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<journal-title><![CDATA[Revista Cubana de Farmacia]]></journal-title>
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<publisher-name><![CDATA[Editorial Ciencias Médicas]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Pasteurización de soluciones de inmunoglobulinas de uso intravenoso: 2. El ph ácido como elemento estabilizante]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto Finlay. Centro de Investigación y Producción de Vacunas y Sueros  ]]></institution>
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<self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0034-75151999000300001&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0034-75151999000300001&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0034-75151999000300001&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Una solución de inmunoglobulinas de uso intravenoso (intacglobin®, Cuba), libre de estabilizantes, fue pasteurizada a baja fuerza iónica y pH ácidos. El contenido de polímeros se determinó por cromatografía en gel, y se obtuvo el mejor resultado a pH 3,5 con 3,8 % de polímeros y 72,7 % de monómeros. La estabilidad de la inmunoglobulina G (IgG), tratada a pH de 3,0 a 7,0, fue evaluada por espectrofotometría. La actividad antígeno-anticuerpo fue medida por un ELISA tipo Sandwich de doble antígeno, y se obtuvo como resultado una disminución del título de anticuerpos a los pH más ácidos. Se demostró que la baja fuerza iónica y el pH ácido son 2 condiciones necesarias para lograr un bajo nivel de polímeros durante la pasteurización de las soluciones de IgG. Se encontraron requisitos para que el proceso transcurra sin la adición de estabilizantes en mejores condiciones que las reportadas por otros autores.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[A stabilizer-free intravenous immunoglobulin solution (intacglobin®, Cuba) was pasteurized at low ionic force and acid pH. the content of polymers was determined by gel chromatography. The best result was obtained at pH 3.5 with 3.8 % of polymers and 72.7 % of monomers. The stability of immunoglobulin G (IgG), treated at pH from 3.0 to 7.0, was evaluated by spectrophotometry. The antigen-antibody activity was measured by a double antigen ELISA Sandwich. It was observed a reduction of the antibody titre at the most acid pH. It was proved that the low ionic force and the acid pH are two necessary conditions to attain a low polymer level during the pasteurization of IgG solution. Requirements were found for the process to go on without adding stabilizers under better conditions than the ones reported by other authors.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[CALOR]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[INMUNOGLOBULINAS INTRAVENOSAS]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <h3> Art&iacute;culos Originales</h3>Instituto Finlay. Centro de Investigaci&oacute;n  y Producci&oacute;n de Vacunas y Sueros <h2> Pasteurizaci&oacute;n de soluciones  de inmunoglobulinas de uso intravenoso. 2. El ph &aacute;cido como elemento estabilizante</h2><i><a href="#*">Armando  C&aacute;diz Lahens,<sup>1</sup> Janhna Hern&aacute;ndez Mach&iacute;n,<sup>2</sup>  L&aacute;zaro Jo&oacute; S&aacute;nchez,<sup>3</sup> Aniel Moya Torres<sup>4</sup>  y Amador Camero Santiesteban<sup>5</sup></a></i> <h4> RESUMEN</h4>Una soluci&oacute;n  de inmunoglobulinas de uso intravenoso (intacglobin&reg;, Cuba), libre de estabilizantes,  fue pasteurizada a baja fuerza i&oacute;nica y pH &aacute;cidos. El contenido  de pol&iacute;meros se determin&oacute; por cromatograf&iacute;a en gel, y se  obtuvo el mejor resultado a pH 3,5 con 3,8 % de pol&iacute;meros y 72,7 % de mon&oacute;meros.  La estabilidad de la inmunoglobulina G (IgG), tratada a pH de 3,0 a 7,0, fue evaluada  por espectrofotometr&iacute;a. La actividad ant&iacute;geno-anticuerpo fue medida  por un ELISA tipo Sandwich de doble ant&iacute;geno, y se obtuvo como resultado  una disminuci&oacute;n del t&iacute;tulo de anticuerpos a los pH m&aacute;s &aacute;cidos.  Se demostr&oacute; que la baja fuerza i&oacute;nica y el pH &aacute;cido son 2  condiciones necesarias para lograr un bajo nivel de pol&iacute;meros durante la  pasteurizaci&oacute;n de las soluciones de IgG. Se encontraron requisitos para  que el proceso transcurra sin la adici&oacute;n de estabilizantes en mejores condiciones  que las reportadas por otros autores.     <p><i>Descriptores DeCS</i>: CALOR; INMUNOGLOBULINAS  INTRAVENOSAS/aislamiento &amp; purificaci&oacute;n; ESTERILIZACION/m&eacute;todos.      <p>Dado que la sangre es la v&iacute;a de transmisi&oacute;n de varias enfermedades,  sobre todo para microorganismos que producen una viremia persistente y a elevados  t&iacute;tulos, existe la necesidad de tomar medidas para prevenir la infecci&oacute;n  por el uso de productos del plasma.<sup>1,2</sup>     <p>Por esta raz&oacute;n la  introducci&oacute;n de pasos de inactivaci&oacute;n y/o remoci&oacute;n de virus  en los procesos de fabricaci&oacute;n de inmunoglobulinas intravenosas (IGIV),  cobran gran importancia y desempe&ntilde;an una funci&oacute;n esencial en la  seguridad de los productos biol&oacute;gicos.<sup>3,4</sup> La pasteurizaci&oacute;n  de soluciones de inmunoglobulinas, es uno de los m&eacute;todos que hasta el momento  muestra resultados seguros en la inactivaci&oacute;n viral, por lo que se hace  necesario la b&uacute;squeda de condiciones ideales de calentamiento, para lograr  que &eacute;ste sea capaz de inactivar los virus presentes, sin afectar la estructura  y funci&oacute;n de las prote&iacute;nas, teniendo en cuenta tambi&eacute;n que  no s&oacute;lo la seguridad de no transmitir virus es importante, sino que se  pueden presentar reacciones adversas determinadas por los agregados moleculares  que se forman por la acci&oacute;n del calor. Estos agregados poseen actividades  biol&oacute;gicas propias que no se encuentran en los mon&oacute;meros de inmunoglobulinas.<sup>5</sup>      <p>El uso de pH &aacute;cido, como ha sido demostrado por varios autores,<sup>6,7</sup>  confiere una mayor estabilidad molecular a la inmunoglobulina G (IgG), a su vez  la disminuci&oacute;n de la fuerza i&oacute;nica del medio, dado por un decrecimiento  en las concentraciones de NaCl, evita el efecto desestabilizador de esta sal sobre  las fuerzas no covalentes encargadas de mantener la conformaci&oacute;n de la  mol&eacute;cula. Este trabajo estudia la posibilidad de combinar ambos factores  en el calentamiento del intacglobin&reg; con vistas a aumentar la estabilidad  de la mol&eacute;cula inmunoglobul&iacute;nica.     <p><b>M&Eacute;TODOS</b>     <p>Se  tomaron 20 mL de un <i>pool</i> de intacglobin y diafiltramos con 6 vol&uacute;menes  de agua, para lo que se emple&oacute; una membrana YM 100, en un sistema de ultrafiltraci&oacute;n  AMICON, con una presi&oacute;n de nitr&oacute;geno de 3,5 atm. Esta diafiltraci&oacute;n  se realiz&oacute; con el objetivo de eliminar el 5 % de dextrosa que incluye la  formulaci&oacute;n final del intacglobin.<sup>8</sup>     <p>Estos 20 mL fueron divididos  en 4 al&iacute;cuotas de 5 mL cada una y el pH fue ajustado con HCl (1 M), a 3,0;  3,5; 4,0 y 5,0 respectivamente. El calentamiento se realiz&oacute; en un ba&ntilde;o,  de temperatura controlada a 60 <font face="Symbol">&deg;</font>C y al transcurrir  las 10 h del proceso convencional de pasteurizaci&oacute;n, las muestras fueron  analizadas por cromatograf&iacute;a en gel.     <p>Este m&eacute;todo cromatogr&aacute;fico  se escogi&oacute; dada su capacidad de separaci&oacute;n de las mol&eacute;culas  seg&uacute;n su peso molecular. El objetivo consisti&oacute; en la determinaci&oacute;n  del porcentaje de pol&iacute;meros, d&iacute;meros y mon&oacute;meros de IgG,  en intacglobin, antes y despu&eacute;s de pasteurizado a baja fuerza i&oacute;nica  y pH &aacute;cido, lo que permiti&oacute; conocer la estabilidad de la IgG obtenida.      <p>Por la alta concentraci&oacute;n de intacglobin (50 mg/mL), realizamos a las  muestras una diluci&oacute;n 1:4, para desarrollar corridas dentro del rango de  concentraciones establecidas para este m&eacute;todo y la sensibilidad seleccionada,  y as&iacute; obtener una mayor resoluci&oacute;n en el cromatograma.     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las condiciones  para el desarrollo de esta cromatograf&iacute;a fueron: matriz Sephacril S-300,  columna Pharmacia XK 16/70, sensibilidad 0,2, velocidad del papel 0,01 mm/min,  flujo 30 mLh<sup>-1</sup> y como <i>buffer</i> de corrida soluci&oacute;n salina  tamponada con fosfato (0,1 M) o soluci&oacute;n tamponada con acetato (0,1 M)  en dependencia del rango de pH de las muestras.     <p>Para el estudio de estabilidad  de la inmunoglobulina presente en el intacglobin a diferentes pH por espectrofotometr&iacute;a,  decidimos leer a 260 nm como forma de medir la contribuci&oacute;n de fenil alanina  en la absorci&oacute;n de la mol&eacute;cula.<sup>9</sup>     <p>Partimos de 2,5 mL  del <i>pool</i> y realizamos una diluci&oacute;n 1:10 por la elevada concentraci&oacute;n  del intacglobin, y los 25 mL resultantes fueron distribuidos en 5 al&iacute;cuo-tas  de 5 mL cada una, ajustamos el pH a 3,0; 4,0; 5,0; 6,0 y 7,0 respectivamente,  mantuvimos las muestras en reposo 1 h y le&iacute;mos densidad &oacute;ptica (DO)  a 260 nm en un espectrofot&oacute;metro (Pharmacia LKB, ULTROSPEC III).     <p>Realizamos  un ELISA tipo Sandwich, de doble ant&iacute;geno (Ag) para la detecci&oacute;n  y cuantificaci&oacute;n de anticuerpos (Acs) contra el ant&iacute;geno (Ag) de  superficie del virus de la hepatitis B (HB<sub>s</sub>) en el intacglobin, en  un rango de pH de 3,0 a 7,0 con intervalos de una unidad.     <p>El procedimiento  desarrollado se describe en la Tesis de Residencia en Inmunolog&iacute;a de <i>Garc&iacute;a  M</i> (Desarrollo de un m&eacute;todo inmunoenzim&aacute;tico para la detecci&oacute;n  de Ac contra el Ag de superficie del virus de la hepatitis B. Instituto de Ciencias  B&aacute;sicas y Precl&iacute;nicas "Victoria de Gir&oacute;n", 1994). <h4> RESULTADOS</h4>La  diafiltraci&oacute;n del intacglobin nos permiti&oacute; obtener la soluci&oacute;n  de inmunoglobulinas libre de estabilizantes, para ser sometida a la pasteurizaci&oacute;n  a baja fuerza i&oacute;nica y pH &aacute;cido.     <p>Las consecuencias de este calentamiento  en la estabilidad de la mol&eacute;cula de IgG se analizan por medio de la proporci&oacute;n  de pol&iacute;meros, d&iacute;meros y mon&oacute;meros, que se muestran en la  tabla. Como se observa a pH 6,5, la muestra de intacglobin utilizada como material  de partida consta del 3,19 % de pol&iacute;meros, 0 % de d&iacute;meros y el 96,8  % de mon&oacute;meros.     <p>     <center>TABLA.<i> Pasteurizaci&oacute;n del sobrenadante  II (</i>pool<i> de 4 lotes) a baja concentraci&oacute;n de NaCl y pH &aacute;cido</i></center>    <center><table CELLPADDING=5 >  <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">&nbsp;</td><td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center>%</center></td><td VALIGN=TOP WIDTH="25%">      ]]></body>
<body><![CDATA[<center>%</center></td><td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center>%</center></td></tr>  <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">Muestras&nbsp;</td><td VALIGN=TOP WIDTH="25%">      <center>Pol&iacute;meros</center></td><td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center>D&iacute;meros</center></td><td VALIGN=TOP WIDTH="25%">      <center>Mon&oacute;meros</center></td></tr> <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">pH  6,5*</td><td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center>3,19</center></td><td VALIGN=TOP WIDTH="25%">      <center>-</center></td><td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center>96,8</center></td></tr>  <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">pH 3,0</td><td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center>-</center></td><td VALIGN=TOP WIDTH="25%">      <center>41,9</center></td><td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     ]]></body>
<body><![CDATA[<center>56,4</center></td></tr>  <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">pH 3,5</td><td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center>3,8</center></td><td VALIGN=TOP WIDTH="25%">      <center>23,5</center></td><td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center>72,7</center></td></tr>  <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">pH 4,0</td><td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center>16,3</center></td><td VALIGN=TOP WIDTH="25%">      <center>49,0</center></td><td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center>40,8</center></td></tr>  <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">pH 5,0</td><td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center>40,0</center></td><td VALIGN=TOP WIDTH="25%">      <center>14,5</center></td><td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center>43,6</center></td></tr>  </table></center>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center>* Sobredonante B nativo. : Ausencia.</center>    <p>Los mejores  resultados se obtuvieron a pH 3,0, donde los pol&iacute;meros presentes en el  producto original desaparecen con el tratamiento y a pH 3,5 el incremento en el  contenido de pol&iacute;meros con respecto al material de partida, es pr&aacute;cticamente  insignificante y se obtiene la mayor proporci&oacute;n de mon&oacute;meros; en  ambos casos se observa un considerable incremento en el porcentaje de d&iacute;meros.  Para los pH 4,0 y 5,0 el aumento en el contenido de pol&iacute;meros es mucho  mayor que a 3,0 y 3,5.     <p>El resultado del ploteo de los valores de absorbancia  contra los diferentes valores de pH, a 260 nm, se muestra en la figura 1, en la  que se observa un aumento de los valores de absorbancia con el aumento del pH.  Para pH 3,0; 4,0 y 5,0 los valores de absorbancia est&aacute;n por debajo de 0,05  nm y por encima de este valor para el pH 6,0 y 7,0.     <center>     <p><a href="/img/revistas/far/v33n2/f0101399.gif"><img SRC="/img/revistas/far/v33n2/f0101399.gif" ALT="Figura1" BORDER=0 height=148 width=235></a>      
<p>FIG. 1<i>. Estudio de la estabilidad de la IgG a pH &aacute;cido por la lectura  de absorbancia a 260 nm.</i></center>    <p>La figura 2 muestra la presencia de Acs  contra el Ag de superficie de la hepatitis B a diferentes pH del intacglobin.  El mayor t&iacute;tulo se corresponde con pH 6,0 y los menores valores a los pH  3,0 y 4,0.     <center>     <p><a href="/img/revistas/far/v33n2/f0201399.gif"><img SRC="/img/revistas/far/v33n2/f0201399.gif" ALT="Figura2" BORDER=0 height=162 width=238></a>      
<p>FIG. 2.<i> Comportamiento de los Acs contra el Hb<sub>s</sub> Ag en el intacglobin  tratado a diferentes pH.</i></center><h4> DISCUSI&Oacute;N</h4>Para evitar el  efecto desestabilizante del NaCl sobre las fuerzas no covalentes, que contribuyen  a mantener la estructura conformacional de la inmunoglobulina, como son: las interacciones  dipolo - dipolo, las fuerzas de Van der Waals y los puentes de H y evitar la acci&oacute;n  negativa del ion cloruro sobre estas mol&eacute;culas, realizamos esta pasteurizaci&oacute;n  a baja concentraci&oacute;n de NaCl.<sup>10</sup>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El pH es otro par&aacute;metro  que al igual que la fuerza i&oacute;nica est&aacute; comprometido en la estabilidad  de la mol&eacute;cula y que en condiciones extremas puede provocar des-naturalizaci&oacute;n.  Durante la pasteurizaci&oacute;n obtuvimos los mejores resultados, determinados  por cromatograf&iacute;a en gel, con los pH m&aacute;s &aacute;cidos, preferiblemente  a pH 3,5, donde se obtuvo un valor bajo de pol&iacute;meros y el mayor porcentaje  de mon&oacute;meros. Esto corrobora que el uso del pH &aacute;cido confiere una  mayor estabilidad molecular a la IgG, permitiendo la disociaci&oacute;n de los  agregados. Este fen&oacute;meno est&aacute; influido por la fuerza i&oacute;nica  del medio para cada uno de los pH.<sup>11</sup>     <p>Condiciones similares de calentamiento  han sido desarrolladas en trabajos de inactivaci&oacute;n y eliminaci&oacute;n  de virus durante el fraccionamiento de preparaciones de inmunoglobulinas para  uso intravenoso,<sup>12</sup> y se han obtenido resultados comparables con los  nuestros respecto a la no utilizaci&oacute;n del NaCl como estabilizante, aunque  utilizan otras sales y el trabajo a pH &aacute;cido con ligeras diferencias a  las nuestras, donde en uno de los trabajos se reportan valores de 5 a 6 y en el  otro valores de pH de 4,8.<sup>6</sup> Estas diferencias pudieran estar dadas  tambi&eacute;n por las condiciones de obtenci&oacute;n de estas inmunoglobulinas.      <p>La pasteurizaci&oacute;n a baja fuerza i&oacute;nica y pH &aacute;cido, resulta  ser un m&eacute;todo muy efectivo para la inactivaci&oacute;n y eliminaci&oacute;n  de virus, ya que adem&aacute;s de incrementar la seguridad viral, no se necesita  de estabilizantes los cuales pueden proteger la part&iacute;cula viral y con el  tiempo pueden cambiar las caracter&iacute;sticas organol&eacute;pticas de la preparaci&oacute;n,  ejemplo: sacarosa, dextrosa, etc. Adem&aacute;s, seg&uacute;n los ex&aacute;menes  hay una buena tolerancia cl&iacute;nica de estas preparaciones de inmunoglobulinas.<sup>6</sup>      <p>Los buenos resultados obtenidos en esta pasteurizaci&oacute;n a pH &aacute;cido  y baja fuerza i&oacute;nica, nos condujo al an&aacute;lisis del comportamiento  de las inmunoglobulinas presentes en el intacglobin a pH &aacute;cidos, por otros  m&eacute;todos.     <p>El valor de absorbancia de una soluci&oacute;n de inmunoglobulinas  es una medida de su turbidez y a su vez &eacute;sta, es una medida de su agregaci&oacute;n  y desnaturalizaci&oacute;n. Los valores de absorbancia a 260 nm del intacglobin  tratado a diferentes pH, muestran un incremento del grado de turbidez con el aumento  del pH (fig. 1), lo que demuestra que el uso del pH &aacute;cido confiere una  mayor estabilidad molecular a la IgG, esto es debido a que las inmunoglobulinas  son una familia de mol&eacute;culas estrechamente relacionadas entre s&iacute;  con un rango amplio de puntos isoel&eacute;ctricos (aproximadamente una unidad  de pH) y con 40 cargas superficiales como promedio, confiriendo mayor solubilidad  de &eacute;stas a pH &aacute;cido que a pH neutro donde todav&iacute;a un gran  porcentaje de ellas tienen neutralizadas sus cargas.<sup>13</sup>     <p>No es sorprendente  el hecho de que el pH influya sobre la capacidad de formaci&oacute;n del complejo  Ag-Ac (fig. 2), ya que los sitios activos de reacci&oacute;n de cada mol&eacute;cula  (ep&iacute;topes e idiotipos) est&aacute;n compuestos por grupos ionizables y  diferentes condiciones de pH pueden no ser id&oacute;neos para mantener la conformaci&oacute;n  del centro activo y provocar la reacci&oacute;n. Esto no quiere decir que la estabilidad  de las mol&eacute;culas est&eacute;n afectadas por esta variaci&oacute;n en el  microambiente del sitio activo. Este fen&oacute;meno puede variar con distintos  Ags y el idiotipo formado en respuesta a cada uno de ellos, por lo que pudi&eacute;ramos  encontrar diferentes resultados utilizando diferentes sistemas de mol&eacute;culas.  La regi&oacute;n Fc de una inmunoglobulina es m&aacute;s l&aacute;bil a pH &aacute;cido  que la regi&oacute;n F(ab)<sub>2</sub><sup>13</sup> y quedar&iacute;a por demostrar  si las funciones biol&oacute;gicas de la mol&eacute;cula, como la opsonizaci&oacute;n  o la fijaci&oacute;n del complemento no se afectan por la pasteurizaci&oacute;n  a pH &aacute;cido ya que radican en el fragmento Fc. En la pr&aacute;ctica cl&iacute;nica  la preparaci&oacute;n de intacglobin al entrar al torrente sangu&iacute;neo que  se encuentra a pH neutro vuelve a tomar todo su potencial biol&oacute;gico al  parecer sin afectaci&oacute;n.<sup>14</sup> <h4> SUMMARY</h4>A stabilizer-free  intravenous immunoglobulin solution (intacglobin&reg;, Cuba) was pasteurized at  low ionic force and acid pH. the content of polymers was determined by gel chromatography.  The best result was obtained at pH 3.5 with 3.8 % of polymers and 72.7 % of monomers.  The stability of immunoglobulin G (IgG), treated at pH from 3.0 to 7.0, was evaluated  by spectrophotometry. The antigen-antibody activity was measured by a double antigen  ELISA Sandwich. It was observed a reduction of the antibody titre at the most  acid pH. It was proved that the low ionic force and the acid pH are two necessary  conditions to attain a low polymer level during the pasteurization of IgG solution.  Requirements were found for the process to go on without adding stabilizers under  better conditions than the ones reported by other authors.     <p><i>Subject headings</i>:  HEAT; INMUNOGLOBULINS; INTRAVENOUS/isolation &amp; purification; STERILIZATION.  <h4> REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</h4><ol>     <!-- ref --><li> Auley C, Herring S, Uemura  Y. Hepatitis C virus more resistant to inactivation than human immunodeficiency  virus. Vox Sang 1992;63:289.</li>    <!-- ref --><li> Nowak T, Gregersen P, Klockmann U, Cummins  L. Virus safety of human immunoglobulins: efficient inactivation of hepatitis  C and other human pathogenic viruses by the manufacturing procedure. J Med Virol  1992;36:209-16.</li>    <!-- ref --><li> Wells M, Witteks Aepstein J, Marcus S. Inactivation and  partition of human virus during ethanol fractionation of plasma. Transfusion 1986;26:210-3.</li>    <!-- ref --><li>  Henin Y, Marechal Fcherman J, Morgenthaler J. Inactivation and partition of human  immunodeficiency virus during Kistler and nitschmann fractionation of human blood  plasma. Vox Sang 1989;54:78-83.</li>    <!-- ref --><li> Tomono T, Ikeda K, Suzuky T. A new intact  immunoglobulin for intravenous use stabilized by chemically modiefied gelatin  derivates. Vox Sang 1986;51:81-6.</li>    <!-- ref --><li> Bridonneau P, Marcilly H, Vernois M,  Goigoux P, Bourdel V, Laulan A, et al. Liquid pasteurization of an immunoglobulin  preparation without stabilizer: effects on its biological and biochemical properties.  Vox Sang 1996;70:203-9.</li>    <!-- ref --><li> Dodd RY. Infectious risk of plasma donations:  relationship to safety of intravenous immune globulins. Clin Exp Immunol 1996;104:31-4.</li>    <li>  C&aacute;diz A, Castellano ME, Castillo R y Melchor A. Comportamiento de algunos  par&aacute;metros determinantes de efectos adversos inducidos por inmunoglobulinas  intravenosas. Rev Cubana Farm 1995;29(2):109-16.</li>    <!-- ref --><li> Ch&aacute;vez MA. Temas  de enzimolog&iacute;a (tomo II). La Habana: Universidad de La Habana. Facultad  de Biolog&iacute;a:1990.</li>    <!-- ref --><li> Sjoberg B, Mortensen K. Structure and thermodynamics  of nonideal solutions of colloidal particles: investigation of salt!free solution  of human serum albumin by using small!angle neutron scattering and Monte Carlo  simulation. Biophys Chem 1997;65(1):75-83.</li>    <!-- ref --><li> H&auml;m&auml;l&auml;inen  E, Suomela H, Ukkonen P. Virus inactivation during intravenous immunoglobulin  production. Vox Sang 1992;63:6-11.</li>    <!-- ref --><li> Uemura Y, Uriyu K, Hirao Y, Takechi  K, Ishikawa H, Nakajima T, et al. Inactivation and elimination of viruses during  the fractionation of an intrevenous immunoglobulin preparation: liquid heat treatment  and polyethylene glycol fractionation. Vox Sang 1989;56:155-61.</li>    <!-- ref --><li> Uemura  Y. Dissociation of agregated IgG and denaturation of monomeric IgG by acid treatment.  J Med 1983;141:337-49.</li>    <!-- ref --><li> C&aacute;diz A, Guti&eacute;rrez A, Giraldino  I, Garc&iacute;a L. Ensayo de un m&eacute;todo de obtenci&oacute;n industrial  en Cuba de una inmunoglobulina humana normal biol&oacute;gicamente activa por  fraccionamiento etanoico. Rev Cubana Farm 1977;11:5-12</li>    </ol>Recibido: 3 de  mayo de 1999. Aprobado: 4 de junio de 1999.     <br>Lic. <i>Armando C&aacute;diz Lahens</i>.  Instituto Finlay. Centro de Investigaci&oacute;n y Producci&oacute;n de Vacunas  y Sueros. Ave. 27 No. 19805, municipio La Lisa, AP 16017, C&oacute;digo 11600,  Ciudad de La Habana, Cuba.     <br>&nbsp;     <br> &nbsp; <a NAME="*"></a><sup>1</sup>  Licenciado en Biolog&iacute;a. Investigador Titular.     <br> <sup>2</sup> Licenciada  en Microbiolog&iacute;a.     <br> <sup>3</sup> Licenciado en Biolog&iacute;a y Bioqu&iacute;mica.      <br> <sup>4</sup> Licenciado en Bioqu&iacute;mica. Aspirante a Investigador. <sup>    <br>  5</sup> Licenciado en Biolog&iacute;a.     <br> &nbsp;      ]]></body>
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