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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[DETECCIÓN POR PCR DE Anaplasma marginale EN BÚFALOS DE LA REGIÓN OCCIDENTAL DE CUBA]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The buffalo species was recently introduced in Cuba, showing excellent productive and reproductive performance. Their health situation has been little studied, although their natural resistance to various diseases reported in the country, including haemoparasitosis has been recognized. Buffaloes are also susceptible to infection with Anaplasma marginale, but hardly present clinical anaplasmosis, remaining asymptomatic carriers, which facilitates transmission to cattle. This study is aimed at determining the presence of A. marginale in buffaloes of the western region of Cuba. For this purpose, an nPCR test, based on msp5 gene amplification of this hemoparasites, was developep. Fifty-two DNA samples, extracted from animal blood, randomly selected from 6 farms in western Cuba, which underwent blood smear were analized. From the total samples analyzed, 47 (90.4%) were positive by nPCR, visualizing in all cases a band of 345 bp, while only 5 animals (9.6%) were positive in blood smear. One of the fragment amplified was sequenced and the sequence obtained was deposited in GenBank under Accession Number JF270381, showing a high percentage of identity with Anaplasma marginale deposited sequences in different regions of the world.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Art&iacute;culo    original</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B><font size="4">DETECCI&Oacute;N    POR PCR DE<I> Anaplasma marginale </I>EN B&Uacute;FALOS DE LA REGI&Oacute;N    OCCIDENTAL DE CUBA</font></B></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><font size="3">DETECTION    BY PCR <i>Anaplasma marginale</i> IN BUFFALOES OF THE WESTERN REGION OF CUBA</font></b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>Belkis Corona*,    D. Obreg&oacute;n**, Siomara Mart&iacute;nez*, Ivette Espinosa*, A. Henrique    Fonseca***, E. Roque**</B> </font>      <P> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><I>*Centro Nacional    de Sanidad Agropecuaria. Apartado 10, San Jos&eacute; de las Lajas, Mayabeque,    Cuba. Correo electr&oacute;nico: <U><a href="mailto:bcorona@censa.edu.cu">bcorona@censa.edu.cu</a></U>.    **Universidad Agraria de La Habana. Autopista Nacional y carretera de Tapaste,    San Jos&eacute; de las Lajas, Mayabeque, Cuba. ***Universidad Federal Rural    de Rio de Janeiro, RJ, Brasil</I></font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>&nbsp;     <P>&nbsp; <hr noshade size="1">     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>RESUMEN</B></font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La especie bubalina,    introducida en Cuba, ha mostrando excelentes resultados productivos y reproductivos.    La situaci&oacute;n de salud en ellos ha estudiado poco, aunque se reconoce    su resistencia natural a varias enfermedades informadas en el pa&iacute;s, incluidas    las hemoparasitosis. Los b&uacute;falos tambi&eacute;n son susceptibles a la    infecci&oacute;n por <I>Anaplasma marginale, </I>pero la anaplasmosis cl&iacute;nica    dif&iacute;cilmente se presenta, permaneciendo como portadores asintom&aacute;ticos,    lo que facilita la transmisi&oacute;n a los bovinos. El presente trabajo tuvo    como objetivo determinar la presencia de <I>A. marginale </I>en b&uacute;falos    de la regi&oacute;n occidental de Cuba. Para ello se desarroll&oacute; un ensayo    de nPCR, a partir de la amplificaci&oacute;n del gen <I>msp</I>5 de este hemopar&aacute;sito.    Se analizaron 52 muestras de ADN, extra&iacute;do de sangre de animales seleccionados    al azar en seis granjas del occidente de Cuba, a los que se les realiz&oacute;    Frotis Sangu&iacute;neo. Del total de muestras analizadas, 47 muestras (90,4%)    resultaron positivas por el nPCR, visualiz&aacute;ndose en todos los casos una    banda de 345 pb, mientras que s&oacute;lo cinco animales (9,6%) fueron positivos    en el Frotis Sangu&iacute;neo. Uno de los fragmentos amplificados fue secuenciado    y la secuencia obtenida fue depositada en el GenBank con N&uacute;mero de Acceso    JF270381, mostrando un alto por ciento de identidad con secuencias depositadas    de <I>Anaplasma marginale</I> de diferentes regiones del mundo. </font>      <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Palabras clave:</b>    Anaplasma marginale; PCRn; msp5.</font>  <hr noshade size="1">     <P> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>ABSTRACT</b></font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">The buffalo species    was recently introduced in Cuba, showing excellent productive and reproductive    performance. Their health situation has been little studied, although their    natural resistance to various diseases reported in the country, including haemoparasitosis    has been recognized. Buffaloes are also susceptible to infection with <I>Anaplasma    marginale</I>, but hardly present clinical anaplasmosis, remaining asymptomatic    carriers, which facilitates transmission to cattle. This study is aimed at determining    the presence of <I>A. marginale</I> in buffaloes of the western region of Cuba.    For this purpose, an nPCR test, based on <I>msp</I>5 gene amplification of this    hemoparasites, was developep. Fifty-two DNA samples, extracted from animal blood,    randomly selected from 6 farms in western Cuba, which underwent blood smear    were analized. From the total samples analyzed, 47 (90.4%) were positive by    nPCR, visualizing in all cases a band of 345 bp, while only 5 animals (9.6%)    were positive in blood smear. One of the fragment amplified was sequenced and    the sequence obtained was deposited in GenBank under Accession Number JF270381,    showing a high percentage of identity with <I>Anaplasma marginale</I> deposited    sequences in different regions of the world.</font>  <B></B>      <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Key words: </b>Anaplasma    marginale; nPCR; msp5.</font>  <hr noshade size="1">     <P>&nbsp;     <P>&nbsp;     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B><font size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></B></font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En Latinoam&eacute;rica    la existencia estimada de b&uacute;falos asciende a m&aacute;s de 3,8 millones    de cabezas (1) y en el mundo supera los 2020 millones (2). La especie bubalina    (<I>Bubalus bubalis</I>) fue introducida en Cuba en la d&eacute;cada de los    80, (3), como alternativa para la recuperaci&oacute;n de leche, carne y su empleo    en la tracci&oacute;n animal, garantizando su desarrollo con bajos insumos,    adapt&aacute;ndose muy bien a nuestras condiciones de crianza (4) y en el 2009    alcanzaban la cifra de 63 050 cabezas (5). </font>      <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Hasta la actualidad    no se han realizado estudios que aborden la incidencia de las hemoparasitosis    en los reba&ntilde;os bubalinos. Tampoco existen reportes de focos o cuadros    cl&iacute;nicos de estas patolog&iacute;as (Informe de Balance, 2009, IMV),    predominando el criterio entre productores y personal veterinario, de que los    b&uacute;falos son refractarios a las hemoparasitosis. </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los trabajos realizados    hasta el momento indican la necesidad e importancia de caracterizar la situaci&oacute;n    epidemiol&oacute;gica de estas infecciones en los reba&ntilde;os bubalinos (6,7,8,9),    en especial, la identificaci&oacute;n de animales portadores, por constituir    un par&aacute;metro epidemiol&oacute;gico importante en el monitoreo y control    de estas infecciones (10). </font>      <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los b&uacute;falos    son susceptibles a muchas de las enfermedades y par&aacute;sitos que afectan    al bovino, pero el efecto en ellos es menos serio, en un mismo ecosistema (11).    <I>Anaplasma marginale</I> es una rickettsia del genogrupo II de las Ehrlichias,    que parasita los eritrocitos maduros del ganado bovino. Los animales que sobreviven    a la anaplasmosis bovina aguda, despu&eacute;s de una infecci&oacute;n primaria,    permanecen persistentemente infectados de por vida, independientemente de re-exposiciones    a la rickettsia (12), sirviendo como reservorio para la transmisi&oacute;n de    la enfermedad en el campo (13). </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La enfermedad cl&iacute;nica    es m&aacute;s notable en bovinos, pero otros rumiantes que incluyen b&uacute;falo    de agua, bisonte, ant&iacute;lope africano, y ciervo se pueden convertir en    persistentemente infectados con <I>Anaplasma marginale</I> (11). </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El control de la    anaplasmosis bovina requiere de una vacuna efectiva y de la identificaci&oacute;n    exacta de los animales portadores. Los dos m&eacute;todos recomendados para    la detecci&oacute;n de estos son la identificaci&oacute;n del ADN de la rickettsia    en sangre, mediante t&eacute;cnicas moleculares y la detecci&oacute;n de anticuerpos    espec&iacute;ficos contra <I>A. marginale</I> en suero (14). Este &uacute;ltimo    se hace dif&iacute;cil por los m&eacute;todos serol&oacute;gicos de rutina (15),    por lo que contar con t&eacute;cnicas de mayor sensibilidad y especificidad,    es una necesidad. </font>      <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El gen <I>msp</I>5    es de gran utilidad para el diagn&oacute;stico molecular, mediante PCR, en animales    persistentemente infectados (16). Este gen y su producto de expresi&oacute;n    son recomendados para el monitoreo de animales durante el movimiento internacional    de ganado y en programas de control de la anaplasmosis bovina (17). </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Teniendo en cuenta    las potencialidades del gen <I>msp</I>5 y la sensibilidad y especificidad que    ofrece la PCR, para ser utilizados en el diagn&oacute;stico, el objetivo del    presente trabajo fue desarrollar un ensayo de PCR a partir de la amplificaci&oacute;n    del gen <I>msp</I>5, para demostrar la presencia de <I>A. marginale</I> en muestras    de b&uacute;falos en explotaci&oacute;n en la regi&oacute;n occidental de Cuba.    </font>     <P>&nbsp;      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B><font size="3">MATERIALES    Y M&Eacute;TODOS </font></B></font>      <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>Muestras de    sangre: </b>Se tomaron muestras de sangre a 52 b&uacute;falos seleccionados    al azar, de diferentes categor&iacute;as, procedentes de varias unidades de    producci&oacute;n bufalina, en cuatro provincias del occidente de Cuba (<a href="#t1">Tabla    1</a>).<B> </B>Ning&uacute;n caso presentaba manifestaciones cl&iacute;nicas    de s&iacute;ndrome hemol&iacute;tico.</font>      <P align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><img src="/img/revistas/rsa/v34n1/t0102112.gif" width="323" height="190"><a name="t1"></a>    
<BR>       <BR>   </font>      <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>Diagn&oacute;stico    por frotis sangu&iacute;neo: </B>A cada animal se le extrajo sangre perif&eacute;rica,    perforando el borde interno de la oreja, previo lavado de la piel, con aguja    de calibre 26 X 1/2, desechando las primeras gotas y se realiz&oacute; frotis    sangu&iacute;neo delgado. Las extensiones fueron llevadas al laboratorio, fijadas    con metanol absoluto (Uni-Chem) y te&ntilde;idas durante 30 min con Giemsa seg&uacute;n    Gainer (18). La lectura se hizo con microscopio &oacute;ptico (Opton), empleando    lente de inmersi&oacute;n de 100X. </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>Colecta de sangre:    </B>La sangre para el diagn&oacute;stico por PCR se obtuvo mediante punci&oacute;n    de la vena yugular, utilizando agujas hipod&eacute;rmicas calibre 40 X 15 y    tubos de cristal de fondo plano (Polylabo) con 10 mg de EDTA como anticoagulante    y se conserv&oacute; -20&#176;C en crioviales (Neogene), sin descongelarse,    hasta su uso. </font>      <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>Purificacion    del ADN: </B>La extracci&oacute;n de ADN fue realizada seg&uacute;n la metodolog&iacute;a    descrita por Ambrosio y Potgieter (19). </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Como control positivo    se utiliz&oacute; el ADN del aislamiento Habana de <I>A. marginale</I>, obtenido    a partir de sangre infectada, donada por el Grupo de Parasitolog&iacute;a, CENSA.    Esta sangre se extrajo de bovinos esplenectomizados infectados experimentalmente    y que alcanzaron un 60% de parasitemia. La sangre fue lavada con PBS y conservada    en 30% de glicerol a -20<SUP>o</SUP>C hasta su uso y el ADN se purific&oacute;    seg&uacute;n la metodolog&iacute;a descrita por Ambrosio y Potgieter (19). </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>Realizaci&oacute;n    del PCR: </B>Para la realizaci&oacute;n del nPCR se utilizaron los cebadores    descritos por Torioni <I>et al.</I> (16), con los que se amplifican dos fragmentos    dentro del gen <I>msp</I>5 de <I>A. marginale</I>. Para el PCR<SUB>1</SUB> los    cebadores 1 y 2 (5&#180;GCATAGCCTCCGCGTCTTTC3&#180;; 5&#180;TCCTCGCCTTGCCCCTCAGA3&#180;)    amplifican un fragmento de 458 pb, y para el PCR<SUB>2 </SUB>los cebadores 3    y 2 (5&#180;TACACGTGCCCTACCGATTA3'; 5&#180;TCCTCGCCTTGCCCCTCAGA3&#180;) amplifican    un fragmento de 345 pb dentro del primer fragmento amplificado. La s&iacute;ntesis    de los cebadores se realiz&oacute; en el Centro de Ingenier&iacute;a Gen&eacute;tica    y Biotecnolog&iacute;a (CIGB), La Habana, Cuba. </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Ambos ensayos (PCR<SUB>1</SUB>    y PCR<SUB>2</SUB>) se realizaron en una mezcla de reacci&oacute;n de 25 &#181;L,    seg&uacute;n lo descrito por Torioni <I>et al.</I> (16), con modificaciones.    La mezcla de reacci&oacute;n conten&iacute;a 2,5 &#181;L de soluci&oacute;n    tamp&oacute;n 1X (Promega) (KCl 50mM; Tris-HCI 10mM, pH 8.3); 2.5mM de MgCl<SUB>2</SUB>,    200&#181;M de los dNTPs (Promega), 10&#181;M de los cebadores y 1&#181;L de    <I>Taq</I> Polimerasa (AmpliCEN). En el PCR<SUB>1</SUB> se utilizaron 5&#181;l    de ADN de <I>A. marginale</I>, y en el PCR<SUB>2 </SUB>se utiliz&oacute; 1&#181;L    del producto del PCR<SUB>1</SUB>. Todos los reactivos se manipularon en flujo    laminar (IKEM), utilizando puntas con filtros (Eppendorff) resistentes a aerosoles.    Las reacciones se desarrollaron en un Termociclador &#171;Mastercycler Personal&#187;    (Eppendorf). Ambos ensayos se realizaron con el siguiente programa de amplificaci&oacute;n:    un ciclo de 95&#186;C, durante 3 minutos; 35 ciclos de 95&#186;C- 30 segundos,    61&#186;C- 1 minuto, 72&#186;C- 30 segundos y una extensi&oacute;n final de    10 minutos a 72&#186;C. </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>Visualizaci&oacute;n    de los resultados del nPCR: </B>Los resultados del nPCR se aplicaron en geles    de agarosa (Sigma) al 2%, en tamp&oacute;n TBE 0.5 X, se corrieron a 100 Volts    y 50 mA, en c&aacute;mara de electroforesis &#171;Maxiphor 2012&#187; (LKB Bromma)    durante 35 minutos; el tamp&oacute;n de corrida (TBE 0.5X) conten&iacute;a Bromuro    de Etidio (0.5 &#181;g/mL). Los resultados se visualizaron en un transluminador    de luz ultravioleta &#171;Macro Vue&#187; (Pharmacia) y se fotografiaron con    c&aacute;mara digital (Olympus) de 10 megapixel. Se utiliz&oacute; un marcador    de peso molecular de 100pb (Promega). </font>      <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>An&aacute;lisis    de restricci&oacute;n al fragmento amplificado en el nPCR: </B>Se realiz&oacute;    un an&aacute;lisis <I>in silico</I> para determinar las posibles enzimas a emplear,    para lo que se utiliz&oacute; el programa &#171;NEB cutter&#187; <U>(<a href="http://www.tols.neb.com/nebcutter" target="_blank">http://www.tols.neb.com/nebcutter</a>)</U>,    y como molde, la secuencia del gen<I> msp5 </I>del aislamiento &#171;Habana&#187;    de <I>A. marginale</I> con n&uacute;mero de acceso AY527217. Para confirmar    que los fragmentos visualizados en el gel de agarosa, eran realmente de <I>A.    marginale</I>, se seleccionaron muestras al azar y se les realiz&oacute; an&aacute;lisis    de restricci&oacute;n con Eco<I>R </I>I (Promega). </font>      <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>Secuenciaci&oacute;n    del fragmento amplificado: </B>Uno de los fragmentos amplificados fue secuenciado    utilizando el Kit Genome Lab<SUP>tm</SUP> DTCS- Quick start kit, en el Equipo    CEQ<SUP>tm </SUP> 8800 (Beckman Coulter). La secuencia obtenida fue depositada    en el GenBank con N&uacute;mero de Acceso JF270381 y se analiz&oacute; el por    ciento de identidad con el programa BlastN del NCBI. </font>     <P>&nbsp;     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B><font size="3">RESULTADOS    Y DISCUSI&Oacute;N</font></B></font>      <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La primera determinaci&oacute;n    de <I>A. marginale</I> en sangre de b&uacute;falo se realiz&oacute; a trav&eacute;s    de la visualizaci&oacute;n de los frotis sangu&iacute;neos, te&ntilde;idos con    Giemsa. Del total de 52 muestras analizadas, solo 5 (9,6%) resultaron positivas,    encontr&aacute;ndose escasos eritrocitos parasitados por campo. Con el empleo    del nPCR se visualiz&oacute; la banda de 345 pb en 47 de las muestras analizadas,    para un 90,4% (<a href="/img/revistas/rsa/v34n1/f0102112.gif">Figura 1</a>,    <a href="/img/revistas/rsa/v34n1/t0202112.gif">Tabla 2</a>). </font>      
<P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Esta diferencia    en los resultados obtenidos por ambas t&eacute;cnicas confirma que el frotis    sangu&iacute;neo no es lo suficientemente sensible para la identificaci&oacute;n    de animales portadores, ya que esta t&eacute;cnica solo detecta niveles de parasitemia,    superiores a 10<SUP>6</SUP> EI/ml de sangre (20), mientras que en los animales    portadores la parasitemia fluct&uacute;a entre 10<SUP>2 </SUP>y 10<SUP>7</SUP>    EI/ml de sangre (21), lo que limita que pueda ser usado para establecer un diagn&oacute;stico    preciso en animales portadores. </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El an&aacute;lisis    <I>in silico </I>permiti&oacute; identificar varias enzimas de restricci&oacute;n,    cuyos sitios de corte est&aacute;n presentes en la secuencia nucleot&iacute;dica    del fragmento de<I> msp</I>5<I> </I>amplificado por el nPCR <I>(</I><a href="/img/revistas/rsa/v34n1/f0202112.jpg">Figura    2</a>). Se seleccion&oacute; la enzima de restricci&oacute;n <I>Eco</I>R1, cuyo    sitio de corte se encuentra en la posici&oacute;n 152 del fragmento de 345 pb    del gen <I>msp</I>5<I>, </I> amplificado en el nPCR. </font>      
<P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Como resultado    del an&aacute;lisis de restricci&oacute;n se obtuvieron bandas con tallas de    193pb y 152pb respectivamente en 25 muestras, seleccionadas al azar, del total    de muestras positivas. En la<B> </B><a href="/img/revistas/rsa/v34n1/f0302112.gif">Figura    3</a><B> </B>podemos observar<B> </B>que las bandas obtenidas mostraron patrones    de peso seg&uacute;n lo esperado, siendo otra evidencia de la especificidad    del ensayo. </font>      
]]></body>
<body><![CDATA[<P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La identificaci&oacute;n    de <I>Anaplasma marginale</I> fue confirmada con la secuenciaci&oacute;n de    uno de los fragmentos de 345 pb amplificado. La secuencia, depositada en el    GenBank con n&uacute;mero de acceso JF270381, se compar&oacute; con secuencias    previamente informadas para <I>A. marginale, A. centrale, A. ovis </I>y<I> A.    phagocytophilum</I> (<a href="/img/revistas/rsa/v34n1/f0402112.gif">Fig.    4</a>), mostrando entre un 94%-99% de identidad con cepas de <I>A. marginale</I>,    un 88% de identidad para <I>A. centrale</I>, un 86% para <I>A. ovis</I> y un    69% para <I>A. phagocytophilum. </I>En la comparaci&oacute;n con secuencias    de cepas de <I>A. marginale </I>mostr&oacute; los m&aacute;s altos por cientos    de identidad con la cepa Habana, aislada de bovinos (99%) y las cepas de Estados    Unidos (97%). </font>      
<P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Strik <I>et al</I>.    (22) encontraron alta conservaci&oacute;n del gen <I>msp</I>5 entre aislamientos    de <I>A. pahogocytophilum</I> de diferentes regiones de Estados Unidos y Europa,    reafirmando adem&aacute;s que el gen <I>msp</I>5 de <I>Anaplasma</I> sp. y su    ort&oacute;logo <I>map</I>2 de <I>Ehrlichia</I> spp. son altamente conservados    dentro los g&eacute;neros <I>Anaplasma</I> y <I>Ehrlichia</I>, aspecto planteado    por otros autores (23,24). </font>      <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Por otra parte,    Dreher <I>et al</I>. (25) informaron un 64% de similitud en la secuencia deducida    de amino&aacute;cidos de la prote&iacute;na MSP5 de <I>A. phagocytophilum</I>    y la del aislamiento Habana de <I>Anaplasma marginale</I>, con la que nuestra    secuencia nucleot&iacute;dica tiene un 99% de identidad. En nuestro caso existe    un 69% de identidad de la secuencia nucleot&iacute;dica del gen <I>msp</I>5    con este aislamiento de <I>A. phagocytophilum</I> para el que se inform&oacute;    reactividad inmunol&oacute;gica cruzada entre la prote&iacute;na MSP5 de <I>Anaplasma    marginale</I> y la <I>Anaplasma phagocytophilum</I>, recomendando el uso del    PCR para el caso de muestras que resulten positivas por IFA y cELISA. </font>      <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Molad <I>et al</I>.    (26) encontraron un 86.8% de identidad entre la secuencia nucleot&iacute;dica    del gen <I>msp</I>5 de la cepa vacunal de <I>A. centrale</I> y una cepa de <I>Anaplasma    marginale</I>, aislada de bovino, lo que coincide con nuestros resultados. </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Con estos resultados    se verific&oacute; que el ensayo de nPCR constituye una herramienta diagn&oacute;stica    de precisi&oacute;n para la identificaci&oacute;n de animales portadores de    la infecci&oacute;n por <I>Anaplasma marginale,</I> coincidiendo con los resultados    de Torioni <I>et al.</I> (16) quienes lo emplearon en muestras de sangre de    bovinos. Los resultados obtenidos confirman que el ensayo puede ser empleado    en otras especies, coincidiendo con lo planteado por de la Fuente <I>et al</I>.    (27,28) al realizar la detecci&oacute;n de <I>Anaplasma marginale</I> en muestras    de sangre de Bisonte Americano (<I>Bison bison</I>) y ciervo ib&eacute;rico,    respectivamente. Los resultados obtenidos por estos autores demostraron que    el ciervo ib&eacute;rico estaba naturalmente infectado con <I>Anaplasma</I>,    y que por lo tanto podr&iacute;an servir como reservorio del pat&oacute;geno,    identificando a <I>Hyalomma marginatum </I>y <I>Rhipicephalus bursa </I>como    vectores biol&oacute;gicos potenciales para <I>A. marginale, </I>y que pueden    efectuar la transmisi&oacute;n de <I>A. marginale </I>entre el ciervo y la poblaci&oacute;n    bovina. </font>      <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El hallazgo de    <I>Anaplasma marginale </I>infectando los b&uacute;falos en el occidente de    Cuba constituye un resultado novedoso, siendo el primer informe de este par&aacute;sito    en la especie en el pa&iacute;s. Estos resultados coinciden con los obtenidos    por Jacobo <I>et al.</I> (29), Rajput <I>et al</I>. (11) y Gomes <I>et al</I>.<I>    </I>(30), quienes detectaron la infecci&oacute;n con <I>Anaplasma marginale</I>    y la enfermedad en la forma cr&oacute;nica o asintom&aacute;tica en b&uacute;falos    de otras regiones del mundo. </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los resultados    de la distribuci&oacute;n de casos seg&uacute;n las diferentes provincias, aun    cuando no se trata de un estudio epidemiol&oacute;gico, permiten suponer que    la infecci&oacute;n est&aacute; ampliamente distribuida en todos los reba&ntilde;os    de la regi&oacute;n, como ocurre en otros pa&iacute;ses, como Argentina y Colombia    (7). </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La infecci&oacute;n    de <I>Anaplasma marginale</I> en b&uacute;falos ya fue informada en Argentina    por Jacobo <I>et al. </I>(7; 8), pero no se evalu&oacute; su impacto sanitario    en la especie. Sin embargo, Jacobo <I>et al. </I>(29), infieren que esto podr&iacute;a    constituirse en todo un problema sanitario para esta especie y particularmente    para los bovinos que son sus hospederos primarios, oficiando el b&uacute;falo    en este caso, como fuente de infecci&oacute;n<I>, </I>manteniendo el agente    infeccioso y comport&aacute;ndose como reservorio en zonas enzo&oacute;ticas.    </font>      <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Gomes <I>et al.</I>    (30), encontraron que los b&uacute;falos mostraron altos niveles de anticuerpos    durante las primeras 24 horas despu&eacute;s de succionar calostro, indicando    la presencia de inmunidad calostral pasiva, por lo que concluyeron que los b&uacute;falos    son capaces de desarrollar una respuesta inmune humoral espec&iacute;fica contra    <I>Anaplasma marginale</I>, siendo considerados portadores de este par&aacute;sito.    </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Fyumagwa <I>et    al.</I> (31) encontraron 13 especies diferentes de garrapatas en b&uacute;falos    de la regi&oacute;n de Ngorongoro Cr&aacute;ter y de &eacute;stas en 4 especies    se detect&oacute; la presencia de <I>Anaplasma marginale</I>. Khan <I>et al.</I>    (32) estudiaron la presencia de hemopar&aacute;sitos en sangre de bovinos y    b&uacute;falos y encontraron que entre los animales infectados la mayor&iacute;a    presentaba <I>Anaplasma marginale</I> y en el caso de los b&uacute;falos el    80% de los animales estudiados estaban infectados. </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los resultados    obtenidos son de gran importancia para los programas de control de la anaplasmosis    que se desarrollan en nuestro pa&iacute;s y en la regi&oacute;n del Caribe,    si tenemos en cuenta que los b&uacute;falos, pueden constituir importantes reservorios    para la trasmisi&oacute;n de la enfermedad al bovino. </font>     <P>&nbsp;     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B><font size="3">REFERENCIAS</font></B></font>      <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">1. FAO. Principales    pa&iacute;ses productores de ganado bufalino. Disponible en: <U><a href="http://www.fao.org/ag/AGa/AGAP/WAR/warally/v1650b/v16500bOc.htm.%202000" target="_blank">http://www.fao.org/ag/AGa/AGAP/WAR/warally/v1650b/v16500bOc.htm.    2000</a></U>.     </font>      <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">2. Anuario. Producci&oacute;n    bufalina. Direcci&oacute;n de ganader&iacute;a. &Aacute;rea bufalinos. Disponible    en: <U><a href="http://www.Sagpya.mencor.ar" target="_blank">http://www.Sagpya.mencor.ar</a></U>.    2008.     </font>      <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">3. Fundora O, Gonz&aacute;lez    ME. Performance of primiparous buffaloes and their progeny. Proc. VI World Buffalo    Congress. Maracaibo, Venezuela. 2001;137.     </font>      <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">4. Mitat A. B&uacute;falos    de agua en Cuba. Origen y evoluci&oacute;n. Rev ACPA. 2009;3:45.     </font>      <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">5. Simon L, Galloso    M. Presencia y perspectivas de los b&uacute;falos en Cuba. Pastos y Forrajes    [online]. 2011;34(1):3-20.    </font>      <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">6. Banerjee DP,    Momim RR, Samanta RA. Cross transmisi&oacute;n of <I>Babesia bigemina </I>from    cattle (<I>Bos taurus </I>x <I>Bos indicus</I>) to buffalo (<I>Bubalus bubalis</I>).    In: Wolrd Buffalo Congress, 1998, New Delhi. Council of Agricultural Research,    p. 329.     </font>      <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">7. Jacobo RA, Seggiaro    S, Cipolini MF, Storani CA, Mart&iacute;nez DE, De Sa Da Silva A, et al. Primera    comunicaci&oacute;n en Argentina del Complejo tristeza del bovino en b&uacute;falos.    Resumen de II&#170; Simposio de B&uacute;falos de las Am&eacute;ricas. Corrientes    (Argentina), 2004.     </font>      <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">8. Jacobo RA, Cipolini    MF, Storani CA, Mart&iacute;nez DE, Mart&iacute;nez EI. Infecci&oacute;n con    el Complejo tristeza del bovino en b&uacute;falos. Rev Medicina Veterinaria<I>.</I>    2004;85(5):203-204.     </font>      <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">9. Ferreri L, Benitez    D, Dominguez M, Rodr&iacute;guez A, Asenzo G, Mesplet M, et al. Water Buffalos    as Carriers of <i>Babesia bovis</i> in Argentina. N.Y. Acad. Sci. Anim Biodiv    and Emerging Diseases. 2008;1149:149-151.     </font>      <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">10.Almeria S, Castella    J, Ferrer D, Ortu&ntilde;o A, Estrada-Pe&ntilde;a A, Gutierrez JF. Bovine piroplasms    in Minorca (Belearic Islands Spain): a comparison of PCR-based and light microscopy    detection. Vet Parasitol. 2001;99:249-259.     </font>      <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">11.Rajput I, Hu    S, Arijo AG, Habib M, Khalid M. Comparative study of <I>Anaplasma parasites    </I>in tick carrying buffaloes and cattle. J Zhejiang Univ<I> SCI, </I>6B. 2004;1057-1062.        </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">12.Eriks IS, Palmer    GH, McGuire TC, Barbet AF. Detection and quantification of <I>Anaplasma marginale</I>    in carrier by using a nucleic acid probe. J Clin Microbiol. 1989;27:279-284.        </font>      <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">13.Eriks IS, Stiller    D, Palmer GH. Impact of persistent <I>Anaplasma marginale</I> rickettsemia on    tick infection and transmission. J Clin Microbiol. 1993;31:2091-2096.     </font>      <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">14.Knowles DP,    Torioni ES, Palmer GH, McGuire TC, Stiller D, McElwain TF. Antibody against    an <I>Anaplasma marginale</I> MSP5 epitope common to tick and erythrocyte stages    identifies persistently infected cattle. 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