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<journal-title><![CDATA[Revista Cubana de Farmacia]]></journal-title>
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<publisher-name><![CDATA[Editorial Ciencias Médicas]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Utilización de la ultrafiltración en la producción de las inmunoglobulinas]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Planta de Hemoderivados. Ciudad de La Habana  ]]></institution>
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<self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0034-75151996000100001&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0034-75151996000100001&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0034-75151996000100001&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Se presentan las experiencias de sustitución de la liofilización por ultradiafiltración como etapa intermedia para la eliminación del etanol, sales y contaminantes proteicos de peso molecular inferior al cut-off del módulo usado (100 kd), en la producción de inmunoglobulinas obtenidas por el método de fraccionamiento de alcohol en frío. Se evalúan las ventajas del uso ultrafiltro desde el punto de vista económico por el aumento de rendimientos, y la factibilidad de obtener un producto libre de polímeros, lo que aumenta la calidad del preparado. Se compara el sistema de membranas planas con los cartuchos de fibra hueca en cuanto a flujo de trabajo.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The authors present the experiences in substituting the freeze-drying with the ultrafiltration, as an intermediate stage for the elimination of ethanol, salts and protein contaminants of inferior molecular weight to the cut-off of the used modulus (100 kd) in the production of immunoglobulins obtained through the cold alcohol fractionation method. The advantages of using the ultrafilter are evaluated from an economical point of view, due to the increase in yielding, and the feasibility of obtaining a polymers-free product, which increases the quality of the preparation. The plain membrane system is compared with empty fiber cartridges, with reference to the work flow.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[ULTRAFILTRACION]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[LIOFILIZACION]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[INMUNOGLOBULINAS]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[ULTRAFILTRATION]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[FREEZE-DRYING]]></kwd>
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<kwd lng="en"><![CDATA[IMMUNOGLOBULINS]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <H3> Art&iacute;culos Originales</H3>   Planta de Hemoderivados. Ciudad de La Habana   <H2>   Utilizaci&oacute;n de la ultrafiltraci&oacute;n en la producci&oacute;n   de las inmunoglobulinas</H2>   <I>Mar&iacute;a Esther Castellano Becerrill,<SUP>1</SUP> Armando C&aacute;diz   Lahens,<SUP>2</SUP> Lorenzo S&aacute;nchez Gallardo<SUP>1</SUP> y H&eacute;ctor   Borrero Larger<SUP>3</SUP></I>          <P><I>1</I> Especialista A en Producci&oacute;n de Hemoderivados.       <BR><SUP>2</SUP> Investigador Auxiliar.       <BR><SUP>3</SUP> Investigador Aspirante.   <H4>   RESUMEN</H4>   Se presentan las experiencias de sustituci&oacute;n de la liofilizaci&oacute;n   por ultradiafiltraci&oacute;n como etapa intermedia para la eliminaci&oacute;n   del etanol, sales y contaminantes proteicos de peso molecular inferior   al <I>cut-off</I> del m&oacute;dulo usado (100 kd), en la producci&oacute;n   de inmunoglobulinas obtenidas por el m&eacute;todo de fraccionamiento de   alcohol en fr&iacute;o. Se eval&uacute;an las ventajas del uso ultrafiltro   desde el punto de vista econ&oacute;mico por el aumento de rendimientos,   y la factibilidad de obtener un producto libre de pol&iacute;meros, lo   que aumenta la calidad del preparado. Se compara el sistema de membranas   planas con los cartuchos de fibra hueca en cuanto a flujo de trabajo.          <P><I>Palabras clave:</I> ULTRAFILTRACION; LIOFILIZACION; POLIMEROS; INMUNOGLOBULINAS.   <H4>   INTRODUCCION</H4>   La aplicaci&oacute;n de la ultrafiltraci&oacute;n en el proceso de fraccionamiento   de las prote&iacute;nas plasm&aacute;ticas data de 1975, donde se empezaron   a obtener productos estables mediante la aplicaci&oacute;n de este m&eacute;todo   en sustituci&oacute;n de la liofilizaci&oacute;n, con el objetivo de eliminar   el etanol y las sales de los preparados, fundamentalmente de la alb&uacute;mina.<SUP>1</SUP>          <P>A partir de la d&eacute;cada del 80 esta t&eacute;cnica tom&oacute;   gran importancia pudi&eacute;ndose lograr concentraciones terap&eacute;u-ticas   de inmunoglobulinas al 16 % de concentraci&oacute;n a pesar de su alta   viscosidad, lo cual fue facilitado por el uso de las membranas planas.<SUP>2</SUP>          <P>En el momento actual se utiliza esta tecnolog&iacute;a como paso intermedio   para eliminar el alcohol y las sales durante el proceso de producci&oacute;n   de las inmunoglobulinas intravenosas (IGIV),<SUP>3,4</SUP> dejando la liofilizaci&oacute;n   solamente para la formulaci&oacute;n de aquellos productos que no son estables   en estado l&iacute;quido y necesitan para su almacenamiento la forma liofilizada.<SUP>5-7</SUP>          <P>La ultrafiltraci&oacute;n no s&oacute;lo elimina el agente precipitante   o sales del sistema, sino tambi&eacute;n puede eliminar otras prote&iacute;nas   con pesos moleculares inferiores al <I>cut-off</I> del m&oacute;dulo utilizado   pudiendo concentrar la inmunoglobulina al nivel deseado en la formulaci&oacute;n   final.          <P>Las preparaciones de inmunoglobulinas son m&aacute;s viscosas que las   de la alb&uacute;mina, lo cual hace m&aacute;s dif&iacute;cil su concentraci&oacute;n.   Es por ello que se debe tener especial cuidado en la selecci&oacute;n en   el sistema de ultrafiltraci&oacute;n.          <P>El objetivo de este trabajo es demostrar las ventajas de la ultrafiltraci&oacute;n   sobre la liofilizaci&oacute;n como etapa intermedia para la eliminaci&oacute;n   del etanol en la producci&oacute;n de las inmunoglobulinas obtenidas por   el m&eacute;todo de Cohn,<SUP>8</SUP> analizando tambi&eacute;n la formaci&oacute;n   de pol&iacute;meros por ambos m&eacute;todos. Dada la alta viscosidad del   preparado quisimos comprobar si exist&iacute;an diferencias en cuanto al   uso de las membranas planas y la fibra hueca.   <H4>   MATERIAL Y METODO</H4>   Utilizamos pastas II provenientes del fraccionamiento alcoh&oacute;lico   de Cohn<SUP>8</SUP> modificado (C&aacute;diz A. Modificaciones tecnol&oacute;gicas   al m&eacute;todo de Cohn. Primer Forum Nacional de Energ&iacute;a. Libro   Res&uacute;menes. La Habana, 1984:57.), obtenidas en la Planta de Hemoderivados   de Ciudad de La Habana. Estas se restituyeron 10 veces peso/volumen con   agua apirog&eacute;nica realiz&aacute;ndole una filtraci&oacute;n previa   a la ultrafiltraci&oacute;n por cartuchos Sartorius de 0,2 m de poro.          ]]></body>
<body><![CDATA[<P>La ultradiafiltraci&oacute;n se llev&oacute; a cabo en 7 lotes, para   lo cual se utiliz&oacute; un Sartocon mini de la Sartorius con placas de   flujo tangencial y 0,5 m<SUP>2</SUP> de superficie. Dos lotes se procesaron   con un equipo de la Amicon con cartuchos de fibra hueca de una superficie   total de 4,2 m<SUP>2</SUP>.          <P>En la etapa de ultrafiltraci&oacute;n el lote se llev&oacute; del volumen   inicial restituido hasta un volumen 5 veces menor. El permeado se analiz&oacute;   durante todo el proceso con vistas a detectar fugas de inmunoglobulinas.          <P>La diafiltraci&oacute;n se llev&oacute; a cabo mediante el intercambio   de 5 vol&uacute;menes de agua apirog&eacute;nica por volumen del ultrafiltrado.          <P>Posterior a la diafiltraci&oacute;n, el granel obtenido se ajusta en   su concentraci&oacute;n proteica, para lo cual se sigui&oacute; el mismo   esquema de producci&oacute;n de las inmunoglobulinas en la Planta de Hemoderivados.          <P>El estudio cromatogr&aacute;fico se realiz&oacute; con la utilizaci&oacute;n   de una columna de Supherose 6 HR (10/30) acoplada a un sistema FPLC.   <H4>   RESULTADOS</H4>   En la tabla 1 se observan las caracter&iacute;sticas fundamentales de las   mem-branas de ultrafiltraci&oacute;n utilizadas. La alta resistencia a   la presi&oacute;n de los ultrafiltros de membrana plana permite concentrar   a valores mucho mayores que los de fibra hueca en tiempos menores de trabajo.       <CENTER>TABLA 1. <I>Caracter&iacute;sticas de las membranas de ultrafiltraci&oacute;n   utilizadas</I></CENTER>             <P>Tipo de membrana Caracter&iacute;sticas Fabricante          <P>Planas - Excelente resistencia a la presi&oacute;n Sartorius          <P>- Alta capacidad de concentraci&oacute;n de prote&iacute;nas          <P>- Peque&ntilde;os vol&uacute;menes muertos          ]]></body>
<body><![CDATA[<P>- Tiempos cortos de ultrafiltraci&oacute;n          <P>Fibra hueca - Resistencia moderada a la presi&oacute;n Amicon          <P>- Menor capacidad de concentraci&oacute;n de prote&iacute;nas          <P>- Peque&ntilde;os vol&uacute;menes muertos          <P>- Tiempos largos de ultrafiltraci&oacute;n          <P>La tabla 2 presenta los resultados de la ultradiafiltraci&oacute;n en   7 lotes de inmunoglobulinas con la utilizaci&oacute;n del sistema de membranas   planas.       <CENTER>TABLA 2. <I>Resultado de la ultradiafiltraci&oacute;n por membranas   planas. (Sartorius)</I></CENTER>          <CENTER><TABLE BORDER CELLPADDING=4 WIDTH="100%" >   <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">          <P>&nbsp;          <P>No. de lote&nbsp;</TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>Concentraci&oacute;n prote&iacute;nas de inicial</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>Concentraci&oacute;n prote&iacute;nas de inicial</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>Volumen final</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>Volumen de intercambio</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>Presi&oacute;n de entrada</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>Flujo promedio</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>Flujo promedio</CENTER>   </TD>   </TR>      <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">&nbsp;</TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>(L)</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>(%)</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>(%)</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>(L)</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>(bar)</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>(L/h/0,1 m)</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>(L/h/m)</CENTER>   </TD>   </TR>      <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">1</TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>18</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>2,54</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>14,5</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>20</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>0,8</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>1,15</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>11,5</CENTER>   </TD>   </TR>      <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">2</TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>20</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>2,00</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>15,0</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>20</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>0,8</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>1,09</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>10,9</CENTER>   </TD>   </TR>      <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">3</TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>20</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>2,54</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>15,0</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>20</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>0,8</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>1,17</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>11,7</CENTER>   </TD>   </TR>      <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">4</TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>20</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>2,40</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>15,5</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>20</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>0,8</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>1,01</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>10,1</CENTER>   </TD>   </TR>      <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">5</TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>20</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>2,30</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>14,5</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>20</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>0,8</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>1,09</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>10,9</CENTER>   </TD>   </TR>      <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">6</TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>20</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>2,47</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>15,0</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>20</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>0,8</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>1,04</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>10,4</CENTER>   </TD>   </TR>      <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">7</TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>20</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>2,90</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>15,0</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>20</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>1,2</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>1,26</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>12,6</CENTER>   </TD>   </TR>      <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">_</TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>19,7</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>2,45</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>14,9</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>20</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>0,86</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>1,12</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>11,2</CENTER>   </TD>   </TR>   </TABLE></CENTER>   Nota: M&oacute;dulo usado: 100 kd; temperatura: 8 EC; soluci&oacute;n proteica:   Pasta II (IgG) m&eacute;todo Cohn modificado por <I>C&aacute;diz et al.</I>          ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Puede observarse c&oacute;mo se alcanzan concentraciones de prote&iacute;na   del 15 % con flujos promedios de 10-12 L/h/m<SUP>2</SUP>. Comparado con   el sistema de fibra hueca (tabla 3), la concentraci&oacute;n de prote&iacute;na   alcanzada fue del 30 % menor, entre 9-10 g %, y el flujo promedio fue aproximadamente   de 2,2 L/h/m<SUP>2</SUP>, o sea, unas 5 veces menos eficiente que el sistema   de membrana plana.       <CENTER>TABLA 3. <I>Resultado de la ultradiafiltraci&oacute;n por fibra   hueca. (Amicon)</I></CENTER>          <CENTER><TABLE BORDER CELLPADDING=4 WIDTH="100%" >   <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">No. de lote</TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>Concentraci&oacute;n de prote&iacute;nas inicial</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>Concentraci&oacute;n de prote&iacute;nas inicial</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>Volumen final</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>Volumen de intercambio</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>Presi&oacute;n de entrada</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>Flujo promedio</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>Flujo promedio</CENTER>   </TD>   </TR>      <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">&nbsp;</TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>(L)</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>(%)</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>(%)</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>(L)</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>(bar)</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>(L/h/0,1 m)</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>(L/h/m)</CENTER>   </TD>   </TR>      <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">1</TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>100</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>1,84</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>10,45</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>100</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>1,0</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>3,26</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>2,33</CENTER>   </TD>   </TR>      <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">2</TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>100</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>2,40</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>9,50</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>100</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>1,0</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>3,00</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>2,14</CENTER>   </TD>   </TR>      <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">_</TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>100</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>2,12</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>10,00</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>100</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>1,0</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>3,13</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="13%">       <CENTER>2,24</CENTER>   </TD>   </TR>   </TABLE></CENTER>   Nota: M&oacute;dulo usado: 100 kd; temperatura: 8 EC; soluci&oacute;n proteica:   Pasta II (IgG) m&eacute;todo Cohn modificado por <I>C&aacute;diz et al.</I>          <P>La tabla 4 demuestra las ventajas de la ultrafiltraci&oacute;n sobre   la liofilizaci&oacute;n ya que no se generan pol&iacute;meros de IgG durante   el proceso, mientras que en la liofilizaci&oacute;n la agregaci&oacute;n   puede tomar valores de hasta el 4 %.       <CENTER>TABLA 4. <I>Pol&iacute;meros en lotes ultrafiltrados y liofilizados</I></CENTER>          ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER><TABLE BORDER CELLPADDING=4 WIDTH="80%" >   <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>No. de lote</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>Equipo utilizado</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>Mon&oacute;mero + d&iacute;mero</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>Pol&iacute;meros</CENTER>   </TD>   </TR>      <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>1</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>Sartocon</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>100</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>0</CENTER>   </TD>   </TR>      <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>2</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>Sartocon</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>100</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>0</CENTER>   </TD>   </TR>      <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>3</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>Sartocon</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>100</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>0</CENTER>   </TD>   </TR>      <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>4</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>Sartocon</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>100</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>0</CENTER>   </TD>   </TR>      <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>5</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>Sartocon</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>100</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>0</CENTER>   </TD>   </TR>      <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>6</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>Sartocon</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>100</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>0</CENTER>   </TD>   </TR>      <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>7</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>Sartocon</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>100</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>0</CENTER>   </TD>   </TR>      <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>1</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>Amicon</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>100</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>0</CENTER>   </TD>   </TR>      <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>2</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>Amicon</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>100</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>0</CENTER>   </TD>   </TR>      <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>01031</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>Liofilizaci&oacute;n</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>95,65</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>4,35</CENTER>   </TD>   </TR>      <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>02031</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>Liofilizaci&oacute;n</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>95,36</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>4,64</CENTER>   </TD>   </TR>      <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>05031</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>Liofilizaci&oacute;n</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>97,64</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>2,36</CENTER>   </TD>   </TR>      <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>10031</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>Liofilizaci&oacute;n</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>97,40</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>2,60</CENTER>   </TD>   </TR>      <TR>   <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>03021</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>Liofilizaci&oacute;n</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       <CENTER>98,06</CENTER>   </TD>      <TD VALIGN=TOP WIDTH="25%">       ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>1,94</CENTER>   </TD>   </TR>   </TABLE></CENTER>      <H4>   DISCUSION</H4>   La ultrafiltraci&oacute;n es una filtraci&oacute;n molecular. Esta discrimina   entre mol&eacute;culas de diferentes tama&ntilde;o y, por lo tanto, entre   mol&eacute;culas de diferentes pesos moleculares.          <P>Las ventajas de la ultrafiltraci&oacute;n sobre otros procesos de separaci&oacute;n   son:<SUP>9</SUP>          <P>- No introduce cambios de fase.       <BR>- Bajo costo energ&eacute;tico.       <BR>- Equipamiento sencillo.       <BR>- No se usan sistemas de calentamiento.       <BR>- Requiere un m&iacute;nimo de trabajo.          <P>La liofilizaci&oacute;n introduce cambios importantes en la mol&eacute;cula   de IgG, que pueden ir desde la activaci&oacute;n espont&aacute;nea de la   filtraci&oacute;n de complemento hasta la producci&oacute;n de quininas   biol&oacute;gicamente activas, &eacute;stas son productoras del efecto   hipotensor en los pacientes que reciben el producto.<SUP>10,11</SUP>          <P>La utilizaci&oacute;n de un <I>cut-off</I> de 100 kd en el sistema de   ultrafiltraci&oacute;n permite tambi&eacute;n eliminar contaminantes proteicos   de peso molecular menor a esta cifra. Especial importancia posee la eliminaci&oacute;n   de la ceruloplasmina y la alb&uacute;mina de este preparado que se confunden   con la fracci&oacute;n de mon&oacute;meros en los productos liofilizados   dada su concentraci&oacute;n tan baja.<SUP>12</SUP>          <P>En los ensayos realizados por ultrafiltraci&oacute;n comparados con   la liofilizaci&oacute;n se demuestra un aumento de rendimientos de aproximadamente   1g/L de plasma procesado (Castellano ME, Borrero H, S&aacute;nchez L, C&aacute;diz,   A. Sustituci&oacute;n de la liofilizaci&oacute;n por la ultrafiltraci&oacute;n   en la producci&oacute;n de hemoderivados. VIII Forum de Ciencias y T&eacute;cnica.   La Habana, 1993.)          ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Entre los 2 sistemas de ultrafiltraci&oacute;n que hemos utilizado existen   diferencias que son importantes a la hora de escoger uno u otro para este   tipo de producci&oacute;n espec&iacute;ficamente (tabla 1). El sistema   de membranas planas presenta una excelente resistencia a la presi&oacute;n   y es capaz de llegar a altas concentraciones de prote&iacute;nas (tabla   2). El sistema de fibra hueca resiste menos presi&oacute;n y disminuye   su capacidad de ultrafiltraci&oacute;n grandemente al aumento de concentraci&oacute;n   de prote&iacute;nas (tabla 3).          <P>En el caso especial de las inmunoglobulinas, &eacute;stas forman una   capa coloidal que no incrementa simplemente su concentraci&oacute;n en   la superficie de la membrana al paso del tiempo, sino que tiende a formar   una membrana secundaria conocida como membrana gelatinosa.<SUP>9</SUP>          <P>Tambi&eacute;n se encuentran diferencias significativas en el nivel   de pol&iacute;meros entre los productos ultrafiltrados y liofilizados.   En las inmunoglobulinas ultrafiltradas no se observan pol&iacute;meros   mientras que con la liofilizaci&oacute;n se producen alrededor del 2-4   % de &eacute;stos (tabla 4).          <P>Existen 2 fen&oacute;menos que apoyan estos resultados. Es conocido   desde hace muchos a&ntilde;os que la presi&oacute;n retarda la desnaturalizaci&oacute;n   de las prote&iacute;nas aun en presencia de etanol en concentraciones superiores   a 0,3 molar,<SUP>13</SUP> y la ultrafiltraci&oacute;n trabaja con presiones   positivas. Sin embargo, en el proceso de liofilizaci&oacute;n es necesario   aplicar alto vac&iacute;o y calor. Las pastas de IgG liofilizadas siguen   una cin&eacute;tica de desnaturalizaci&oacute;n que resulta fenomenol&oacute;gicamente   de primer orden, la cual se incrementa con la temperatura (Guti&eacute;rrez   AM. Estudio de la conservaci&oacute;n de alb&uacute;mina y gammaglobulina   liofilizadas. Tesis para obtener el t&iacute;tulo en Master en Ciencias   T&eacute;cnicas. Centro Nacional de Investigaciones Cient&iacute;ficas.   La Habana, 1995:23-32).          <P>Concluyendo, podemos decir que la ultrafiltraci&oacute;n presenta ventajas   sobre la liofilizaci&oacute;n, logr&aacute;ndose productos de mayor calidad.   Dada la alta viscosidad que alcanzan las soluciones de inmunoglobulinas   incrementada por la baja temperatura de trabajo, es que preferimos los   sistemas de membranas planas a los fibra hueca para la ultradiafiltraci&oacute;n   en este tipo de producci&oacute;n.   <H4>   SUMMARY</H4>   The authors present the experiences in substituting the freeze-drying with   the ultrafiltration, as an intermediate stage for the elimination of ethanol,   salts and protein contaminants of inferior molecular weight to the cut-off   of the used modulus (100 kd) in the production of immunoglobulins obtained   through the cold alcohol fractionation method. The advantages of using   the ultrafilter are evaluated from an economical point of view, due to   the increase in yielding, and the feasibility of obtaining a polymers-free   product, which increases the quality of the preparation. The plain membrane   system is compared with empty fiber cartridges, with reference to the work   flow.          <P><I>Key words:</I> ULTRAFILTRATION; FREEZE-DRYING; POLYMERS; IMMUNOGLOBULINS.   <H4>   REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS</H4>      <OL>       <!-- ref --><LI>   <FONT SIZE=-1>Martinache L, Henon MP. Concentration and desalting by ultrafiltration.   En: Curling JM, ed. Methods of plasma protein fractionation. London: Academic,   1980:223-38.</FONT></LI>    <!-- ref --><LI>   <FONT SIZE=-1>Sartocon Mini. Crossflow System. Product Information. Sartorius   GmbH. Germany. Pub. FU 4018 d 10/1986.</FONT></LI>    <!-- ref --><LI>   <FONT SIZE=-1>Lundblad J, Schroeder D. M&eacute;todos de producci&oacute;n   de IGIV y an&aacute;lisis de los preparados comerciales. En: Yap DL, ed.   Aplicaciones cl&iacute;nicas del tratamiento con inmunoglobulinas intravenosas.   Barcelona: JR. Prous, 1993;15-36.</FONT></LI>    <LI>   <FONT SIZE=-1>Schwartz RS. Overview of the biochemistry and safety of a   new intravenous gamma globulin, IGIV, pH 4,25. Am J Med 1987;83(Suppl 4A):46-51.</FONT></LI>          ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><LI>   <FONT SIZE=-1>Greene E. Regulatory aspects of IVIG therapy. En: Yap PL,   ed. Clinicals applications of intravenous immunoglobulin therapy. Edinburg:   Churchill Livingstone, 1992:217-38.</FONT></LI>    <!-- ref --><LI>   <FONT SIZE=-1>Mc Cue J, Hein RH, Tenold R. Three generations of IgG preparations   of clinical use. Rev Infect Dis 1986;8:374-81.</FONT></LI>    <!-- ref --><LI>   <FONT SIZE=-1>Lundblad JL, Mitra G, Sternberg MM, Schroeder DD. Comparative   studies impurities in intravenous immunoglobulin preparations. Rev Infect   Dis 1986;8:382-90.</FONT></LI>    <LI>   <FONT SIZE=-1>Cohn EJ, Strong LE, Hughes WL, Mulford DJ, Ashworth JN, Melin   JN, et al. Preparation and properties of serum and plasma protein. IV:   A system for the separation into fractions of the protein and lipoproteins   components of biological tissues and fluids. J Am Chem Soc 1946;68:459-75.</FONT></LI>          <!-- ref --><LI>   <FONT SIZE=-1>Genovesi CS. Validation of unique filtration processes. En:   Carleton JF, Agalloco JP, eds. Validation of aseptic pharmaceutical processes.   New York: Marcel Dekker, 1986:476-506.</FONT></LI>    <!-- ref --><LI>   <FONT SIZE=-1>Frank M. The effects of intravenous immune globulin on complement   dependent immune damage of cells and tissues. Clin Immunol Immunophatol   1992;62:S82-6.</FONT></LI>    <!-- ref --><LI>   <FONT SIZE=-1>Thorpe R. An&aacute;lisis de laboratorio de los preparados   de inmunoglobulinas intravenosas. En: Yap PL, ed. Aplicaciones cl&iacute;nicas   del tratamiento con inmunoglobulinas intravenosas. Barcelona: JR. Prous,   1993:239-48.</FONT></LI>    <!-- ref --><LI>   <FONT SIZE=-1>Perry RJ. Application for a product licence under the EC   extension directives for human IGIV administration. SNTBS p.0000208, july,1992.</FONT></LI>    <!-- ref --><LI>   <FONT SIZE=-1>Joly M. A physico-chemical approach to the denaturation of   proteins. London: Academic, 1965:41.</FONT></LI>    </OL>   Recibido: 29 de junio de 1995. Aprobado: 27 de octubre de 1995.          ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Lic. <I>Mar&iacute;a Esther Castellano Becerril</I>. Calle 122 No. 7101   entre 71 y 71A, Marianao, Ciudad de La Habana, Cuba.             ]]></body><back>
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