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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evaluación in vitro del efecto de fosfolípidos sobre la germinación de semillas de tomate (Lycopersicon esculentum Mill)]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Centro Nacional de Sanidad Agropecuaria (CENSA)  ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The effect of a mixture of natural phospholipids applied as substrate on filter paper on in vitro germination of tomato seeds of three varieties (Amalia, Campbell 28 and Vita) was evaluated. In all cases, an inducing effect on the radicular growth of seedlings derived from newly germinated seeds, given by lengths of radicles significantly higher in treated groups compared to controls were showed. Althought hypocotyles maxims longitudes were higher in this group with respect to control, no statistical difference in this growth indicator were evidenced. There was not homogeneous behavior in terms of percentages of germination. These results demonstrate the potential use of these compounds as inducers of radicles growth plant and are the first obtained in Cuba on the exogenous application of phospholipids as roots bio-stimulants, opening a new way to study the biological roles of these biomolecules and its exogenous application in economic and social impact crops]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>COMUNICACI&Oacute;N    CORTA</strong></font></p>     <p align="right">&nbsp;</p>     <p align="left"><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>    Evaluaci&oacute;n <em>in vitro</em> del efecto de fosfol&iacute;pidos sobre    la germinaci&oacute;n de semillas de tomate (<em>Lycopersicon esculentum</em>    Mill)</strong></font></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="left"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong><em>In    Vitro</em> evaluation of phospholipids effect on germination of tomato seeds    (<em>Lycopersicon esculentum</em> Mill)</strong></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Dra.C.    Mar&iacute;a del C. Travieso, Dra.C. Oriela Pino, Ms.C. Ya&iacute;ma S&aacute;nchez,    Miriam Rojas, Dra.C. Belkis Peteira </strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Centro Nacional    de Sanidad Agropecuaria (CENSA) Apartado 10, San Jos&eacute; de las Lajas; Mayabeque,    Cuba.     <br>   </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p> <hr>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>RESUMEN</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se eval&uacute;o    el efecto de una mezcla de fosfol&iacute;pidos de origen natural, aplicados    como sustrato en papel de filtro, sobre la germinaci&oacute;n <em>in vitro</em>    de semillas de tres cultivares de tomate (Amalia, Campbell 28 y Vita). En todos    los casos se evidenci&oacute; un efecto inductor sobre el crecimiento radicular    de las pl&aacute;ntulas de las semillas reci&eacute;n germinadas, dados por    longitudes de rad&iacute;culas significativamente superiores en los grupos tratados    con bajas concentraciones con respecto a los controles. Aunque se observaron    longitudes m&aacute;ximas de hipocotilos superiores en este grupo con respecto    al control, no existieron diferencias estad&iacute;sticamente significativas    en este indicador del crecimiento. En cuanto a los porcentajes de germinaci&oacute;n    no hubo un comportamiento homog&eacute;neo. Los resultados demuestran las potencialidades    del uso de estos compuestos como inductores del crecimiento radicular en plantas    y constituyen los primeros obtenidos en Cuba sobre la aplicaci&oacute;n ex&oacute;gena    de fosfol&iacute;pidos como bioestimulantes de ra&iacute;ces; abriendo un nuevo    camino para el estudio de las funciones biol&oacute;gicas de estas biomol&eacute;culas,    as&iacute; como de su aplicaci&oacute;n ex&oacute;gena en cultivos de impacto    econ&oacute;mico y social.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Palabras    clave:</strong> crecimiento, germinaci&oacute;n, hipocotilos, plantas.</font></p> <hr>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>ABSTRACT</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">The effect of a    mixture of natural phospholipids applied as substrate on filter paper on <em>in    vitro</em> germination of tomato seeds of three varieties (Amalia, Campbell    28 and Vita) was evaluated. In all cases, an inducing effect on the radicular    growth of seedlings derived from newly germinated seeds, given by lengths of    radicles significantly higher in treated groups compared to controls were showed.    Althought hypocotyles maxims longitudes were higher in this group with respect    to control, no statistical difference in this growth indicator were evidenced.    There was not homogeneous behavior in terms of percentages of germination. These    results demonstrate the potential use of these compounds as inducers of radicles    growth plant and are the first obtained in Cuba on the exogenous application    of phospholipids as roots bio-stimulants, opening a new way to study the biological    roles of these biomolecules and its exogenous application in economic and social    impact crops.</font></p>     <p> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Key words:</strong>    growth, germination, hypocotyle, plants.</font></p> <hr>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>INTRODUCCI&Oacute;N</strong></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> En Cuba, el cultivo    del tomate constituye una prioridad del sector agr&iacute;cola, por constituir    una de las hortalizas de mayor consumo por la poblaci&oacute;n y una importante    fuente de materia prima para la industria como rengl&oacute;n exportable (1).    Desde hace algunos a&ntilde;os, se vienen introduciendo en este cultivo, el    uso de biofertilizantes y bioestimulantes del crecimiento vegetal, resaltando    con buenos resultados los brasinoesteroides y sus an&aacute;logos (2), el uso    de bacterias rizosf&eacute;ricas del g&eacute;nero <em>Azotobacter</em> (3),    el humus l&iacute;quido (4), entre otros. Sin embargo, la disponibilidad de    estos productos no cubre toda la demanda actual de los productores. Por esta    raz&oacute;n, la b&uacute;squeda de productos bioactivos que favorezcan la obtenci&oacute;n    de los incrementos productivos requeridos, constituye una prioridad en la investigaci&oacute;n    en este sector. Por otra parte, investigaciones recientes apuntan al estudio    de los fosfol&iacute;pidos y lisofosfol&iacute;pidos como una nueva clase de    reguladores del crecimiento en plantas, debido a las evidencias cient&iacute;ficas    que muestran que estos compuestos y las enzimas que participan en su catabolismo    (fosfolipasas), juegan un importante papel en el crecimiento y desarrollo de    las plantas y en la respuesta de estas a los diferentes tipos de estr&eacute;s    (bi&oacute;tico y abi&oacute;tico) a los que est&aacute;n sometidas, resalt&aacute;ndose    que las fosfolipasas A, C y D, algunos lisofosfol&iacute;pidos y el &aacute;cido    fosfat&iacute;dico, son componentes clave de las rutas de se&ntilde;alizaci&oacute;n    de l&iacute;pidos en las c&eacute;lulas vegetales que determinan el destino    celular (5). Desde hace algunos a&ntilde;os, a nivel internacional, han tomado    auge investigaciones b&aacute;sicas, para el esclarecimiento de las funciones    biol&oacute;gicas de estos compuestos en las c&eacute;lulas vegetales, as&iacute;    como su implicaci&oacute;n en el desarrollo y crecimiento de las plantas (6),    e investigaciones aplicadas relacionadas con su uso para mejorar el rendimiento    y calidad de las producciones agr&iacute;colas (7, 8, 9, 10). No obstante estas    evidencias, existe poca informaci&oacute;n disponible sobre el efecto de fosfol&iacute;pidos    aplicados ex&oacute;genamente sobre la germinaci&oacute;n, el crecimiento y    el desarrollo de las plantas (5), por lo que el objetivo del presente trabajo    fue evaluar el efecto de fosfol&iacute;pidos, aplicados ex&oacute;genamente,    sobre la germinaci&oacute;n de semillas de tomate.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong> MATERIALES    Y M&Eacute;TODOS </strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Se emplearon semillas    de tomate de tres cultivares (Amalia, Campbell 28 y Vita) provenientes del Instituto    Nacional de Ciencias Agr&iacute;colas (INCA). Se evaluaron suspensiones acuosas    de mezclas de fosfol&iacute;pidos purificados de fuente natural con una composici&oacute;n    mayoritaria de fosfatidilcolina y fosfatidiletanolamina, y presencia de otros    fosfol&iacute;pidos como esfingomielina, fosfatidilserina, fosfatidilinositol,    fosfatidilglicerol y lisofosfatidilcolina, caracterizados previamente por cromatograf&iacute;a    de placa delgada (11).     <br>       <br>   El dise&ntilde;o experimental consisti&oacute; en la evaluaci&oacute;n de la    germinaci&oacute;n <em>in vitro</em> sobre placas Petri a un grupo control y    tres grupos tratados (tres r&eacute;plicas por grupo). Se realiz&oacute; la    siembra de 30 semillas por placa empleando papel de filtro como sustrato humectado    con 5 mL de agua (grupo control) o con suspensiones de fosfol&iacute;pidos a    concentraciones de 0,1; 1 y 10 mg mL<sup>-1</sup> (grupos tratados). Se realiz&oacute;    observaci&oacute;n diaria durante los siete d&iacute;as de duraci&oacute;n de    la prueba para la determinaci&oacute;n del n&uacute;mero de semillas germinadas,    tomando como indicador de germinaci&oacute;n cuando la longitud de la rad&iacute;cula    sobrepas&oacute; los 2 mm de longitud. Trascurrido este tiempo se realiz&oacute;    medici&oacute;n directa de las longitudes de las rad&iacute;culas e hipocotilos    de cada semilla germinada para cada uno de los grupos, as&iacute; como conteo    de n&uacute;meros de hojas verdaderas por pl&aacute;ntula. Se realiz&oacute;    el c&aacute;lculo de los porcentajes de germinaci&oacute;n (G) a los siete d&iacute;as    (12). Los datos experimentales obtenidos se procesaron estad&iacute;sticamente    mediante un an&aacute;lisis de varianza de clasificaci&oacute;n simple, y las    medias se compararon mediante la prueba de comparaci&oacute;n de rangos m&uacute;ltiples    de Duncan, a una probabilidad de error al 5 % (p&lt;0,05), usando el paquete    estad&iacute;stico SAS 9.0. </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <strong>RESULTADOS    Y DISCUSI&Oacute;N</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Los resultados    (<a href="/img/revistas/ctr/v36n2/t0120215.gif">Tablas I</a>, <a href="/img/revistas/ctr/v36n2/t0220215.gif">II</a>    y <a href="/img/revistas/ctr/v36n2/t0320215.gif">III</a>) demostraron que    la mezcla evaluada no tuvo un efecto significativo sobre la germinaci&oacute;n    en los grupos tratados con bajas concentraciones con respecto a los controles,    excepto en el cultivar Amalia para una concentraci&oacute;n de 1 mg mL<sup>-1</sup>.    Sin embargo, los grupos tratados con altas concentraciones mostraron inhibici&oacute;n    del proceso germinativo que difirieron estad&iacute;sticamente de los controles,    mostrando una relaci&oacute;n inversamente proporcional entre los porcentajes    de germinaci&oacute;n (G) y la concentraci&oacute;n de fosfol&iacute;pidos.    Estos resultados apoyan la relaci&oacute;n declarada por algunos autores, entre    el metabolismo de los fosfol&iacute;pidos y el mecanismo de acci&oacute;n de    las fitohormonas (5, 13), influyendo en procesos fisiol&oacute;gicos de las    plantas a bajas concentraciones (14).     
<br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Por otra parte, la mezcla evaluada tiene entre sus componentes mayoritarios    la fosfatidilcolina y la fosfatidiletanolamina que constituyen, a su vez, los    fosfol&iacute;pidos fundamentales en las membranas de plantas, a partir de los    cuales se forma el &aacute;cido fosfat&iacute;dico, que constituye el principal    producto de degradaci&oacute;n enzim&aacute;tica de estas clases de fosfatidilfosfol&iacute;pidos.    Se ha demostrado que estos compuestos juegan un papel fundamental en la se&ntilde;alizaci&oacute;n    del &aacute;cido absc&iacute;sico durante el proceso de germinaci&oacute;n de    las semillas (15), lo que corrobora la estrecha relaci&oacute;n, apuntada anteriormente,    entre el metabolismo y la se&ntilde;alizaci&oacute;n de estos compuestos y el    mecanismo de acci&oacute;n hormonal en plantas (5). Aunque en los &uacute;ltimos    a&ntilde;os ha existido un avance notable en el conocimiento de las funciones    biol&oacute;gicas de los fosfol&iacute;pidos en las c&eacute;lulas vegetales,    en la se&ntilde;alizaci&oacute;n de estos en plantas y la relaci&oacute;n con    los procesos de desarrollo y crecimiento (6, 13, 16), a&uacute;n no est&aacute;n    completamente dilucidados los mecanismos fisiol&oacute;gicos y todos los roles    biol&oacute;gicos de cada una de las diferentes clases de fosfol&iacute;pidos    en este tipo de c&eacute;lula. Menos a&uacute;n, sobre la ventaja del uso ex&oacute;geno    de estos importantes compuestos, que aunque promisorio su estudio, como apuntara    Cowan, est&aacute; a&uacute;n en sus inicios (5).     <br>       <br>   Estos resultados corroboran otros informados en la literatura que demostraron    la relaci&oacute;n que existe entre los niveles de fosfol&iacute;pidos de las    membranas de las semillas de tomate, con la calidad y viabilidad de estas, sin    influir directamente en la velocidad de germinaci&oacute;n, inform&aacute;ndose,    incluso, p&eacute;rdidas de viabilidad relacionadas con la disminuci&oacute;n    de los niveles de fosfatidilcolina, que constituye la clase de fosfol&iacute;pidos    mayoritaria en este tipo de semillas (17) y en la mezcla evaluada. Por otra    parte, los fosfol&iacute;pidos en los sistemas vivos (semillas viables), se    convierten en fuentes de f&oacute;sforo org&aacute;nico, por la acci&oacute;n    de las fosfolipasas C y D, con implicaci&oacute;n directa en todas las fases    de desarrollo y especialmente en la fase inicial de germinaci&oacute;n de las    semillas y formaci&oacute;n de las pl&aacute;ntulas (18, 19, 20).    <br>       <br>   Los resultados de las longitudes de la rad&iacute;cula (LR) como indicador del    crecimiento de las pl&aacute;ntulas reci&eacute;n germinadas mostraron, en todos    los cultivares, un aumento estad&iacute;sticamente significativo en los grupos    tratados a bajas concentraciones, con respecto a los controles (excepto en el    cultivar Amalia para una concentraci&oacute;n de 1 mg mL<sup>-1</sup>), mientras    que a la mayor concentraci&oacute;n evaluada no se evidenci&oacute; afectaci&oacute;n    de este indicador del crecimiento con respecto a los controles. Otros autores    han demostrado la implicaci&oacute;n de la fosfatidilcolina con el crecimiento    de las ra&iacute;ces, confirmando como una mutaci&oacute;n del gen <em>XIPOTL1</em>    que codifica para la S-adenosil-L-metionina:fosfoetanolamina N-metiltransferasa    que constituye una enzima cr&iacute;tica en la bios&iacute;ntesis de la fosfatidilcolina,    resulta en la afectaci&oacute;n del crecimiento de las ra&iacute;ces primarias    y de las c&eacute;lulas epid&eacute;rmicas, debido a muerte celular inducida    por disminuci&oacute;n del contenido de fosfatidilcolina (16, 21). Por otra    parte, la mezcla evaluada contiene fosfol&iacute;pidos que constituyen sustratos    de fosfolipasas, espec&iacute;ficamente de la fosfolipasa A2 cuya funci&oacute;n    fundamental ha estado asociada a la regulaci&oacute;n de la liberaci&oacute;n    del &aacute;cido linoleico para la bios&iacute;ntesis del &aacute;cido jasm&oacute;nico,    y su implicaci&oacute;n en los procesos de germinaci&oacute;n, crecimiento de    las pl&aacute;ntulas, crecimiento mediado por auxina tales como la expansi&oacute;n    celular y la respuesta a estr&eacute;s (5), lo que corrobora las potencialidades    de estos compuestos fosfolip&iacute;dicos como inductores del crecimiento radicular    de las pl&aacute;ntulas (16). Sin embargo, no se observaron diferencias en las    longitudes de los hipocotilos (LH) ni en la presencia de hojas verdaderas en    este nivel de concentraci&oacute;n con respecto al control.     <br>       <br>   Otro resultado interesante lo constituye la demostraci&oacute;n de que altas    concentraciones de fosfol&iacute;pidos (10 mg mL<sup>-1</sup>) provocaron un    efecto inhibitorio sobre la germinaci&oacute;n, y un menor crecimiento de las    pl&aacute;ntulas, dado por valores de LH estad&iacute;sticamente inferiores    con respecto al resto de los grupos tratados y a los controles, as&iacute; como    la ausencia de hojas verdaderas (<a href="/img/revistas/ctr/v36n2/f0120215.gif">figura</a>).    </font></p>     
<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Adem&aacute;s de    estos fosfatidilfosfol&iacute;pidos, que constituyen sustratos de familias de    enzimas fosfolipasas (A, C, D) con implicaci&oacute;n directa en el destino    celular y en los procesos de desarrollo y crecimiento (6), en la mezcla evaluada    est&aacute;n presentes otros componentes fosfolip&iacute;dicos interconvertibles    en otros precursores y segundos mensajeros de gran importancia en los procesos    germinativos, por lo que constituye un reto en nuestras investigaciones dilucidar    el efecto individual y el mecanismo de acci&oacute;n de cada uno de los fosfol&iacute;pidos,    el sinergismo o antagonismo de la mezcla evaluada, as&iacute; como el efecto    inhibitorio sobre la germinaci&oacute;n y el crecimiento evidenciado a altos    niveles de fosfol&iacute;pidos.     <br>       <br>   Estos resultados, aunque constituyen evidencias preliminares del efecto bioestimulante    de la mezcla de fosfol&iacute;pidos aplicada ex&oacute;genamente, demuestran    la importancia del conocimiento de los niveles requeridos para lograr el efecto    &oacute;ptimo y la importancia de su evaluaci&oacute;n en los diferentes estadios    del desarrollo de las plantas.     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   De modo general, se han realizado avances recientes en el conocimiento del metabolismo    y funciones de los fosfol&iacute;pidos end&oacute;genos y sus catabolitos, que    muestran que fosfol&iacute;pidos y fosfolipasas juegan un papel importante en    el desarrollo normal de la planta y en su respuesta a estr&eacute;s abi&oacute;tico    y bi&oacute;tico. En comparaci&oacute;n, existe poca informaci&oacute;n disponible    sobre el uso ex&oacute;geno de fosfol&iacute;pidos. Nuevas evidencias sugieren    que estos compuestos aplicados ex&oacute;genamente ejercen profundos efectos    sobre el crecimiento de la planta y nuestros resultados aportan elementos sobre    las posibilidades de uso de estas sustancias como reguladores del crecimiento    vegetal. </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <strong>CONCLUSIONES</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Con estos resultados    se puede concluir que la mezcla de fosfol&iacute;pidos evaluada posee un efecto    inductor sobre el crecimiento radicular de las pl&aacute;ntulas de las semillas    reci&eacute;n germinadas, cuando esta se aplica como sustrato a bajas concentraciones.    De igual manera no existi&oacute; efecto significativo sobre el porcentaje de    germinaci&oacute;n y no hubo un comportamiento homog&eacute;neo en este indicador    en los cultivares estudiados. Los resultados demuestran las potencialidades    del uso de estos compuestos como inductores del crecimiento en plantas.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <strong>BIBLIOGRAF&Iacute;A</strong></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> 1. Companioni,    N.; Delgado, R. y Gonz&aacute;lez, M. D&eacute;cimo Seminario Nacional de la    Agricultura Urbana y Primero de la Suburbana. Agricultura Org&aacute;nica. 2009.    <br>       <!-- ref --><br>   2. Gonz&aacute;lez, F.; Casanova, A.; Hern&aacute;ndez, A.; M&eacute;ndez, M.;    Gonz&aacute;lez, R. y Delgado, A. Efecto de la aplicaci&oacute;n de Biobras-16    en la producci&oacute;n de pl&aacute;ntulas injertadas de tomate (<em>Lycopersicon    esculentum</em> Mill). <em>Temas de Ciencia y Tecnolog&iacute;a</em>, 2006,    vol.10, no. 30, pp. 53-63. ISSN: 2007-0977.    <br>       <!-- ref --><br>   3. Acosta, M. Efecto de la aplicaci&oacute;n del <em>Azotobacter chroococcum</em>    sobre el crecimiento y la productividad del tomate. En: IV Simposio Internacional    de Bot&aacute;nica. La Habana, Cuba. 1993. 222 pp.    <br>       <br>   4. Arteaga, M.; Garc&eacute;s, N.; Guridi, F.; Pino, J. A.; L&oacute;pez, A.;    Men&eacute;ndez, J. L. y Cartaya, O. Evaluaci&oacute;n de lasaplicaqciones foliares    de humus l&iacute;quido en el cultivo del tomate (<em>Lycopersicon esculentum</em>    Mill) var. Amalia en condiciones de producci&oacute;n. <em>Cultivos Tropicales</em>,    2006, vol. 27, no. 3, pp. 95-101. ISSN: 1819-4087.    <br>       <!-- ref --><br>   5. Cowan, A. K. Phospholipids as plant growth regulators. <em>Plant Growth Regulation</em>,    2006, no. 48, pp. 97-109. ISSN: 1573-5087.    <br>       <!-- ref --><br>   6. Munnik, T.; Irvine, R. F. y Musgrave, A. Phospholipid signalling in plants.<em>    Biochimica et Biophysica Acta</em>, 1998, no. 1389, pp. 222-272. ISSN: 0006-3002.    <br>       <!-- ref --><br>   7. Kopp, H.; Weiss, A. y Schlue, R. Use of phospholipids to improve plant growth.        World patent WO012685. 1996.     <br>       <!-- ref --><br>   8. Hong, J. H.; Hwang, S. K.; Chung, G. H. y Cowan, A. K. Influence of lysophosphatidylethanolamine    application on fruit quality of Thompson Seedless grapes. <em>Journal of Applied    Horticulture</em>, 2007, vol. 9, pp. 112-4. ISSN: 0972-1045.    <br>       <!-- ref --><br>   9. Hong, J. H.; Chung, G. H. y Cowan, A. K. Delayed leaf senescence by exogenous    lyso phosphatidylethanolamine: Towards a mechanism of action. <em>Plant Physiol    and Biochem</em>, 2009, vol. 47, pp. 526- 534. ISSN: 0981-9428.    <br>       <!-- ref --><br>   10. Cowan, A. K. Plant growth promotion by 18:0-lyso-phosphatidylethanolamine    involves senescence delay. <em>Plant Signaling and Behavior</em>, 2009, vol.    4, no. 4, pp. 324-327. ISSN: 1559-2324.    <br>       <!-- ref --><br>   11. Travieso, M. C. y Betancourt, A. Validaci&oacute;n de un m&eacute;todo de    separaci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n de fosfol&iacute;pidos por Cromatograf&iacute;a    de Capa Delgada. <em>Revista Cubana de Qu&iacute;mica</em>, 2001; vol. 13, no.    2, 83 pp. ISSN: 2224-5421.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br>   12. Vadillo, G.; Suni, M. y Cano, A. Viabilidad y germinaci&oacute;n de semillas    de <em>Puya raimondii</em> Har&aacute;s. <em>Revista Peruana de Biolog&iacute;a</em>,    2004, vol. 11, no. 1, pp. 71-78. ISSN: 1727-9933.    <br>       <!-- ref --><br>   13. Xue, H. W.; Chen, X. y Li, G. Involvement of phospholipid signaling in plant    growth and hormone effects. <em>Current Opinion in Plant Biology</em>, 2007,    vol. 10, pp. 483-489. ISSN: 1369-5266.    <br>       <!-- ref --><br>   14. Davies, P. J. The Plant Hormones: Their Nature, Occurrence, and Functions.    <em>Plant Hormones</em>. Ed. 3. 2010; Part A: pp. 1-15.    <br>       <!-- ref --><br>   15. Katagiri, T.; Ishiyama, K.; Kato, T.; Tabata, S.; Kobayashi, M. y Shinozaki,    K. An important role of phosphatidic acid in ABA signalling during germination    in Arabidopsis thaliana. <em>The Plant Journal</em>, 2005, vol. 43, pp. 107-117.    ISSN: 1365-313X.    <br>       <!-- ref --><br>   16. Xue, H. W.; Chen, X. y Mei, Y. Function and regulation of phospholipid signalling    in plants. <em>Biochemical Journal</em>, 2009, vol. 421, no. 2, pp. 145-156.    ISSN: 1470-8728.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br>   17. Adele, F. y Coolbear, P. Changes in the membrane phospholipid composition    of tomato seeds accompanying loss of germination capacity caused by controlled    deteriotion. <em>The Journal of Experimental Botany</em>, 1984, vol. 35, pp.    1764-1770. ISSN: 1460-2431.    <br>       <!-- ref --><br>   18. White, P. J. y Hammond, J. P. Phosphorous nutrition of terrestrial plants.    <em>Plant Ecophysiology</em>, 2008, vol. 7, pp. 51-81. ISSN: 1572-5561.    <br>       <!-- ref --><br>   19. Nakamura, Y.; Awai, K.; Masuda, T.; Yoshioka, Y.; Takamiya, K. I. y Ohta,    H. A novel phosphatidylcholine-hydrolyzing phospholipase C induced by phosphate    starvation in Arabidopsis. <em>The Journal of Biological Chemistry</em>, 2005,    vol. 280, pp. 7469-7476. ISSN: 1083-351X.    <br>       <!-- ref --><br>   20. Nakamura, Y.; Koizumi, R.; Shui, G.; Shimojima, M.; Wenk, M. R.; Ito, T.    y Ohta, H. Arabidopsis lipins mediate eukaryotic pathway of lipid metabolism    and cope critically with phosphate starvation. <em>Proceedings of the National    Academy of Sciences USA</em>, 2009, vol. 106, pp. 20978-20983. ISSN: 1091-6490.    <br>       <!-- ref --><br>   21. Cruz, R. A.; L&oacute;pez, B. J.; Ram&iacute;rez, P. G.; Zurita, S. A.;    S&aacute;nchez, C. L.; Ram&iacute;rez, C. E.; Gonz&aacute;lez, O. E. y Herrera,    E. L. The xipotl mutant of Arabidopsis reveals a critical role for phospholipid    metabolism in root system development and epidermal cell integrity. <em>Plant    Cell</em>, 2004, vol. 16, pp. 2020-2034. ISSN: 1532-298X.    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Recibido: 26 de    abril de 2014    <br>   Aceptado: 8 de diciembre de 2014</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><em>Dra.C. Mar&iacute;a    del C. Travieso</em>, Centro Nacional de Sanidad Agropecuaria (CENSA) Apartado    10, San Jos&eacute; de las Lajas; Mayabeque, Cuba. Email: <a href="mailto:oriela@censa.edu.cu">oriela@censa.edu.cu</a></font></p>      ]]></body><back>
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