<?xml version="1.0" encoding="ISO-8859-1"?><article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance">
<front>
<journal-meta>
<journal-id>0258-5936</journal-id>
<journal-title><![CDATA[Cultivos Tropicales]]></journal-title>
<abbrev-journal-title><![CDATA[cultrop]]></abbrev-journal-title>
<issn>0258-5936</issn>
<publisher>
<publisher-name><![CDATA[Ediciones INCA]]></publisher-name>
</publisher>
</journal-meta>
<article-meta>
<article-id>S0258-59362014000400003</article-id>
<title-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Alternativas microbiológicas para el manejo de Phytophthora cinnamomi Rands., en Persea americana Mill. bajo condiciones de casa-malla]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Microbiological alternatives for Phytophthora cinnamomi Rands., management in Persea americana Mill. under greenhouse conditions]]></article-title>
</title-group>
<contrib-group>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Ramírez Gil]]></surname>
<given-names><![CDATA[Joaquín G]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Castañeda Sánchez]]></surname>
<given-names><![CDATA[Darío A]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Morales Osorio]]></surname>
<given-names><![CDATA[Juan G]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
</contrib-group>
<aff id="A01">
<institution><![CDATA[,Universidad Nacional de Colombia Sede Medellín Departamento de Ciencias Agronómicas]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Medellín ]]></addr-line>
<country>Colombia</country>
</aff>
<pub-date pub-type="pub">
<day>00</day>
<month>12</month>
<year>2014</year>
</pub-date>
<pub-date pub-type="epub">
<day>00</day>
<month>12</month>
<year>2014</year>
</pub-date>
<volume>35</volume>
<numero>4</numero>
<fpage>19</fpage>
<lpage>27</lpage>
<copyright-statement/>
<copyright-year/>
<self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0258-59362014000400003&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0258-59362014000400003&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0258-59362014000400003&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Para la producción de aguacate en Colombia es necesario establecer alternativas de manejo amigables con el medio ambiente y de bajo costo para el control de la enfermedad conocida como marchitez, cuyo principal agente causal es Phytophthora cinnamomi. El uso de microorganismos del suelo, es una opción viable para mejorar la nutrición y sanidad en Persea americana, buscando ser más competitivos en aras de afrontar los tratados de libre comercio y poder aprovechar el potencial exportador que presenta este frutal. Entendiendo la complejidad del sistema de la microbiota del suelo, consecuencia de su gran diversidad y de las distintas relaciones ecológicas que lo gobiernan, este trabajo estuvo encaminado a evaluar en condiciones de invernadero el efecto de cepas de Trichoderma sp., Glomus fasciculatum y una cepa de Pseudomonas sp., en el desarrollo de plántulas de P. americana, sin inocular e inoculadas con P. cinnamomi. Los resultados encontrados en este trabajo sugieren queG. fasciculatum y Pseudomonas sp., solos o en combinación, favorecen el desarrollo de plántulas de aguacate, mientras que Trichoderma sp. presentó los mejores resultados en la reducción del progreso de la enfermedad de marchitez en plantas inoculadas con P. cinnamomi. Los microorganismos del suelo presentan un enorme potencial para el desarrollo y protección contra patógenos en P. americana, pero se hace necesario entender todas las relaciones para poder potenciar su uso como biofertilizantes y agentes de biocontrol]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Avocado crop production in Colombia requires establishing environmentally friendly and inexpensive measures for wilt disease management, whose main causal agent is. Soil microorganisms use is an option for improving nutrition and health in Persea americana, looking to be more competitive in order to face the free trade agreements and to exploit the full export potential for this fruit. Understanding the complexity of the soil microbiota system, due to its great diversity and different ecological relationships that govern it, this study was designed to evaluate under greenhouse conditions the effect of Trichoderma sp, Glomus fasciculatum and Pseudomonas sp. isolates, on P. americana seedling development inoculated and non-inoculated with P. cinnamomi. Results found in this work suggest that G. fasciculatum and Pseudomonas sp., alone or in combination increase avocado seedling development, meanwhile Trichoderma sp. showed the best results in reducing the wilt disease progress on P. cinnamomi-inoculated plants. Soil microorganisms have a large potential for P. Americana development and pathogen protection, but it is necessary to understand all possible relationships in order to strengthen their use as biofertilizers and biocontrol agents]]></p></abstract>
<kwd-group>
<kwd lng="es"><![CDATA[marchitez de aguacate]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[microorganismos promotores de crecimiento]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[avocado wilt]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[plant growth promoting microorganisms]]></kwd>
</kwd-group>
</article-meta>
</front><body><![CDATA[ <p><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Alternativas    microbiol&oacute;gicas para el manejo de Phytophthora cinnamomi Rands., en Persea    americana Mill. bajo condiciones de casa-malla</strong></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Microbiological    alternatives for Phytophthora cinnamomi Rands., management in Persea americana    Mill. under greenhouse conditions</strong></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Ms.C. Joaqu&iacute;n    G. Ram&iacute;rez Gil,<sup>I</sup> Dr.C. Dar&iacute;o A. Casta&ntilde;eda S&aacute;nchez,<sup>II</sup>    Dr.C. Juan G. Morales Osorio<sup>III</sup></strong></font></p>     <p> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><sup>I</sup>Laboratorio    Fitotecnia Tropical, Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n,    Departamento de Ciencias Agron&oacute;micas, Campus El Volador, Bloque 11. A.    A. 1779. Bloque 19A- lab. 306. Medell&iacute;n, Colombia.    <br>   <sup>II</sup>M&aacute;ster en Geomorfolog&iacute;a y Suelo y Profesor en Bioqu&iacute;mica    por Maestr&iacute;a en Bioqu&iacute;mica, Universidad Nacional de Colombia,    Sede Medell&iacute;n, Departamento de Ciencias Agron&oacute;micas, Campus El    Volador, Bloque 11. A. A. 1779. Bloque 19A- lab. 306. Medell&iacute;n, Colombia.    <br>   <sup>III</sup>Profesor en Bioqu&iacute;mica, Universidad Nacional de Colombia,    Sede Medell&iacute;n, Departamento de Ciencias Agron&oacute;micas, Campus El    Volador, Bloque 11. A. A. 1779. Bloque 19A- lab. 306. Medell&iacute;n, Colombia.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p> <hr>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>RESUMEN</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Para la producci&oacute;n    de aguacate en Colombia es necesario establecer alternativas de manejo amigables    con el medio ambiente y de bajo costo para el control de la enfermedad conocida    como marchitez, cuyo principal agente causal es Phytophthora cinnamomi. El uso    de microorganismos del suelo, es una opci&oacute;n viable para mejorar la nutrici&oacute;n    y sanidad en Persea americana, buscando ser m&aacute;s competitivos en aras    de afrontar los tratados de libre comercio y poder aprovechar el potencial exportador    que presenta este frutal. Entendiendo la complejidad del sistema de la microbiota    del suelo, consecuencia de su gran diversidad y de las distintas relaciones    ecol&oacute;gicas que lo gobiernan, este trabajo estuvo encaminado a evaluar    en condiciones de invernadero el efecto de cepas de Trichoderma sp., Glomus    fasciculatum y una cepa de Pseudomonas sp., en el desarrollo de pl&aacute;ntulas    de P. americana, sin inocular e inoculadas con P. cinnamomi. Los resultados    encontrados en este trabajo sugieren que G. fasciculatum y Pseudomonas sp.,    solos o en combinaci&oacute;n, favorecen el desarrollo de pl&aacute;ntulas de    aguacate, mientras que    <br>   Trichoderma sp. present&oacute; los mejores resultados en la reducci&oacute;n    del progreso de la enfermedad de marchitez en plantas inoculadas con P. cinnamomi.    Los microorganismos del suelo presentan un enorme potencial para el desarrollo    y protecci&oacute;n contra pat&oacute;genos en P. americana, pero se hace necesario    entender todas las relaciones para poder potenciar su uso como biofertilizantes    y agentes de biocontrol.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Palabras    clave:</strong> marchitez de aguacate, microorganismos promotores de crecimiento.</font></p> <hr>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>ABSTRACT</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Avocado crop production    in Colombia requires establishing environmentally friendly and inexpensive measures    for wilt disease management, whose main causal agent is. Soil microorganisms    use is an option for improving nutrition and health in Persea americana, looking    to be more competitive in order to face the free trade agreements and to exploit    the full export potential for this fruit. Understanding the complexity of the    soil microbiota system, due to its great diversity and different ecological    relationships that govern it, this study was designed to evaluate under greenhouse    conditions the effect of Trichoderma sp, Glomus fasciculatum and Pseudomonas    sp. isolates, on P. americana seedling development inoculated and non-inoculated    with P. cinnamomi. Results found in this work suggest that G. fasciculatum and    Pseudomonas sp., alone or in combination increase avocado seedling development,    meanwhile Trichoderma sp. showed the best results in reducing the wilt disease    progress on P. cinnamomi-inoculated plants. Soil microorganisms have a large    potential for P. Americana development and pathogen protection, but it is necessary    to understand all possible relationships in order to strengthen their use as    biofertilizers and biocontrol agents.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Key words:</strong>    avocado wilt, plant growth promoting microorganisms.</font></p> <hr>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong><font size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Las condiciones    agroclim&aacute;ticas que se encuentran en varias regiones de Colombia presentan    caracter&iacute;sticas favorables para el desarrollo del cultivo de aguacate    (1), raz&oacute;n por la cual, seg&uacute;n la FAO (2), Colombia reporta los    m&aacute;s altos rendimientos de la fruta en toneladas por hect&aacute;rea.    A pesar de esto, este frutal estuvo mucho tiempo relegado a pocas regiones del    pa&iacute;s, donde la siembra no se realizaba comercialmente. Las necesidades    de satisfacer una demanda interna y las perspectivas de exportaci&oacute;n han    incrementado las plantaciones notablemente durante la &uacute;ltima d&eacute;cada,    ocupando actualmente el tercer lugar en &aacute;rea sembrada de frutales (3).    El incremento r&aacute;pido en el &aacute;rea sembrada, implica generar paquetes    tecnol&oacute;gicos de manejo para mantener la competitividad y la sostenibilidad    del cultivo.    <br>       <br>   La marchitez es la principal enfermedad registrada en el cultivo de aguacate    en Colombia (4, 5). Este problema puede ser ocasionado por factores bi&oacute;ticos    y abi&oacute;ticos, destac&aacute;ndose el Oomycete P. cinnamomi, el cual com&uacute;nmente    se conoce como tristeza (4, 6). Para el manejo de esta enfermedad se aplican    principalmente productos de origen qu&iacute;mico (5). El uso permanente de    mol&eacute;culas sint&eacute;ticas para el manejo de P. cinnamomi, ejercen una    fuerte presi&oacute;n de selecci&oacute;n de las poblaciones, generando en algunos    casos resistencia o disminuci&oacute;n de la sensibilidad a las mol&eacute;culas    qu&iacute;micas utilizadas (7).    <br>       <br>   Como una alternativa al control qu&iacute;mico de enfermedades, se han realizado    intensas investigaciones sobre microorganismos que pueden contribuir al manejo    de los problemas fitosanitarios. Los mecanismos por medio de los cuales ejercen    control de las enfermedades son variados e incluyen desde el antagonismo, la    inducci&oacute;n de resistencia, el suministro de nutrimentos y de fitohormonas    al hospedante, el micoparasitismo, la antibiosis, la competencia, entre otros    (8, 9). Los estudios realizados en aguacate, demuestran que la din&aacute;mica    microbiana del suelo, muestra una influencia en el desarrollo de P. cinnamomi    (10, 11). Se han identificado algunos grupos de microorganismos con efecto de    supresi&oacute;n en P. cinnamomi y que mejoran el crecimiento de P. americana,    como bacterias clasificadas dentro del g&eacute;nero Pseudomonas (10, 11); hongos    del g&eacute;nero Trichoderma (11, 12) y hongos micorr&iacute;zicos (13).    <br>       <br>   Este trabajo tuvo como objetivo evaluar el efecto de los microorganismos Trichoderma    sp, G. fasciculatum y una cepa de Pseudomonas sp., en el desarrollo de plantas    de P. americana, inoculadas con P. cinnamomi.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <font size="3"><strong>MATERIALES    Y M&Eacute;TODOS</strong></font></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Este trabajo se    realiz&oacute; en el laboratorio de Fitotecnia Tropical, de la Universidad Nacional    de Colombia sede Medell&iacute;n (6&deg;15N, 75&deg;35&acute;W, 1495 (ms.n.m.).    El suelo utilizado fue un Andisol proveniente del Pe&ntilde;ol (Antioquia, Colombia),    previamente esterilizado en autoclave a 1,02 atm y 121 &ordm;C, por dos ciclos    consecutivos de una hora cada uno. Se realiz&oacute; an&aacute;lisis del suelo,    curva de incubaci&oacute;n de cal, isoterma de absorci&oacute;n de fosfato y    m&aacute;xima capacidad de retenci&oacute;n de humedad; con el fin de suministrar    las condiciones adecuadas para el desarrollo de las plantas y microorganismos    (pH: 5,6; 0,02 ppm de P en soluci&oacute;n y humedad al 50 % de la m&aacute;xima    capacidad de retenci&oacute;n del suelo).    <br>       <br>   <strong>Microorganismos </strong>    <br>       <br>   Se utiliz&oacute; un aislamiento de P. cinnamomi (CIB-35) proveniente de la    colecci&oacute;n de cepas de la Corporaci&oacute;n para Investigaciones Biol&oacute;gicas-Medell&iacute;n,    Colombia (CIB), virulento sobre Persea americana var. Hass. Se seleccion&oacute;    la cepa de G. fasciculatum de la colecci&oacute;n de microorganismos del suelo    de la Universidad Nacional de Colombia sede Medell&iacute;n, que mostr&oacute;    los mejores resultados a nivel de desarrollo de P. americana<SUP>A</sup>. La    cepa de Pseudomonas sp., se aisl&oacute; de la rizosfera de un &aacute;rbol    de aguacate, sembrado en un lote altamente afectado por P. cinnamomi. La muestra    de suelo se disolvi&oacute; en agua destilada est&eacute;ril y se prepararon    diluciones 10<sup>-3</sup> y 10<sup>-4</sup>, de las cuales se sembraron 100    &micro;L en medio King B KB (14), suplementado con ampicilina (50 mg L<SUP>-1</sup>)    y cloranfenicol (12,5 mg L<SUP>-1</sup> (15). Las colonias que produjeron pigmentos    fluorescentes bajo luz ultravioleta (260 nm)<sup>B</sup> se re-aislaron en el    mismo medio (15). A partir de las colonias puras obtenidas, se realizaron pruebas    cualitativas y cuantitativas para producci&oacute;n de &iacute;ndoles totales,    usando la soluci&oacute;n indicadora Salkoswki, modificada para su uso en sobrenadantes    de cultivos bacterianos y se seleccion&oacute; la colonia que present&oacute;    la mayor producci&oacute;n de esta fitohormona, para las pruebas (16). Para    la selecci&oacute;n de la cepa de Trichoderma sp., se realizaron pruebas de    reducci&oacute;n del di&aacute;metro radial in vitro (17), usando cepas comerciales    de Trichoderma sp. y T. asperellum (Biotropical&#8482;) y tres cepas de Trichoderma    sp., aisladas en PDA, suplementado con 0,5 % de Igepal (Sigma, St Louis, USA)    (18), a partir de muestras colectadas del suelo ubicado alrededor del tronco,    en un metro de di&aacute;metro a partir de la base del tallo, de &aacute;rboles    de aguacate afectados con este pat&oacute;geno. Se seleccion&oacute; la cepa    que present&oacute; mayor reducci&oacute;n del crecimiento radial de P. cinnamomi,    sobre PDA, la cual se identific&oacute; como Trichoderma sp. (c&oacute;digo    TAF22).    <br>       <br>   <strong>Plantas</strong>    <br>       <br>   Se utilizaron semillas de P. americana, con un peso de 40-50 g, provenientes    de &aacute;rboles sanos, con el fin de disminuir la variabilidad en las plantas.    La desinfecci&oacute;n superficial se realiz&oacute; mediante lavado en soluci&oacute;n    acuosa de hipoclorito de sodio (3 % v:v) por un minuto, lavado en agua, tratamiento    hidrot&eacute;rmico a 48-50 &ordm;C por 30 min, seguido de tratamiento por inmersi&oacute;n    en mezcla acuosa de fungicida carbox&iacute;n + captan (vitabax<sup>&reg;</sup>)+    insecticida clorpirifos (Lorsban<sup>&reg;</sup>) durante 15 min (1). Despu&eacute;s    de la desinfestaci&oacute;n se aplic&oacute; un pre-tratamiento para acelerar    la germinaci&oacute;n, el cual consisti&oacute; en la remoci&oacute;n de la    testa, corte basal de 2 a 4 mm y corte apical de 10 a 20 mm (1). Las semillas    se sembraron en cuarzo tamizado en malla de 2 mm, a los 60 d&iacute;as, se trasplantaron    a potes pl&aacute;sticos de 2 kg de capacidad. Con el fin de observar resultados    en forma temprana, se removieron los cotiledones de las pl&aacute;ntulas al    momento del trasplante. Las plantas se mantuvieron en condiciones de casa-malla,    fertilizadas con la soluci&oacute;n nutritiva Hoagland, manteniendo las condiciones    de 50 % de la m&aacute;xima capacidad de retenci&oacute;n de humedad del suelo.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Tratamientos    evaluados</strong>    <br>       <br>   En la <a href="/img/revistas/ctr/v35n4/t0103414.gif">tabla</a> se presentan    resumidos todos los tratamientos, evaluados en el presente estudio. Las inoculaciones    de los microorganismos del suelo se hicieron en forma individual y en mezclas,    tanto a plantas de aguacate, inoculadas y no inoculadas con P. cinnamomi.    
<br>       <br>   <strong>Inoculaci&oacute;n de microorganismos    <br>   </strong>    <br>   Para evaluar el efecto de G. fasciculatum, se inocul&oacute; el suelo con 35    g de in&oacute;culo crudo kg<sup>-1</sup> de suelo (45 prop&aacute;gulos infectivos    de G. fasciculatum g<sup>-1</sup> de suelo) (19). La inoculaci&oacute;n con    Trichoderma sp, se realiz&oacute; preparando una soluci&oacute;n ajustada a    una concentraci&oacute;n de 10<sup>6</sup> UFC g<sup>-1</sup> de suelo (9).    La bacteria Pseudomonas sp., se inocul&oacute; a una concentraci&oacute;n de    1 x 10<sup>6</sup> UFC g<sup>-1</sup> de suelo (9). Un mes despu&eacute;s de    aplicados los tratamientos se realiz&oacute; la inoculaci&oacute;n con P. cinnamomi,    en aquellos que lo incluyeron, para lo cual se multiplic&oacute; el in&oacute;culo    en PDA, y se ajust&oacute; a una concentraci&oacute;n de 10<sup>5</sup> prop&aacute;gulos    mL<sup>-1</sup>. El in&oacute;culo de P. cinnamomi, se introdujo en el suelo    de la riz&oacute;sfera repartido homog&eacute;neamente en la maceta. Para el    tratamiento de manejo tradicional, con productos qu&iacute;micos a base de los    compuestos metalaxyl+ mancozeb y fosfito de potasio, se utilizaron las dosis    recomendadas en otros estudios (4), realizando su aplicaci&oacute;n mediante    aspersi&oacute;n al suelo.    <br>       <br>   <strong>Variables evaluadas    <br>   </strong>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Para la evaluaci&oacute;n de la severidad de la enfermedad, se utiliz&oacute;    la escala reportada para plantas j&oacute;venes (30). Los s&iacute;ntomas y    desarrollo de la enfermedad se registraron cada ocho d&iacute;as, durante un    per&iacute;odo de 90 d&iacute;as, despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n con    P. cinnamomi. Con los datos obtenidos se calcul&oacute; el &aacute;rea bajo    la curva del progreso de la enfermedad (AUDPC, por sus siglas en ingl&eacute;s)    (20). La altura y el di&aacute;metro de la base del tallo de las plantas, se    midieron cada 15 d&iacute;as despu&eacute;s de iniciados los tratamientos. Al    final del experimento (120 d&iacute;as) se midieron las siguientes variables:    biomasa seca de ra&iacute;z y a&eacute;rea, &aacute;rea foliar, viabilidad de    ra&iacute;ces muestreando en tres lugares distintos de la maceta mediante la    utilizaci&oacute;n de un cilindro biselado (100 cm<sup>3</sup>). Adem&aacute;s    se realiz&oacute; el re-aislamiento de P. cinnamomi, a partir de ra&iacute;ces    de todas las plantas inoculadas.    <br>       <br>   El porcentaje de colonizaci&oacute;n micorr&iacute;zica se realiz&oacute; mediante    la t&eacute;cnica de l&iacute;neas de intercepci&oacute;n (21). Se tomaron ra&iacute;ces,    se lavaron con agua corriente y se procedi&oacute; a su decoloraci&oacute;n    con KOH (10 %) por 24 h (22). Luego se decoloraron en inmersi&oacute;n alcalina    (0,5 % NH4OH y 0,5 % H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> v/v, en soluci&oacute;n acuosa),    por 30 minutos (23). Las micorrizas se visualizaron con azul de tripano (0,025    % en agua) (24). En las ra&iacute;ces te&ntilde;idas se procedi&oacute; simult&aacute;neamente    a identificar la presencia de Trichoderma sp. y P. cinamomi. A partir de muestras    tomadas de la rizosfera se realiz&oacute; el re-aislamiento de Trichoderma sp.    y Pseudomonas sp.    <br>       <br>   <strong>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</strong>    <br>       <br>   Se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o completamente al azar, con tres replicas    por tratamiento. Se analiz&oacute; la homocedasticidad y normalidad de los datos    (&alpha;&lt;0,01), utilizando los criterios de Levene y Kolmogorov-Smirnov,    respectivamente. Los datos se sometieron a an&aacute;lisis de varianza y las    medias se compararon con la prueba de Tukey (&alpha;&lt;0,01).</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <strong>RESULTADOS    Y DISCUSI&Oacute;N</strong></font></p>     <p><strong><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Desarrollo    de la enfermedad</font></strong><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   Diez d&iacute;as despu&eacute;s de la aplicaci&oacute;n, las pl&aacute;ntulas    inoculadas con P. cinnamomi presentaron s&iacute;ntomas t&iacute;picos de la    enfermedad, caracterizados por marchitez, amarillamiento foliar, retraso en    el crecimiento y pudrici&oacute;n de ra&iacute;ces (<a href="/img/revistas/ctr/v35n4/f0103414.gif">Figura    1A, 1B y 1C</a>). Durante el tiempo de evaluaci&oacute;n no se observ&oacute;    muerte total de las plantas. Las diferencias significativas (&alpha;&lt;0,01)    encontradas para los valores de AUDPC permitieron diferenciar los tratamientos    en cuatro grupos (<a href="/img/revistas/ctr/v35n4/f0203414.gif">Figura    2A</a>). En el primer grupo se ubic&oacute; el control inoculado con el pat&oacute;geno    &uacute;nicamente (T<sub>2</sub>), el cual present&oacute; el nivel m&aacute;s    alto de enfermedad. En el segundo grupo, con un nivel intermedio de enfermedad,    se encontraron los tratamientos inoculados con el microorganismo pat&oacute;geno,    junto con otros microorganismos del suelo aplicados solos y en mezcla, y el    tratamiento inoculado con el pat&oacute;geno m&aacute;s la mezcla de fungicidas    (T<sub>5</sub>, T<sub>7</sub>, T<sub>9</sub>, T<sub>11</sub> T<sub>13</sub>,    T<sub>15</sub>, T<sub>17</sub>). En el tercer grupo se ubic&oacute; el tratamiento    inoculado con el pat&oacute;geno y con una cepa del hongo Trichoderma sp. (T<sub>3</sub>).    Este tratamiento mostr&oacute; el nivel m&aacute;s bajo de enfermedad, entre    los tratamientos en donde se inocul&oacute; el pat&oacute;geno. En el cuarto    grupo de tratamientos no se detect&oacute; la enfermedad (AUDPC = 0) y estuvo    conformado por los tratamientos en donde no se inocul&oacute; P. cinnamomi (T<sub>1</sub>,    T<sub>4</sub>, T<sub>6</sub>, T<sub>8</sub> T<sub>10</sub>, T<sub>12</sub>,    T<sub>14</sub>, T<sub>14</sub>).    
<br>       <br>   En todos los tratamientos donde se realiz&oacute; la inoculaci&oacute;n con    P. cinnamomi, Trichoderma sp. y Pseudomonas sp., se logr&oacute; re-aislar colonias    de estos tres microorganismos, adem&aacute;s, para los dos primeros se observaron    estructuras t&iacute;picas en muestras de ra&iacute;ces te&ntilde;idas. En contraste,    en los tratamientos no inoculados con estos microorganismos, no se observaron    las estructuras caracter&iacute;sticas de estos.    <br>       <br>   En general las cepas de microorganismos aplicados en el presente trabajo, con    el objetivo de controlar el pat&oacute;geno, lograron reducir el nivel de enfermedad    de manera similar o mejor, que la mezcla de fungicidas. Sin embargo, al aplicarlos    combinadamente no se obtuvo el efecto sin&eacute;rgico reportado en la literatura    para las especies de los mismos g&eacute;neros (8, 9, 12). El aislamiento de    Trichoderma sp. (T<sub>3</sub>), mostr&oacute; la mayor reducci&oacute;n de    la enfermedad, con nivel superior al tratamiento con fungicidas; las especies    pertenecientes a este g&eacute;nero han sido ampliamente estudiadas por su capacidad    de inhibir otros microorganismos (9, 17). El g&eacute;nero Trichoderma presenta    mecanismos de competencia, hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica e inducci&oacute;n    de respuestas de defensa en la planta, entre otros, lo que ha permitido su uso    como biocontrolador de pat&oacute;genos como P. cinnamomi (12). Se ha reportado    la activaci&oacute;n de la resistencia sist&eacute;mica inducida (ISR) y adquirida    (SAR) por parte de bacterias del grupo de las Pseudomonas sp. y HMA (26, 27,    28).    <br>       <br>   Esta activaci&oacute;n podr&iacute;a depender de diversos factores como el genotipo    de la cepa utilizada, el suelo, los nutrientes disponibles, el clima y el manejo    del cultivo, entre otros; ya que en contraste con lo obtenido en el presente    estudio, en trabajos realizados por otros autores (29), no se encontr&oacute;    efecto de la inoculaci&oacute;n micorrizal sobre los niveles de enfermedad inducida    por P. cinnamomi. Considerando que en Colombia, el manejo de la tristeza del    aguacate, se basa en un 68 % en productos de origen qu&iacute;mico como &uacute;nica    estrategia y los agroqu&iacute;micos representan el 48,1 % de los costos totales    de producci&oacute;n (3, 5), el uso de los microorganismos para control de la    enfermedad, reportados en este trabajo podr&iacute;an ser una alternativa viable,    la cual se debe evaluar en condiciones de cultivo.     <br>       <br>   <strong>Colonizaci&oacute;n micorr&iacute;zica</strong>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   En la observaci&oacute;n microsc&oacute;pica, las estructuras predominantes    encontradas fueron de tipo micelio interno, externo, ves&iacute;culas y arb&uacute;sculos,    coincidiendo con lo reportado en la literatura para HMA (13). El porcentaje    de colonizaci&oacute;n oscil&oacute; entre el 7 y 54,6 %, resultados similares    a lo reportado por algunos autoresA quienes encontraron valores de colonizaci&oacute;n    para plantas sanas entre 57 y 77 %, con G. fasciculatum. Otros trabajos han    encontrado valores de colonizaci&oacute;n micorr&iacute;zica superiores al 77    %, utilizando cepas de los g&eacute;neros Glomus sp. y Acaulospora sp. (13).    El porcentaje de colonizaci&oacute;n micorr&iacute;zica depende de numerosos    factores como el f&oacute;sforo presente en el suelo, el porcentaje de materia    org&aacute;nica, el genotipo de la HMA y de la planta y la disponibilidad de    otros nutrientes, entre otros.    <br>       <br>   Los valores obtenidos para porcentaje de colonizaci&oacute;n micorr&iacute;zica,    permitieron agrupar los tratamientos en cuatro grupos significativamente diferentes    (&alpha;&lt;0,01) (<a href="/img/revistas/ctr/v35n4/f0203414.gif">Figura    2B</a>). En el primer grupo con el valor m&aacute;s alto, se ubicaron los tratamientos    inoculados con micorriza y sin microorganismo pat&oacute;geno, T<sub>6</sub>    (G. fasciculatum) y T<sub>10</sub> (G. fasciculatum + Pseudomonas sp.). En el    segundo grupo se encontraron los tratamientos a plantas inoculadas con P. cinnamomi    y con G. fasciculatum (T<sub>5</sub>) y con P. cinnamomi y G. fasciculatum +    Pseudomonas sp. (T<sub>9</sub>). En el tercer grupo se identificaron los tratamientos    T<sub>11</sub>, T<sub>12</sub>, T<sub>15</sub>, y T<sub>16</sub>, los cuales    fueron aplicaciones de mezclas de G. fasciculatum con Trichoderma sp. y Psudomonas    sp., a plantas en unos casos infectadas con el agente causal de la marchitez    y en otros sin infectar. En el cuarto grupo se ubicaron aquellos tratamientos    sin aplicaci&oacute;n del HMA G. fasciculatum (T<sub>1</sub>, T<sub>3</sub>,    T<sub>4</sub>, T<sub>7</sub>, T<sub>8</sub>, T<sub>13</sub>, T<sub>14</sub>    y T<sub>17</sub>). Como era de esperarse, estos tratamientos presentaron un    valor de cero para porcentaje de colonizaci&oacute;n micorr&iacute;zica y por    esta raz&oacute;n no se muestran en la <a href="/img/revistas/ctr/v35n4/f0203414.gif">Figura    2B</a>. Los resultados sugieren que la cepa de Trichoderma sp. aplicada, incidi&oacute;    negativamente en la colonizaci&oacute;n de la cepa de HMA. Como se discuti&oacute;    antes, el antagonismo en las especies del g&eacute;nero Trichoderma hacia otros    microorganismos, se ha identificado extensamente, lo que podr&iacute;a explicar    lo observado. Este posible antagonismo se debe considerar cuidadosamente al    momento de dise&ntilde;ar una estrategia de control biol&oacute;gico de las    enfermedades. Por otra parte, algunos estudios plantean que P. cinnamomi afecta    negativamente la colonizaci&oacute;n micorr&iacute;zica en aguacate (29), lo    que explicar&iacute;a la disminuci&oacute;n en el porcentaje de colonizaci&oacute;n,    presentado en el segundo grupo de significancia. Para los tratamientos T5 y    T9, ubicados en el segundo grupo de porcentaje de colonizaci&oacute;n micorr&iacute;zica,    se observaron los menores valores de AUDPC en las plantas con aplicaci&oacute;n    de HMA. Para la aplicaci&oacute;n de microorganismos ben&eacute;ficos solos    o en mezclas, en los cultivos de aguacate en campo, se deben realizar trabajos    adicionales considerando las diferentes variables que inciden en el resultado    final de control de la enfermedad.    
<br>       <br>   <strong>Viabilidad de ra&iacute;ces</strong>    <br>       <br>   Los valores m&aacute;s altos en los porcentajes de ra&iacute;ces viables, se    encontraron en los tratamientos T<sub>8</sub> (Pseudomonas sp.) y T<sub>10</sub>    (G. fasciculatum + Pseudomonas sp.), seguido por T<sub>6</sub> (G. fasciculatum),    y T<sub>16</sub> (Trichoderma sp. + G. fasciculatum + Pseudomonas sp.) (<a href="/img/revistas/ctr/v35n4/f0203414.gif">Figura    2C</a>). Los resultados indican un mayor efecto de promoci&oacute;n de crecimiento    de ra&iacute;ces por la cepa usada de Pseudomonas sp., solo o en combinaci&oacute;n    con el HMA. Para la cepa usada de Pseudomonas sp., se encontr&oacute; producci&oacute;n    de la fitohormona &aacute;cido-indol-ac&eacute;tico (AIA), la cual incrementar&iacute;a    la proliferaci&oacute;n de ra&iacute;ces viables (<a href="/img/revistas/ctr/v35n4/f0203414.gif">Figura    2C</a>), como se observ&oacute; para los tratamientos T<sub>8</sub> y T<sub>10</sub>,    con valores de 90-92,3 % respectivamente.    
<br>       <br>   Todos los tratamientos, que involucraron infecci&oacute;n con P. cinnamomi,    mostraron valores m&aacute;s bajos de ra&iacute;ces viables, que los no inoculados    con el pat&oacute;geno, confirmando su efecto detrimental sobre las ra&iacute;ces.    En los tratamientos T<sub>3</sub>, T<sub>7</sub> y T<sub>11</sub>, se encontraron    valores mayores de ra&iacute;ces viables, que en el tratamiento que us&oacute;    la mezcla de fungicidas &uacute;nicamente (T<sub>17</sub>). Para estos tratamientos    se obtuvieron valores similares de AUDPC, con un mejor nivel de control de la    enfermedad que el observado en el control inoculado &uacute;nicamente con el    pat&oacute;geno (T<sub>2</sub>) (<a href="/img/revistas/ctr/v35n4/f0203414.gif">Figuras    2A</a> y <a href="/img/revistas/ctr/v35n4/f0203414.gif">2C</a>). Es posible    que un incremento en las ra&iacute;ces viables, pueda mejorar la capacidad de    soportar la infecci&oacute;n por P. cinnamomi y disminuir los s&iacute;ntomas    visibles de la enfermedad. Los materiales de P. americana que se han categorizado    como tolerantes a este pat&oacute;geno, presentan mayor cantidad de ra&iacute;ces    viables, lo que apoya esta hip&oacute;tesis (6, 25).     
]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   <strong>Variables biom&eacute;tricas de las plantas</strong>    <br>       <br>   Durante los primeros 30 d&iacute;as despu&eacute;s de la aplicaci&oacute;n de    los tratamientos, no se observaron diferencias notables en las variables altura,    &aacute;rea foliar y biomasa seca, entre los diferentes tratamientos aplicados    a las plantas de aguacate (<a href="/img/revistas/ctr/v35n4/f0203414.gif">Figura    2D</a>, <a href="/img/revistas/ctr/v35n4/f0203414.gif">2E</a> y <a href="/img/revistas/ctr/v35n4/f0203414.gif">2F</a>).    A partir del d&iacute;a 30 en adelante se percibieron las diferencias entre    tratamientos, notablemente se observ&oacute; una marcada reducci&oacute;n del    crecimiento y desarrollo de las plantas inoculadas con P. cinnamomi (T<sub>2</sub>),    hasta finalizar el estudio. Esta tendencia en la variedad de aguacate Hass,    es similar a la reportada para la variedad Mexicola, en la cual se redujo un    25 % la altura, 18 % el di&aacute;metro del tallo, 90 % el n&uacute;mero de    hojas y 49 % el &aacute;rea foliar (30). A partir del d&iacute;a 30 y hasta    el final de la evaluaci&oacute;n, en los tratamientos sin inoculaci&oacute;n    de P. cinnamomi, pero con aplicaci&oacute;n de los otros microorganismos: T<sub>6</sub>    (G. fasciculatum), T<sub>8</sub> (Pseudomonas sp.), T<sub>10</sub> (Pseudomonas    sp.+ G. fasciculatum) y T<sub>16</sub> (Trichoderma sp. + G. fasciculatum +    Pseudomonas sp.), se observ&oacute; un mayor valor para los par&aacute;metros    &aacute;rea foliar, biomasa y altura de las plantas, respecto a los otros tratamientos.    Para los tratamientos inoculados adicionalmente con P. cinnamomi (T<sub>5</sub>,    T<sub>7</sub>, T<sub>9</sub>, T<sub>15</sub>), se encontr&oacute; una velocidad    menor de crecimiento, respecto a aquellos no inoculados con el pat&oacute;geno    (<a href="/img/revistas/ctr/v35n4/f0203414.gif">Figura 2D</a>). Los menores    valores para &aacute;rea foliar, biomasa seca y altura se presentaron para el    tratamiento inoculado &uacute;nicamente con P. cinnamomi (T<sub>2</sub>) (<a href="/img/revistas/ctr/v35n4/f0203414.gif">Figuras    2D</a>, <a href="/img/revistas/ctr/v35n4/f0203414.gif">2E</a> y <a href="/img/revistas/ctr/v35n4/f0203414.gif">2F</a>).    
<br>       <br>   Los valores medidos para todas las variables analizadas en este estudio muestran    que el aislamiento usado de P. cinnamomi fue virulento y caus&oacute; un efecto    perjudicial sobre las plantas (4, 30). Durante la etapa de establecimiento en    vivero y el transplante al campo, las plantas de aguacate son muy vulnerables    al ataque por pat&oacute;genos principalmente P. cinnamomi (4, 6). Los microorganismos    G. fasciculatum (T<sub>6</sub>) y la bacteria Pseudomonas sp. (T<sub>8</sub>),    solos o combinados (T<sub>10</sub>), mostraron utilidad potencial para ser usados    en las fases de germinaci&oacute;n y establecimiento de plantas de aguacate    var. Hass. El efecto positivo de los microorganismos no patog&eacute;nicos,    usados en este trabajo, sobre plantas de aguacate podr&iacute;a atribuirse a    varios mecanismos reportados previamente para cepas de estas mismas especies    (13, 29). La especie P. americana no posee pelos radiculares, por lo que los    HMA podr&iacute;an actuar aumentando el volumen de exploraci&oacute;n del suelo    (1, 31) y el grupo estudiado de Pseudomonas sp., increment&oacute; el porcentaje    de ra&iacute;ces viables, posiblemente por la producci&oacute;n observada de    auxinas, lo que aumentar&iacute;a la capacidad de absorci&oacute;n de agua y    nutrientes (9, 26). Las plantas con mejor condici&oacute;n fisiol&oacute;gica    y ra&iacute;ces saludables, podr&iacute;an soportar mejor las condiciones de    estr&eacute;s abi&oacute;tico y bi&oacute;tico como el ocasionado por el pat&oacute;geno    P. cinnamomi (25), como se encontr&oacute; en el presente trabajo.    <br>       <br>   Es importante evaluar los microorganismos ben&eacute;ficos en &aacute;rboles    establecidos en condiciones de campo y durante per&iacute;odos de tiempo prolongados,    para determinar su utilidad durante todas las fases del cultivo y la duraci&oacute;n    de los efectos positivos encontrados.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <strong>CONCLUSIONES</strong></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> El tratamiento    con Trichoderma sp., mostr&oacute; el mejor control de la enfermedad denominada    marchitez en plantas de aguacate. Las cepas usadas de G. fasciculatum y Pseudomonas    sp. promovieron el crecimiento, el &aacute;rea foliar y la formaci&oacute;n    de ra&iacute;ces viables en plantas de P. americana y alcanzaron un nivel de    control de marchitez similar al de los productos qu&iacute;micos fungicidas    aplicados.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="3"><strong>AGRADECIMIEBTOS</strong></font></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Los autores agradecen    al profesor Nelson Walter Osorio, director del grupo de investigaci&oacute;n    en Microbiolog&iacute;a del Suelo de la Universidad Nacional de Colombia, por    su colaboraci&oacute;n y apoyo y a Laura Osorno, por la ayuda en el procesamiento    de las ra&iacute;ces para la evaluaci&oacute;n de colonizaci&oacute;n micorrizal    y la medici&oacute;n del f&oacute;sforo foliar.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong><font size="2"><strong><font size="3">REFERENCIAS</font></strong></font></strong></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> 1. Bernal, A.    y Cipriano, A. Generalidades del cultivo de Aguacate. En: Tecnolog&iacute;a    para el cultivo de aguacate. Manual T&eacute;cnico 5 CORPOICA Centro de Investigaci&oacute;n    La Selva. Rionegro Antioquia. 2008. pp. 11-80. ISBN 978-958-8311-74-6.    <br>       <!-- ref --><br>   2. FAO. Anuario estad&iacute;stico FOASTAT. 2010. [Consultado 17 septiembre    2012]. Disponible en:&lt;<a href="http://www.fao.org" target="_blank">http://www.fao.org</a>&gt;    .    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <!-- ref --><br>   3. Aproare, Sat. L&iacute;nea base o diagn&oacute;stico de campo. Informativo    el aguacate, 2009, vol. 2, no. 1, pp. 5-7.    <br>       <br>   4. Ram&iacute;rez, J. G.; Casta&ntilde;eda, D. A. y Morales, J. G. Estudios    etiol&oacute;gicos de la marchitez del aguacate en Antioquia-Colombia. Revista    Ceres, 2014, vol. 61, no. 1, pp. 050-061. ISSN 0034-737X.    <br>       <!-- ref --><br>   5. V&aacute;squez, L.; R&iacute;os, G.; Londo&ntilde;o, M. y Torres, M. Caracterizaci&oacute;n    biof&iacute;sica y socioecon&oacute;mica del sistema de producci&oacute;n de    aguacate cv Hass en los departamentos de Antioquia, Caldas, Risaralda y Quind&iacute;o.    Corporaci&oacute;n Colombiana de investigaci&oacute;n CORPOICA. Centro de investigaci&oacute;n    la selva. Rionegro Antioquia, 2011. 54 pp. ISBN 978-958-740-074-8.    <br>       <!-- ref --><br>   6. Perez, M. Significant Avocado Diseases Caused by Fungi and Oomycetes. The    European Journal of Plant Science and Biotechnology, 2008, vol. 2, no. 1, pp.    1-24. ISSN 1749-0472.    <br>       <!-- ref --><br>   7. Dobrowolski, M.; Shearer, B.; Colquhoun, I.; O&#8217;Brien, P. y Hardy, G.    Selection for decreased sensitivity to phosphite in Phytophthora cinnamomi with    prolonged use of fungicide. Plant Pathology, 2008, vol. 57, pp. 928-936. ISSN    1983-2052.    <br>       <!-- ref --><br>   8. Etebu, E. y Osborn, A. A Review of Indicators of Healthy Agricultural Soils    with Pea Footrot Disease Suppression Potentials. Sustainable Agriculture Research,    2012, vol. 1, no. 2, pp. 10-35. ISSN 1044-0046.    <br>       <!-- ref --><br>   9. Jena, N. Pseudomonas and Trichoderma: The most effective bio-control agents    against damping off pathogens of vegetable crops. Asian Journal of Microbiology,    Biotechnology and Environmental Sciences, 2012, vol. 14, no. 2, pp. 295-298.    ISSN 0972-3005.    <br>       <!-- ref --><br>   10. Yang, C.; Crowley, D. y Menge, J. 16S rDNAengerprinting of rhizosphere bacterial    communities associated with healthy and Phytophthora infected avocado roots.    Microbiology Ecology, 2001, vol. 35, pp. 129-136. ISSN 0095-3628.    <br>       <!-- ref --><br>   11. Costa, J.; Menge, J. y Casale, W. Biological control of Phytophthora root    rot of avocado with microorganisms grown in organic mulches. Brazilian Journal    of Microbiology, 2000, vol. 31, pp. 239-246. ISSN 1517-8382.    <br>       <!-- ref --><br>   12. Chambers, S. y Scott, E. In vitro antagonism of Phytophthora cinnamomi and    P. citricola by isolates of Trichoderma sp. and Gliocladium virens. Journal    of Phytopathology, 1995, vol. 143, pp. 471-477. ISSN 0931-1785.    <br>       <!-- ref --><br>   13. Orozco, I.; Vargas, C.; Cabezas, M. y Cuervo, J. Colonizaci&oacute;n micorricica    en plantas de aguacate (Persea americana L.). Revista U.D.C.A Actualidad y Divulgaci&oacute;n    Cient&iacute;fica, 2010, vol. 13, no. 2, pp. 51-60. ISSN 0123-4226.    <br>       <!-- ref --><br>   14. King, E.; Ward, M. y Raney, D. Two simple media for demonstration of pyocyanin    and fluorescin. Journal Laboratory Clinical Medical, 1954, vol. 44, pp. 301-307.    ISSN 0022-2143.    <br>       <!-- ref --><br>   15. Simon, A. y Ridge, E. H. The use of ampicillin in a simplified selective    Medium for the isolation of Fluorescent Pseudomonas. Journal Applied Bacterial,    1974, vol. 37, pp. 459-460. ISSN 1365-2672. DOI: 10.1111/j.1365-2672.1974.tb00464.x.    <br>       <!-- ref --><br>   16. Patten C. L. y Glick B. R. Role of Pseudomonas putida indole acetic acid    in development of host plant root system. Applied environment microbiology,    2002, vol. 48, pp. 3795-3801. ISSN 0099-2240.    <br>       <!-- ref --><br>   17. Khalili, E.; Sadravi, M.; Naeimi, S.; y Khosravi, V. Biological control    of rice brown spot with native isolates of three Trichoderma species. Brazilian    Journal of Microbiology, 2012, vol. 43, no 1, pp. 297-305. ISSN 1517-8382.    <br>       <!-- ref --><br>   18. Porras, M.; Barrau, C. y Romero, F. Effects of soil solarization and Trichoderma    on strawberry production. Crop Protection, 2007, vol. 26, pp. 782-787. ISSN    0261-2194.    <br>       <!-- ref --><br>   19. Porter, W. The &#8220;Most Probable Number&#8221; method for ennumerating    infective propagules of vesicular arbuscular micorrizal fungi in soil. Australian    Journal of Soil Research, 1979, vol. 17, pp. 515-519. ISSN 0004-9573.    <br>       <!-- ref --><br>   20. Madden, L. V.; Hughes, G. y van den Bosch, F. The Study of Plant Disease    Epidemics. American Phytopatological Society. 2007. 650 pp. ISSN 0031-949X    <br>       <!-- ref --><br>   21. Giovannetti, M. y Mosse, M. An evaluation of techniques for measuring vesicular-arbuscular    mycorrhizal infection in roots. New Phytologist, 1980, vol. 84, pp. 489-500.    ISSN 1469-8137.    <br>       <!-- ref --><br>   22. Phillips, J. M. y Hayman, D. S. Improves procedures for clearing roots and    staining parasitic and vesicular arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assesment    of infection. Transaction British Mycological Society, 1970, vol. 55, pp. 158-161.    ISSN 0007-1536.    <br>       <!-- ref --><br>   23. Brundrett, M. C. y Abbott, L. K. Mycorrhizal fungus propagules in the jarrah    forest. II. Spatial variability in inoculum levels. New Phytologist, 1995, vol.    131, pp. 461-469. ISSN 1469-8137.    <br>       <!-- ref --><br>   24. Kormanik, P. P.; Mcgraw, A. C. y Shultz, R. C. Procedures and equipment    for staining large number of plant roots for endomycorrhizal assay. Canadian    Journal of Microbiology, 1980, vol. 26, pp. 536-538. ISSN 0008-4166.    <br>       <!-- ref --><br>   25. Phillips, D.; Grant, B. y Weste, G. Histological changes in the roots of    an avocado cultivar, Duke 7, infected with Phytophthora cinnamomi. Phytopathology,    1987, vol. 77, pp. 691-698. ISSN 0031-949X.    <br>       <!-- ref --><br>   26. Lugtenberg, B. y Kamilova, F. Plant-Growth-Promoting Rhizobacteria. Annual    Review of Microbiology, 2009, vol. 63, pp. 541-556.    <br>       <br>   27. Garc&iacute;a, L.; Romero, D.; Zeriouh, H.; Cazorla, F.; Torres, D.; Vicente,    A. y P&eacute;rez, A. Isolation and selection of plant growth-promoting rhizobacteria    as inducers of systemic resistance in melon. Plant Soil, 2012, vol. 358, pp.    201-212. ISSN 1573-5036.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <!-- ref --><br>   28. Jung, C.; Mart&iacute;nez, A.; L&oacute;pez, A. y Pozo, A. Mycorrhiza-Induced    Resistance and Priming of Plant Defenses. Journal Chemical Ecology, 2012, vol.    38, pp. 651-664. ISSN 0098-0331.    <br>       <!-- ref --><br>   29. Davis, R. M.; Menge, I. A. y Zentmyer, G. A. Influence of vesicular arbuscular    mycorrhizae on Phytophthora root rot of three crop plant. Phytopathology, 1978,    vol. 68, pp. 1614-161. ISSN 0031-949X.    <br>       <!-- ref --><br>   30. Besoain, X.; Arenas, C.; Salgado, E. y Latorre, B.A. Efecto del Periodo    de Inundaci&oacute;n en el Desarrollo de la Tristeza del Palto (Persea americana),    Causada por Phytophthora cinnamomi. Ciencia e Investigaci&oacute;n Agraria,    2005, vol. 32, no. 2, pp. 97-103. ISSN 0718-1620.    <br>       <!-- ref --><br>   31. Parniske, M. Arbuscular mycorrhiza: the mother of plant root endosymbioses.    Nature Reviews Microbiology, 2008, vol. 6, pp. 763-775. ISSN 1740-1526.    </font></p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Recibido: 14 de    abril de 2013    <br>   Aceptado: 27 de septiembre de 2013</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><em>Ms.C. Joaqu&iacute;n    G. Ram&iacute;rez</em>, Laboratorio Fitotecnia Tropical, Universidad Nacional    de Colombia, Sede Medell&iacute;n, Departamento de Ciencias Agron&oacute;micas,    Campus El Volador, Bloque 11. A. A. 1779. Bloque 19A- lab. 306. Medell&iacute;n,    Colombia. Email: <a href="mailto:jgmoraleso@unal.edu.co">jgmoraleso@unal.edu.co</a></font></p>      ]]></body><back>
<ref-list>
<ref id="B1">
<label>1</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Bernal]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cipriano]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Generalidades del cultivo de Aguacate]]></article-title>
<source><![CDATA[Tecnología para el cultivo de aguacate. Manual Técnico 5 CORPOICA]]></source>
<year>2008</year>
<page-range>11-80</page-range><publisher-loc><![CDATA[Rionegro Antioquia ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Centro de Investigación La Selva]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B2">
<label>2</label><nlm-citation citation-type="">
<collab>FAO</collab>
<source><![CDATA[Anuario estadístico FOASTAT]]></source>
<year>2010</year>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B3">
<label>3</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Aproare]]></surname>
<given-names><![CDATA[Sat]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Línea base o diagnóstico de campo]]></article-title>
<source><![CDATA[Informativo el aguacate]]></source>
<year>2009</year>
<volume>2</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>5-7</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B4">
<label>4</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Tamayo]]></surname>
<given-names><![CDATA[P. J]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Enfermedades del aguacate]]></article-title>
<source><![CDATA[Revista politécnica]]></source>
<year>2007</year>
<volume>4</volume>
<page-range>2-71</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B5">
<label>5</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Vásquez]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ríos]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Londoño]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Torres]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Caracterización biofísica y socioeconómica del sistema de producción de aguacate cv Hass en los departamentos de Antioquia, Caldas, Risaralda y Quindío. Corporación Colombiana de investigación CORPOICA]]></source>
<year></year>
<publisher-loc><![CDATA[Rionegro Antioquia ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Centro de investigación la selva]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B6">
<label>6</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Perez]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Significant Avocado Diseases Caused by Fungi and Oomycetes]]></article-title>
<source><![CDATA[The European Journal of Plant Science and Biotechnology]]></source>
<year>2008</year>
<volume>2</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>1-24</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B7">
<label>7</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Dobrowolski]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Shearer]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Colquhoun]]></surname>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[O&#8217;Brien]]></surname>
<given-names><![CDATA[P]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hardy]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Selection for decreased sensitivity to phosphite in Phytophthora cinnamomi with prolonged use of fungicide]]></article-title>
<source><![CDATA[Plant Pathology]]></source>
<year>2008</year>
<volume>57</volume>
<page-range>928-936</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B8">
<label>8</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Etebu]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Osborn]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[A Review of Indicators of Healthy Agricultural Soils with Pea Footrot Disease Suppression Potentials]]></article-title>
<source><![CDATA[Sustainable Agriculture Research]]></source>
<year>2012</year>
<volume>1</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>10-35</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B9">
<label>9</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Jena]]></surname>
<given-names><![CDATA[N]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Pseudomonas and Trichoderma: The most effective bio-control agents against damping off pathogens of vegetable crops]]></article-title>
<source><![CDATA[Asian Journal of Microbiology, Biotechnology and Environmental Sciences]]></source>
<year>2012</year>
<volume>14</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>295-298</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B10">
<label>10</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Yang]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Crowley]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Menge]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[16S rDNAengerprinting of rhizosphere bacterial communities associated with healthy and Phytophthora infected avocado roots]]></article-title>
<source><![CDATA[Microbiology Ecology]]></source>
<year>2001</year>
<volume>35</volume>
<page-range>129-136</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B11">
<label>11</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Costa]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Menge]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Casale]]></surname>
<given-names><![CDATA[W]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Biological control of Phytophthora root rot of avocado with microorganisms grown in organic mulches]]></article-title>
<source><![CDATA[Brazilian Journal of Microbiology]]></source>
<year>2000</year>
<volume>31</volume>
<page-range>239-246</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B12">
<label>12</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Chambers]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Scott]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[In vitro antagonism of Phytophthora cinnamomi and P. citricola by isolates of Trichoderma sp. and Gliocladium virens]]></article-title>
<source><![CDATA[Journal of Phytopathology]]></source>
<year>1995</year>
<volume>143</volume>
<page-range>471-477</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B13">
<label>13</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Orozco]]></surname>
<given-names><![CDATA[I]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Vargas]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cabezas]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cuervo]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Colonización micorricica en plantas de aguacate (Persea americana L.)]]></article-title>
<source><![CDATA[Revista U.D.C.A Actualidad y Divulgación Científica]]></source>
<year>2010</year>
<volume>13</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>51-60</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B14">
<label>14</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[King]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ward]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Raney]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Two simple media for demonstration of pyocyanin and fluorescin]]></article-title>
<source><![CDATA[Journal Laboratory Clinical Medical]]></source>
<year>1954</year>
<volume>44</volume>
<page-range>301-307</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B15">
<label>15</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Simon]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ridge]]></surname>
<given-names><![CDATA[E. H]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[The use of ampicillin in a simplified selective Medium for the isolation of Fluorescent Pseudomonas]]></article-title>
<source><![CDATA[Journal Applied Bacterial]]></source>
<year>1974</year>
<volume>37</volume>
<page-range>459-460</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B16">
<label>16</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Patten]]></surname>
<given-names><![CDATA[C. L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Glick]]></surname>
<given-names><![CDATA[B. R]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Role of Pseudomonas putida indole acetic acid in development of host plant root system]]></article-title>
<source><![CDATA[Applied environment microbiology]]></source>
<year>2002</year>
<volume>48</volume>
<page-range>3795-3801</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B17">
<label>17</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Khalili]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sadravi]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Naeimi]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Khosravi]]></surname>
<given-names><![CDATA[V]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Biological control of rice brown spot with native isolates of three Trichoderma species]]></article-title>
<source><![CDATA[Brazilian Journal of Microbiology]]></source>
<year>2012</year>
<volume>43</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>297-305</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B18">
<label>18</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Porras]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Barrau]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Romero]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Effects of soil solarization and Trichoderma on strawberry production]]></article-title>
<source><![CDATA[Crop Protection]]></source>
<year>2007</year>
<volume>26</volume>
<page-range>782-787</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B19">
<label>19</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Porter]]></surname>
<given-names><![CDATA[W]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[The &#8220;Most Probable Number&#8221; method for ennumerating infective propagules of vesicular arbuscular micorrizal fungi in soil]]></article-title>
<source><![CDATA[Australian Journal of Soil Research]]></source>
<year>1979</year>
<volume>17</volume>
<page-range>515-519</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B20">
<label>20</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Madden]]></surname>
<given-names><![CDATA[L. V]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hughes]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[van den Bosch]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[The Study of Plant Disease Epidemics]]></source>
<year>2007</year>
<page-range>650</page-range><publisher-name><![CDATA[American Phytopatological Society]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B21">
<label>21</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Giovannetti]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Mosse]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[An evaluation of techniques for measuring vesicular-arbuscular mycorrhizal infection in roots]]></article-title>
<source><![CDATA[New Phytologist]]></source>
<year>1980</year>
<volume>84</volume>
<page-range>489-500</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B22">
<label>22</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Phillips]]></surname>
<given-names><![CDATA[J. M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hayman]]></surname>
<given-names><![CDATA[D. S]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Improves procedures for clearing roots and staining parasitic and vesicular arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assesment of infection]]></article-title>
<source><![CDATA[Transaction British Mycological Society]]></source>
<year>1970</year>
<volume>55</volume>
<page-range>158-161</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B23">
<label>23</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Brundrett]]></surname>
<given-names><![CDATA[M. C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Abbott]]></surname>
<given-names><![CDATA[L. K]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Mycorrhizal fungus propagules in the jarrah forest. II. Spatial variability in inoculum levels]]></article-title>
<source><![CDATA[New Phytologist]]></source>
<year>1995</year>
<volume>131</volume>
<page-range>461-469</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B24">
<label>24</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Kormanik]]></surname>
<given-names><![CDATA[P. P]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Mcgraw]]></surname>
<given-names><![CDATA[A. C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Shultz]]></surname>
<given-names><![CDATA[R. C]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Procedures and equipment for staining large number of plant roots for endomycorrhizal assay]]></article-title>
<source><![CDATA[Canadian Journal of Microbiology]]></source>
<year>1980</year>
<volume>26</volume>
<page-range>536-538</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B25">
<label>25</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Phillips]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Grant]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Weste]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Histological changes in the roots of an avocado cultivar, Duke 7, infected with Phytophthora cinnamomi]]></article-title>
<source><![CDATA[Phytopathology]]></source>
<year>1987</year>
<volume>77</volume>
<page-range>691-698</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B26">
<label>26</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Lugtenberg]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Kamilova]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Plant-Growth-Promoting Rhizobacteria]]></article-title>
<source><![CDATA[Annual Review of Microbiology]]></source>
<year>2009</year>
<volume>63</volume>
<page-range>541-556</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B27">
<label>27</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[García]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Romero]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Zeriouh]]></surname>
<given-names><![CDATA[H]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cazorla]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Torres]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Vicente]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Pérez]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Isolation and selection of plant growth-promoting rhizobacteria as inducers of systemic resistance in melon]]></article-title>
<source><![CDATA[Plant Soil]]></source>
<year>2012</year>
<volume>358</volume>
<page-range>201-212</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B28">
<label>28</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Jung]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Martínez]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[López]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Pozo]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Mycorrhiza-Induced Resistance and Priming of Plant Defenses]]></article-title>
<source><![CDATA[Journal Chemical Ecology]]></source>
<year>2012</year>
<volume>38</volume>
<page-range>651-664</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B29">
<label>29</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Davis]]></surname>
<given-names><![CDATA[R. M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Menge]]></surname>
<given-names><![CDATA[I. A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Zentmyer]]></surname>
<given-names><![CDATA[G. A]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Influence of vesicular arbuscular mycorrhizae on Phytophthora root rot of three crop plant]]></article-title>
<source><![CDATA[Phytopathology]]></source>
<year>1978</year>
<volume>68</volume>
<page-range>1614-161</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B30">
<label>30</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Besoain]]></surname>
<given-names><![CDATA[X]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Arenas]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Salgado]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Latorre]]></surname>
<given-names><![CDATA[B. A]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto del Periodo de Inundación en el Desarrollo de la Tristeza del Palto (Persea americana), Causada por Phytophthora cinnamomi]]></article-title>
<source><![CDATA[Ciencia e Investigación Agraria]]></source>
<year>2005</year>
<volume>32</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>97-103</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B31">
<label>31</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Parniske]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Arbuscular mycorrhiza: the mother of plant root endosymbioses]]></article-title>
<source><![CDATA[Nature Reviews Microbiology]]></source>
<year>2008</year>
<volume>6</volume>
<page-range>763-775</page-range></nlm-citation>
</ref>
</ref-list>
</back>
</article>
