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Instituto de Ecología y Sistemática
Daisy Sandoval López,1 Armando Payo Hill2 y Hermán Vélez Castro3
Se informan los resultados obtenidos del estudio del contenido de alcaloides en las hojas y tallos de la especie endémica cubana Annona sclerophylla, de discreta actividad antimicrobiana. Para la extracción y purificación de dichos metabolitos se utilizaron solventes orgánicos y métodos cromatográficos de separación por columna. Con el empleo de técnicas espectroscópicas de UV, IR, masa y RMN1H y 13C, así como por la medición de sus constantes físicas, se identificaron los alcaloides isocorypalmina y liriodenina, y los compuestos (-)-kau-16-en-19-oico y (-)-kauran-16a-o1.
DeCS: PLANTAS MEDICINALES; ALCALOIDES; EXTRACTOS VEGETALES/farmacología; EXTRACTOS VEGETALES/química.
El interés en los últimos años de los investigadores por la actividad biológica de las Anonáceas, se debe fundamentalmente a la acción cititóxica, antitumoral, pesticida y antimicrobiana1,2 que presentan un gran número de plantas de esta importante familia.
Este trabajo forma parte del estudio iniciado con las especies endémicas cubanas3 del género Annona, en el cual se reporta la identidad de los constituyentes mayoritarios presentes en las partes aéreas de Annona sclerophylla Safford, arbusto endémico4 que crece en la región oriental de la isla de Cuba.
El material vegetal fue colectado en Pinares de Mayarí, Holguín, Cuba; un ejemplar se encuentra depositado en el Herbario HAC del Instituto de Ecología y Sistemática, catalogado como HAC 41416.
Las hojas y tallos (3,7 kg) secos y molidos de A. sclerophylla se extrajeron de acuerdo con el procedimiento descrito con anterioridad.3 El crudo, constituido por una mezcla, fue fraccionado con el empleo de cromatografía de columna sobre Kieselgel 40 (70-230 mesh); como eluyente se utilizó cloroformo (CHCl3) y las mezclas cloroformo-metanol (CHCl3MeOH) de polaridad creciente.
]]> La purificación de los 4 compuestos obtenidos se realizó mediante cromatografía de columna sobre Kieselgel y mezcla benceno/metanol aumentando la polaridad.La determinación del punto de fusión y rotación específica se realizó en un microscopio modelo MHK y un equipo Polartronic(Universal) respectivamente.
Los datos espectroscópicos se obtuvieron en equipo Specord (UV), Pye Unican SP 1100 (IR), Jeol DX-300 (masa) y Jeol FX-90Q-90 MHz (RMN-1H) -22,53 (RMN-13C).
Compuesto 1 (466 mg): C20 H23 NO4, M+ m/z 341. Pf. 213-215 °C (descomposición). Cristalizado en CHCl3 MeOH; [a]25D-326,2 ° (CHCl3, e= 0,32); UV: 
nm (log l) : 284 (3,72) . IR:n 
cm-1 3 490 (OH), 2 590, 1 623, 1 523, 1 296,1 000, 876, 820. EM [m/z] (int. rel. %),M+341 (87), 326 (45), 310 (13), 178(9), 176 (33), 164 (100), 149 (76), 134 (9). RMN 1H: [200 MHz, DMSO-d6, TMS, d (p.p.m.)]: 3,71; 3,74; 3,76 (9 H, 3O Me); 4,04 (JAB = 16 Hz); 6,49; 6,81; 6,87 (1H, 1H, 2H aromáticos). RMN 13C: [22,5 MHz, CDCl3, DMSO, TMS, d (p.p.m.)] (tabla).
Tabla . Datos espectroscópicos RMN 13C de los compuesto 1,3 y 4
| Carbón No. | Compuesto 1 | Compuestos 3 | Compuesto 4 |
| 1 | 108,7 | 41,4 | ]]> 42,2 |
| 1 a | 128,2 | - | - |
| 2 | 144,6 | 19,1 | 18,7 |
| 3 | 146,1 | 37,9 | 42,2 |
| 4 | ]]> 115,0 | 43,8 | 33,2 |
| 4 a | 127,2 | - | - |
| 5 | 28,5 | 57,2 | 56,2 |
| 6 | 51,8 | ]]> 21,8 | 20,5 |
| 7 | - | 40,7 | 40,5 |
| 8 | 54,0 | 44,2 | 45,5 |
| 8 a | 127,6 | - | ]]> - |
| 9 | 150,5 | 55,2 | 57,1 |
| 10 | 145,5 | 39,7 | 39,5 |
| 11 | 111,5 | 18,4 | 18,1 |
| 12 | ]]> 124,2 | 33,1 | 27,0 |
| 12 a | 128,7 | - | - |
| 13 | 36,0 | 43,8 | 49,2 |
| 14 | 59,5 | ]]> 39,7 | 37,8 |
| 15 | - | 49,0 | 58,4 |
| 16 | - | 155,6 | 79,3 |
| 17 | - | 103,1 | ]]> 24,5 |
| 18 | - | 28,9 | 33,6 |
| 19 | - | 184,6 | 21,5 |
| 20 | - | 15,5 | 17,8 |
| 3-OCH3 | ]]> 56,3(a) | - | - |
| 9-OCH3 | 60,3 | - | - |
| 10-OCH3 | 56,0(a) | - | - |
(a) señales intercambiables.
]]> Compuesto 2 (10 mg): C17 H9 NO3, M+ m/z 275. Pf. 280 °C. Cristalizado en CHCl3 UV: nm (log e): 418 (3,92); 310 (3,27); 268 (4,22); 248 (4,30). IR: n cm –1: 1 654, 1 594, 1 576. EM [m/z] (int. rel. %): M+ 275 (100), 246 (38), 219 (36), 217 (35), 162 (11). RMN 1H: [100 MHz, CF3 CO2 D, TMS, d (p.p.m.)]: 6, 52 (s, 2H, OCH3O); 7,42 (s,1H), 7,5 - 8,7 (m, 6H).
Compuesto 3 (715 mg): C20 H30 O2, M+ m/z 302. Pf. 160-163 °C. Cristalizado en n-hexano; [a]25D-99,9° (CHCl3, c = 0,91). IR: n cm-1: 2 940, 1 961 (CO2H), 882 (= CH2). EM [m/z] (int. rel. %): M+ 302 (63), 287 (38), 259 (55), 241 (34), 213 (32), 187 (18), 169 (15), 148 (19), 131 (57), 105 (62), 91 (100), 79 (72), 67 (57), 55 (51), 41 (94). RMN 1H:[200 MHz, CDCl3, TMS, d (p.p.m)]: 0,97;1,25 (6H, 2CH3). 4,79 (2H,J = 11,4 Hz = CH2). RMN 13C: [22,5 MHz CDCl3 DMSO, TMS, d (p.p.m.)] (tabla).
Compuesto 4 (72,7 mg): C20 H34 =, M+ m/z 290. Pf. 218-219 °C. Cristalizado en n-hexano; [a]25 D –49° (CHCl3 c = 0,24). IR:n cm-1: 3 460, 2 952, 1 477, 1 382, 1 122 (OH), 940 (C CH2)3). EM [m/z] (int. rel. %): M+ 290, 272, 253, 243, 232, 217, 204, 187. RMN 1H: [90 MHz, CDCl3, DMSO, TMS, d (p.p.m.)] (tabla).
Ensayos preliminares realizados demuestran que el crudo obtenido a partir de los extractos etanólicos presenta una discreta actividad frente al Staphylococcus aureus ATCC 15 006 (Martínez J.L. Comunicación personal).
El espectro IR del compuesto 1 muestra la presencia de un grupo hidroxilo en 3 490 cm-1, así como un cuarteto AB con la mitad a alto campo cubierta por las señales de los grupos metoxilos en d 4,00 y d 4,08 (JAB = 16 Hz) en el espectro RMN 1H, que indican sustituciones en las posiciones 9 y 10 de una tetrahidroprotoberberina.5 Las asignaciones de los corrimientos del espectro de RMN13 C (INEPT) fueron comparadas con los datos reportados para compuestos tipos similares,6,7 identificándose al compuesto como el alcaloide isocorypalmina (fig.1).
Fig. 1. Isocorypalmina (compuesto 1)
Se observan en el espectro IR del compuesto 2, la presencia de un grupo carbonilo en 1 654 cm-1, y las bandas aromáticas en 1 594 y 1 576 cm-1. En el espectro RMN 1H la presencia de un singlete en d 6,52 propio de un grupo metilendioxi, así como las señales en d 7,42 y d 7,5-8,7 características de protones aromáticos nos indican que este alcaloide no es más que la oxoaporfina, liriodenina (fig.2).
El espectro IR del compuesto 3 muestra la banda de un ácido carboxílico en 1 691 cm-1 y de un doble enlace exocíclico en 878 cm.-1 En el espectro RMN 1H se aprecian las señales de 2 grupos metilos terciarios d 0,91 y d 1,25, así como la señal correspondiente a 2 protones en d 4,79.
La presencia en el espectro RMN 13C de los corrimientos en 184,6; 155,6 y 103,0 p.p.m. confirman la presencia del grupo carboxilo y del doble enlace respectivamente. Este compuesto se identifica con el ácido (-)- Kaur- 16 - en- 19- oico (fig.3).
Fig. 3. Ácido (-)-kaur-16-en-19-oico (compuesto 3).
La presencia de un grupo hidroxilo terciario con bandas en 1 122 cm-1 y de 2 grupos metilos geminales en 940 cm-1 son verificados por las señales en d 0,8; 0,83; 1,03 y 1,32 del espectro RMN 1H del compuesto 4. El espectro RMN 13C de este coincide con el reportado8 para el (-)-kauran-16a-o1 (fg.4).
Fig. 4. (-)kauran-16a-o1 (compuesto 4).
Los resultados permiten establecer la presencia de isocorypalmina, liriodenina, ácido (-)-kaur-16-en-19-oico y (-)-kauran-16a-ol en las hojas y los tallos de la especie endémica cubana A. sclerophylla Safford.
Agradecemos al doctor H. Ripperger el aporte brindado a la realización de este trabajo y al licenciado Pedro Herrera por la colecta e identificación del material vegetal.
Subject headings: PLANTS, MEDICINAL; ALKALOIDS; PLANT EXTRACTS//pharmacology; PLANT EXTRACTS/chemistry.
Recibido: 11 de enero del 2002. Aprobado: 4 de febrero del 2002.
Lic. Armando Payo Hill. Instituto de Ecología y Sistemática. Carretera de Varona km 3½ Capdevila, municipio Rancho Boyeros, Ciudad de La Habana, Cuba.
1 Licenciada en Química. Investigadora Agregada.
2 Licenciado en Bioquímica. Investigador Agregado.
3 Doctor en Química. Investigador Titular. Centro de Química Farmacéutica.
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