2"> </font><font face="Verdana" size="2"> The quantitative determination of carbamazepine in human serum and plasma, it requires of a previous treatment to eliminate the proteins. In this study were used methanol and trichloroacetic acid to 10 %, with the purpose of selecting the protein precipitant that guarantees the biggest effectiveness to remove the proteins. The proportions serum/plasma-protein precipitant 1:2 for the methanol and 1:0,2 for the trichloroacetic acid were used. The evaluation of the efficiency of protein precipitation was carried out applying UV spectrophotometry; the spectra of the precipitated samples were registering in the range of 200-340 nm. The selection approach was the decrease from the absorbance intensity to the wave lengths of maximum absorption of the proteins. The methanol guaranteed a reduction of the absorbance in the region near at 235 nm and 280 nm as much in the serum as in the plasma. The trichloroacetic acid 10% didn't show effectiveness to remove the proteins.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <b>Keywords:</b> Carbamazepine, quantitative determination, serum, plasma, UV- spectrophotometry.</font></p> <hr>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p><b><font face="Verdana" size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La carbamazepina (CBZ) es un antiepil&eacute;ptico cl&aacute;sico (<a href="#f1">figura 1)</a> derivado del iminoestilbeno relacionado qu&iacute;micamente con los antidepresivos tric&iacute;clicos del tipo de la imipramina. Se utiliza como antiepil&eacute;ptico, analg&eacute;sico y antiman&iacute;aco. Se metaboliza a 10-11 epoxicarbamazepina, que tiene efectos terap&eacute;uticos y t&oacute;xicos similares a los de la CBZ. La fenito&iacute;na, el fenobarbital y la primidona pueden reducir a la mitad los niveles de CBZ y aumentan los de su metabolito activo con riesgos de efectos t&oacute;xicos UV spectrophotometry [1].</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="f1" id="f1"></a><img src="/img/revistas/ind/v28n3/f0110316.gif"></font></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El intervalo &oacute;ptimo de niveles s&eacute;ricos de CBZ es de 6-12 mg/L aunque pueden ocurrir considerables variaciones [2].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Con el fin de determinar los niveles plasm&aacute;ticos de carbamazepina se han desarrollado varios m&eacute;todos cromatogr&aacute;ficos: cromatograf&iacute;a gaseosa [3-5], cromatograf&iacute;a l&iacute;quida de alta resoluci&oacute;n [6-10] (CLAR) y la espectrofotometr&iacute;a ultravioleta (UV), combinada con m&eacute;todos quimiom&eacute;tricos de an&aacute;lisis [11,12]. Los m&eacute;todos cromatogr&aacute;ficos requieren de una instrumentaci&oacute;n costosa y del empleo de cantidades relativamente altas de disolventes org&aacute;nicos contaminantes. Los m&eacute;todos espectrofotom&eacute;tricos son menos selectivos y las sustancias end&oacute;genas presentes en las matrices biol&oacute;gicas podr&iacute;an interferir en el an&aacute;lisis, pero son m&aacute;s econ&oacute;micos y pr&aacute;cticos.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La determinaci&oacute;n anal&iacute;tica de f&aacute;rmacos en fluidos biol&oacute;gicos requiere de varias etapas que van desde la colecci&oacute;n de la muestra hasta el reporte final de resultados. Las etapas intermedias incluyen el almacenamiento, preparaci&oacute;n, separaci&oacute;n, identificaci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n. La preparaci&oacute;n de la muestra es esencial y tiene tres objetivos principales: la disoluci&oacute;n del f&aacute;rmaco en un disolvente apropiado, remover las sustancias interferentes y pre concentrar el analito [13]. En la etapa de preparaci&oacute;n se realizan varios pre-tratamientos que depender&aacute;n de la naturaleza de la muestra, y las caracter&iacute;sticas f&iacute;sicas, qu&iacute;micas y biofarmac&eacute;uticas del f&aacute;rmaco o metabolito. Entre los pre-tratamientos a desarrollar se incluyen: la desproteinizaci&oacute;n, hidr&oacute;lisis de conjugados, homogeneizaci&oacute;n y liofilizaci&oacute;n [14]. Las muestras de plasma y suero contienen prote&iacute;nas que pueden interferir en la determinaci&oacute;n por espectrofotometr&iacute;a UV y, adem&aacute;s, pueden deteriorar las columnas cromatogr&aacute;ficas, por lo cual deben ser sometidas a tratamientos de desproteinizaci&oacute;n.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Se han desarrollado muy pocos estudios de desproteinizaci&oacute;n para la determinaci&oacute;n cuantitativa de carbamazepina empleando espectrofotometr&iacute;a UV acoplada a m&eacute;todos quimiom&eacute;tricos.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Por ello en este trabajo se estudi&oacute; la desproteinizaci&oacute;n del suero y el plasma utilizando metanol y &aacute;cido tricloroac&eacute;tico (TCA), para realizar el pretratamiento en la etapa de preparaci&oacute;n de muestras. La t&eacute;cnica aplicada para evaluar la efectividad del agente desproteinizante fue la espectrofotometr&iacute;a UV.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>FUNDAMENTACI&Oacute;N TE&Oacute;RICA</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><strong><em>Monitorizaci&oacute;n farmacocin&eacute;tica cl&iacute;nica de los niveles de f&aacute;rmacos en la sangre</em></strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La cuantificaci&oacute;n de los niveles de f&aacute;rmaco en sangre, como estudio de rutina, fue introducida en el laboratorio m&eacute;dico por Ch. Pippenger, hace poco tiempo: su desarrollo y difusi&oacute;n abarca el &uacute;ltimo tercio del siglo XX. Hoy se sabe que la eficacia terap&eacute;utica de muchos f&aacute;rmacos depende de su concentraci&oacute;n sangu&iacute;nea. Esta no depende solo de la dosis administrada, sino de varios factores que determinan una amplia variabilidad interindividual. Por ello, la determinaci&oacute;n cuantitativa de los niveles de f&aacute;rmacos en la sangre resulta imprescindible para un tratamiento eficaz y para minimizar el riesgo de aparici&oacute;n de manifestaciones t&oacute;xicas. El objetivo que se persigue con la cuantificaci&oacute;n de los medicamentos en sangre es optimizar el tratamiento, mediante la individualizaci&oacute;n de las dosis [15]. Los m&eacute;todos anal&iacute;ticos aplicados en la determinaci&oacute;n cuantitativa de f&aacute;rmacos en muestras biol&oacute;gicas han sido muy diversos y entre ellos se destacan los espectrosc&oacute;picos, cromatogr&aacute;ficos y las t&eacute;cnicas de inmunoan&aacute;lisis.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><strong><em>M&eacute;todos anal&iacute;ticos para el estudio de f&aacute;rmacos en muestras biol&oacute;gicas</em></strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Los m&eacute;todos anal&iacute;ticos para la determinaci&oacute;n de los niveles de f&aacute;rmacos en sangre, requieren ser muy sensibles, espec&iacute;ficos, exactos y reproducibles, adem&aacute;s de r&aacute;pidos.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La espectrofotometr&iacute;a UV durante algunas d&eacute;cadas fue el m&eacute;todo m&aacute;s empleado. Su principal ventaja radicaba en que estaba al alcance de cualquier laboratorio que contara con un espectrofot&oacute;metro. Este m&eacute;todo tiene como inconvenientes la escasa sensibilidad y la relativa falta de especificidad, lo que obliga a un engorroso y largo proceso de extracci&oacute;n previo [15].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">En general, los m&eacute;todos empleados en la actualidad son los cromatogr&aacute;ficos y lo m&eacute;todos de inmunoensayo. El empleo de rutina de los m&eacute;todos cromatogr&aacute;ficos como la Cromatograf&iacute;a Gaseosa y la Cromatograf&iacute;a L&iacute;quida de Alta Resoluci&oacute;n (CLAR) para el monitoreo de los f&aacute;rmacos en la sangre est&aacute; limitado por su baja productividad, pues son variantes en general engorrosas y consumen mucho tiempo.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Teniendo en cuenta las t&eacute;cnicas que est&aacute;n al alcance de los laboratorios cl&iacute;nicos en Cuba, el empleo de la espectrofotometr&iacute;a UV acoplada a m&eacute;todos quimiom&eacute;tricos constituye una alternativa econ&oacute;mica y pr&aacute;ctica. La literatura especializada reporta varias t&eacute;cnicas aplicando las herramientas quimiom&eacute;tricas. La determinaci&oacute;n de carbamazepina en muestras de suero de pacientes por un procedimiento asistido completamente por herramientas quimiom&eacute;tricas fue propuesta por C&aacute;mara M. S. <em>et al</em>., [11] el cual aplic&oacute; calibraci&oacute;n multivariada usando el m&eacute;todo de regresi&oacute;n por cuadrados m&iacute;nimos parciales (PLS) sobre los espectros UV de la segunda derivada.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">En el estudio de recuperaci&oacute;n no se encontraron diferencias estad&iacute;sticamente significativas, pudi&eacute;ndose concluir que no influyeron errores sistem&aacute;ticos. La regi&oacute;n el&iacute;ptica de confianza contiene el punto (1,0) indicando que no hay error constante ni proporcional. Los resultados obtenidos mostraron la potencialidad de la metodolog&iacute;a estudiada para la monitorizaci&oacute;n farmacocin&eacute;tica de pacientes tratados con este anticonvulsivante. Un m&eacute;todo espectrofotom&eacute;trico UV para la determinaci&oacute;n simult&aacute;nea de carbamazepina y fenito&iacute;na en plasma aplicando regresi&oacute;n por cuadrados m&iacute;nimos parciales fue desarrollado por Rezaei y col. en el 2005 [12]. Se demostr&oacute; que el m&eacute;todo PLS propuesto luego de la extracci&oacute;n l&iacute;quido-l&iacute;quido de los f&aacute;rmacos result&oacute; ser apropiado, logrando predecir las concentraciones de carbamazepina con un porcentaje medio de recobrado de 98,4.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Las muestras biol&oacute;gicas m&aacute;s ampliamente utilizadas para la determinaci&oacute;n anal&iacute;tica de carbamazepina han sido, plasma y suero [11, 12].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><strong><em>Caracter&iacute;sticas de la muestra de sangre</em></strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La sangre est&aacute; compuesta por dos fracciones bien diferenciables que son las c&eacute;lulas sangu&iacute;neas y el plasma sangu&iacute;neo. Las c&eacute;lulas constituyen del 40 al 50 % del volumen total de la sangre; el volumen restante corresponde al plasma, en el que est&aacute; presente una gama de compuestos qu&iacute;micos. Las c&eacute;lulas sangu&iacute;neas son de tres tipos: eritrocitos o gl&oacute;bulos rojos, especializados en la transportaci&oacute;n de ox&iacute;geno y di&oacute;xido de carbono; leucocitos o gl&oacute;bulos blancos, centrados en el sistema inmune para la defensa contra las infecciones; y las plaquetas, que intervienen en el proceso de coagulaci&oacute;n de la sangre. El plasma sangu&iacute;neo est&aacute; compuesto por un 90 % de agua y un 10 % de solutos, de los cuales el 10 % son sales i&oacute;nicas, 20 % mol&eacute;culas org&aacute;nicas peque&ntilde;as, y el 70 % prote&iacute;nas.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Entre las sales inorg&aacute;nicas se encuentran el cloruro de sodio, bicarbonato, fosfato, cloruro de calcio, cloruro de magnesio, cloruro de potasio y sulfato de sodio. Entre las mol&eacute;culas org&aacute;nicas y productos residuales contiene, glucosa, amino&aacute;cidos, lactato, piruvato, cuerpos cet&oacute;nicos, citrato, urea y &aacute;cido &uacute;rico. Las principales prote&iacute;nas del plasma son: inmunoglobulinas, alb&uacute;mina s&eacute;rica, apolipoprote&iacute;nas involucradas en el transporte de l&iacute;pidos, transferina para el transporte de hierro, y prote&iacute;nas de la coagulaci&oacute;n como el fibrin&oacute;geno y la protrombina. La sangre contiene otras sustancias siempre en cantidades de trazas que incluyen otros metabolitos como las enzimas, hormonas, vitaminas y pigmentos biliares [16].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Cuando la sangre se coagula antes de la separaci&oacute;n de los elementos celulares el l&iacute;quido amarillo p&aacute;lido remanente es una fracci&oacute;n del plasma sangu&iacute;neo denominado suero sangu&iacute;neo [17]. El suero sangu&iacute;neo en su composici&oacute;n no presenta las prote&iacute;nas de la coagulaci&oacute;n, como el fibrin&oacute;geno y la protrombina, pues estas intervienen en el proceso de coagulaci&oacute;n que concluye con la retracci&oacute;n del co&aacute;gulo, pero s&iacute; contiene la prote&iacute;na principal que es la alb&uacute;mina s&eacute;rica.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><strong><em>Desproteinizaci&oacute;n de muestras de plasma y suero</em></strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Uno de los problemas principales que se encuentran para el an&aacute;lisis de los f&aacute;rmacos en el plasma o el suero utilizando m&eacute;todos espectrofotom&eacute;tricos UV es el solapamiento espectral de las se&ntilde;ales del f&aacute;rmaco y las prote&iacute;nas presentes. La presencia de prote&iacute;nas en el plasma puede interferir en las determinaciones realizadas por m&eacute;todos espectrosc&oacute;picos y cromatogr&aacute;ficos como la CLAR. Las prote&iacute;nas presentan m&aacute;ximos de absorci&oacute;n en la regi&oacute;n ultravioleta a la longitud de onda 235 nm debido a la propiedad que tienen los enlaces pept&iacute;dicos de absorber en esta regi&oacute;n. La se&ntilde;al a 280 nm se debe a la presencia de los residuos arom&aacute;ticos de tirosina y tript&oacute;fano caracter&iacute;sticos de las prote&iacute;nas, los cuales tambi&eacute;n son responsables de la absorci&oacute;n al UV [18]. Por tanto, estas propiedades espectrales pueden interferir en el estudio anal&iacute;tico de f&aacute;rmacos como la carbamazepina en muestras de plasma y suero, pues la carbamazepina exhibe un m&aacute;ximo de absorci&oacute;n a 285 nm. Por ello es necesario desproteinizar las muestras para realizar estudios anal&iacute;ticos de este f&aacute;rmaco empleando la espectrofotometr&iacute;a UV.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">En la desproteinizaci&oacute;n de las muestras biol&oacute;gicas se utilizan disolventes org&aacute;nicos miscibles en agua, &aacute;cidos org&aacute;nicos [13] y sales i&oacute;nicas [16].</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Disolventes org&aacute;nicos como el metanol, acetona, acetonitrilo y etanol han sido ampliamente utilizados en bioan&aacute;lisis debido a su compatibilidad con las fases m&oacute;viles utilizadas en CLAR. Estos disolventes act&uacute;an disminuyendo la solubilidad de las prote&iacute;nas y tienen una efectividad inversamente proporcional a su polaridad. Las prote&iacute;nas que est&aacute;n en su forma cati&oacute;nica a pH bajos forman sales insolubles con los &aacute;cidos. Para la desproteinizaci&oacute;n en medio &aacute;cido, soluciones de 5-20 % de los mismos generalmente son suficientes y los mejores resultados pueden obtenerse utilizando los reactivos fr&iacute;os [13]. &Aacute;cidos tales como, &aacute;cido tricloroac&eacute;tico (TCA) y &aacute;cido percl&oacute;rico son muy eficientes.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Los procedimientos de desnaturalizaci&oacute;n de las prote&iacute;nas tambi&eacute;n incluyen el efecto salino, utilizando sales, pues la mayor&iacute;a de las prote&iacute;nas son menos solubles a concentraciones elevadas de sal. La concentraci&oacute;n de sal a la cual una prote&iacute;na precipita difiere de una prote&iacute;na a la otra. Por ejemplo, el sulfato de amonio 0,8 mol/L precipita el fibrin&oacute;geno, mientras que para precipitar la alb&uacute;mina s&eacute;rica se requiere una concentraci&oacute;n de 2,4 mol/L [16].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">En la literatura cient&iacute;fica son muy pocos los reportes relacionados con estudios de desproteinizaci&oacute;n de muestras de sangre para el an&aacute;lisis cuantitativo de CBZ.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Bugamelli eval&uacute;o dos procedimientos de pretratamiento para el estudio de seis anticonvulsivantes, entre ellos carbamazepina y fenobarbital, en plasma humano; uno de ellos fue la precipitaci&oacute;n de prote&iacute;nas con &aacute;cido percl&oacute;rico, el cual permiti&oacute; el an&aacute;lisis de carbamazepina y fenobarbital, pero no de los metabolitos de carbamazepina 10-11 dihidro y 10-11 epoxicarbamacepina [19]. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Estudios en otros f&aacute;rmacos como el lorazepam demostraron que el tratamiento con etanol en proporciones Plasma-Etanol (1:4) seguido de centrifugaci&oacute;n a 2 500 rpm, durante 10 min y posterior filtraci&oacute;n por papel de filtro Whatman, permiti&oacute; obtener un sobrenadante claro y se comprob&oacute; que el m&eacute;todo espectrofotom&eacute;trico UV acoplado a quimiometr&iacute;a fue capaz de cuantificar el lorazepam en plasma humano [20].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">En un estudio comparativo de dos m&eacute;todos de desproteinizaci&oacute;n se mostr&oacute; que la precipitaci&oacute;n de prote&iacute;nas con acetonitrilo a pH fisiol&oacute;gico permiti&oacute; la detecci&oacute;n de m&aacute;s metabolitos de bajo peso molecular y concentraciones superiores utilizando la espectroscop&iacute;a de resonancia magn&eacute;tica nuclear prot&oacute;nica, constituyendo esto una gran ventaja ya que el procedimiento result&oacute; muy sencillo y r&aacute;pido [21].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La desproteinizaci&oacute;n con metanol permiti&oacute; obtener valores de recobrados superiores a los obtenidos para el &aacute;cido f&oacute;rmico en la determinaci&oacute;n cuantitativa diclorodifeniltricloroetano y su metabolito asegurando una excelente precisi&oacute;n en el estudio [22].</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Los espectros fueron registrados en un espectrofot&oacute;metro UV-VIS, RayLeigh, de procedencia China. En los distintos ensayos se utilizaron cubetas de cuarzo de 1 cm de paso &oacute;ptico y 4 mL de volumen interno.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Fueron utilizados los reactivos: Metanol (Uni-Chem); &aacute;cido tricloroac&eacute;tico (Uni-Chem) y Carbamazepina (Sigma)</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Para la preparaci&oacute;n de la disoluci&oacute;n madre de CBZ de concentraci&oacute;n 10 mg/mL (SM<sub>1</sub>) se pesaron 250 mg y se disolvieron en 25 mL de metanol. Se conserv&oacute; a temperatura de 2-8°C, (Disoluci&oacute;n madre de CBZ- SM1).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Para la preparaci&oacute;n de la disoluci&oacute;n de trabajo de carbamazepina de concentraci&oacute;n 6 &micro;g/mL (ST) a partir de SM<sub>1</sub> se tom&oacute; una al&iacute;cuota de 15 &micro;L que fueron diluidos con agua destilada en volum&eacute;tricos de 25 mL. Se registr&oacute; el espectro UV en el rango de 200-340 nm.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><strong><em>Preparaci&oacute;n de la muestra de suero y plasma sin desproteinizar</em></strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El suero y el plasma congelado y libre de f&aacute;rmacos, para el estudio de selecci&oacute;n del agente desproteinizante, se obtuvo del laboratorio cl&iacute;nico del Hospital Docente Cl&iacute;nico Quir&uacute;rgico Ginecobst&eacute;trico &quot;Juan Bruno Zayas&quot;. Las muestras se conservaron a temperatura de -20 &ordm;C hasta el momento del an&aacute;lisis. Previa descongelaci&oacute;n en el momento de an&aacute;lisis se midieron 2 mL de suero o plasma y se a&ntilde;adieron 4 mL de agua, se enfri&oacute; en ba&ntilde;o de hielo y se centrifug&oacute; a 2 500 rpm durante 15 minutos.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><strong><em>Preparaci&oacute;n de la muestra de suero y plasma cargada con analito</em></strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">A partir de la disoluci&oacute;n de CBZ de concentraci&oacute;n 10 mg/mL se tom&oacute; un volumen de 0,09 mL, se a&ntilde;adieron 2 mL de plasma o del suero y se agit&oacute; durante 5 minutos.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Para la selecci&oacute;n del agente desproteinizante se compararon los espectros UV en el rango de 200-400 nm de muestras de suero y plasma libre de f&aacute;rmaco sin desproteinizar, muestras de suero y plasma libre de f&aacute;rmaco desproteinizadas; y muestras de suero y f&aacute;rmaco enriquecidas con CBZ desproteinizadas. Se utilizaron dos agentes desproteinizantes para el pretratamiento de la muestra: metanol y TCA al 10 %. Las proporciones suero o plasma y agente desproteinizante utilizadas fueron 1:2 para el metanol y 1:0,2 para el TCA.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">A la muestras sometidas a desproteinizaci&oacute;n se les a&ntilde;adieron los vol&uacute;menes correspondiente del agente desproteinizante y se complet&oacute; con agua destilada hasta 6 mL. Para el tratamiento con metanol se a&ntilde;adieron 4 mL y con el TCA al 10 % 0,4 mL.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Se agit&oacute; durante 5 minutos, se coloc&oacute; en un ba&ntilde;o de hielo durante 5 minutos y se centrifug&oacute; a 2 500 rpm por un tiempo de 15 minutos. Se decant&oacute; para obtener el sobrenadante claro. A partir del cual se midi&oacute; un volumen de 1 mL y se enras&oacute; con agua destilada a volumen exacto en volum&eacute;tricos de 25 mL.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La evaluaci&oacute;n de la efectividad de la desproteinizaci&oacute;n para cada agente desproteinizante estudiado se realiz&oacute; teniendo en cuenta como criterios de selecci&oacute;n, la disminuci&oacute;n de las intensidades de absorbancia obtenidas a las longitudes de onda de 235 y 280 nm.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><strong><em>Comportamiento espectral de las muestras de plasma, suero y de la carbamazepina en el rango ultravioleta del espectro electromagn&eacute;tico</em></strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La determinaci&oacute;n cuantitativa de la carbamazepina en el suero y el plasma requiere de un adecuado tratamiento previo, para lo cual ser&aacute; necesario seleccionar las condiciones adecuadas de preparaci&oacute;n de la muestra biol&oacute;gica utilizando procedimientos anal&iacute;ticos que permitan eliminar la mayor cantidad de sustancias end&oacute;genas de la matriz, como las prote&iacute;nas plasm&aacute;ticas y amino&aacute;cidos, que pueden interferir en la determinaci&oacute;n anal&iacute;tica. Por lo que fue necesario seleccionar el agente desproteinizante que garantizara una precipitaci&oacute;n eficiente de las prote&iacute;nas s&eacute;ricas y plasm&aacute;ticas, que son sustancias end&oacute;genas que podr&iacute;an interferir en la determinaci&oacute;n de la CBZ por espectrofotometr&iacute;a ultravioleta visible a la longitud de onda reportada para su estudio anal&iacute;tico de 285 nm.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Para la desproteinizaci&oacute;n de muestras biol&oacute;gicas en el estudio anal&iacute;tico de carbamazepina la literatura ha reportado el uso del &aacute;cido percl&oacute;rico 1,5 mol/L para la desproteinizaci&oacute;n del plasma [16], con este tratamiento se obtuvieron buenos resultados para la carbamazepina, pero no para sus metabolitos.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">No existen reportes acerca del uso del metanol ni del TCA como desproteinizante para el pretratamiento de muestras de plasma y suero en el an&aacute;lisis de carbamazepina. Para evaluar la efectividad del tratamiento de desproteinizaci&oacute;n en este estudio se aplic&oacute; la espectrofotometr&iacute;a UV.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La espectrofotometr&iacute;a de absorci&oacute;n ultravioleta visible es una herramienta muy vers&aacute;til que permite realizar toda una gran variedad de determinaciones a la hora de estudiar las prote&iacute;nas. As&iacute; el registro de la absorbancia a las longitudes de onda caracter&iacute;sticas de las prote&iacute;nas servir&aacute; para detectarlas. Por ello se selecciona esta t&eacute;cnica para estudiar la desproteinizaci&oacute;n de las muestras de suero y plasma.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">En las <a href="#f2">figuras 2</a> y <a href="#f3">3</a> se muestran los espectros de absorci&oacute;n en el rango UV del suero y plasma sin desproteinizar (SD), y la disoluci&oacute;n acuosa de carbamazepina de concentraci&oacute;n 6 &micro;g/mL. Se obtuvo que las muestras de suero y plasma sin desproteinizar exhibieron una banda de absorci&oacute;n por debajo de los 250 nm centrada sobre los 210 a 220 nm [23], correspondiente a la presencia de las prote&iacute;nas s&eacute;ricas y plasm&aacute;ticas debido a la propiedad de los enlaces pept&iacute;dicos de absorber en esta regi&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Algunos de los enlaces de las cadenas laterales de amino&aacute;cidos como fenilalanina, tirosina, tript&oacute;fano, glutetimida, glicina, arginina, aspartato, aspargina, e histidina tambi&eacute;n pueden absorber luz de longitud de onda cerca de los 210 nm.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Las bandas de absorci&oacute;n m&aacute;s significativas de las cadenas laterales de los amino&aacute;cidos proteicos se encuentran en el intervalo de longitudes de onda comprendido entre 230 y 300 nm y concretamente corresponden a la absorci&oacute;n de las cadenas laterales de los amino&aacute;cidos arom&aacute;ticos y de la cistina. La cistina produce una banda centrada alrededor de los 250 nm con un coeficiente de extinci&oacute;n molar muy peque&ntilde;o que apenas puede considerarse. Los residuos arom&aacute;ticos correspondientes a la fenilalanina, tript&oacute;fano y tirosina absorben entorno a los 260-290 nm. La fenilalanina s&oacute;lo absorbe de 250 a 260 nm y su contribuci&oacute;n es muy peque&ntilde;a. Por tanto la se&ntilde;al a 280 nm es debido a los residuos arom&aacute;ticos de tirosina y tript&oacute;fano, los cuales poseen grupos arom&aacute;ticos, responsables de la absorci&oacute;n al UV [18].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La carbamazepina mostr&oacute; un m&aacute;ximo de absorci&oacute;n a 285 nm, lo cual se corresponde con lo reportado en la literatura [3], debido a la presencia del n&uacute;cleo iminoestilbeno en su estructura, por tanto la presencia de las prote&iacute;nas s&eacute;ricas y plasm&aacute;ticas constituyen una interferencia en la determinaci&oacute;n anal&iacute;tica de carbamazepina por espectrofotometr&iacute;a UV.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="f2" id="f2"></a><img src="/img/revistas/ind/v28n3/f0210316.gif"></font></p>     
<p align="center"><font size="2" face="Verdana"> <a name="f3" id="f3"></a><img src="/img/revistas/ind/v28n3/f0310316.gif"></font></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><strong><em>Selecci&oacute;n del agente desproteinizante para el tratamiento previo del suero sangu&iacute;neo</em></strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Para este estudio se seleccionaron dos agentes desproteinizantes, el metanol y el &aacute;cido tricloroac&eacute;tico al 10 %. El metanol fue seleccionado porque es uno de los solventes org&aacute;nicos que ha sido utilizado en bioan&aacute;lisis para remover prote&iacute;nas, es ampliamente utilizado en la Cromotagraf&iacute;a L&iacute;quida de Alta Resoluci&oacute;n por su compatibilidad con las columnas cromatogr&aacute;ficas y adem&aacute;s es transparente en el rango UV a partir de los 210 nm. Los &aacute;cidos, son muy eficientes para precipitar las prote&iacute;nas [13], pero algunos f&aacute;rmacos son susceptibles a degradarse en este medio, por tanto es importante evaluar la estabilidad del f&aacute;rmaco en este medio.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Se demostr&oacute; que, el metanol permite una reducci&oacute;n considerable de la absorbancia de la muestra de suero en la regi&oacute;n espectral cercana a los 235nm. A la longitud de onda de 280 nm tambi&eacute;n se aprecia una reducci&oacute;n de la intensidad de la se&ntilde;al anal&iacute;tica, lo que demuestra la eficiencia del tratamiento para remover las prote&iacute;nas presentes en el suero. El &aacute;cido tricloroac&eacute;tico no result&oacute; eficiente para eliminar las prote&iacute;nas s&eacute;ricas, ya que los m&aacute;ximos de absorci&oacute;n a la longitud de onda 280 y por debajo de los 250 nm se mantienen con una intensidad muy similar a la observada para la muestra sin desproteinizar (<a href="#f4">figura 4</a>). En la <a href="#t1">tabla 1</a> se muestran los valores de absorbancia obtenidos antes y despu&eacute;s de la desproteinizaci&oacute;n.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="f4" id="f4"></a><img src="/img/revistas/ind/v28n3/f0410316.gif"></font></p>     
<p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="t1"></a><strong>TABLA  1. VALORES DE ABSORBANCIA OBTENIDOS PARA LAS MUESTRAS DE SUERO     <br> SIN DESPROTEINIZAR Y DESPROTEINIZADAS</strong></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">   <table border="1" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">     <tr>       <td width="177" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><strong>Muestra </strong></font></p></td>       <td width="189" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><strong>Absorbancia ( &lambda;=235 nm) </strong></font></p></td>       <td width="189" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><strong>Absorbancia ( &lambda;=280 nm) </strong></font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="177" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Suero sin desproteinizar </font></p></td>       <td width="189" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">2,827 </font></p></td>       <td width="189" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">1,348 </font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="177" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Suero-Metanol </font></p></td>       <td width="189" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,237 </font></p></td>       <td width="189" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,127 </font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="177" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana">Suero-TCA </font></p></td>       <td width="189" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">2,431 </font></p></td>       <td width="189" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">1,166 </font></p></td>     </tr>   </table> </div>       <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La <a href="#f5">figura 5</a> muestra la comparaci&oacute;n de los espectros de absorci&oacute;n en el rango UV de 200-340 nm del suero sin desproteinizar, el suero cargado con analito que fue sometido a desproteinizaci&oacute;n con metanol y el suero sin analito desproteinizado con metanol. Se puede corroborar que el metanol garantiza la precipitaci&oacute;n de las prote&iacute;nas pues se aprecia una disminuci&oacute;n significativa del m&aacute;ximo de absorci&oacute;n a la longitud de onda de 280 nm. En el espectro de la muestra de suero cargada con analito y desproteinizada se observ&oacute; un desplazamiento del m&aacute;ximo de absorci&oacute;n hacia la longitud de onda de 285 nm el cu&aacute;l es caracter&iacute;stico de la carbamazepina demostrando esto la capacidad del metanol para remover las prote&iacute;nas s&eacute;ricas, lo cual se sustenta adem&aacute;s con la desaparici&oacute;n del m&aacute;ximo de absorci&oacute;n a 280 nm para la muestra de suero desproteinizada sin analito. Los valores de absorbancia observados a las longitudes de onda caracter&iacute;sticas de las prote&iacute;nas, 235 y 280 nm; y de la carbamazepina a 285 nm se muestran en la <a href="#t2">tabla 2</a>.</font></p>       <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="f5" id="f5"></a><img src="/img/revistas/ind/v28n3/f0510316.gif"></font></p>     
<p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="t2"></a><strong>TABLA  2. VALORES DE ABSORBANCIA PARA LAS MUESTRAS DE SUERO CON  CBZ A&Ntilde;ADIDA, SOMETIDAS     <br> DESPROTEINIZACI&Oacute;N O NO, Y DEL SUERO DESPROTEINIZADO CON METANOL</strong></font></p>      <div align="center">   <table border="1" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">     <tr>       <td width="150" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><strong>Muestra </strong></font></p></td>       <td width="113" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><strong>Absorbancia (&lambda;=235 nm) </strong></font></p></td>       <td width="102" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana"><strong>Absorbancia (&lambda;=280 nm) </strong></font></p></td>       <td width="123" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><strong>Absorbancia (&lambda;=285 nm) </strong></font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="150" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Suero-CBZ </font></p></td>       <td width="113" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">2,482 </font></p></td>       <td width="102" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">1,058 </font></p></td>       <td width="123" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">1,025 </font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="150" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Suero-CBZ-Metanol </font></p></td>       <td width="113" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,619 </font></p></td>       <td width="102" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,477 </font></p></td>       <td width="123" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,506 </font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="150" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana">Suero-Metanol </font></p></td>       <td width="113" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,086 </font></p></td>       <td width="102" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,051 </font></p></td>       <td width="123" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,057 </font></p></td>     </tr>   </table> </div>       <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><strong><em>Selecci&oacute;n del agente desproteinizante para el tratamiento previo del plasma sangu&iacute;neo</em></strong></font></p>       <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El estudio anal&iacute;tico de f&aacute;rmacos tambi&eacute;n puede realizarse en muestras de plasma. El plasma es una de las muestras biol&oacute;gicas de mayor inter&eacute;s para el estudio de f&aacute;rmacos y se prefiere generalmente debido a la presencia de mayor cantidad de f&aacute;rmaco. Est&aacute; constituido por un 90 % de agua y 10 % de solutos. Contiene una gran variedad de prote&iacute;nas, lipoprote&iacute;nas, nutrientes, metabolitos, productos de degradaci&oacute;n, iones inorg&aacute;nicos y hormonas disueltos o suspendidos. M&aacute;s del 70 % de los solutos se corresponden a prote&iacute;nas plasm&aacute;ticas principalmente inmunoglobulinas, alb&uacute;mina s&eacute;rica, apolipoprote&iacute;nas involucradas en el transporte de l&iacute;pidos, transferina y prote&iacute;nas de la coagulaci&oacute;n tales como el fibrin&oacute;geno y la protrombina. Los componentes inorg&aacute;nicos son: cloruro de sodio, bicarbonato, fosfato, cloruro de calcio, cloruro de magnesio, cloruro de potasio y sulfato de sodio. Entre las mol&eacute;culas org&aacute;nicas contiene: glucosa, amino&aacute;cidos, &aacute;cido acetilac&eacute;tico, &aacute;cido l&aacute;ctico, &aacute;cido &uacute;rico, &aacute;cidos grasos, amon&iacute;aco, bilirrubina, colesterol, &eacute;steres de colesterol, creatinina, fenilalanina, grasas, l&iacute;pidos, &aacute;cido pir&uacute;vico, urea, alanina, cistina, &aacute;cido glut&aacute;mico y glutamina. Las prote&iacute;nas mayoritarias del plasma son: la alb&uacute;mina, alfa globulinas, beta globulinas y gamma globulinas. Otros metabolitos se encuentran en niveles de trazas como las hormonas, vitaminas y pigmentos biliares [16].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Debido al elevado contenido de prote&iacute;nas se requerir&aacute; la desproteinizaci&oacute;n previa del plasma para eliminar interferencias en el an&aacute;lisis. Se demostr&oacute; que, el metanol permite una reducci&oacute;n considerable de la absorbancia en la regi&oacute;n espectral cercana a los 235nm. A la longitud de onda de 280 nm tambi&eacute;n se aprecia una reducci&oacute;n de la intensidad de la se&ntilde;al anal&iacute;tica, lo que demuestra la eficiencia del tratamiento para remover las prote&iacute;nas presentes en el plasma. El &aacute;cido tricloroac&eacute;tico no mostr&oacute; efectividad en la desnaturalizaci&oacute;n de las prote&iacute;nas ya que el espectro de absorci&oacute;n mantiene la se&ntilde;al caracter&iacute;stica de los residuos arom&aacute;ticos de tirosina, tript&oacute;fano y fenilalanina a 280 nm, la cual interfiere en la determinaci&oacute;n de carbamazepina a 285 nm. (<a href="#f6">figura 6</a>). Los valores de absorbancia observados a las longitudes de onda caracter&iacute;sticas de las prote&iacute;nas, 235 y 280 nm; y de la carbamazepina a 285 nm se muestran en la <a href="#t3">tabla 3</a>.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="f6" id="f6"></a><img src="/img/revistas/ind/v28n3/f0610316.gif"></font></p>     
<p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="t3"></a><strong>TABLA  3. VALORES DE ABSORBANCIA OBTENIDOS PARA LAS MUESTRAS DE PLASMA     <br> SIN DESPROTEINIZAR Y DESPROTEINIZADAS</strong></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">   <table border="1" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">     <tr>       <td width="183" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><strong>Muestra </strong></font></p></td>       <td width="192" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><strong>Absorbancia (&lambda;=235 nm) </strong></font></p></td>       <td width="189" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><strong>Absorbancia (&lambda;=280 nm) </strong></font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="183" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Plasma sin desproteinizar </font></p></td>       <td width="192" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">2,034 </font></p></td>       <td width="189" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,672 </font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="183" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Plasma-Metanol </font></p></td>       <td width="192" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,126 </font></p></td>       <td width="189" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,077 </font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="183" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana">Plasma-TCA </font></p></td>       <td width="192" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">2,965 </font></p></td>       <td width="189" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,896 </font></p></td>     </tr>   </table> </div>       <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La <a href="#f7">figura 7</a> muestra la comparaci&oacute;n de los espectros de absorci&oacute;n en el rango UV de 200-340 nm del plasma sin desproteinizar, el plasma cargado con analito que fue sometido a desproteinizaci&oacute;n con metanol y el plasma sin analito desproteinizado con metanol. Se comprob&oacute; que el metanol garantiz&oacute; la precipitaci&oacute;n de las prote&iacute;nas ya que disminuy&oacute; significativamente el m&aacute;ximo de absorci&oacute;n a la longitud de onda de 280 nm. En el espectro de la muestra de plasma enriquecida con analito y desproteinizada se observ&oacute; un desplazamiento del m&aacute;ximo de absorci&oacute;n hacia la longitud de onda de 285 nm el cu&aacute;l es caracter&iacute;stico de la carbamazepina demostrando esto la capacidad del metanol para desproteinizar el plasma (ver <a href="#t4">tabla 4</a>).</font></p>       <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="f7" id="f7"></a><img src="/img/revistas/ind/v28n3/f0710316.gif"></font></p>     
<p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="t4"></a><strong>TABLA 4. VALORES DE ABSORBANCIA PARA LAS MUESTRAS DE CBZ A&Ntilde;ADIDA, SOMETIDAS     <br> DESPROTEINIZACI&Oacute;N O NO, Y DEL PLASMA DESPROTEINIZADO CON METANOL</strong></font></p>     <div align="center">   <table border="1" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">     <tr>       <td width="160" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><strong>Muestra </strong></font></p></td>       <td width="113" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><strong>Absorbancia (&lambda;=235 nm) </strong></font></p></td>       <td width="104" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana"><strong>Absorbancia (&lambda;=280 nm) </strong></font></p></td>       <td width="119" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><strong>Absorbancia (&lambda;=285 nm) </strong></font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="160" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Plasma-CBZ </font></p></td>       <td width="113" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">2,599 </font></p></td>       <td width="104" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">1,305 </font></p></td>       <td width="119" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">1,277 </font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="160" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Plasma-CBZ-Metanol </font></p></td>       <td width="113" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,355 </font></p></td>       <td width="104" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,272 </font></p></td>       <td width="119" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,287 </font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="160" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana">Plasma-Metanol </font></p></td>       <td width="113" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,281 </font></p></td>       <td width="104" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,124 </font></p></td>       <td width="119" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,122 </font></p></td>     </tr>   </table> </div>       <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El agente desproteinizante que mostr&oacute; mayor eficacia para remover las prote&iacute;nas en el tratamiento previo de las muestras de suero y plasma fue el metanol.</font></p>       <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El espectro UV de carbamazepina en metanol reportado en la literatura, exhibe un m&aacute;ximo de gran intensidad a 285 nm y el f&aacute;rmaco es estable en este medio. Adem&aacute;s el metanol posee transparencia en la regi&oacute;n UV a partir de 210 nm [3], lo cual evita interferencias por efecto del disolvente. El tratamiento de las muestras biol&oacute;gicas con este disolvente permite obtener un sobrenadante claro y transparente luego de la centrifugaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Se decide proponer el suero como muestra biol&oacute;gica de trabajo ya que su obtenci&oacute;n, a partir de la sangre, no requiere la adici&oacute;n de un anticoagulante.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">En la <a href="#f8">figura 8</a> se observa que la muestra de suero, con el f&aacute;rmaco a&ntilde;adido, mostr&oacute; un pico de m&aacute;xima intensidad a 285 nm luego de la desproteinizaci&oacute;n con metanol a bajas temperaturas.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="f8" id="f8"></a><img src="/img/revistas/ind/v28n3/f0810316.gif"></font></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Como se puede apreciar en la <a href="#t5">tabla 5</a>, el suero desproteinizado con metanol exhibe un m&aacute;ximo de absorci&oacute;n superior al mostrado por la disoluci&oacute;n patr&oacute;n de CBZ de concentraci&oacute;n 6 &mu;g/mL, por lo que podemos inferir que a&uacute;n est&aacute;n presentes otras sustancia interferentes y ser&aacute; necesario emplear otros procedimientos de purificaci&oacute;n de la muestra para poder aplicar la espectrofotometr&iacute;a UV.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="t5"></a><strong>TABLA  5. VALORES DE ABSORBANCIA OBTENIDOS PARA LAS MUESTRAS DE SUERO     <br> ANALIZADAS Y EL PATR&Oacute;N DE  CBZ DE CONCENTRACI&Oacute;N 6 &mu;</strong><strong>g/mL</strong></font></p>      <div align="center">   <table border="1" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">     <tr>       <td width="187" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><strong>Muestra </strong></font></p></td>       <td width="123" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><strong>Absorbancia (&lambda;=285 nm) </strong></font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="187" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Suero-CBZ </font></p></td>       <td width="123" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">1,128 </font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="187" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Suero-CBZ-Metanol </font></p></td>       <td width="123" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,388 </font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="187" valign="top">    <p align="center"><font size="2" face="Verdana">CBZ-Metanol 6 m g/mL </font></p></td>       <td width="123" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana">0,274 </font></p></td>     </tr>   </table> </div>       <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Se propone dise&ntilde;ar un procedimiento de extracci&oacute;n l&iacute;quido-l&iacute;quido para lograr una mayor purificaci&oacute;n de la muestra de suero luego de la desproteinizaci&oacute;n con el metanol.</font></p>       <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>CONCLUSIONES</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Teniendo en cuenta los resultados obtenidos se propone la desproteinizaci&oacute;n de la muestra de suero utilizando una proporci&oacute;n muestra biol&oacute;gica-metanol (1:2), enfriando en ba&ntilde;o de hielo durante 10 min y posterior centrifugaci&oacute;n durante 15 minutos a 3500 rpm.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Se recomienda emplear el metanol como agente desproteinizante para el tratamiento previo de la muestra de suero en el estudio anal&iacute;tico de carbamazepina por espectrofotometr&iacute;a UV y por Cromatograf&iacute;a L&iacute;quida de Alta Resoluci&oacute;n con detecci&oacute;n UV a 285 nm. Para el an&aacute;lisis por espectrofotometr&iacute;a UV se sugiere la combinaci&oacute;n con el procedimiento de extracci&oacute;n l&iacute;quido-l&iacute;quido para garantizar una mayor purificaci&oacute;n de la muestra y mejorar la selectividad.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</strong></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> 1. ARMIJO, J. A. &quot;F&aacute;rmacos antiepil&eacute;pticos y anticonvulsivos&quot;. En: <em>Farmacolog&iacute;a Humana. </em>FL&Oacute;REZ, J. (Director), 3ra Edici&oacute;n. Espa&ntilde;a: Masson, S.A., 1997, pp. 493-97.    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">2. MCNAMARA J. O. &quot;Pharmacotherapy of the epilepsies&quot;. En: <em>Goodman and Gilman's the Pharmacological Basis of Therapeutics. </em>BRUNTON, L. L., (Editor). 11na Edici&oacute;n. New York: McGraw-Hill, 2006. ISBN: 0-07-146804-8.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">3. GALICHET L. Y. <em>Clarke's isolation and identification of drug in pharmaceutical, body fluids, and post-morten material</em>. 3ra Edici&oacute;n. London: The Pharmaceutical Press, 2005.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">4. K&Uuml;LPMANN, W. R. y OELLERICH, M. &quot;Monitoring of therapeutic serum concentrations of antiepileptic drugs by a newly developed gas chromatographic procedure and enzyme immunoassay (EMIT): a comparative study&quot;. <em>Journal of Clinical Chemistry and Clinical Biochemistry. </em> 1981, 19(5), 249-58.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">5. K&Uuml;LPMANN , W. R. &quot;A gas-chromatographic method for the determination of carbamazepine, phenobarbital, phenytoin and primidone in the same extract of serum&quot;. <em>Journal of Clinical Chemistry and Clinical Biochemistry. </em> 1980, 18(4), 227-232.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">6. RAINBOW, S. J.; DAWSON, C. M.; TICKNER, T. R. &quot;Direct serum injection high-performance liquid chromatographic method for the simultaneous determination of phenobarbital, carbamazepine and phenytoin&quot;. <em>Journal of Chromatography</em>. 1990, 527(2), 389-396.    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">7. ROJAS, J. H.; SIERRA, N. &quot;Estandarizaci&oacute;n y validaci&oacute;n de una metodolog&iacute;a anal&iacute;tica para la determinaci&oacute;n de carbamazepina en plasma mediante extracci&oacute;n en fase s&oacute;lida y cromatograf&iacute;a l&iacute;quida de alta eficiencia&quot;, <em>Revista Colombiana de Ciencias Qu&iacute;mica Farmac&eacute;utica. </em> 2007, 36(1), 55-69.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">8. MANDRIOLI, R.; ALBANI, F.; CASAMENTI, G., <em>et al</em>., &quot;Simultaneous high-performance liquid chromatography determination of carbamazepine and five of its metabolites in plasma of epileptic patients&quot;. <em>Journal of Chromatography B: Biomedical Sciences and Application. </em>2001, 762, 109-116.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">9. MARTINAVARRO-DOM&Iacute;NGUEZ, A., <em>et al</em>., &quot;Therapeutic drug monitoring of anticonvulsant drugs by micellar HPLC with direct injection of serum samples&quot;. <em>Clinical Chemistry. </em> 2002, 48(10), 1696-1702.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">10. KISHORE, P., <em>et al</em>., &quot;Validated high performance liquid chromatographic methods for simultaneous determination of phenytoin, phenobarbital and carbamazepine in human serum&quot;. <em>Arzneimitteln-Forschung/Drug Res. </em> 2003, 53(11), 763-768.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">11. C&Aacute;MARA, M. S.; MASTRANDEA, C.; GOICOCHEA, H. C. &quot;Chemometrics-assisted simple UV-spectroscopic determination of carbamaz epine in human serum and comparison with references methods&quot;. <em>Journal of Biochemical and Biophysical Methods</em>. 2005, 64, 153-166.    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">12. REZAEI, Z., <em>et al</em>.,&quot;Simultaneous spectrophotometric determination of carbamazepine and phenytoin in serum by PLS regression and comparison with HPLC&quot;. <em>Talanta</em>. 2005, 65, 21-28.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">13. BIDDLECOMBE, B.; SMITH G. &quot;Sample preparation techniques&quot;. Evans G. (Editor). En: A <em>Handbook of Bioanalysis and Drug Metabolism</em>. Florida: CRC Press LLC, 2004.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">14. SMITH, R. V.; STEWART, J. T. &quot;Textbook of Biopharmaceutical Analysis&quot;. 3era Edici&oacute;n. Philadelphia: Lea &amp; Febiger, 1981, p. 279. ISBN: 0-8121-0770-3.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">15. SUARD&Iacute;AZ, J. H. P. &quot;Monitoreo de los niveles de medicamentos en la sangre. En: Laboratorio Cl&iacute;nico. SURD&Iacute;AZ J. P., CRUZ C.R., COLINA A. R. La Habana: Editorial Ciencias M&eacute;dicas, 2004, p. 194-199. ISBN: 959-212-120-6.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">16. NELSON, D. L.; COX, M. M. &quot;Lehninger. Principles of Biochemistry&quot;. 5ta Edici&oacute;n. New York: WH Freeman and Company, 2008, p. 921. ISBN: 10:0-7167-7108-X.    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">17. MANAHAN, S. E. &quot;Toxicological Chemistry and Biochemistry&quot;. 3era Edici&oacute;n. Florida: CRC Press LLC, 2003, p. 424. ISBN: 1-56670-618-1.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">18. CH&Aacute;VEZ, M. A., <em>et al</em>., &quot;Temas de enzimolog&iacute;a&quot;. Tomo II. La Habana: ENPES, 1990, p. 280.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">19. BUGAMELLI, F., <em>et al</em>.,&quot;Simultaneous analysis of six antiepileptic drugs and two selected metabolites in human plasma by liquid chromatography after solid-phase extraction&quot;. <em>Analytica Chimica Acta </em> 2002, 472, 1-10.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">20. GHASEMI, J.; NIAZI, A. &quot;Two and three-way chemometrics methods applied for spectrometric determination of lorazepam in pharmaceutical formulations and biological fluids&quot;. <em>Analytica Chimica Acta </em>. 2005, 533, 160-177.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">21. DAYKIN, C.A., <em>et al</em>., &quot;The comparison of plasma deproteinization methods for the detection of low-molecular-weight metabolites by 1 H nuclear magnetic resonance spectroscopy&quot;. <em>Analytical Biochemistry </em>. 2002, 304, 220-230.    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">22. SMEREK, A. L.; HEAD, S. L.; NEEDHAM, L. L. &quot;Comparison or Two Deproteinization Methods for the Determination of DDT and DDT Metabolites in Serum&quot;. <em>Analytical. Letters. </em> 1981, 14(2), 81-96.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">23. GARC&Iacute;A-SEGURA J. M. S., <em>et al</em>., T&eacute;cnicas Instrumentales de An&aacute;lisis en Bioqu&iacute;mica. Espa&ntilde;a: Editorial S&iacute;ntesis S.A, 1996, pp. 398. ISBN: 84-7738-429-0.    </font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana">Recibido: 27/01/2016    <br> Aceptado: 6/05/2016</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">       <p align="justify"> <font size="2" face="Verdana"><em>MSc. Yamil&eacute; Heredia-D&iacute;az</em>, Universidad de Oriente, Santiago de Cuba, Cuba, <a href="mailto:yherediad@uo.edu.cu">yherediad@uo.edu.cu</a></font></p> </div>      ]]></body><back>
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