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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Resistencia antimicrobiana de aislados cubanos de Mycoplasma gallisepticum]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Respiratory disorders are a major cause of death in poultry. Avian mycoplasmosis which is a chronic infectious-contagious disease is within these pathologies. Although several species of mycoplasmas are involved in this process, Mycoplasma gallisepticum is recognized as the main etiological agent. One of the measures aimed at the control of this disease is the treatment with antibiotics, as it helps to improve the productive indicators and to reduce the economic losses caused by the clinical outbreaks. Among the groups of antibiotics most used in poultry are quinolones, tetracyclines and macrolides, as they are recognized as effective against Mycoplasma spp. The objective of this work was to determine the in vitro antimicrobial activity of 5 antimicrobial agents against 10 Cuban isolates of M. gallisepticum from different poultry farms destined to egg production in Mayabeque province. For this purpose, the Minimum Inhibitory Concentration (MIC) method was performed, resulting in a MIC of 2 &#956;g/ml for Enrofloxacin; 32 &#956;g/ml for Ciprofloxacin; 0.0625 &#956;g/ml for Tylosin; 0.5 &#956;g/ml for Oxytetracycline, and 0.031 &#956;g/ml for Minocycline. This result indicates an increase in resistance in these isolates compared to the two compounds of the quinolone family used in the study. It also provides practical information for the treatment of M. gallisepticum infection in poultry]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right" style="text-align:right;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">ART&Iacute;CULO  ORIGINAL</span></strong></p>     <p align="right" style="text-align:right;">&nbsp;</p>     <p style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:14.0pt; ">Resistencia antimicrobiana de aislados cubanos de <em>Mycoplasma gallisepticum</em></span></strong></p>     <p style="text-align:justify;">&nbsp;</p>     <p style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">Antimicrobial  resistance of <em>Mycoplasma gallisepticum</em> Cuban isolates </span></strong></p>     <p style="text-align:justify;">&nbsp;</p>     <p style="text-align:justify;">&nbsp;</p>     <p style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Ariadna  Duque-Ortiz, Anisleidy P&eacute;rez-Castillo, Evelyn Lobo-Rivero</span></strong><a href="#_ftn1" name="_ftnref1" title="" id="_ftnref1"><span class="MsoFootnoteReference"><strong><span style="font-family:Wingdings; font-size:10.0pt; ">*</span></strong></span></a><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> </span></strong></p>     <p style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Laboratorio de diagn&oacute;stico de Micoplasma  (MYCOLAB), Departamento de Microbiolog&iacute;a- Epidemiolog&iacute;a, Centro Nacional de  Sanidad Agropecuaria (CENSA), Carretera de Tapaste y Autopista Nacional, CP  32700, San Jos&eacute; de las Lajas, Mayabeque, Cuba.</span></p>     <p style="text-align:justify;">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="text-align:justify;">&nbsp;</p> <hr />     <p style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">RESUMEN</span></strong></p>     <p style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Los trastornos respiratorios constituyen  una de las principales causas de muerte en el sector av&iacute;cola. Dentro de estas  patolog&iacute;as se encuentra la micoplasmosis aviar, enfermedad infecto-contagiosa  de curso cr&oacute;nico. Aunque en este proceso participan varias especies de  micoplasmas, se reconoce a <em>Mycoplasma  gallisepticum</em> como la principal especie. Unas de las medidas destinadas al  control de esta enfermedad es el tratamiento con antibi&oacute;ticos, pues ayuda a  mejorar los indicadores productivos y reducir las p&eacute;rdidas  econ&oacute;micas causadas por brotes cl&iacute;nicos. Entre los grupos de  antibi&oacute;ticos que m&aacute;s se utilizan en la avicultura se encuentran las quinolonas,  las tetraciclinas y los macr&oacute;lidos, pues se reconocen como efectivos contra <em>Mycoplasma </em>spp. El objetivo de este  trabajo fue determinar la actividad antimicrobiana <em>in vitro</em> de cinco agentes antimicrobianos frente a 10 aislados  cubanos de <em>M. gallisepticum, </em>procedentes  de diferentes granjas av&iacute;colas de la provincia Mayabeque destinadas a la  producci&oacute;n de huevos. Para ello se utiliz&oacute; el m&eacute;todo de Concentraci&oacute;n M&iacute;nima  Inhibitoria (CMI) y como resultado se obtuvo una CMI de 2 &micro;g/ml para  Enrofloxacina; 32 &micro;g/ml para la Ciprofloxacina; 0,0625 &micro;g/ml para Tilosina; 0,5  &micro;g/ml a la Oxitetraciclina y 0,031 &micro;g/ml para Minociclina. Este resultado  indica un incremento de la resistencia en estos aislados frente a los dos  compuestos de la familia de las quinolonas que se usaron en el estudio; adem&aacute;s,  brinda una informaci&oacute;n pr&aacute;ctica para el tratamiento de la infecci&oacute;n contra <em>M. gallisepticum </em>en la avicultura.</span></p>     <p style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Palabras  clave:</span></strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> Micoplasmosis aviar, <em>Mycoplasma  gallisepticum</em>, susceptibilidad antimicrobiana.</span></p> <hr />     <p style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">ABSTRACT</span></strong></p>     <p style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Respiratory disorders are a major cause of death in poultry. Avian  mycoplasmosis which is a chronic infectious-contagious disease is within these  pathologies. Although several species of mycoplasmas are involved in this  process, <em>Mycoplasma gallisepticum</em> is  recognized as the main etiological agent. One of the measures aimed at the control  of this disease is the treatment with antibiotics, as it helps to improve the  productive indicators and to reduce the economic losses caused &nbsp;by &nbsp;the &nbsp;clinical &nbsp;outbreaks. &nbsp;Among &nbsp;the  &nbsp;groups &nbsp;of &nbsp;antibiotics  &nbsp;most &nbsp;used &nbsp;in  poultry are quinolones, tetracyclines and macrolides, as they are recognized as  effective against <em>Mycoplasma</em> spp. The  objective of this work was to determine the <em>in  vitro</em> antimicrobial activity of 5 antimicrobial agents against 10 Cuban  isolates of <em>M. gallisepticum</em> from  different poultry farms destined to egg production in Mayabeque province. For  this purpose, the Minimum Inhibitory Concentration (MIC) method was performed,  resulting in a MIC of 2 </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&mu;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">g/ml for Enrofloxacin; 32 </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&mu;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">g/ml for Ciprofloxacin; 0.0625 </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&mu;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">g/ml for Tylosin; 0.5 </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&mu;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">g/ml for Oxytetracycline, and 0.031 </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&mu;</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">g/ml for  Minocycline. This result indicates an increase in resistance in these isolates  compared to the two compounds of the quinolone family used in the study. It  also provides practical information for the treatment of <em>M. gallisepticum</em> infection in poultry. </span></p>     <p style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Key words:</span></strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> Avian mycoplasmosis,<em> Mycoplasma  gallisepticum</em>, antimicrobial susceptibility.</span></p> <hr />     <p>&nbsp;</p>     <p><br clear="all" style="page-break-before:auto;" /> </p>     <p style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; ">INTRODUCCI&Oacute;N</span></strong></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">La micoplasmosis aviar es una enfermedad  infecto-contagiosa de curso cr&oacute;nico que afecta el sistema respiratorio de las  aves; aunque en este proceso participan varias especies de micoplasmas, se  reconoce a <em>Mycoplasma gallisepticum</em> como la principal especie <a href="#r" title="Ley, 1997 #6">(1)</a>.  La enfermedad causa una disminuci&oacute;n en la producci&oacute;n de  huevos, un aumento de la mortalidad embrionaria y disminuci&oacute;n de la convecci&oacute;n  alimentaria, lo que produce p&eacute;rdidas econ&oacute;micas <a href="#r">(2)</a><em>. M. gallisepticum</em> se  transmite verticalmente a trav&eacute;s de los huevos infectados, y horizontalmente  por la inhalaci&oacute;n de aerosoles, as&iacute; como por el contacto de ave a ave <a href="#r" title="McMartin, 1987 #8">(3)</a>. En la actualidad el control de la micoplasmosis,  mediante el uso de antibi&oacute;ticos es una de las principales medidas que se  utilizan para disminuir las p&eacute;rdidas ocasionadas por esta entidad <a href="#r" title="Hofacre, 2007 #9">(4)</a>.</span></p>     <p style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Entre los grupos de antibi&oacute;ticos  ampliamente usados en la avicultura podemos encontrar quinolonas, tetraciclinas  y macr&oacute;lidos, por ser efectivos contra <em>Mycoplasma </em>spp. <a href="#r" title="Reinhardt, 2002 #10">(5)</a>.  En tal sentido, es importante tener en cuenta que los micoplasmas, por la  ausencia de una pared celular, son intr&iacute;nsecamente resistentes a los  antimicrobianos que tienen como diana a esta estructura, tal es el caso de las  penicilinas, betalact&aacute;micos, glucop&eacute;ptidos, polimixinas, rifampicina y  sulfonamidas <a href="#r">(6)</a>. Otros antimicrobianos como los  aminogluc&oacute;sidos y el cloranfenicol poseen poca actividad frente a los  micoplasmas <a href="#r">(7)</a>. Esto presupone un problema en el momento de  elegir el antimicrobiano adecuado en cada caso. </span></p>     <p style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">En Cuba la micoplasmosis aviar es una de  las primeras causas de mortalidad en la avicultura, que se asocia a trastornos  respiratorios y en su tratamiento tambi&eacute;n se utilizan los antibi&oacute;ticos  pertenecientes a quinolonas, tetraciclinas y macr&oacute;lidos <a href="#r">(8)</a>. Las estrategias de  medicaci&oacute;n para su control consisten en programas preventivos y programas  terap&eacute;uticos en los cuales se combinan un grupo importante de antibi&oacute;ticos de  diferentes espectros <a href="#r">(8,9)</a>. Sin embargo, hasta el presente se  desconoce la susceptibilidad antimicrobiana que presentan los aislados cubanos  de <em>M. gallisepticum</em> frente a los  principales antimicrobianos usados en la avicultura. Por tanto, el objetivo de  este trabajo fue determinar la actividad antimicrobiana <em>in vitro </em>de aislados cubanos de <em>M.  gallisepticum </em>frente a cinco agentes antimicrobianos. </span></p>     <p style="text-align:justify;">&nbsp;</p>     <p style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; ">MATERIALES  Y M&Eacute;TODOS</span></strong></p>     <p style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Periodo  de estudio y selecci&oacute;n de las muestras</span></strong></p>     <p style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">El presente estudio comprendi&oacute; el periodo  enero/2014 a abril/2015, e incluy&oacute; seis granjas av&iacute;colas de la provincia  Mayabeque con antecedentes de problemas respiratorios. El destino productivo de  estas granjas es la producci&oacute;n de huevo. La toma de muestra se realiz&oacute; por  hisopaje traqueal y estos se depositaron en un medio de transporte. Por cada  granja, se seleccionaron 50 animales con sintomatolog&iacute;a respiratoria, para un  total de 300 muestras, seg&uacute;n lo recomienda la Organizaci&oacute;n Mundial de Sanidad  Animal (OIE) <a href="#r">(9)</a>. Para el criterio de inclusi&oacute;n de los  animales se tuvo en cuenta la presencia de s&iacute;ntomas respiratorios; la selecci&oacute;n  de las aves se realiz&oacute; de manera tendenciosa.</span></p>     <p style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Procesamiento  de las muestras</span></strong></p>     <p style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Las muestras se trasladaron al Laboratorio  de diagn&oacute;stico de micoplasmas (MYCOLAB) bajo condiciones de bioseguridad. Se  sembraron en medio Jordan y se incubaron por cinco d&iacute;as a 37&ordm;C con 5% de CO<sub>2 </sub><a href="#r" title="Jordan, 1983 #12">(6,10)</a>.  Se realiz&oacute; la lectura diaria de los cultivos. Donde hubo cambio de pH (en tubo)  o la presencia de colonias en forma de huevo frito (en placas), se procedi&oacute; a  realizar los subcultivos correspondientes, seg&uacute;n la metodolog&iacute;a descrita por  Poveda <a href="#r">(11)</a>.<span style="color:red; "> </span></span></p>     <p style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Identificaci&oacute;n  de <em>M. gallisepticum</em></span></strong></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Se realiz&oacute; por las siguientes pruebas  bioqu&iacute;micas: fermentaci&oacute;n de la glucosa y reducci&oacute;n del tetrazolium y  digitonina, seg&uacute;n lo recomendado por Poveda <a href="#r">(11)</a>. Como prueba  confirmatoria se realiz&oacute; la Reacci&oacute;n en Cadena de la Polimerasa (PCR) basada en  la amplificaci&oacute;n del gen <em>mgc</em>2 de <em>M. gallisepticum </em><a href="#r">(12)</a>.</span></p>     <p style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Susceptibilidad  antimicrobiana a los aislados de <em>M.  gallisepticum</em></span></strong></p>     <p style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Se determin&oacute; por el m&eacute;todo de Concentraci&oacute;n  M&iacute;nima Inhibitoria (CMI) <a href="#r">(13)</a> con el medio de cultivo descrito  anteriormente <a href="#r">(10,11)</a>. La concentraci&oacute;n de los cultivos de  cada aislado se ajust&oacute; a 10<sup>3</sup> UFC/ml mediante conteo de UFC/ml por  diluciones seriadas en base a 10. Se utilizaron placas de poliestireno de 96 pocillos  de fondo plano y tapa de baja evaporaci&oacute;n (FALCON Becton Dickinson). Se  realizaron diluciones en base 2 (64 a 0,004 &micro;g/ml) de los antibi&oacute;ticos  Enrofloxacina (Fluka), Ciprofloxacina (Fluka), Tilosina (SIGMA), Oxitetraciclina  (SIGMA) y Minociclina (SIGMA) en el medio Jordan.</span></p>     <p style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">En cada pocillo se a&ntilde;adieron 200 &micro;l de cada  diluci&oacute;n del antibi&oacute;tico y 100 &micro;l del cultivo de cada aislado siguiendo la  metodolog&iacute;a descrita por Hannan <a href="#r">(13)</a>. Las placas se sellaron e  incubaron a 37&ordm;C por tres d&iacute;as. Como control positivo del ensayo se utilizaron los  pocillos donde se encontraba el microorganismo en ausencia de antibi&oacute;tico; en  estos se observ&oacute; un cambio de coloraci&oacute;n (rojo a amarillo) a los tres d&iacute;as. Se  realizaron dos r&eacute;plicas biol&oacute;gicas para cada aislado. La CMI se defini&oacute; como la  menor concentraci&oacute;n de antibi&oacute;tico que inhibi&oacute; el crecimiento del  microorganismo y en la cual no ocurri&oacute; cambio de coloraci&oacute;n de rojo a amarillo.</span></p>     <p style="text-align:justify;">&nbsp;</p>     <p style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; ">RESULTADOS  Y DISCUSI&Oacute;N</span></strong></p>     <p style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">La OIE y la Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud (OMS) clasifican a  los antimicrobianos de acuerdo a su importancia </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "><a href="#r">(14)</a></span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">. En tal sentido, la OIE describe a  los agentes antimicrobianos veterinarios en tres grupos: de importancia  cr&iacute;tica, de importancia elevada o de importancia para la sanidad animal </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "><a href="#r">(15)</a></span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">; de igual manera, la OMS clasifica  a los agentes antimicrobianos en los de importancia cr&iacute;tica, de importancia  elevada o de importancia para la medicina humana </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "><a href="#r">(16)</a></span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">. Se consideran antimicrobianos de  importancia cr&iacute;tica aquellos que, en primer lugar, se emplean para el  tratamiento, la prevenci&oacute;n y el control de infecciones graves de los animales  con consecuencias importantes para la salud, el bienestar de los animales y la  salud p&uacute;blica, o consecuencias importantes de &iacute;ndole econ&oacute;mica y, en segundo  lugar, para los que tienen poca o ninguna alternativa de sustituciones </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "><a href="#r">(14)</a></span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">.</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> </span></p>     <p style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Los antibi&oacute;ticos que se emplearon en este  estudio, adem&aacute;s de estar entre los que m&aacute;s se utilizan en la avicultura en  Cuba, clasifican como de importancia cr&iacute;tica tanto para uso veterinario como  para uso humano, con excepci&oacute;n de la oxitetraciclina, que clasifica como de  importancia elevada seg&uacute;n la OMS <a href="#r">(16)</a>. El &uacute;nico antibi&oacute;tico  que reconoce esta organizaci&oacute;n de </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">importancia cr&iacute;tica es la glicilciclina (tigeciclina), ya que  representa una generaci&oacute;n diferente en comparaci&oacute;n con las otras tetraciclinas </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "><a href="#r">(14)</a></span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">. La clasificaci&oacute;n de los  antibi&oacute;ticos que se utilizaron en la investigaci&oacute;n pone de manifiesto la  necesidad de realizar una vigilancia sobre la resistencia a  antimicrobianos,&nbsp; determinar y aplicar  medidas apropiadas de gesti&oacute;n para contener la extensi&oacute;n de la resistencia y  preservar la eficacia de los medicamentos; todo esto con el consiguiente uso  prudente de los antimicrobianos.</span></p>     <p style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">En el caso de las tetraciclinas, son  antibi&oacute;ticos de amplio espectro y se utilizan para ampliar la acci&oacute;n y dar  sinergia a micoplasmicidas de mayor especificidad <a href="#r">(17,18)</a>. Debido  al gran uso de estos antimicrobianos, a nivel internacional se describe una  alta resistencia surgida como consecuencia de la adquisici&oacute;n de genes <em>Tet </em>(tetraciclina) y/o genes <em>Otr </em>(oxitetraciclina) por parte de las  bacterias, tanto comensales como pat&oacute;genas <a href="#r">(19)</a>. Los  resultados de este estudio no coinciden con otros reportes, pues al considerar  el efecto de la oxitetraciclina (grupo de primera generaci&oacute;n) y la minociclina  grupo de segunda generaci&oacute;n) sobre los aislados cubanos de <em>M. gallisepticum</em> se observ&oacute; que los valores de CIM fueron 0,5 &micro;g/ml  y 0,031 &micro;g/ml, respectivamente, para cada antibi&oacute;tico. </span></p>     <p style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Gautier-Bouchardon <em>et al.</em> <a href="#r">(20)</a> refieren que cuando la CIM de estas  tetraciclinas es&le;1 &micro;g/ml, los aislados se pueden considerar susceptibles; en  cambio, cuando presentan valores &ge;1&micro;g/ml se consideran resistentes. En tal  sentido, se puede afirmar que los aislados, que se obtuvieron en el presente  estudio son susceptibles a estos antibi&oacute;ticos. Una explicaci&oacute;n posible a este  comportamiento puede ser que en los &uacute;ltimos a&ntilde;os se emplean con m&aacute;s frecuencia  antibi&oacute;ticos como las quinolonas, lo que propicia una menor presi&oacute;n de  selecci&oacute;n sobre la microbiota bacteriana y, con ello, menor riesgo para la  presentaci&oacute;n del fen&oacute;meno de resistencia a las tetraciclinas. Resultados  similares se reportaron por Rivera-Tapia <a href="#r">(21)</a>.</span></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Por otra parte, la tilosina pertenece al  grupo de los <span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; ">macr&oacute;lidos</span><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; ">,</span>&nbsp;</strong>mol&eacute;culas que se emplean desde  hace muchos a&ntilde;os, son bacteriost&aacute;ticos, inhiben los procesos de traslocaci&oacute;n y  transpeptidaci&oacute;n de la s&iacute;ntesis prote&iacute;nica y pueden presentar resistencia  cruzada entre tilosina y eritromicina <a href="#r">(22)</a>. Los principales  mecanismos de resistencia a este grupo son alteraciones de la diana (el gen 23S  rRNA), aumento de la expresi&oacute;n de sistemas de expulsi&oacute;n activa, disminuci&oacute;n de  la permeabilidad celular e inactivaci&oacute;n enzim&aacute;tica <a href="#r">(23)</a>. En  micoplasmas se describen alteraciones en el gen 23S ARNr de <em>M. gallisepticum; </em>estas mutaciones est&aacute;n  descritas como responsables de resistencia adquirida a macr&oacute;lidos y  lincosamidas <a href="#r">(24)</a>.</span></p>     <p style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Seg&uacute;n el criterio microbiol&oacute;gico reportado  por Hannan <a href="#r">(13)</a>, las cepas de <em>M. gallisepticum </em>se consideran susceptibles cuando la CMI de la  tilosina es &le;1 &micro;g/ml. En el caso del presente estudio, los resultados coinciden  con esta clasificaci&oacute;n, pues se obtuvieron valores de la CIM de 0,0625 &micro;g/ml.  Cuando comparamos el comportamiento de la tilosina, se observa que este  antibi&oacute;tico demostr&oacute; poseer un efecto inhibitorio <em>in vitro </em>m&aacute;s potente en comparaci&oacute;n con el resto de los  antimicrobianos probados. Estos resultados coinciden con lo se&ntilde;alado por  Forrester <em>et al. </em><a href="#r">(25)</a>,  quienes obtuvieron un comportamiento similar con valores de la CIM entre 0.008  &micro;g/ml y 0.002 &micro;g/ml; de igual manera coinciden con lo referido por Gi&atilde;o Antunes  cuando estudi&oacute; el comportamiento de la tilosina frente a diferentes cepas de  micoplasmas <a href="#r">(26)</a>.</span></p>     <p style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Solo unos pocos estudios en <em>M. gallisepticum </em>informan la emergencia <em>in vitro</em> de resistencia a macr&oacute;lidos;  este fen&oacute;meno se debe a las interacciones de estos f&aacute;rmacos con la subunidad  ribosomal 50S <a href="#r">(27,28)</a>. Es importante se&ntilde;alar que el desarrollo  de las estrategias terap&eacute;uticas eficaces depende de una comprensi&oacute;n precisa y  detallada de los mecanismos de resistencia a antibi&oacute;ticos. </span></p>     <p style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Las quinolonas son de origen sint&eacute;tico y  uno de los grupos de antimicrobianos que m&aacute;s se utilizan por su eficacia frente  a los micoplasmas <a href="#r">(29)</a>. Su mecanismo de acci&oacute;n interfiere con  la replicaci&oacute;n del ADN porque act&uacute;a sobre las topoisomerasas bacterianas.  Actualmente, las mutaciones en las topoisomerasas bacterianas, el aumento de la  expresi&oacute;n de sistemas de expulsi&oacute;n activa, las alteraciones en la permeabilidad  celular y los pl&aacute;smidos est&aacute;n reconocidos como los responsables de la  resistencia adquirida a las quinolonas <a href="#r">(30,31)</a>. Para los micoplasmas  solamente se describen las mutaciones en las topoisomerasas y los sistemas de  eflujo como los responsables de la disminuci&oacute;n de la susceptibilidad a estos  f&aacute;rmacos <a href="#r">(29)</a>.</span></p>     <p style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">La CMI de la enrofloxacina y ciprofloxacina,  frente a los aislados de campo de <em>M.  gallisepticum, </em>fue de 2 &micro;g/ml y 32 &micro;g/ml, respectivamente. Cuando se  comparan los resultados alcanzados con lo descrito por Hannan <a href="#r">(13)</a>,  se aprecia que ambos antimicrobianos presentan valores elevados relacionados  con la resistencia. Estos resultados tambi&eacute;n coinciden con los descritos por otros  autores, quienes reportan un incremento significativo de la resistencia de  aislamientos de <em>M. gallisepticum </em>a la  enrofloxacina y a la ciprofloxacina: Gerchman <a href="#r">(32)</a> obtuvo una  CMI superior a 1 &micro;g/ml en 23 aislados y Gharaibeh una CMI de 2 &micro;g/ml </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; color:black; ">en siete</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> aislados de campo <a href="#r">(33)</a>. </span></p>     <p style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">La <a href="/img/revistas/rsa/v39n1/t0104117.gif">Tabla 1</a> resume los  valores medios de la CIM de <em>M.  gallisepticum</em> a los antibi&oacute;ticos testados. Como puede observarse, el  comportamiento result&oacute; variable, lo que evidencia la existencia de resistencias  adquiridas a los antimicrobianos que se testaron. Esto se puede explicar debido  a que en las producciones de aves existe una amplia utilizaci&oacute;n de  antimicrobianos, lo que implica una gran presi&oacute;n selectiva sobre las  poblaciones bacterianas y provoca la aparici&oacute;n con mayor facilidad de cepas  resistentes.<span style="color:black; "> </span></span></p>     
<p style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Aunque son varios los trabajos que refieren  la utilidad de una gran variedad de antibi&oacute;ticos para el control de <em>M. gallisepticum</em>, entre los que se  incluyen estreptomicina, oxitetraciclina, eritromicina, espiramicina, tilosina  y lincomicina debido a su susceptibilidad <a href="#r">(1,17,21,25,27)</a>,  tambi&eacute;n&nbsp;&nbsp; existen otros que reportan la  aparici&oacute;n de aislados de <em>M. gallisepticum</em> altamente resistentes a estos f&aacute;rmacos <a href="#r">(5,20,24)</a>. L<span style="color:#231F20; ">a aparici&oacute;n de microorganismos resistentes puede ocurrir  durante o despu&eacute;s de tratamientos, ya que los residuos de antibi&oacute;ticos pueden  establecerse durante grandes periodos de tiempo posteriores al tratamiento, lo  que favorece la inactivaci&oacute;n de los antibi&oacute;ticos y la diseminaci&oacute;n de genes de  resistencia </span><a href="#r">(22,33)</a><span style="color:#231F20; ">.</span></span></p>     <p style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Los resultados de este estudio permitieron  conocer la resistencia antimicrobiana de los aislados cubanos de <em>M. gallisepticum</em> frente a los diferentes  antibi&oacute;ticos que se utilizan en la avicultura; adem&aacute;s, brinda una informaci&oacute;n  pr&aacute;ctica sobre la conducta a seguir en el tratamiento de la infecci&oacute;n contra  este agente como parte de su control, espec&iacute;ficamente en cuanto a la selecci&oacute;n  de f&aacute;rmacos con una actividad apropiada <em>in  vitro</em>.<span style="color:black; "> </span></span></p>     <p style="text-align:justify;">&nbsp;</p>     <p style="text-align:justify;"><a name="r" id="r"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; ">REFERENCIAS</span></strong></a></p> <span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "><ol>       ]]></body>
<body><![CDATA[<li><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">         <p align="justify">Ley DH, Yoder HW. Mycoplasma gallisepticum infection. In: Calnek BW, Barnes HJ,  Beard CW, McDougald LR, Saif YM, editor. Diseases of Poultry. 10<sup>th</sup> ed. Iowa State Univ. Press1997. pp. 194&ndash;207. </p>   </span></li>       <li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Ley D. <em>Mycoplasma  gallisepticum </em>infection. In: Saif YM BH, Glisson JR, Fadly AM, McDougald  LR, Swayne DE, editor. Diseases of poultry. 11<sup>th </sup>ed. Iowa State  University Press2003. pp. 722-744. </span></p>   </li>       <li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">McMartin D, Khan M, Farver T, Christie G. Delineation of the  lateral spread of <em>Mycoplasma  gallisepticum</em> infection in chickens. Avian Dis. 1987:814-819. </span></p>   </li>       <li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Hofacre C. Antimicrobial drug use in poultry. In: Giguere S  PJ, Baggot JD, Walker RD, Dowling PM. Oxford: Wiley Blackwell, editor.  Antimicrobial Therapy in Veterinary Medicine. 4 ed 2007. pp. 545-553. </span></p>   </li>       <li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Reinhardt A, Kempf I, Kobisch M, Gautier-Bouchardon A.  Fluoroquinolone resistance in <em>Mycoplasma  gallisepticum</em>: DNA gyrase as primary target of enrofloxacin and impact of  mutations in topoisomerases on resistance level. J Antimicrob Chemoth.  2002;50(4):589-92. </span></p>   </li>       ]]></body>
<body><![CDATA[<li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Sader, H. Resistencia antimicrobiana en  Latinoam&eacute;rica. Rev Chil Infectol.2002; 19: 5-13.</span></p>   </li>       <li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Ayling  RD, Baker SE, Nicholas RA, Peek ML, Simon AJ. Comparison of in vitro activity  of danofloxacin, florfenicol, oxytetracycline, spectinomycin and tilmicosin  against <em>Mycoplasma mycoides </em>subspecies <em>mycoides </em>small colony type. Vet Rec.  2000;146(9):243-246.</span></p>   </li>       <li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">IMV. Informe de Balance trimestral. Cuba: Instituto de  Medicina Veterinaria IMV, 2015. </span></p>   </li>       <li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Organizaci&oacute;n Mundial de Sanidad Animal  (OIE). Cap&iacute;tulo sobre Micoplasmosis aviar. 2014</span></p>   </li>       <li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Jordan F. Recovery and identification  of avian mycoplasmas. Methods in mycoplasmology. 1983;2:69. </span></p>   </li>       ]]></body>
<body><![CDATA[<li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Poveda JB. Biochemical characteristics in mycoplasma  identification. Methods Mol Biol. 1998;104:69-78. </span></p>   </li>       <li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Garc&iacute;a M, Ikuta N, Levisohn S, Kleven  S. Evaluation and comparison of various PCR methods for detection of Mycoplasma  gallisepticum infection in chickens. Avian Dis. 2005;49(1):125-132. </span></p>   </li>       <li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Hannan PC. Guidelines and  recommendations for antimicrobial minimum inhibitory concentration (MIC)  testing against veterinary mycoplasma species. Vet Res.2000;31(4):373-95. </span></p>   </li>       <li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Reuni&oacute;n  Conjunta FAO/OMS/OIE de expertos sobre los antimicrobianos de importancia  cr&iacute;tica. Informe de la reuni&oacute;n de expertos Sede de la FAO, Roma (Italia) del 26  al 30 de noviembre de 2007. </span></p>   </li>       <li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Organizaci&oacute;n  Mundial de Sanidad Animal (OIE). Lista de antimicrobianos de importancia  veterinaria de la OIE. Noviembre de 2007.</span></p>   </li>       ]]></body>
<body><![CDATA[<li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Comit&eacute;  de medicamentos para usos veterinarios (CVMP). Reuni&oacute;n conjunta FAO/OMS/OIE de  expertos sobre la resistencia a los antimicrobianos de importancia cr&iacute;tica.  Solicitud de datos e informaci&oacute;n.&nbsp;  EMEA/CVMP/253620/2007, 14 de junio de 2007.</span></p>   </li>       <li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Saif  Y. Diseases of Poultry 11<sup>th</sup> ed. Iowa State University Press  2003;56:719- 743.</span></p>   </li>       <li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Miranda  CD, Kerhenberg C, Ulep C, Schwarz S, Roberts M. Diversity of tetracycline  resistance genes in bacteria from chilean salmon farms. Antimicrob. Agents  Chemother. 2003;47:883-888.</span></p>   </li>       <li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Chopra  I, Roberts M. Tetracycline Antibiotics: Mode of Action, cations, molecular  Biology, and Epidemiology of Bacterial Resistance. Microbiol Mol Biol Rev.  2001;65<em>:</em>232-260.</span></p>   </li>       <li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Gautier-Bouchardon A, Reinchardt AK, Kobisch M, Kempf I.  In vitro develoment resistence to enrofloxacin, tylosi, tiamulin and  oxytetrcycline in <em>Mycoplama gallisepticum</em>, <em>Mycoplasma iowae</em> y <em>Mycoplasmas synoviae</em>. Vet Mic.  2002;88:47-58. </span></p>   </li>       ]]></body>
<body><![CDATA[<li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Rivera-Tapia JA, Rodriguez N. Micoplasmas  y antibioticos. Salud P&uacute;blica  M&eacute;x&nbsp;vol.48&nbsp;n.1&nbsp;Cuernavaca&nbsp;Jan./Feb.&nbsp;2006. <a href="http://dx.doi.org/10.1590/S0036-36342006000100002" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1590/S0036-36342006000100002</a>&nbsp;</span></p>   </li>       <li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Gerchman I, Levisohn S, Mikula I,  Manso-Silv&aacute;n L, Lysnyansky I. Characterization of in vivo-acquired resistance  to macrolides of <em>Mycoplasma gallisepticum</em> strains isolated from poultry. Vet Res. 2011;42:90.</span></p>   </li>       <li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Stakenborg T, Vicca J, Butaye P, Maes D,  Minion FC, Peeters J, De Kruif A, Haesebrouck F. Characterization of In Vivo  acquired resistance of <em>Mycoplasma  hyopneumoniae</em> to macrolides and lincosamides. Microb Drug Resist. 2005;11(3):290-294.  </span></p>   </li>       <li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Wu CM, Wu H, Ning, Y., Wang, J., Du, X., Shen, J., 2005. Induction of  macrolide resistance in <em>Mycoplasma gallisepticum </em>in vitro and its resistance-related mutations within domain V of 23S rRNA.  FEMS Microbiol. Lett. 247(2):199-205. </span></p>   </li>       <li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Forrester  CA, Bradbury J, Dare C, Domangue R, Windsor H, Tasker J, Mockett A.&nbsp; <em>Mycoplasma  gallisepticum</em> in pheasants and the efficacy of tylvalosin to treat the  disease. Avian Pathology. 2011;40(6):581-586</span></p>   </li>       ]]></body>
<body><![CDATA[<li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Gi&atilde;o  Antunes N.T. Mecanismos de resistencia a las quinolonas en <em>Mycoplasma mycoides subsp. mycoides </em>LC. Tesis doctoral. Universidad  de Las Palmas de Gran Canaria.2007.</span></p>   </li>       <li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Stipkovits,  L. and Mockett, APA. Aivlosin granules for oral solution used for the treatment  and prevention of mycoplasmosis due to Mycoplasma gallisepticum. Abstracts of  the 15<sup>th</sup> Congress of the World Veterinary Poultry Association,  Beijing, China. 2007; p. 537. </span></p>   </li>       <li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Stuart  AD, Brown, TDK, Imrie G, Tasker J.B,and Mockett APA. Intra-cellular  accumulation and trans-epithelial transport of aivlosin, tylosin and  tilmicosin. The Pig Journal.2007;60: 2635.</span></p>   </li>       <li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Van Bambeke F, Michot JM, Van Eldere J, Tulkens PM.Quinolones in 2005:  an update. Clin Microbiol Infect. 2005;11(4):256-280. </span></p>   </li>       <li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Andersson MI, MacGowan AP.Development of the quinolones. J. Antimicrob.  Chemother. 2003; 51 Suppl 1:1-11. </span></p>   </li>       ]]></body>
<body><![CDATA[<li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Van Bambeke F. Glupezynski Y, Pl&eacute;siat P, Pech&egrave;re JC, Tulkens PM.Antibiotic  efflux pumps in prokaryotic cells: occurrence, impact on resistance and  strategies for the future of antimicrobial therapy. J Antimicrob Chemoth. 2003;51:1055-1065. </span></p>   </li>       <li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Gerchman I, Lysnyansky I, Perk S, Levisohn S. In vitro  susceptibilities to fluoroquinolones in current and archived Mycoplasma  gallisepticum and Mycoplasma synoviae isolates from meat-type turkeys. Vet  Microbiol. 2008;131(3):266-276. </span></p>   </li>       <li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Gharaibeh S, Al-Rashdan M. Change in  antimicrobial susceptibility of <em>Mycoplasma  gallisepticum</em> field isolates. Vet Microbiol. 2011;150(3):379-383. </span></p>   </li>       <li>         <p align="justify"><span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Reinhardt AK, Gautier-Bouchardon AV,  Gicquel-Bruneau M, Kobisch M, Kempf I.Persistence of <em>Mycoplasma gallisepticum </em>in chickens after treatment with  enrofloxacin without development of resistance. Vet Microbiol. 2005;106(1-2):129-137.</span></p>   <span style="line-height:115%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "></span></li>     </ol> </span>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><br clear="all" style="page-break-before:auto;" /> </p>     <p><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Recibido: 8/5/2016</span></p>     <p><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Aceptado: 26/1/2017</span></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><a href="#_ftnref1" name="_ftn1" title="" id="_ftn1"><span class="MsoFootnoteReference"><span style="font-family:Wingdings; font-size:10.0pt; ">*</span></span></a><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> <span style="color:#221E1F; ">Autor para correspondencia: </span><em>Evelyn Lobo-Rivero</em>. E-mail: <a href="mailto:elobo@censa.edu.cu">elobo@censa.edu.cu</a></span></p>      ]]></body><back>
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<label>1</label><nlm-citation citation-type="book">
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<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Mycoplasma gallisepticum infection]]></article-title>
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<surname><![CDATA[Calnek]]></surname>
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<source><![CDATA[Diseases of Poultry]]></source>
<year>1997</year>
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