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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evaluación de sustratos con jugo de aloe vera para el crecimiento de lactobacillus plantarum]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Aloe vera (sabila) is a non-traditional fermentation substrate bearing the most of its carbohydrates in an arrange of mannose polymers. This work had the objective to evaluate potentialities of the use of Aloe vera juice as an early substrate with sugar cane by-products for Lactobacillus plantarum LB/103-1-5 strain growth. Sabila juice at 100 %, supplemented with both glucose and sugar cane molasses at 75 % and MRS growth culture media as control were assessed. Response variables were: viability, pH, total acidity and consumption of carbohydrates. The best substrate variant to be used as culture media for L. plantarum LB/103-1-5 strain growth was sabila juice at 75 % with molasses; this variant exhibited a higher viability up to 9,0 log (UFC/mL), a pH drop, acidity values denoting lactic acid production, as well as glucose and sucrose depletion due to microorganism assimilation.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>ART&Iacute;CULO    ORIGINAL</b></font></p>     <p align="right">&nbsp;</p>     <p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="4"><b>Evaluaci&oacute;n    de sustratos con jugo de aloe vera para el crecimiento de lactobacillus plantarum</b></font></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>Evaluation    of substrates with aloe vera juice for the lactobacillus plantarum growth</b></font></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>MSc.    Heidy P&eacute;rez-Leonard<sup>I</sup> , Dr.C. Aldo Hern&aacute;ndez-Monz&oacute;n<sup>II</sup></b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">I:    Instituto Cubano de Investigaciones de los Derivados de la Ca&ntilde;a de Az&uacute;car.    La Habana, Cuba.    <br>   II: Instituto de Farmacia y Alimentos. Universidad de La Habana. La Habana,    Cuba. <a href="mailto:aldohm@ifal.uh.cu">aldohm@ifal.uh.cu</a></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p> <hr>     <p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El    Aloe vera es un sustrato no tradicional donde la mayor&iacute;a de sus carbohidratos    se encuentran en forma de pol&iacute;meros de manosa. Este trabajo tuvo como    objetivo evaluar las potencialidades del uso de sustratos a partir de jugo de    Aloe vera (s&aacute;bila) y coproductos azucareros para el crecimiento de Lactobacillus    plantarum LB/103-1-5. Se utilizaron como sustratos: jugo de s&aacute;bila 100    % y combinado con glucosa y melaza, jugo al 75 % con melaza y como sustrato    est&aacute;ndar MRS. Las variables respuestas fueron: viabilidad, pH, acidez    total y consumo de carbohidratos. La mejor variante de sustrato a emplear como    medio de cultivo para el crecimiento de L. plantarum LB/103-1-5 result&oacute;    el jugo de s&aacute;bila al 75 % con melaza. Se obtuvo una viabilidad superior    a 9,00 log(ufc/mL), disminuci&oacute;n del pH, valores de acidez que denotan    producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico, as&iacute; como el consumo    de glucosa y sacarosa asimilada por el microorganismo.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Palabras    clave</b>: Aloe vera, fermentaci&oacute;n, coproductos azucareros, probi&oacute;ticos.</font></p> <hr>     <p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Aloe    vera (sabila) is a non-traditional fermentation substrate bearing the most of    its carbohydrates in an arrange of mannose polymers. This work had the objective    to evaluate potentialities of the use of Aloe vera juice as an early substrate    with sugar cane by-products for Lactobacillus plantarum LB/103-1-5 strain growth.    Sabila juice at 100 %, supplemented with both glucose and sugar cane molasses    at 75 % and MRS growth culture media as control were assessed. Response variables    were: viability, pH, total acidity and consumption of carbohydrates. The best    substrate variant to be used as culture media for L. plantarum LB/103-1-5 strain    growth was sabila juice at 75 % with molasses; this variant exhibited a higher    viability up to 9,0 log (UFC/mL), a pH drop, acidity values denoting lactic    acid production, as well as glucose and sucrose depletion due to microorganism    assimilation.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Keywords</b>:    Aloe vera, fermentation, sugar cane by-products, probiotics.</font></p> <hr>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En    la industria de alimentos, los cultivos probi&oacute;ticos han sido utilizados    como una herramienta en el desarrollo de productos funcionales novedosos, lo    cual se ha expandido en el mundo de manera continua [1]. La importancia de ciertas    caracter&iacute;sticas tecnol&oacute;gicas y fisiol&oacute;gicas de las cepas    probi&oacute;ticas contribuye a un n&uacute;mero de beneficios en la salud ampliamente    comprobados [2]. Los cultivos comerciales usados en estas aplicaciones incluyen    cepas de los g&eacute;neros Lactobacillus y Bifidobacterium.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Para    el crecimiento de muchos lactobacilos se consideran indispensables amino&aacute;cidos    como leucina, valina, &aacute;cido glut&aacute;mico, arginina, tirosina y tript&oacute;fano;    el pantotenato y la niacina son dos vitaminas necesarias, as&iacute; como la    presencia de ciertos metales como el Mn<sup>2+</sup> y el Fe<sup>2+</sup>. Las bacterias &aacute;cido    l&aacute;cticas (BAL) son incapaces de sintetizar ciertos amino&aacute;cidos    y vitaminas esenciales para su crecimiento, lo cual condiciona la necesidad    de a&ntilde;adir a los medios de cultivos hidrolizados de prote&iacute;nas y    p&eacute;ptidos como fuente de estos elementos [3].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Lactobacillus    plantarum es miembro de la familia Lactobacillaceae, orden Lactobacillales,    g&eacute;nero Lactobacillus y pertenece a la clase Bacilli. Se considera un    candidato ideal para el desarrollo de productos probi&oacute;ticos debido a    los altos niveles de este microorganismo en los alimentos. Es una BAL no pat&oacute;gena,    Gram-positiva, no esporulada, su genoma es el m&aacute;s grande entre todas    las BAL, habita de forma natural en el tracto gastrointestinal y saliva humana,    siendo aislado de este &uacute;ltimo la cepa L. plantarum NCIMB 8826 [2, 4,    5].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Existe    evidencia cient&iacute;fica de que algunos tipos de vegetales tienen un alto    potencial como fuentes de oligo y polisac&aacute;ridos [6]. El Aloe vera es    un sustrato no tradicional para el uso de estos microorganismos, pero es interesante    comprobar su potencial, ya que contiene vitaminas y la mayor&iacute;a de sus    carbohidratos se encuentran en forma de pol&iacute;meros de manosa. Presenta    capacidad bacteriost&aacute;tica y bactericida contra pat&oacute;genos de infecciones,    altos niveles de enzimas como catalizadores de c&eacute;lulas vivas, posee 19    amino&aacute;cidos esenciales para la formaci&oacute;n y estructuraci&oacute;n    de las prote&iacute;nas y tambi&eacute;n minerales como el calcio, f&oacute;sforo,    cobre, hierro, magnesio, potasio y sodio; fungicida, antibi&oacute;tico y regenerativo.    Todos estos elementos son indispensables para el metabolismo y actividad celular    [7, 8].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Debido    a sus propiedades nutricionales y composici&oacute;n qu&iacute;mica, el Aloe    vera tiene un alto potencial para promover del desarrollo de bacterias probi&oacute;ticas.    En un trabajo de investigaci&oacute;n reciente [9] se comprob&oacute; que tanto    el jugo como la pulpa de Aloe vera es un buen sustrato que permite el crecimiento    de bacterias l&aacute;cticas y la consecuente producci&oacute;n de &aacute;cido    l&aacute;ctico. Estos investigadores obtuvieron una proliferaci&oacute;n m&aacute;xima    del orden 10<sup>10</sup> ufc/mL en jugo de s&aacute;bila al 75 % (v/v) y en    el jugo con adici&oacute;n de 5 % (m/v) de glucosa se increment&oacute; la viabilidad    hasta 10<sup>12</sup> ufc/mL.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Otros    investigadores [10] informaron que el jugo de Aloe vera como sustrato vegetal    puede ser utilizado como medio de propagaci&oacute;n in vitro para las especies    probi&oacute;ticas L. plantarum y L. casei. Obtuvieron resultados muy prometedores    con viabilidades en el orden de 10<sup>9</sup> a 10<sup>11</sup>ufc/mL, los    cuales sugirieron que el jugo de s&aacute;bila pudiera ser utilizado en la elaboraci&oacute;n    de bebidas fermentadas con bacterias l&aacute;cticas.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Tambi&eacute;n    se ha informado [9] que la planta Aloe vera por los componentes nutricionales    que aporta puede considerarse como materia prima para la elaboraci&oacute;n    de alimentos funcionales y en la actualidad como alimentos del futuro, por lo    que el Aloe vera pudiera convertirse en una excelente fuente de productos qu&iacute;micos    nutricionales para el desarrollo y comercializaci&oacute;n de nuevos productos    para la industria alimentaria.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La    melaza de ca&ntilde;a tambi&eacute;n se utiliza como sustrato para el crecimiento    de L. plantarum con evidencias de que las condiciones &oacute;ptimas para el    crecimiento de este microorganismo fueron: concentraci&oacute;n de melaza (20    %), temperatura (30 &plusmn; 1 &deg;C) durante 24 horas, pH 5,2 &plusmn; 0,1,    agitaci&oacute;n (100 min.-1) y viabilidad de 4,3x10<sup>10</sup>ufc/mL [11].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Teniendo    en cuenta estos antecedentes este trabajo tuvo como objetivo evaluar las potencialidades    del uso de sustratos a partir de jugo de Aloe vera y de coproductos azucareros    para el crecimiento de la bacteria probi&oacute;tica Lactobacillus plantarum    LB/103-1-5.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>MATERIALES    Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Para    el desarrollo de esta investigaci&oacute;n se utiliz&oacute; la cepa probi&oacute;tica    L. plantarum LB/103-1-5 perteneciente a la colecci&oacute;n de cultivos del    Instituto Cubano de Investigaciones de los Derivados de la Ca&ntilde;a de Az&uacute;car    (ICIDCA). Como sustratos se emplearon jugo de Aloe vera (s&aacute;bila) variedad    barbadensis, melaza de ca&ntilde;a clarificada y glucosa, y como medios de cultivos    caldo MRS y agar MRS para los an&aacute;lisis de la evaluaci&oacute;n de la    cepa probi&oacute;tica en los diferentes sustratos.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Para    la obtenci&oacute;n del jugo de s&aacute;bila se utilizaron las hojas de la    planta, las cuales se lavaron y cortaron en trozos peque&ntilde;os para macerar    en una licuadora (PROTOR SILEX) de uso de laboratorio. El macerado obtenido    se filtr&oacute; para la obtenci&oacute;n del jugo libre de fibra para ser utilizado    en las fermentaciones.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La    determinaci&oacute;n de carbohidratos se realiz&oacute; mediante cromatograf&iacute;a    l&iacute;quida de alta resoluci&oacute;n (columna amino, fase m&oacute;vil AcN:H2O    80:20, flujo de la fase m&oacute;vil 2 mL/min, temperatura 25 &ordm;C, sensibilidad    del detector 0,002 x 10-3 D RI, tiempo de respuesta del detector 0,1) utilizando    patrones de fructosa, glucosa, xilosa y sacarosa, seg&uacute;n [12].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Los    &aacute;cidos org&aacute;nicos se determinaron por cromatograf&iacute;a l&iacute;quida    de alta resoluci&oacute;n empleando un detector ultravioleta (Columna Supelco,    Hypersil ODS, fase m&oacute;vil agua acidulada con H3PO4 al 85 %, flujo 0,5    mL/min, presi&oacute;n 13,3 MPa, detecci&oacute;n 210 nm, temperatura ambiente)    usando como patrones los &aacute;cidos ox&aacute;lico, m&aacute;lico, l&aacute;ctico,    ac&eacute;tico y c&iacute;trico (lazo 20 uL, detector DAD Knawer, modelo K 2800,    bomba Knauer, modelo K 1001), seg&uacute;n [13]. El pH se determin&oacute; en    un medidor RADIOMETER 26 COPENHAGEN utilizando soluciones tampones est&aacute;ndar    a pH 4 y 7 con electrodo combinado [14]. La acidez total por un m&eacute;todo    potenciom&eacute;trico y se expres&oacute; en gramos de &aacute;cido l&aacute;ctico    /100 mL.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El    crecimiento de la BAL se determin&oacute; mediante la preparaci&oacute;n de    diluciones decimales seriados, las cuales se sembraron en placa a superficie    incubadas durante 48 h y el resultado se expres&oacute; en ufc/mL [15]. El cultivo    de la cepa probi&oacute;tica se prepar&oacute; en medio caldo MRS ajustado a    pH 6,5 e incubado a 37 &ordm;C en condiciones est&aacute;ticas. Los ensayos    de fermentaci&oacute;n se realizaron a escala de laboratorio empleando matraces    de 250 mL con un volumen efectivo de 100 mL de medio a base de jugo de s&aacute;bila    con pH ajustado a 5,0. Se ensayaron diferentes variantes de concentraciones    de jugo y combinaciones de sustratos empleados (<a href="#t0103215">tabla 1</a>).</font></p>     <p align="center"><a name="t0103215"></a><img src="/img/revistas/rtq/v35n2/t0103215.jpg"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La    glucosa y la melaza fueron combinados con una composici&oacute;n de 15 g/L,    y en el caso de esta &uacute;ltima en base a az&uacute;cares reductores totales    (ART), con el objetivo de utilizar la misma concentraci&oacute;n de az&uacute;car    que contiene el medio MRS empleado para comparar todos los sustratos.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El    medio control utilizado para la BAL fue MRS [16]. Todos los medios empleados    en la experimentaci&oacute;n se esterilizaron en autoclave a 118 &ordm;C durante    10 minutos.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Cada    fermentaci&oacute;n se inocul&oacute; con una relaci&oacute;n de 1:10, agitaci&oacute;n    en zaranda a 150 min.-1 con temperatura controlada y los cultivos se incubaron    a 37 &ordm;C en una incubadora JOUAN. Las fermentaciones se realizaron por duplicado.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Se    determin&oacute; el pH y el crecimiento microbiano por recuento total de c&eacute;lulas    viables en las variantes a ensayar, ambos en intervalos de 0, 6, 24 y 48 h.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El    perfil de az&uacute;cares se analiz&oacute; a los medios de jugo de s&aacute;bila    puro y los combinados con sustratos al inicio y final de cada fermentaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>RESULTADOS    Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La    <a href="/img/revistas/rtq/v35n2/t0203215.jpg">tabla 2</a> muestra la composici&oacute;n    de los az&uacute;cares y &aacute;cidos org&aacute;nicos presentes en el sustrato    no tradicional. Se encontr&oacute; fructosa y glucosa en los medios a base de    jugo de s&aacute;bila. En el caso del jugo de s&aacute;bila (100 %) combinado    con melaza present&oacute; una composici&oacute;n diferente a los dem&aacute;s    medios, puesto que adem&aacute;s de fructosa y glucosa se evidenciaron la disponibilidad    de otros az&uacute;cares como xilosa y sacarosa aportados por la melaza, que    permitir&aacute;n un mayor uso de estos para el crecimiento de la cepa probi&oacute;tica.    En cuanto a la presencia de &aacute;cidos org&aacute;nicos se detectaron los    &aacute;cidos m&aacute;lico y ox&aacute;lico en todos los sustratos con una    mayor concentraci&oacute;n de &aacute;cido m&aacute;lico. En el caso del jugo    de s&aacute;bila con melaza se detect&oacute; la presencia &aacute;cido l&aacute;ctico.</font></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En    la <a href="/img/revistas/rtq/v35n2/t0303215.jpg">tabla 3</a> se presentan    los resultados del an&aacute;lisis estad&iacute;stico de la viabilidad del L.    plantarum LB/103-1-5 en los sustratos evaluados para diferentes tiempo de fermentaci&oacute;n.</font></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En    el jugo 75 % no hubo crecimiento, quiz&aacute;s por la falta de nutrientes necesarios.    Sin embargo, para el caso del jugo 100 % si se apreci&oacute; un cambio en el    logaritmo de la viabilidad de 8,50 a 9,44 a las 24 h no presentando diferencias    significativas (p &lt;= 0,05) con el crecimiento en el MRS, lo que demostr&oacute;    que el Aloe vera no es inhibitorio del crecimiento. A las 48 h se observ&oacute;    una disminuci&oacute;n del crecimiento muy probable por el agotamiento de los    sustratos.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Para    el caso de los jugos con glucosa y melaza manifestaron comportamiento similar    al jugo de s&aacute;bila 100 %, pero con la diferencia que no disminuy&oacute;    el crecimiento, lo que corrobor&oacute; la deficiencia de sustratos en el jugo    de s&aacute;bila 100 %. De hecho, a las 48 h los jugos combinados no mostraron    diferencias significativas entre ellos, pero s&iacute; con el medio MRS, aunque    se debe se&ntilde;alar que los valores de viabilidad alcanzados fueron adecuados.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El    jugo s&aacute;bila 100 % con melaza mostr&oacute; una buena viabilidad y no    present&oacute; diferencias significativas con el jugo con glucosa, lo que demostr&oacute;    que los nutrientes de la melaza son asimilados por el microorganismo.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El    jugo 75 % con melaza present&oacute; un comportamiento similar a los medios    de jugo 100 % combinado hasta las 24 h, sin embargo a las 48 h present&oacute;    diferencias significativas con estos y un comportamiento similar con el medio    MRS.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">A    pesar de que el jugo de s&aacute;bila es un sustrato no tradicional, la diferencia    con el MRS fue de solo un ciclo logar&iacute;tmico de crecimiento al final de    la fermentaci&oacute;n, este aspecto no es un factor desfavorable o limitante    para el uso de medios de cultivo a base de este jugo debido a que una concentraci&oacute;n    celular de 108 ufc/mL (8,00 log(ufc/mL)) es considerada adecuada.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Al    realizar una comparaci&oacute;n de estos resultados con el medio jugo de s&aacute;bila    (100 %) se observ&oacute; la significaci&oacute;n que tiene la concentraci&oacute;n    del jugo en cuanto a la disponibilidad de mayores cantidades de material fermentable,    lo cual coincide con una de las escasas investigaciones realizadas con el jugo    de esta planta [10].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Adem&aacute;s,    [9] tambi&eacute;n utilizaron las mismas concentraciones del jugo de s&aacute;bila    para el crecimiento de L. plantarum NCIMB 11718 y observaron que la concentraci&oacute;n    neta de Aloe en el medio fue determinante para el desarrollo de los cultivos,    ya que en los medios con menor cantidad de jugo (25 % v/v), se registraron crecimientos    menores de hasta dos &oacute;rdenes (105 ufc/mL) que en los cultivos que conten&iacute;an    cantidades mayores de este sustrato. Sin embargo, informaron valores de viabilidad    del orden de 107ufc/mL para los cultivos en medio jugo de s&aacute;bila con    50 y 75 %, los cuales son mucho menor que los alcanzados en este trabajo.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La    <a href="/img/revistas/rtq/v35n2/t0403215.jpg">tabla 4</a> refleja la utilizaci&oacute;n    de los carbohidratos durante la fermentaci&oacute;n inicial y final en cada    sustrato.</font></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Como    se observa el L. plantarum LB/103-1-5 fue capaz de consumir la glucosa en los    diferentes medios de jugo de s&aacute;bila y MRS, en este &uacute;ltimo al final    de la fermentaci&oacute;n present&oacute; un consumo total y m&aacute;s r&aacute;pido.    En cuanto a la fructosa se observ&oacute; un consumo lento durante la fermentaci&oacute;n    en todos los medios evaluados.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El    jugo de s&aacute;bila con glucosa present&oacute; un menor consumo de este az&uacute;car    con respecto al resto de los medios a las 48 h debido a la presencia de una    mayor concentraci&oacute;n de glucosa en este medio.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">No    obstante, en los medios de jugo de s&aacute;bila con melaza se manifest&oacute;    un consumo de sacarosa, el cual fue total en el jugo de s&aacute;bila al 75    %. Otro carbohidrato presente en los medios donde se us&oacute; como combinado    la melaza fue la xilosa, pero no se apreci&oacute; el consumo de la misma al    final de la fermentaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El    comportamiento del pH durante las fermentaciones de L. plantarum LB/103-1-5    en los distintos sustratos ensayados fue un indicador de inter&eacute;s que    indic&oacute; la producci&oacute;n de &aacute;cidos org&aacute;nicos y el crecimiento    del microorganismo. Tanto en el medio MRS como en los jugos combinados al final    de la fermentaci&oacute;n se obtuvieron valores bajos de pH que oscilaron desde    3,7 hasta 4,0. Los medios que se corresponden con estos valores son jugo de    s&aacute;bila 100 % con glucosa (pH 3,7), jugo de s&aacute;bila 75 % con melaza    (pH 3,9) y jugo de s&aacute;bila 100 % con melaza (pH 4,0).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">De    estos resultados se destac&oacute; el comportamiento del medio jugo de s&aacute;bila    75 % con melaza por manifestar buena viabilidad, capacidad de disminuci&oacute;n    del pH y consumo de glucosa y sacarosa comparados con el resto de los medios    y similar al MRS.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En    la <a href="#t0503215">tabla 5</a> se presenta el comportamiento de la acidez,    en el medio MRS el incremento fue m&aacute;s r&aacute;pido, sin embargo fue    m&aacute;s lento en el jugo de s&aacute;bila durante la fermentaci&oacute;n.    Los valores de acidez alcanzados al final de la fermentaci&oacute;n fueron de    0,482 % para el MRS y de 0,306 % para el medio jugo de s&aacute;bila al 75 %    con melaza. Dichos valores podr&iacute;an ser inhibitorios para bacterias no    deseables y se observ&oacute; que a medida que se increment&oacute; la acidez    se manifest&oacute; un aumento de la viabilidad del microorganismo.</font></p>     <p align="center"><a name="t0503215"></a><img src="/img/revistas/rtq/v35n2/t0503215.jpg"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En    la <a href="#t0603215">tabla 6</a> se aprecia la presencia de &aacute;cidos    org&aacute;nicos tales como l&aacute;ctico, ac&eacute;tico, c&iacute;trico y    ox&aacute;lico en el medio jugo de s&aacute;bila 75 % con melaza durante la    fermentaci&oacute;n, la mayor cantidad fue de &aacute;cido l&aacute;ctico (20,58    mg/mL). Este resultado demostr&oacute; que la disminuci&oacute;n del pH y el    incremento de la acidez total observada durante la fermentaci&oacute;n en este    medio se debieron solo a la producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico    como metabolito principal de las bacterias &aacute;cido l&aacute;cticas.</font></p>     <p align="center"><a name="t0603215"></a><img src="/img/revistas/rtq/v35n2/t0603215.jpg"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Como    se ha reflejado en este trabajo el sustrato seleccionado present&oacute; el    mayor potencial y composici&oacute;n adecuada para el crecimiento del probi&oacute;tico    L. plantarum LB/103-1-5 porque los lactobacilos encontraron en este medio, nitr&oacute;geno    en forma de amino&aacute;cidos o p&eacute;ptidos, carbohidratos (glucosa, fructosa    y sacarosa) y minerales.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Teniendo    en cuenta los precios variables y elevados del medio de cultivo comercial MRS    empleado para el crecimiento de lactobacilos, el uso de jugo de s&aacute;bila    75 % con melaza representar&iacute;a ventajas econ&oacute;micas por ser una    materia prima barata y nutricional con alto contenido de carbohidratos solubles    en comparaci&oacute;n con el medio comercial.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">1.    Se demostr&oacute; que la cepa probi&oacute;tica L. plantarum LB/ 103-1-5 posee    una capacidad de crecimiento adecuada en los diferentes sustratos utilizados.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">2.    Se alcanz&oacute; una viabilidad entre 9,06 y 9,44 log (ufc/mL) cuando se utilizaron    sustratos a base de jugo de s&aacute;bila y jugos con glucosa y melaza, excepto    para el jugo de s&aacute;bila al 75 %.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">3.    El sustrato jugo de s&aacute;bila 75 % con melaza present&oacute; el mejor comportamiento    para los requerimientos nutricionales de L. plantarum LB/103-1-5 durante la    fermentaci&oacute;n, logr&aacute;ndose una buena viabilidad y producci&oacute;n    de &aacute;cido l&aacute;ctico similar a la alcanzada en el medio est&aacute;ndar    MRS.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>BIBLIOGRAF&Iacute;A</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">1.    SHAH, N. &quot;Functional foods from probiotics to prebiotics&quot;. Food technology.    2001, vol 55, pp. 46-52.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">2.    VASILJEVIC, T, et al. &quot;Probiotics-from Metchnikoff to bioactives&quot;.    International Dairy Journal. 2008, vol 18, pp 714 - 728.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">3.    PANDEY, A, et al. &quot;Iron requirement and search for siderophores in lactic    acid bacteria&quot;. Applied Microbiology and Biotechnology, 1994, vol 40, pp.    735-739.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">4.    MOLENAAR, D, et al. &quot;Exploring Lactobacillus plantarum genome diversity    by using microarrays&quot;. Journal Bacteriology. 2005, vol 187, pp. 6119-6127.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">5.    DEL PIANO, M, et al. &quot;Probiotics: from research to consumer&quot;. Digestive    and Liver Disease. 2006, vol 38, pp. 248-255.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">6.    SCHREZENMEIR, J, et al. &quot;Probiotics, prebiotics and symbiotics, definition.&quot;    American Journal Clinical Nutrition. 2001, vol 73, pp.361-364.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">7.    LAWRENCE, G, The Health and Medical Use of Aloe vera. Ed. Life Sciences Pres,    1998. pp 80-88.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">8.    GARC&Iacute;A, J, et al. &quot;Preliminary compositional nutrient diagnosis    norms in Aloe vera L. grown on calcareous soil in an arid environment&quot;.    Environmental and Experimental Botan .2006, vol 58, pp. 244-252.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">9.    CONTRERAS-PINZ&Oacute;N, M, et al. &quot;Proceso de biotransformaci&oacute;n    l&aacute;ctica del jugo de Aloe vera&quot;. Revista de Ciencia, Tecnolog&iacute;a    y Educaci&oacute;n. 2007, vol 22, pp.35-42.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">10.    GONZ&Aacute;LEZ, B, et al. &quot;Aloe vera como sustrato para el crecimiento    de L. plantarum y L. casei&quot;. Revista Ciencia y Tecnolog&iacute;a Alimentaria.    2008, vol 6, pp.152-157.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">11.    OSSA, J. A, et al. &quot;Evaluaci&oacute;n de la melaza de ca&ntilde;a como    sustrato para el crecimiento de Lactobacillus plantarum&quot;. Revista U.D.C.A    Actualidad and Divulgaci&oacute;n Cient&iacute;fica. 2010, vol 13, pp. 97-104.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">12.    DIRECCI&Oacute;N BIOTECNOLOG&Iacute;A. ICIDCA Determinaci&oacute;n simult&aacute;nea    por CLAR de mono, di sac&aacute;ridos y glicerol. PNO-B-En-22. Manual de procedimientos    en el departamento de Bioqu&iacute;mica, La Habana, Cuba. 2008.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">13.    DIRECCI&Oacute;N BIOTECNOLOG&Iacute;A. ICIDCA Determinaci&oacute;n por CLAR    de &aacute;cidos carbox&iacute;licos en caldos de fermentaci&oacute;n. PNO-B-En-23    Manual de procedimientos en el departamento de Bioqu&iacute;mica, La Habana,    Cuba. 2008.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">14.    DIRECCI&Oacute;N BIOTECNOLOG&Iacute;A. ICIDCA. Determinaci&oacute;n de pH. PNO-B-Eq-29    Manual de procedimientos en el departamento de Bioqu&iacute;mica, La Habana,    Cuba. 2008.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">15.    DIRECCI&Oacute;N BIOTECNOLOG&Iacute;A. ICIDCA. Determinaci&oacute;n del crecimiento    microbiano en placa. PNO-M-En-10. Manual de procedimientos en el departamento    de Bioqu&iacute;mica. La Habana, Cuba. 2009.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">16.    MAN, J, et al. &quot;A medium for the cultivation of lactobacilli&quot;. Journal    of Applied Bacteriology. 1960, vol 23, pp.130-135.    </font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Recibido:    Noviembre 2014     <br>   Aprobado: Febrero 2015</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><i>MSc.    Heidy P&eacute;rez-Leonard<sup>I</sup>.</i></font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">    Instituto Cubano de Investigaciones de los Derivados de la Ca&ntilde;a de Az&uacute;car.    La Habana, Cuba.</font></p>      ]]></body><back>
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