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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[ASPECTOS TECNOLÓGICOS GENERALES PARA LA CONVERSIÓN A ETANOL DE LA BIOMASA LIGNOCELULOSICA II]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[For their high content of fermentable sugars and their extraordinary readiness, among other many reasons, is the biomass lignocelulósica the matter excellence cousin for the production of ethanol fuel, which is considered as a cleaner alternative to the fossil fuels. In this work are treated some of the challenges that faces the production of this renewable fuel, derived of the employment of this substrate that include their pretratamiento for explosion of vapor (EV) and the enzymatic hydrolysis (EH), as well as the compound inhibitors of the fermentation that are generated as consequence of these processes. In this context, the productive capacities of the microbial species are fundamental in the yield and efficiency of the fermentative process. The increment in the consumption of glucose and xylose, the tolerance to the temperature and the compound inhibitors is characters that can be developed or powered by means of the application of different strategies of evolutionary engineering, being this a important contribution in the improvement of the technology of the lignocellulosic ethanol.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>REVISION BIBLIOGRAFICA </b></font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="left"><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>ASPECTOS TECNOL&Oacute;GICOS GENERALES PARA LA   CONVERSI&Oacute;N A ETANOL DE LA BIOMASA LIGNOCELULOSICA II</strong></font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="left"> <strong><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">TECHNOLOGICAL ASPECTS GENERAL FOR CONVERSION TO ETHANOL FROM BIOMASS LIGNOCELLULOSIC II</font></strong></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>MSc. Juan Francisco Almenares-Verdec&iacute;a,    Lic. Frande Ngoma-Presline, Dr. Manuel de Jes&uacute;s Serrat-D&iacute;az</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Facultad de Ciencias Naturales, Universidad de Oriente, Santiago de Cuba. <a href="mailto:juan@cebi.uo.edu.cu">juan@cebi.uo.edu.cu</a></font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p> <hr>     <p align="left"><strong><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">RESUMEN</font></strong></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Por su elevado contenido de az&uacute;cares fermentables y su extraordinaria disponibilidad, entre otras   muchas razones, es la biomasa lignocelul&oacute;sica la materia prima de excelencia para la producci&oacute;n   de etanol carburante, el cual es considerado como una alternativa m&aacute;s limpia a los combustibles   f&oacute;siles. En este trabajo se tratan algunos de los retos que enfrenta la producci&oacute;n de este combustible   renovable, derivados del empleo de este sustrato, que incluyen su pretratamiento por explosi&oacute;n de   vapor (EV) y la hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica (HE), as&iacute; como los compuestos inhibidores de la fermentaci&oacute;n   que se generan como consecuencia de estos procesos. En este contexto, las capacidades productivas de la especie microbiana son fundamentales en el rendimiento y eficiencia del proceso   fermentativo. El incremento en el consumo de glucosa y xilosa, la tolerancia a la temperatura y   a los compuestos inhibidores son caracteres que pueden ser desarrollados o potenciados mediante   la aplicaci&oacute;n de diferentes estrategias de ingenier&iacute;a evolutiva, siendo &eacute;sta una importante   contribuci&oacute;n en el mejoramiento de la tecnolog&iacute;a del etanol lignocelul&oacute;sico.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <strong>Palabras clave</strong>: etanol lignocelul&oacute;sico, tolerancia a inhibidores, termotolerancia ingenier&iacute;a   evolutiva.</font></p> <hr>     <p align="left"><strong><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">ABSTRACT</font></strong></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">For their high content of fermentable sugars and their extraordinary readiness, among other many   reasons, is the biomass lignocelul&oacute;sica the matter excellence cousin for the production of ethanol   fuel, which is considered as a cleaner alternative to the fossil fuels. In this work are treated some   of the challenges that faces the production of this renewable fuel, derived of the employment of this   substrate that include their pretratamiento for explosion of vapor (EV) and the enzymatic   hydrolysis (EH), as well as the compound inhibitors of the fermentation that are generated as   consequence of these processes. In this context, the productive capacities of the microbial species   are fundamental in the yield and efficiency of the fermentative process. The increment in the   consumption of glucose and xylose, the tolerance to the temperature and the compound inhibitors   is characters that can be developed or powered by means of the application of different strategies   of evolutionary engineering, being this a important contribution in the improvement of the   technology of the lignocellulosic ethanol.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Keywords</strong>: lignocellulosic ethanol, tolerance to inhibitors, thermo tolerance, evolutionary engineering.</font></p> <hr>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="left"><strong><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">INTRODUCCION</font></strong></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El cambio clim&aacute;tico global es una realidad y   uno de sus principales or&iacute;genes est&aacute; en la quema   indiscriminada de combustibles f&oacute;siles, lo que ha   incrementado los niveles de CO<sub>2</sub> atmosf&eacute;rico. Se   hace necesario un cambio de mentalidad que   disminuya la explotaci&oacute;n de los recursos energ&eacute;ticos no renovables, desarrollando un nuevo modelo de explotaci&oacute;n energ&eacute;tica en armon&iacute;a con el   medio ambiente, a partir de un mayor protagonismo   de las energ&iacute;as renovables, eficientes, baratas y   poco contaminantes [1].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Una de las m&aacute;s importantes aplicaciones de la   biotecnolog&iacute;a moderna, a la vez que supone una   respuesta a la contaminaci&oacute;n ambiental, es la   utilizaci&oacute;n de residuos org&aacute;nicos de la actividad   humana y de materiales renovables para producir   biocombustibles m&aacute;s limpios, como el etanol, factibles de ser empleados como sustitutos de los   combustibles f&oacute;siles [1].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La producci&oacute;n tradicional de etanol tiene lugar   por la fermentaci&oacute;n de sustratos azucarados o   ricos en almid&oacute;n. Emplear estos sustratos con   este fin agrupa un conjunto de obst&aacute;culos tanto econ&oacute;micos como &eacute;ticos, pues estos sustratos son   la base para la producci&oacute;n de alimentos esenciales para el hombre y los animales, en medio de la   grave crisis alimentaria que afecta a una gran parte   de los habitantes de pa&iacute;ses subdesarrollados.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El etanol de segunda generaci&oacute;n se obtiene por   fermentaci&oacute;n de los az&uacute;cares simples fermentables   (pentosas y hexosas) procedentes de la hidr&oacute;lisis   (qu&iacute;mica o enzim&aacute;tica) de los materiales   lignocelul&oacute;sicos [2]. &Eacute;ste se considera una alternativa atractiva a los combustibles f&oacute;siles, por producir   bajas emisiones y no generar cantidades netas de CO<sub>2</sub> [3, 4, 5].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El incremento de los rendimientos en la producci&oacute;n de etanol de lignocelulosa depende de las   caracter&iacute;sticas del microorganismo, del sustrato y   de un proceso tecnol&oacute;gico apropiado. El microorganismo ideal para la producci&oacute;n de etanol de   segunda generaci&oacute;n debe poseer una serie de   requisitos como ser r&aacute;pido fermentador, tolerante   a inhibidores generados en la etapa de   pretratamiento de los materiales lignocelul&oacute;sicos,   termorresistente, as&iacute; como tolerante a elevadas   concentraciones de etanol, adem&aacute;s de ser capaz   de producir etanol a partir de todos los az&uacute;cares   presentes. En la naturaleza no existe un microorganismo con tales caracter&iacute;sticas [6].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En tal sentido es posible conseguir las capacidades antes mencionadas mediante la exploraci&oacute;n de la enorme y casi desconocida diversidad   del mundo microbiano a trav&eacute;s de una estrategia   de b&uacute;squeda (screening) y la aplicaci&oacute;n de la   ingenier&iacute;a evolutiva [7, 8, 9]. La ingenier&iacute;a evolutiva se basa en la posibilidad de seleccionar c&eacute;lulas con propiedades ventajosas bajo condiciones   que reflejen las caracter&iacute;sticas de un proceso   industrial, por ejemplo diferentes fuentes de carbono o la presencia de inhibidores. La adaptaci&oacute;n   mediante ingenier&iacute;a evolutiva se muestra como   una alternativa prometedora para obtener   microorganismos m&aacute;s tolerantes a las temperaturas   y a los t&oacute;xicos generados durante el pretratamiento de la biomasa lignocelul&oacute;sica [10, 11].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El objetivo de esta revisi&oacute;n es abordar algunos   aspectos clave de la tecnolog&iacute;a de producci&oacute;n de   etanol de segunda generaci&oacute;n, tales como las   condiciones del pretratamiento, su influencia sobre la hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica, los inhibidores generados y su efecto sobre la especie microbiana   fermentadora y el rendimiento del proceso, no   tratados en el art&iacute;culo anterior. Estas cuestiones   constituyen actualmente un obst&aacute;culo para el   establecimiento de un proceso tecnol&oacute;gico eficiente y ambientalmente sostenible con el cual se   obtenga etanol combustible a precios competitivos frente a los combustibles f&oacute;silesdesarrollo.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Obtenci&oacute;n de etanol a partir de materiales   lignocelul&oacute;sicos</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El bioetanol producido a partir de materiales   lignocelul&oacute;sicos, tambi&eacute;n llamado bioetanol de   segunda generaci&oacute;n, se presenta como alternativa de futuro a los biocombustibles de primera   generaci&oacute;n. La biomasa lignocelul&oacute;sica es el   material renovable m&aacute;s abundante sobre la tierra,   con una generaci&oacute;n anual cercana a los 25 000   millones de toneladas; habitualmente se encuentra formando parte de los residuos agr&iacute;colas,   forestales y agroindustriales, por lo que no compite con el mercado alimentario y su coste es   menor al de los materiales azucarados o amil&aacute;ceos,   lo que contribuye a disminuir el coste final del   biocombustible.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La biomasa lignocelul&oacute;sica puede clasificarse   seg&uacute;n Tom&aacute;s Pej&oacute;. M. E. (2009) y Sung-Jae   Yang et., al. (2010) [12, 13] en seis grupo principales: 1) residuos agr&iacute;colas (p.ej bagazo de ca&ntilde;a   de az&uacute;car, bagazo de ma&iacute;z, pajas de trigo, arroz y   cebada), 2) maderas duras (p.ej. j&uacute;caro, guayac&aacute;n,   caguair&aacute;n, yamaquey, etc&eacute;tera), 3) maderas blandas (pino, picea), 4) residuos celul&oacute;sicos (papel   peri&oacute;dico, lodos de papel reciclado, residuos de papel   de oficina), 5) biomasa herb&aacute;cea (alfalfa, alpiste,   limoncillo); y 6) residuos s&oacute;lidos urbanos (RSU).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Entre las diferentes materias primas de origen   lignocelul&oacute;sico, el bagazo de ca&ntilde;a es una fuente   abundante de biomasa, principalmente en Am&eacute;rica Latina y el Caribe. Por cada 1,000 kg de ca&ntilde;a, en   el campo se pierden 232 kg, siendo procesados en la   f&aacute;brica 768 kg, de los cuales se obtienen 104 kg de   az&uacute;car (aprox. 10 % de la ca&ntilde;a), 26 kg de mieles   finales, 221 kg de bagazo, adem&aacute;s de la cachaza   [14]. Seg&uacute;n las estad&iacute;sticas de la Organizaci&oacute;n de las Naciones Unidas para la Agricultura, en el   mundo se produjeron 607 millones de toneladas de   az&uacute;car en el a&ntilde;o 2007 [16], lo que supone 13 400   millones de toneladas de bagazo disponible, siendo   una de las fuentes de biomasa lignocelul&oacute;sica m&aacute;s   abundantes. El bagazo es una opci&oacute;n muy prometedora como materia prima en los procesos de producci&oacute;n de etanol de segunda generaci&oacute;n mediante   hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica y fermentaci&oacute;n [16, 17].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Por su composici&oacute;n qu&iacute;mica, la biomasa   lignocelul&oacute;sica es muy diferente de los productos   con alto contenido de az&uacute;cares o almid&oacute;n. La compleja estructura de estos materiales, compuestos   fundamentalmente por celulosa, hemicelulosas y   lignina, estas dos &uacute;ltimas &iacute;ntimamente asociadas constituyendo una verdadera barrera f&iacute;sica a la   penetraci&oacute;n de los enzimas celulol&iacute;ticos, implica que   los procesos para la obtenci&oacute;n de etanol deban   ajustarse de acuerdo a las caracter&iacute;sticas de estos   componentes. [18]</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La celulosa y hemicelulosas, deben ser   hidrolizadas a az&uacute;cares simples, para luego ser   fermentados a etanol. La fermentaci&oacute;n de la   glucosa, procedente de la celulosa, es un proceso   establecido. Sin embargo, la fermentaci&oacute;n de las   pentosas derivadas de las hemicelulosas es un   proceso que a&uacute;n no es viable econ&oacute;micamente,   por no existir microorganismos con la eficiencia   fermentativa requerida para ello.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La lignina no puede ser fermentada a etanol,   as&iacute; como los extractivos y otros componentes   presentes. Su presencia tiene efecto negativo en   procesos fermentativos, por lo que cualquier proceso viable de obtenci&oacute;n de etanol a partir de   biomasa lignocelul&oacute;sica, tiene que incluir su extracci&oacute;n y aprovechamiento en la obtenci&oacute;n de productos de valor y/o generaci&oacute;n de energ&iacute;a. La lignina   se puede emplear en la extracci&oacute;n de una gran   variedad de productos de alto valor a&ntilde;adido, o como   una fuente de energ&iacute;a que pudiera cubrir, total o   parcialmente, las demandas energ&eacute;ticas de una   planta productora de etanol a partir de biomasa. [19]</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El proceso para producir etanol a partir de   material lignocelul&oacute;sico consta de cuatro etapas   fundamentales: pretratamiento, hidr&oacute;lisis, fermentaci&oacute;n, y separaci&oacute;n/purificaci&oacute;n [20]. En los ep&iacute;grafes que siguen ser&aacute;n abordadas las tres primeras de estas etapas.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Pretratamiento</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El objetivo fundamental del pretratamiento es   la separaci&oacute;n de los componentes b&aacute;sicos de los   materiales lignocelul&oacute;sicos, celulosa, hemicelulosa   y lignina. El pretratamiento tiene por objetivo   modificar la estructura macrosc&oacute;pica y microsc&oacute;pica del material lignocelul&oacute;sico, es decir debe   disociar el revestimiento que la lignina y la   hemicelulosa forman alrededor de la celulosa de   tal manera que todos los componentes como la   hemicelulosa y la lignina sean separados [21],   debe alterar las caracter&iacute;sticas estructurales de la   celulosa, tales como la cristalinidad o el grado de   polimerizaci&oacute;n y provocar la solubilizaci&oacute;n y/o   redistribuci&oacute;n de la lignina, quedando la celulosa   accesible para la posterior hidr&oacute;lisis, ya sea &aacute;cida   o enzim&aacute;tica [22].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los efectos sobre el material lignocelul&oacute;sico   son variados, sin embargo se pueden resumir en   varios factores de inter&eacute;s para el posterior proceso de hidr&oacute;lisis como son: incremento del &aacute;rea   superficial y disminuci&oacute;n de la cristalinidad de la   celulosa, remoci&oacute;n de la hemicelulosa y la lignina,   adem&aacute;s de la modificaci&oacute;n de la estructura qu&iacute;mica de la lignina. Desde un punto de vista econ&oacute;mico, se ha estimado que el pretratamiento representa aproximadamente el 33 % del coste total del   proceso [13, 23] y por ello, es necesario desarrollar tecnolog&iacute;as eficientes que reduzcan los costos globales de producci&oacute;n de etanol.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En la actualidad existen diferentes tecnolog&iacute;as   disponibles para pretratar la biomasa lignocelul&oacute;sica,   las que pueden ser clasificadas, seg&uacute;n su naturaleza,   en pretratamientos f&iacute;sicos, qu&iacute;micos, biol&oacute;gicos y   fisico-quimicos, o una mezcla de vario de ellos [12].   Entre los pretratamientos f&iacute;sico-qu&iacute;micos, la explosi&oacute;n por vapor (EV) es el m&aacute;s ampliamente utilizado   y el de mejores resultados para biomasas   lignocelul&oacute;sica con las caracter&iacute;sticas del bagazo de   ca&ntilde;a [24, 25, 26].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Pretratamiento de EV</strong></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Durante la EV la lignina es redistribuida y la   hemicelulosa parcialmente solubilizada [13, 27]. Estudios recientes han concluido que la solubilizaci&oacute;n parcial de la hemicelulosa y la redistribuci&oacute;n de la   lignina son efectos incluso m&aacute;s importantes que la   ruptura de las fibras o la modificaci&oacute;n de la   cristalinidad de la celulosa, para el aumento de la   digestibilidad del bagazo de la ca&ntilde;a de az&uacute;car   durante la hidr&oacute;lisis [28].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La EV se ha mostrado como un m&eacute;todo de   pretratamiento adecuado para aumentar la accesibilidad de la celulosa al ataque enzim&aacute;tico para   un amplio rango de materias primas como chopo [29]   , eucalipto [30], bagazo de ca&ntilde;a de az&uacute;car [31], y paja   de trigo [13, 24, 32]. Sin embargo, este pretratamiento se muestra   menos eficaz con las maderas blandas debido a su   mayor contenido en lignina y menor n&uacute;mero de   grupos acetilo, lo que provoca que el proceso de   autohidr&oacute;lisis no sea tan efectivo. En el caso de la   madera blanda es necesario a&ntilde;adir un catalizador&aacute;cido, lo que implica una mayor generaci&oacute;n de   productos t&oacute;xicos.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Entre las ventajas de la EV, cabe destacar la   posibilidad de emplear tama&ntilde;os relativamente grandes de part&iacute;cula, evitar la adici&oacute;n de catalizadores &aacute;cidos, empleo de maderas blandas, alta recuperaci&oacute;n de az&uacute;cares, buenos rendimientos en la posterior hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica y su viabilidad para ser   implementado a escala comercial. No obstante,   entre sus limitaciones se encuentran la parcial degradaci&oacute;n de los az&uacute;cares hemicelul&oacute;sicos y la   generaci&oacute;n de compuestos t&oacute;xicos que son potencialmente inhibidores de las etapas posteriores de   hidr&oacute;lisis y fermentaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Hidr&oacute;lisis</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El objetivo de la hidr&oacute;lisis es la conversi&oacute;n de   la celulosa en glucosa. Para ello se utilizan tanto   procesos qu&iacute;micos (&aacute;cidos diluidos o concentrados) como enzim&aacute;ticos. Otra opci&oacute;n considerada   con fuerza en la actualidad es el desarrollo de   nuevos microorganismos capaces de hidrolizar la   celulosa y fermentar la glucosa a etanol.   La hidr&oacute;lisis &aacute;cida puede realizarse empleando &aacute;cidos concentrados. Un conjunto de inconvenientes, tales como la gran cantidad de &aacute;cido   empleado, lo costoso de su recuperaci&oacute;n, la necesaria neutralizaci&oacute;n del medio antes de la fermentaci&oacute;n, unido a los efectos corrosivos de los &aacute;cidos, hacen que este proceso no sea econ&oacute;micamente rentable. Si se emplean &aacute;cidos diluidos, se   requieren temperaturas relativamente altas que provocan una mayor corrosi&oacute;n de los equipos y mayor   degradaci&oacute;n de los az&uacute;cares hemicelul&oacute;sicos. Es por   ello, que los procesos de producci&oacute;n de etanol   basados en hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica son los que se   muestran como la alternativa m&aacute;s prometedora.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El material insoluble obtenido tras el   pretratamiento de EV est&aacute; formado principalmente   por celulosa y lignina, ya que gran parte de los   az&uacute;cares hemicelul&oacute;sicos son solubilizados durante   el mismo. Con el fin de romper las cadenas de   celulosa en mon&oacute;meros de glucosa se emplea la   hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica, la cual constituye una de las   etapas limitantes del proceso global de producci&oacute;n   de etanol combustible.Las principales dificultades al   realizar la hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica de la biomasa   lignocelul&oacute;sica est&aacute;n relacionadas con la baja actividad espec&iacute;fica de las enzimas actualmente disponibles, lo que conlleva el empleo de altas dosis de   celulasas. Por otro lado, la propia naturaleza de la   lignocelulosa, donde las microfibrillas de celulosa   se encuentran embebidas en la hemicelulosa y la   lignina, hace del pretratamiento una etapa crucial   en los procesos de producci&oacute;n de etanol cuando   es empleada la hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En un proceso de producci&oacute;n de etanol mediante sacarificaci&oacute;n y fermentaci&oacute;n simult&aacute;nea   (SFS) la producci&oacute;n enzim&aacute;tica puede llegar a   constituir el 50 % del coste total del proceso [13]. Es por ello que en la &uacute;ltima d&eacute;cada se han   realizado numerosos esfuerzos de I+D para disminuir los costes de los enzimas. Internacional y   Novozymes Inc., los dos principales productores   mundiales de enzimas, est&aacute;n colaborando con el   objetivo de lograr una reducci&oacute;n significativa (10   veces) del coste actual del catalizador. [33, 34]</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica es un proceso catalizado   por el grupo de enzimas denominado gen&eacute;ricamente celulasas, que son en realidad, una mezcla   de distintas actividades enzim&aacute;ticas cuya acci&oacute;n conjunta produce la degradaci&oacute;n de la celulosa.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las plantas superiores, de algunos invertebrados   y principalmente microorganismos (hongos y bacterias) son productores de este tipo de enzimas.   Las celulasas de origen f&uacute;ngico, de los g&eacute;neros   Trichoderma, Phanerochaete, Fusarium, han   sido las m&aacute;s estudiadas por la capacidad de estos   microorganismos de producirlas en grandes cantidades y de forma extracelular, facilitando su   separaci&oacute;n de los medios de cultivo.El complejo   celulol&iacute;tico de hongos est&aacute; formado por distintos   componentes que act&uacute;an sin&eacute;rgicamente. Este   sistema enzim&aacute;tico tiene tres tipos diferentes de   actividad, cuya denominaci&oacute;n y mecanismo de   acci&oacute;n son los siguientes [33, 34]: endo-&szlig;-(1,4)-glucanasas (&szlig;-(1,4)-glucan glucanohidrolasa; EC   3.2.1.4); exo-&szlig;-(1,4)-glucanasas, dentro de las   cuales se encuentran la celobiohidrolasa (&szlig;-(1,4)-glucan celobiohidrolasas; EC 3.2.1.91) y la   glucohidrolasa (&szlig;-(1,4)-glucanglucanohidrolasas;   EC 3.2.1.74) y &szlig;-(1,4)-glucsidasa o celobiasa (&szlig;D-gluc&oacute;sido glucohidrolasa; EC 3.2.1.21).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La endogluconasa act&uacute;a al azar en el interior   del pol&iacute;mero, hidrolizando los enlaces &szlig;-(1,4) y   generando nuevos extremos de cadena no   reductores. Pueden actuar sobre celodextrinas y   derivados sustituidos como carboximetilcelulosa   (CMC) e hidroximetilcelulosa (HMC), as&iacute; como   sobre celulosa amorfa, pero no act&uacute;a ni sobre   celulosa cristalina ni sobre celobiosa. Supone,   aproximadamente un 20 % delas prote&iacute;nas totales   del complejo.La celobiohidrolasa act&uacute;a sobre los   extremos no reductores de la cadena generados   por la endoglucanasa, liberando mol&eacute;culas de   celobiosa. Este enzima tiene actividad sobre celulosa cristalina y amorfa y sobre celodextrinas,   pero no act&uacute;a sobre derivados sustituidos ni sobre    <br>   celobiosa. Este enzima constituye del 50-80 % del   complejo celulol&iacute;tico.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La glucohidrolasa se encuentra en peque&ntilde;a proporci&oacute;n y act&uacute;a sobre los extremos no reductores   liberando unidades de glucosa. Tiene actividad sobre celulosa amorfa, celooligosacaridos y CMC. La &szlig;-glucosidasa hidroliza celobiosa y oligosac&aacute;ridos   de peque&ntilde;o tama&ntilde;o y es absolutamente necesaria   para evitar la fuerte inhibici&oacute;n que, sobre las endo y   exoglucanasas producir&iacute;a la celobiosa si se acumulara en el medio de reacci&oacute;n.   Si se a&ntilde;aden celulasas al material lignocelul&oacute;sico   la hidr&oacute;lisis de la celulosa es demasiado lenta, debido   a la asociaci&oacute;n de esta con la lignina, que constituye   una barrera f&iacute;sica a la penetraci&oacute;n de los enzimas.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Otros factores como la porosidad (&aacute;rea superficial   accesible), la cristalinidad de la celulosa, el grado de   polimerizaci&oacute;n y el contenido en lignina y hemicelulosa   dificultan la accesibilidad de las celulasas reduciendo la eficiencia de la hidr&oacute;lisis. Por todos estos   factores es necesaria una etapa de Pretratamiento,   previa a la hidr&oacute;lisis de la celulosa, que altere la   estructura del material lignocelul&oacute;sico, facilitando la   acci&oacute;n de los enzimas [35].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <strong>Fermentaci&oacute;n</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La fermentaci&oacute;n alcoh&oacute;lica es un proceso ampliamente utilizado por el hombre desde hace miles   de a&ntilde;os para la producci&oacute;n de bebidas alcoh&oacute;licas   como el vino o la cerveza. Cuando la fermentaci&oacute;n   se emplea en el proceso de producci&oacute;n de bioetanol   a partir de biomasa lignocelul&oacute;sica, los az&uacute;cares   liberados durante la hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica son fermentados con la consiguiente producci&oacute;n de etanol   y CO<sub>2</sub>. La conversi&oacute;n estequiom&eacute;trica de la glucosa   y xilosa a etanol es de 0,51 g de etanol por gramo de   az&uacute;car. En la pr&aacute;ctica es muy dif&iacute;cil obtener conversiones tan altas, ya que las levaduras derivan cierta   parte de la fuente de carbono que consumen hacia   el metabolismo celular y el crecimiento.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El microorganismo com&uacute;nmente empleado a   nivel industrial en los procesos de fermentaci&oacute;n   alcoh&oacute;lica es la levadura Saccharomyces cerevisiae,   ya que puede usar todo tipo de hexosas y produce   etanol con unos rendimientos cercanos al m&aacute;ximo   te&oacute;rico (0,51g/g). Adem&aacute;s, si se emplea en procesos   de producci&oacute;n de etanol a partir de lignocelulosa,   muestra gran tolerancia a los productos t&oacute;xicos   generados durante el pretratamiento. No obstante,   S. cerevisiae presenta una gran limitaci&oacute;n cuando se   quiere utilizar en la fermentaci&oacute;n los azucares   hemicelul&oacute;sicos ya que no es capaz de fermentar   pentosas, como la xilosa, que tambi&eacute;n est&aacute;n presentes en los materiales lignocelul&oacute;sicos. De ah&iacute; el   inter&eacute;s de utilizar en este proceso microorganismos   capaces de fermentar de forma eficiente todo tipo   de az&uacute;cares [36]. Sacarificaci&oacute;n y fermentaci&oacute;n   simult&aacute;neas (SSF) Uno de los elementos m&aacute;s importantes relacionados con el proceso global de   producci&oacute;n de etanol a partir de biomasa   lignocelul&oacute;sica, ha sido la implementaci&oacute;n y desarrollo del proceso conocido como sacarificaci&oacute;n y   fermentaci&oacute;n simult&aacute;nea (SSF), en el que la   hidr&oacute;lisis y la fermentaci&oacute;n tienen lugar simult&aacute;neamente en un mismo reactor.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En el proceso de SSF la glucosa liberada por   acci&oacute;n de las celulasas durante la hidr&oacute;lisis es   directamente metabolizada a etanol por las levaduras. Esta continua eliminaci&oacute;n de la glucosa del   medio, minimiza la inhibici&oacute;n por producto final sobre   la actividad de las celulasas [17], lo que se refleja en   una reducci&oacute;n del tiempo total del proceso y productividades de etanol m&aacute;s altas [24].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El proceso SSF se presenta como un m&eacute;todo   viable y eficiente para la producci&oacute;n de etanol   lignocelul&oacute;sico ya que puede ser empleado a una   gran variedad de materias primas y con diferentes   tecnolog&iacute;as de pretratamiento. No obstante, las   etapas de hidr&oacute;lisis y fermentaci&oacute;n requieren de   condiciones de operaci&oacute;n diferentes, por lo que se   deben fijar unas condiciones de compromiso que   satisfagan ambas etapas.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El pH &oacute;ptimo para la hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica se   encuentra alrededor de 4,8 en cambio el pH para la   fermentaci&oacute;n, dependiendo del microorganismo, suele   ser 5 o superior. En cuanto a la temperatura &oacute;ptima,   la de la hidr&oacute;lisis se encuentra alrededor de 50 <sup>0</sup>C   mientras que la mayor&iacute;a de microorganismos   fermentadores tiene su &oacute;ptimo de temperatura entre   los 30-37 <sup>0</sup>C [16, 37]. En este contexto, el empleo de   levaduras acid&oacute;filas (tolerantes a pH muy bajos) y   termotolerantes, como Kluyveromyces marxianus   capaces de crecer y fermentar a temperaturas   superiores a 40<sup>0</sup>C, m&aacute;s cercanas a la temperatura &oacute;ptima de la hidr&oacute;lisis, aparecen como alternativas   muy prometedoras [37]. El uso de levaduras   termotolerantes lleva asociadas otras ventajas, ya   que al realizarse la SSF a temperaturas m&aacute;s altas,   adem&aacute;s de conseguirse mayores rendimientos de   la hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica, se disminuye el riesgo de   contaminaci&oacute;n por otros microorganismos [39].</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La producci&oacute;n de etanol a temperaturas superiores a aquellas empleadas en sistemas convencionales contribuye a reducir los costos de operaci&oacute;n asociados al mantenimiento de la temperatura   de crecimiento entre los 30 y 35 <sup>0</sup>C, lo cual resulta   necesario para evitar la inhibici&oacute;n del proceso en   sistemas a gran escala, por otro lado se consigue   un incremento de la productividad y se reducen   las demandas energ&eacute;ticas en la recuperaci&oacute;n del   producto, particularmente cultivos continuos y   semicontinuos [35].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Compuestos t&oacute;xicos generados en los   pretratamientos y sus efectos sobre los   microorganismos</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Durante el pretratamiento de los materiales   lignocelul&oacute;sicos se obtienen dos fracciones, los   s&oacute;lidos insolubles en agua (WIS), a los cuales se   les realiza la hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica, y el   prehidrolizado. Este &uacute;ltimo es la fracci&oacute;n l&iacute;quida   en la cual est&aacute;n presentes los az&uacute;cares provenientes de la hidr&oacute;lisis de la hemicelulosa y los productos solubles de la lignina, as&iacute; como una serie de   productos de degradaci&oacute;n, que act&uacute;an como   inhibidores en la etapa de hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica y   en la fermentaci&oacute;n. Estos compuestos son originados debido a las altas temperaturas (a mayores   temperaturas de pretratamiento mayor cantidad   de t&oacute;xicos se generan) y condiciones &aacute;cidas en las   que se desarrollan los pretratamientos. La naturaleza y concentraci&oacute;n de estos compuestos   inhibidores depender&aacute; del tipo de material   pretratado (madera dura, blanda o herb&aacute;cea), del   m&eacute;todo de pretratamiento utilizado, de las condiciones del proceso (temperatura y tiempo) y de la   utilizaci&oacute;n o no de catalizadores [40].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los productos de degradaci&oacute;n que act&uacute;an como   inhibidores pueden dividirse en tres grupos [35]   derivados del furano, &aacute;cidos alif&aacute;ticos de bajo peso   molecular y derivados fen&oacute;licos. Como consecuencia de las altas temperaturas empleadas en los   pretratamientos, los az&uacute;cares originados en la   hidr&oacute;lisis de la hemicelulosa se degradan, formando   dos compuestos derivados del furano: el furfural,   que procede de la degradaci&oacute;n de las pentosas   (xilosa y arabinosa) y el 5-hidroximetilfurfural (HMF),   formado a partir de la degradaci&oacute;n de las hexosas   (glucosa, manosa y galactosa). El furfural puede   degradarse a &aacute;cido f&oacute;rmico o bien polimerizarse y el   HMF origina cantidades equimoleculares de &aacute;cido f&oacute;rmico y &aacute;cido levul&iacute;nico [35]. Adem&aacute;s de estos   dos &aacute;cidos, en el prehidrolizado tambi&eacute;n estar&aacute;   presente el &aacute;cido ac&eacute;tico, procedente de la hidr&oacute;lisis   de los restos de acetilo de la hemicelulosa.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La composici&oacute;n del prehidrolizado depende del   tipo de madera del que provenga. Los hidrolizados   procedentes del pretratamiento de maderas duras   tienen una mayor concentraci&oacute;n de furfural y&aacute;cidoac&eacute;tico que aquellos procedentes del   pretratamiento de maderas blandas, debido al   mayor contenido en pentosas y restos acetilados   de las hemicelulosas de las maderas duras.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Furfural y HMF</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Entre los efectos producidos por los furfurales   sobre los microorganismos se ha descrito la reducci&oacute;n de la velocidad espec&iacute;fica de crecimiento (&micro;), la   disminuci&oacute;n de la productividad volum&eacute;trica de etanol   [11] y una menor producci&oacute;n de biomasa [41]. Los   efectos producidos por el HMF sobre los   microorganismos revelan una menor toxicidad [40].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> El efecto t&oacute;xico provocado por estos aldeh&iacute;dos   fur&aacute;nicos parece deberse a su reactividad y capacidad para combinarse con determinadas mol&eacute;culas biol&oacute;gicas, como l&iacute;pidos, prote&iacute;nas y &aacute;cidos   nucleicos, o a la producci&oacute;n de da&ntilde;os sobre la   membrana plasm&aacute;tica [11]. El furfural produce la   inhibici&oacute;n de enzimas glicol&iacute;ticos y fermentativos   [40]. La inhibici&oacute;n mostrada por el furfural sobre   la alcohol deshidrogenasa podr&iacute;a explicar la excreci&oacute;n de acetaldeh&iacute;do observada durante las   primeras horas de la fermentaci&oacute;n en presencia   de este derivado del furano [41].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El furfural y el HMF son metabolizados tanto   por bacterias como levaduras [33, 42]. En condiciones de anaerobiosis, como consecuencia del   metabolismo del furfural se produce principalmente alcohol furfur&iacute;lico, y en menor concentraci&oacute;n &aacute;cido furoico. La hip&oacute;tesis de que la reducci&oacute;n de furfural a alcohol furfur&iacute;lico est&aacute; catalizada   por un alcoholdeshidrogenasa dependiente de   NADH est&aacute; pr&aacute;cticamente aceptada [3]. En condiciones de anaerobiosis, durante la fermentaci&oacute;n, se produce glicerol para regenerar el exceso   de NADH producido en la bios&iacute;ntesis y mantener   el balance redox intracelular [11, 40, 41]. Sin   embargo, cuando la fermentaci&oacute;n tiene lugar en   presencia de furfural no se observa producci&oacute;n   de glicerol, lo que sugiere que la reducci&oacute;n del   furfural a alcohol furfur&iacute;lico se acompa&ntilde;a de la   oxidaci&oacute;n del NADH en condiciones de   anaerobiosis [11, 40, 41].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Sin embargo, esta hip&oacute;tesis puede ser refutada   por algunos argumentos.La especificidad de una   enzima por un sustrato determinado viene dada   por la forma y tama&ntilde;o del centro activo. El centro   activo del alcohol deshidrogenasa de S. crevisiae   es muy peque&ntilde;o para aceptar mol&eacute;culas mayores   que el acetaldeh&iacute;do. Adem&aacute;s, la mayor&iacute;a de los   experimentos relacionados con la especificidad   de este enzima se han realizado con preparaciones comerciales que, por un lado son una mezcla   de isoenzimas y por otro, difieren en algunos   amino&aacute;cidos con la alcohol deshidrogenasa clonada   de S. crevisiae, lo cual puede influir en la especificidad del enzima por el sustrato [40, 41].</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>&Aacute;cidos alif&aacute;ticos</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los &aacute;cidos alif&aacute;ticos d&eacute;biles producen descenso   del rendimiento en etanol [40] y disminuci&oacute;n de la   producci&oacute;n de biomasa [41]. Uno de los mecanismos   propuestos para explicar el efecto inhibidor de los &aacute;cidos alif&aacute;ticos es la teor&iacute;a del desacoplamiento.   Seg&uacute;n &eacute;sta, el efecto t&oacute;xico depende del pKa de los &aacute;cidos y del pH del medio. &Uacute;nicamente la forma no   disociada de los &aacute;cidos penetra en la c&eacute;lula por   difusi&oacute;n, donde como consecuencia del mayor pH   intracelular se disocia, provocando un descenso del   pH [43]. Este descenso del pH debe ser compensado   por un ATPasa de membrana, que bombea protones   al exterior a costa de la hidr&oacute;lisis de ATP; de aqu&iacute; la   menor cantidad de ATP disponible observada en   presencia de &aacute;cidos alif&aacute;ticos. Cuando la concentraci&oacute;n de &aacute;cido es suficientemente alta, se supera la   capacidad de bombeo de protones, lo que origina la   acidificaci&oacute;n del citoplasma y la posterior muerte   celular [43, 44].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Compuestos fen&oacute;licos</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Durante el pretratamiento, una parte de la   lignina tambi&eacute;n se degrada originando una gran variedad de compuestos fen&oacute;licos. Se trata de un   grupo de compuestos muy heterog&eacute;neo que se   pueden encontrar en forma de mon&oacute;mero, d&iacute;meros   y pol&iacute;meros con una gran diversidad de sustituyentes   [45]. Entre ellos, se encuentran &aacute;cidos, aldeh&iacute;dos y   alcoholes arom&aacute;ticos. Los fenoles originados en el   Pretratamiento var&iacute;an seg&uacute;n el tipo de biomasa, ya   que la composici&oacute;n de las ligninas difiere considerablemente atendiendo al grupo taxon&oacute;mico al que   pertenezca la especie vegetal. Un derivado fen&oacute;lico   muy abundante en los hidrolizados de maderas duras   es el &aacute;cido-4-hidroxibenzoico. Se origina por la   rotura de los enlace &eacute;ster que lo unen a los grupos   hidroxilos de los alcoholes cin&aacute;m&iacute;licos que forman la   lignina [41]. Otros derivados fen&oacute;licos abundantes   en los hidrolizados de maderas duras son el   siringaldehido y el &aacute;cido sir&iacute;ngico, procedentes de la   degradaci&oacute;n de las unidades siringilpropano de la   lignina [40]. El 4-hidroxibenzaldehido y los &aacute;cidos   gent&iacute;sico, salic&iacute;lico y protocat&eacute;quico han sido identificados tambi&eacute;n en hidrolizados procedentes de   maderas duras [40].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Otros derivados fen&oacute;licos identificados, tanto en   maderas blandas como el pino y el abeto [13, 46]   como en maderas duras como el chopo, roble y   sauce, han sido la vainillina y el &aacute;cido vain&iacute;llico,   derivados de la degradaci&oacute;n de las unidades de   guayacilpropano de la lignina. Adem&aacute;s de los compuestos anteriormente citados, otros derivados   fen&oacute;licos detectados en los hidrolizados de diferentes tipos de maderas han sido el catecol [41], guayacol,   hidroquinona, aldeh&iacute;do conifer&iacute;lico y &aacute;cido   homain&iacute;llico [40].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">De los inhibidores identificados en los   hidrolizados de los materiales lignocelul&oacute;sicos, los   compuestos arom&aacute;ticos de bajo peso molecular   son los que han mostrado mayor toxicidad para los   microorganismos [40, 47]. Aunque el mecanismo   de inhibici&oacute;n no se conoce completamente, se ha   estudiado el efecto de los derivados fen&oacute;licos   sobre procariotas como Klebsiella pneumoniae   [47] y Escherichia coli [11, 47]. El efecto t&oacute;xico   de los aldeh&iacute;dos arom&aacute;ticos puede deberse a una   interacci&oacute;n con determinadas zonas hidrof&oacute;bicas   de las c&eacute;lulas y a la p&eacute;rdida de la integridad de la   membrana, afectando as&iacute; su capacidad para actuar como una barrera selectiva. El efecto t&oacute;xico   de los alcoholes arom&aacute;ticos se debe al da&ntilde;o que &eacute;stos ocasionan a la membrana plasm&aacute;tica; su   efecto inhibidor puede basarse en mecanismos   semejantes al de los &aacute;cidos alif&aacute;ticos, descrito   anteriormente [48]</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Aunque se han realizados diversos estudios   sobre el efecto de los derivados fen&oacute;licos sobre   levaduras [48] y especialmente sobre   Saccharomyces cerevisiae [49], el mecanismo   de inhibici&oacute;n sobre los eucariotas no est&aacute; completamente aclarado. Sin embargo, debido a que la estructura de la membrana plasm&aacute;tica es similar a la   de los procariotas, se postula que los mecanismos de   inhibici&oacute;n pueden ser similares [48, 49].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Al igual que con el furfural e HMF, existen datos   en la bibliograf&iacute;a que demuestran la capacidad de   determinados microorganismos, tanto bacterias como   K .pneumoniae [50] o Z. mobilis [11], como levaduras pertenecientes a los g&eacute;neros Saccharomyces,   Pichia, Pachisolen y Candida [49] de metabolizar los   aldeh&iacute;dos arom&aacute;ticos. Sin embargo, los datos reportados sobre el papel del alcohol deshidrogenasa   de S, cerevisiae en la conversi&oacute;n de estos compuestos resultan contradictorios [51, 52, 53]. Otros   enzimas, que pueden estar implicadas en el metabolismo de los aldeh&iacute;dos arom&aacute;ticos son la vainillina   oxidoreductasa [54], la aldosa reductasa y la   arilalcohol deshidrogenada [52, 53, 54].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Ingenier&iacute;a evolutiva</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Con el fin de aumentar la tolerancia a los   t&oacute;xicos generados en la etapa de pretratamiento   se han seguido diversas estrategias [10, 55] Entre   ellas se destacan la ingenier&iacute;a metab&oacute;lica, la   mutag&eacute;nesis y los m&eacute;todos de selecci&oacute;n natural,   como la ingenier&iacute;a evolutiva [36, 56]. La ingenier&iacute;a evolutiva se basa en la posibilidad de seleccionar c&eacute;lulas con propiedades ventajosas bajo condiciones que reflejen las caracter&iacute;sticas de un   proceso industrial, por ejemplo, diferentes fuentes de   carbono, la presencia de productos de inhibidores o   la temperatura. En este contexto se han desarrollado   diferentes estrategias de ingenier&iacute;a evolutiva con   cepas recombinantes de S. cerevisiae para conseguir una eficiente fermentaci&oacute;n de la xilosa [56]. La   adaptaci&oacute;n mediante ingenier&iacute;a evolutiva se muestra como una alternativa prometedora para obtener   microorganismos m&aacute;s tolerantes a las temperaturas   y a los t&oacute;xicos generados durante el pretratamiento   de la biomasa lignocelul&oacute;sica [10, 11].</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Con el objetivo de obtener una cepa de S.   cerevisiae con mayor tolerancia a los productos   t&oacute;xicos y m&aacute;s eficientes en el consumo de xilosa,   se someti&oacute; a la cepa F 12 a un proceso de   evoluci&oacute;n mediante la adaptaci&oacute;n [9]. Cuando los   microorganismos se crecen en medio l&iacute;quido, las   c&eacute;lulas mejor adaptadas para crecer en un determinado entorno, evolucionan a lo largo del tiempo y   terminan desplazando a la poblaci&oacute;n original, como   consecuencia de un proceso natural de selecci&oacute;n   clonal [9]. En este caso, la adaptaci&oacute;n se desarroll&oacute;   en medio l&iacute;quido, mediante transferencia secuencial   de las c&eacute;lulas de levadura a medios con concentraciones crecientes del prehidrolizado y por ende, de   los inhibidores. Al mismo tiempo se fueron realizando aumentos progresivos de la temperatura.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El prehidrolizado empleado para la adaptaci&oacute;n   se obtuvo tras la filtraci&oacute;n de la paja de trigo   pretratada con explosi&oacute;n a vapor a 210 <sup>0</sup>C durante 5 min. Este prehidrolizado se correspond&iacute;a con un   material pretratado completo con 15,2 % (p/p) de   s&oacute;lidos insolubles y fue diluido con agua destilada   hasta 4, 6, 8 y 9 % (p/p), para realizar la adaptaci&oacute;n. El proceso comenz&oacute; creciendo el microorganismo en presencia del prehidrolizado diluido al   5 %. Cada cultivo fue crecido a 42, 44, 46 y 48 <sup>0</sup>C,   pH 5,0 durante 48 h. Para que las concentraciones de az&uacute;cares fueran las mismas en todas las   diluciones del prehidrolizado, se a&ntilde;adi&oacute; glucosa y   xilosa hasta alcanzar la concentraci&oacute;n de az&uacute;cares del prehidrolizado sin diluir (15,6g/L y 3,6 g/L   de xilosa y glucosa, respectivamente) [9, 21].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Con el objetivo de comprobar la eficacia que el   proceso de ingenier&iacute;a evolutiva tiene en la obtenci&oacute;n   de levaduras con mayor tolerancia a los t&oacute;xicos a   elevadas temperaturas, y mejor producci&oacute;n de etanol   a partir de xilosa, se desarrollaron diferentes pruebas de fermentabilidad con prehidrolizados de paja   de trigo. Al emplear prehidrolizados al 8 % a 44 <sup>0</sup>C se obtuvieron mayores diferencias entre la cepa   adaptada y la cepa parental. En ese caso, al emplear   el prehidrolizado obtenido a 200 <sup>0</sup>C durante 5 min. (con menor concentraci&oacute;n de t&oacute;xicos), la cepa original consumi&oacute; la glucosa completamente tras 40   h, mientras que la cepa adaptada lo hizo en 12 h.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">A la misma diluci&oacute;n, el consumo de glucosa fue   mucho m&aacute;s lento a 46 <sup>0</sup>C cuando se emple&oacute; el   prehidrolizado obtenido a 210 <sup>0</sup>C (mayor concentraci&oacute;n de t&oacute;xicos). En este caso la cepa adaptada   consumi&oacute; completamente la glucosa tras 48 h,   mientras que la cepa original no consumi&oacute; la   totalidad de la glucosa hasta las 140 h.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Estos resultados demuestran que pese a los   efectos negativos que tiene la temperatura sobre   la fermentaci&oacute;n y los productos de degradaci&oacute;n   sobre el consumo de az&uacute;cares, el empleo de cepas   adaptadas supone una tasa mayor de asimilaci&oacute;n de   la glucosa. Resultados similares se obtuvieron en   fermentaciones con hidrolizados de bagazo de ca&ntilde;a   de az&uacute;car en los que la presencia de los compuestos   fen&oacute;licos, furaldeh&iacute;dos y &aacute;cidos alif&aacute;ticos produc&iacute;an   un retraso en el consumo de glucosa [10, 13, 21]. En   el mismo estudio, al igual que ocurre con los   prehidrolizados de paja de trigo, la adaptaci&oacute;n de S.   cerevisiae a los compuestos inhibidores presentes   en el prehidrolizado se tradujo en un m&aacute;s r&aacute;pido   consumo de glucosa [9, 13]. Durante las fermentaciones de los prehidrolizados se evalu&oacute; adem&aacute;s la   capacidad de la levadura de consumir la xilosa   durante 140 h, expresado como porcentaje del total   de xilosa presente en el medio (40 g/L). El mayor   consumo de xilosa (85 % del contenido de xilosa   potencial) se obtuvo al emplear la cepa adaptada   con el prehidrolizado con menor concentraci&oacute;n de   productos t&oacute;xicos y diluido hasta un 4 % (p/p). Es   destacable que el mayor incremento en el consumo de xilosa entre la cepa original y adaptada se   observ&oacute; al emplear los prehidrolizados m&aacute;s concentrados (8 % p/p), consumi&eacute;ndose el 53 y el 67 % de   la xilosa disponible en el prehidrolizado obtenido a   200 y 210 <sup>0</sup>C, respectivamente. Estos resultados   mostraron el &eacute;xito de aplicar la ingenier&iacute;a evolutiva   para conseguir microorganismos que utilicen m&aacute;s   eficientemente la xilosa [9, 13].</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><strong><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">CONCLUSIONES</font></strong></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El empleo de sustratos lignocelul&oacute;sicos para la   producir etanol combustible constituye un paso de   avance en la disminuci&oacute;n de los costos del proce so, pero entra&ntilde;a dificultades que pudieran dar al   traste con este objetivo. La ingenier&iacute;a evolutiva   constituye una alternativa posible para mejorar la   respuesta del microorganismo a los inhibidores y   los aumentos de temperatura durante la fermentaci&oacute;n, al tiempo que se logra un incremento en la   tasa de consumo de pentosas y hexosas, lo que se   traducir&iacute;a en mayores rendimientos y productividad de etanol. La simplicidad t&eacute;cnica de la ingenier&iacute;a evolutiva representa una ventaja importante frente a los complejos y costosos procedimientos   que implican la manipulaci&oacute;n gen&eacute;tica in vitro de   los microorganismos.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><strong><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">BIBLIOGRAFIA</font></strong></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">1. R. S. RAO; B. BHADRA; S. SHIVAJI. Isolation and characterization of ethanol-producing yeasts from fruits and tree barks. Letters in Applied Microbilogy, 47, 19-24, 2008.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">2. S. OSTERGAARD; L. OLSSON; J. NIELSEN. Metabolic Engineering of Saccharomyces cerevisiae. Microbiology and Molecular Biology Reviews, 2000, No. 1. vol. 64. P&aacute;gs. 34-50.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">3. FENG-MING, L.; BIN Q.; YING-JIN Y. Comparative Proteomic Analysis of Tolerance and Adaptation of Ethanologenic Saccharomyces cerevisiae to Furfural. Lignocellulosic Inhibitory Compound Applied and environmental microbiology, 2009, vol. 75, No. 11. P&aacute;gs. 3765-3776.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">4. D. SINGH; et-al. Ethanol production at elevated temperatures and alcohol concentrations: Part II-Use of Kluyveromyces marxianus IMB3 Wolrd Journal &amp; Biotechnology 1998, 14. P&aacute;gs. 823-834.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">5. K. KARHUMAA; B. WIEDEMENN; B. HAHN-H&Auml;GERDAL; E. BOLES; M. GORWA-GRAUSLUND. Co-utilization of Larabinose and D-xylose by laboratory and industrial Saccharomyces cereviseae strain. Microbiol Cell Factories 2006, 5:18. P&aacute;gs. 5-18.    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">6. Thomas W. Jeffries Engineering yeast for xylose metabolism  .   Curent Opinion in Biotechnology   2006, 17: P&aacute;gs. 320-326.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">7. Cakar Z. P.; Seker U.O.S.; Tamerler C.; Sonderegger M.; Sauer U., Evolutionary engineering of multiplestrees resistant Saccharomyces cerevisiae. FEMS Yeast Research 2005, 5. 569-578.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">8. CHATERJEE R.; Yuan L. Direct evolution metabolic pathways. Trends in Biotechnology 2006. P&aacute;gs. 24. 28-38.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">9. TOM&Aacute;S-PEJ&Oacute; E; BALLESTEROS M; OLIVA J. M.; OLSSON L. Adaptation of xylose fermentation yeast Saccharomyces cerevisiae F12 for improving ethanol production at high substrate loading. J. Ind Microbiol Biotechnol 2010, 37: P&aacute;gs. 1211-1220.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">10. MARTIN, C., MARCEL, M., ALMAZ&Aacute;N, O., JONSSON, L. J. Adaptation of a recombinant xylosa-utilizating Saccharomyces cerevisiae to a bagasse of cane hidrolyzate wiht high content of fermentation inhibitors. Bioresource Technology 2007, 98. P&aacute;gs. 1767-1773.    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">11. Liu, Z. L.; SLININGER P. J.; GORSICH, S. W., Enhnaced Biotransformation of furfural anf hydroxymethylfurfural by newly developed ethanologenic yeast strain. Applied Biochemestry and Biotechnology 2005, 24. P&aacute;gs. 451- 460.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">12. SUNG-JAE Yang, et-al. Eficient Degradation of Lignocellulosic Plant Biomass, without Pretreatment, by the Thermophilic Anaerobe. Anaerocellum thermophilum. Applied and Enviromental Microbiology, 2010 No. 14. vol. 75. P&aacute;gs. 4762-4769.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">13. TOM&Aacute;S PEJ&Oacute;. M. E. Bioetanol de paja de trigo estrategia de integraci&oacute;n de las etapas de proceso. Tesis Doctoral. Universidad Complutense de Madrid. 2009.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">14. Bamaga O.; Thakur M.; Verma M. Assessment of cereal Straw availability in combine harvested fields and its recovery by baling. Agricultural Mechanization in Asia, Africa and Latin America 2003, 34, P&aacute;gs. 53-58.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">15. FAOSTAT. Food and Agricultural Organization (FAO). 2007.    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">16. ALFANI A., GALLIFUOCO F., SAPOROSI A., SPERA A., CANTARELLA M. A comparison of SHF and SSF process for the bioconversi&oacute;n of steam-exploded wheat straw. Journal of Industrial Microbiology and Biotechnology 25. 2000. P&aacute;gs. 184-192.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">17. OLSSON L., SORENSEN H. R., DAM B. P., CHRISTENSEN H., KROGH K. M., MEYER A. S. Separate and simultaneous enzymatic hydrolysis and fermentation of wheat hemicellulose with recombinant xylose utilizing Saccharomyces cerevisiae. Applied Biochemistry and biotechnology. 2006, 129-132,117-129.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">18. ZHANG, W.; M. LIANG; C. LU. Morphological and structural development of hardwood cellulose during mechanochemical pretreatment in solid state through pan-milling  .   TECNOLOG&Iacute;A QU&Iacute;MICA Vol. XXXI, No. 3. 2011.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">19. Wilson, D. B., Three microbial strategies for plant cell wall degradation. 2008. P&aacute;gs. 289-297.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">20. McCann, M. C.; N. C. Carpita. Designing the deconstruction of plant cell walls  .   Curr. Opin. Plant Biol. 11:314-320.    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">21. ALMENARES J. F., SERRAT M. Aspectos tecnol&oacute;gicos generales para la conversi&oacute;n a etanol de la biomasa lignocelul&oacute;sica. Tecnolog&iacute;a Qu&iacute;mica 2008, 28, No. 3. P&aacute;gs. 63-70</font><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">22. WYMAN C. E.; DALE B. E.; ELANDER R. T.; HOLTZAPPLE M.; LADISCH M. R.; LEE Y. Y. Coordinated development of leading biomass pretreatment technologies. Bioresource Technology 2005, 96. P&aacute;gs. 1959-1966.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">23. JEOH, T.; C. I. ISHIZAWA,; M. F. DAVIS; M. E. HIMMEL; W. S. ADNEY; D. K. JOHNSON. Cellulase digestibility of pretreated biomass is limited by cellulose accessibility. Biotechnol. Bioeng. 2007. 98: P&aacute;gs. 112-122.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">24. BALLESTEROS I., NEGRO M.J., OLIVA J. M., CABA&Ntilde;AS A., MANZANARES P., BALLESTEROS M. Ethanol production from steam-explosion pretreated wheat Straw. Applied Biochemistry and Biotechnology   2006, 1. P&aacute;gs. 496-508.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">25. P&Eacute;REZ, J. A., GONZ&Aacute;LEZ A., OLIVA J. M., BALLESTEROS I., MANZANARES P. Effect of process variables on liquid hot w&aacute;ter pretreatment of wheat Straw for bioconversi&oacute;n to fuel-ethanol in a batch reactor. Journal of chemical Tecnology and Biotechnology 2007, 82, 929-938.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">26. PALONEN, H; Role of lignin in the enzymatic hydrolysis of lignocelluloses. Tesis Doctoral. 2004.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">27. Kristensen J. B., Thygesen L. G., Felby C., Jorgensen H., Elder T. Cell-wall structural changes in wheat straw pretreated for biothanol production. P&aacute;gs. 110-119.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">28. Oliva Dom&iacute;nguez. M. J. Efecto de los productos de degradaci&oacute;n originados en la explosi&oacute;n por vapor de biomasa de chopo sobre la fermentaci&oacute;n. T&eacute;sis Doctoral 2003. Universidad Complutense de Madrid. Espa&ntilde;a.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">29. Himmel, M. E. S. Y.; et-al. Biomass recalcitrance: engineering plants and enzymes for biofuels production. Science 2007. 315. P&aacute;gs. 804-807.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">30. HARRIS, D., and S. DeBolt. Relative crystallinity of plant biomass: studies on assembly, adaptation and acclimation. PLOS ONE. 2008.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">31. Hendriks, A. T.; Zeeman G., Pretreatments to enhance the digestibility of lignocellulosic biomass. Bioresource Technology 2009, 100. P&aacute;gs. 10-18.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">32. Demain, A. L. M.; J. H. Wu. Cellulase, clostridia, and ethanol. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 2005, 69. P&aacute;gs. 124-154.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">33. Fukuda, H. S.; Hama, S.; H. Noda. Whole-cell biocatalysts for biodiesel fuel production. Trends Biotechnol. 2008, 26:668-673.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">34. Zhang, Y. H. P.; and L. R. Lynd., Cellulose utilization by Clostridium thermocellum: bioenergetics and hydrolysis product assimilation. Applied and Enviromental Microbiology   2010, vol. 73, 15. P&aacute;gs. 4881-4891.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">35. MATSUSHITA, A., Inoue H., Kodaki T.; Sawayama S. Ethanol production from xylose in engineered Sacharomyces cerevisiae strain: current state and perspectives. 2009.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">36. Jorgensen, H., Kristensen, J. B.; Felby C., Enzymatic conversion of lignocelluloses into fermentable sugars: challenges and opportunities. Biofuel, Bioproducts and Biorefining   2007, 20. P&aacute;gs. 119-134.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">37. ROSGAARD L., Andric P., Dam-Jonhansen K., Pedersen S., Meyer, A. S. Effects of substrate loading on enzymatic hydrolysis and viscosity of pretreated barley straw. Applied Biochemistry and Biotechnology  . 2007, 2, P&aacute;gs. 22-30.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">38. LIMTONG, S., Sringiew C., Yongmanitchai, W. Production of fuel ethanol at high temperature from sugar cane juice by a newly isolated Kluyveromyces marxianus. Bioresource Technology 2007, 98. P&aacute;gs. 3367-3374.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">39. Liu, Z. L., P. J. Slininger, B. S. Dien, M. A. Berhow, C. P. Kurtzman; and S. W. Gorsich, Adaptive response of yeasts to furfural and 5- ydroxymethylfurfural and new chemical evidence for HMF conversion to 2,5-bishydroxymethlfuran. J. Ind. Microbiol. Biotechnol.   2010, 31. P&aacute;gs. 345-352.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">40. MODIG, T.; G. Liden; M. J. Taherzadeh. Inhibition effects of furfural on alcohol dehydrogenase, aldehyde dehydrogenase and pyruvate dehydrogenase. 2009.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">41. KATAEVA, I. A., et-al. Genome sequence of the anaerobic, thermophilic and cellulolytic bacterium &quot;Anaerocellum thermophilum&quot; DSM 6725. J. Bacteriol. 2009, 191. P&aacute;gs. 3760-3761.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">42. Xia, J. M.; F. M. Lin; and Y. J. Yuan., Systematic analysis of yeast response to inhibitors  .   Prog. Chem. 2009, 19. P&aacute;gs. 1159-1163.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">43. Howard, R. L., Abostsi, E., Rensburg J., Howard S. Lignocelluloses biotechnology: issues of bioconversion and enzyme production  . African Journal of Biotechnology   2003, 2, 602-619.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">44. Lam T. B. T., Kadoya K., Liyama K. Bonding of hydroxycinnamic acids to lignin: ferulic and pcoumaric acids are predominantly linked at the bemzel position of lignin, not the beta-position, in grass cell walls. Phytochemistry 2001, 57, 987-992.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">45. BOLL&Oacute;K M., R&Eacute;CZEY K., ZACCHI G. Simultaneous Saccharification and fermentation of steampretreated spruce to etanol. 2000.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">46. ZOGAJ X., NIMTZ M., BOKRANZ W., ROMLING U. The multicellular morphotypes of Salmonella typhmurium and Escherichia coli produce cellulose as the second component of the extracellular matrix. Molecular microbiology 2001, 39. P&aacute;gs. 1452-1463.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">47. GORSICH S. W., B. S. DIEN, N. N. NICHOLS, P. J. SLININGER, Z. L. LIU, and C. D. SKORY, Tolerance to furfural-induced stress is associated with pentose phosphate pathway genes ZWF1, GND1, RPE1, and TKL1 in Saccharomyces cerevisiae. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2010, 71. P&aacute;gs. 339-349.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">48. LARSSON S., QINTANA S., REIMAN A., NILVEBRANT N. O., JONSSON L. O., Influence of lignocellulose derivated aromatic compounds on oxygen limited growth and ethanolic fermentation by Saccharomyces cerevisiae. 2000.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">49. Zhang, Y. H. P., et-al. Fractionating recalcitrant lignocellulose at modest reaction conditions. Biotechnol. Bioeng. 2007. 97. P&aacute;gs. 214-223.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">50. FENG-MING, L.; BIN Q.; YING-JIN Y. Comparative Proteomic Analysis of Tolerance and Adaptation of Ethanologenic Saccharomyces cerevisiae to Furfural. Lignocellulosic Inhibitory Compound Applied and environmental microbiology, 2009. vol. 75, No. 11. P&aacute;gs. 3765-3776.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">51. CHONG P. K. A. 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