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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Caracterización de rizobios aislados de nódulos de frijol caupí, en suelos salinos de Cuba]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In soils of Cauto River Valley (Granma, Cuba) affected by salts, six new bacteria isolated from nodules of Vigna unguiculata (L.) Walp were obtained. The six isolates were subjected to differents salt levels (0,17- 6,6 dS m-1 of NaCl), pH levels (4,5 - 9) and temperatures (28 - 45 ºC) with the objective to determine their tolerance to these abiotic stresses. Variation within the 16S rRNA gene, was examined by amplified 16S rDNA restriction analysis (ARDRA) and direct sequencing to show genetic diversity. Three isolates (VIBA-1, VIBA-2 and VIBA-6) achieved similar results as the control with 2,6 and 3,4 dS m-1 of NaCl. All of the isolates could grow at pH 7 and 9 and got growth until 40 ºC, only two of them (VIBA-4 and VIBA-5) grew at 45 ºC. Phylogeny analysis confirmed the close relationship of one isolate with Bradyrhizobium liaoningense (VIBA-1) and four isolates with Bradyrhizobium yuanmingense (VIBA-2, VIBA-3, VIBA-5 and VIBA-6) and one to Rhizobium radiobacter (formely Agrobacterium tumefaciens, VIBA-4). All of them, with the exception of VIBA-4, were able to nodulate in the plants when they were inoculated. The survival of these strains in the different abiotic stress (salinity, alkalinity and temperature), evidenced their ability to grow under this specific environment. The findings indicated that under Cuban saline soils there are Bradyrhizobium strains able to establish symbiosis with cowpea, but the diversity is still low, being characterized only two different species able to nodulate]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p class="MsoNormal" align="right" style="text-align:right;"><strong><span style="line-height:107%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">ART&Iacute;CULO  ORIGINAL</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="line-height:107%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:14.0pt; ">Caracterizaci&oacute;n  de rizobios aislados de n&oacute;dulos <span style="letter-spacing:-.2pt; ">de frijol  caup&iacute;, en suelos salinos de Cuba</span></span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="line-height:107%; letter-spacing:-.2pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:14.0pt; ">&nbsp;</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="line-height:107%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">Characterization of rhizobia  isolated from cowpea nodules, in Cuban saline soils</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">&nbsp;</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">&nbsp;</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Ernesto G&oacute;mez-Padilla,<sup>I</sup> Beatriz Ruiz-D&iacute;ez,<sup>II</sup> Susana Fajardo,<sup>II</sup> <span style="letter-spacing:-.8pt; ">Bettina Eichler-Loebermann,<sup>III</sup> Roeland  Samson,<sup>IV</sup> Patrick Van-Damme,<sup>V</sup></span> Ra&uacute;l L&oacute;pez-S&aacute;nchez,<sup>I</sup> Mercedes Fern&aacute;ndez-Pascual<sup>II</sup></span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><sup><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">I</span></sup><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Centro  de Estudio de <span style="text-transform:uppercase; ">b</span>iotecnolog&iacute;a  Vegetal, Facultad de Ciencias Agr&iacute;colas, Universidad de Granma, Cuba.<br />   <br />   <sup>II</sup>Instituto de Ciencias Agr&iacute;colas, ICA-CSIC, Madrid, Spain.<br />   <br />   <sup>III</sup>Universidad de Rostock, Facultad de Ciencias Agr&iacute;colas y  Ambientales, Rostock, Alemania.<br />   <br />   <sup>IV</sup>Universidad de Antwerp, Facultad de Ciencias de la Ingenier&iacute;a de  Biociences. Belgium.<br />   <br />   <sup>V</sup>Universidad de Ghent, Laboratorio de Agronom&iacute;a Tropical y  Subtropical y Etnobot&aacute;nica, Belgium.</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p class="MsoNormal" style="text-align:justify;">&nbsp;</p> <hr />     <p><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">RESUMEN</span></strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> </span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">A partir de suelos del  Valle del R&iacute;o Cauto (Granma, Cuba) afectados por sales, se aislaron seis  bacterias procedentes de n&oacute;dulos de <em>Vigna unguiculata</em> (L.) Walp. Los  aislados se sometieron a diferentes niveles de sales (0,17 - 6,6 dS m<sup>-1</sup> de NaCl), pH (4,5 - 9) y temperatura (28 - 45 <sup>o</sup>C), con el objetivo  de determinar su tolerancia a estos tipos de estr&eacute;s. La variaci&oacute;n en el gen 16S  rRNA, se examin&oacute; a trav&eacute;s del an&aacute;lisis de restricci&oacute;n de amplificados 16S rDNA  (ARDRA) y secuenciaci&oacute;n directa. Tres aislados, VIBA-1, VIBA-2 y VIBA-6,  mostraron resultados similares al control (0,17 dS m<sup>-1</sup>) con 2,6 y  3,4 dS m<sup>-1</sup> de NaCl. Todas las cepas crecieron a pH 7 y 9 hasta 40 <sup>o</sup>C,  solo dos de ellas (VIBA-4 y VIBA-5) crecieron a 45 <sup>o</sup>C.&nbsp; El an&aacute;lisis de filogenia, confirm&oacute; la  estrecha relaci&oacute;n de la cepa <em>Bradyrhizobium liaoningense</em> con el  aislamiento VIBA-1, y los aislamientos VIBA-2, VIBA-3, VIBA-5 y VIBA-6, con la  cepa <em>Bradyrhizobium yuanmingense</em>, y uno de ellos a <em>Rhizobium  radiobacter</em> (formalmente <em>Agrobacterium tumefaciens</em>, VIBA-4). Todos  los aislados con excepci&oacute;n de VIBA-4, formaron n&oacute;dulos en las plantas cuando  fueron inoculadas. La sobrevivencia de estas cepas en condiciones de estr&eacute;s  (salinidad, alcalinidad y temperatura), evidencia su habilidad para crecer bajo  estas condiciones ambientales espec&iacute;ficas. Los resultados indicaron que, en un  entorno de suelos salinos de Cuba, existen cepas de <em>Bradyrhizobium</em> que  pueden establecer simbiosis con Caup&iacute;, pero la diversidad de estos  microorganismos es a&uacute;n escasa, debido a que s&oacute;lo dos especies lograron nodular  la leguminosa.</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Palabras clave</span></strong><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">:</span></strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> <em>Bradyrhizobium </em>sp, identificaci&oacute;n molecular, nodulaci&oacute;n, salinidad, tolerancia, <em>Vigna  unguiculata.</em></span></p> <hr />     <p><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">ABSTRACT</span></strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> </span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">In soils of Cauto River Valley (Granma, Cuba) affected  by salts, six new bacteria isolated from nodules of <em>Vigna unguiculata</em> (L.) Walp were obtained. The six isolates were subjected to differents salt  levels (0,17- 6,6 dS m<sup>-1</sup> of NaCl), pH levels (4,5 - 9) and  temperatures (28 - 45 <sup>o</sup>C) with the objective to determine their  tolerance to these abiotic stresses. Variation within the 16S rRNA gene, was  examined by amplified 16S rDNA restriction analysis (ARDRA) and direct  sequencing to show genetic diversity. Three isolates (VIBA-1, VIBA-2 and  VIBA-6) achieved similar results as the control with 2,6 and 3,4 dS m<sup>-1</sup> of NaCl. All of the isolates could grow at pH 7 and 9 and got growth until 40 <sup>o</sup>C,  only two of them (VIBA-4 and VIBA-5) grew at 45 <sup>o</sup>C. Phylogeny  analysis confirmed the close relationship of one isolate with <em>Bradyrhizobium  liaoningense</em> (VIBA-1) and four isolates with <em>Bradyrhizobium yuanmingense</em> (VIBA-2, VIBA-3, VIBA-5 and VIBA-6) and one to <em>Rhizobium radiobacter</em> (formely <em>Agrobacterium tumefaciens</em>, VIBA-4). All of them, with the  exception of VIBA-4, were able to nodulate in the plants when they were  inoculated. The survival of these strains in the different abiotic stress  (salinity, alkalinity and temperature), evidenced their ability to grow under  this specific environment. The findings indicated that under Cuban saline soils  there are <em>Bradyrhizobium</em> strains able to establish symbiosis with  cowpea, but the diversity is still low, being characterized only two different  species able to nodulate.</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="line-height:107%; letter-spacing:-.3pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Key words</span></strong><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">:</span></strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> </span><em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Bradyrhizobium</span></em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> sp, molecular identification, nodulation, salinity, tolerance, <em>Vigna unguiculata.</em></span></p> <hr />     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">INTRODUCCI&Oacute;N</span></strong></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">La salinidad es uno de los  principales problemas en los ecosistemas agr&iacute;colas en el mundo; cerca del 50 %  del planeta est&aacute; afectado por este flagelo (1,2). Cuba no es la excepci&oacute;n, ya  que se han informado alrededor de un mill&oacute;n de hect&aacute;reas de suelos salinos. El  valle del r&iacute;o Cauto, ubicado en la regi&oacute;n oriental del pa&iacute;s, tiene 228 mil  hect&aacute;reas afectadas por la salinidad; entre ellos, el 28 % est&aacute;n clasificados  como fuertemente salinos y el 11 % muy fuertemente salinos (3). Se han  producido numerosos da&ntilde;os en el rendimiento de los cultivos, incluso algunas  &aacute;reas de cultivo han sido abandonadas, causadas por la p&eacute;rdida de capacidad de  las especies de plantas para crecer en estos ambientes salinos (3).<br />   <br />   Por otro lado, se sabe que la salinidad no solo perjudica fisiol&oacute;gica y  bioqu&iacute;micamente a las plantas. De hecho, las comunidades microbianas, entre  ellas las bacterias rizobios, disminuyen en n&uacute;mero, diversidad y actividad,  cuando los suelos dejan de cultivarse y cuando se han encontrado las  condiciones de estr&eacute;s ambiental, como salinidad del suelo, temperatura, pH,  metales pesados (4,5).<br />   <br />   En esta situaci&oacute;n, una opci&oacute;n natural y ecol&oacute;gica para disminuir el efecto  nocivo de las sales, y para mantener la producci&oacute;n bajo estr&eacute;s salino, puede  ser la selecci&oacute;n e introducci&oacute;n de plantas o microorganismos adaptados a estas  condiciones (6).<br />   <br />   En este sentido, el frijol caup&iacute; es una opci&oacute;n debido a que es reportada como especie  r&uacute;stica que puede ser encontrada en ambientes adversos y con tolerancia a la  sequ&iacute;a, alta temperatura, metales pesados y estr&eacute;s salino, pero tambi&eacute;n puede  contribuir con una cantidad apreciable de nitr&oacute;geno (150 kg N ha<sup>-1</sup>) de  fijaci&oacute;n simbi&oacute;tica al ecosistema (7,8). Sin embargo, el aislamiento de cepas  rizobiales nativas adaptadas a estreses abi&oacute;ticos espec&iacute;ficos y capaces de  establecer una simbiosis eficiente con el caup&iacute; es una pr&aacute;ctica obligatoria en  las &aacute;reas salinas de la provincia Granma (Valle del R&iacute;o Cauto) Cuba, ya que no  existen cepas comerciales para cubrir la inoculaci&oacute;n de <em>Vigna</em> para estos  suelos. Adem&aacute;s, la inoculaci&oacute;n de semillas de caup&iacute; y pl&aacute;ntulas con  bradyrhizobios nativos apropiados, puede garantizar la nodulaci&oacute;n de la ra&iacute;z y  el aumento de la producci&oacute;n de la planta (9).<br />   <br />   Este estudio se llev&oacute; a cabo con el objetivo de aislar bacterias rizobiales  nativas de suelos salinos, evaluar la tolerancia al estr&eacute;s abi&oacute;tico (soluci&oacute;n  salina, pH y alta temperatura), realizar la identificaci&oacute;n gen&eacute;tica y obtener  una colecci&oacute;n de bioinoculantes de caup&iacute; en suelos salinos del valle del r&iacute;o  Cauto en Cuba.</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">MATERIALES  Y M&Eacute;TODOS</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">AISLAMIENTO BACTERIANO</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Los aislados utilizados en  este estudio, se obtuvieron a partir de n&oacute;dulos de ra&iacute;ces de variedades de  Caup&iacute; [<em>Vigna unguiculata</em> (L.) Walp.], cultivadas en suelos salinos en  los municipios de Babiney (con 4,76 dS m<sup>-1</sup>) de conductividad  el&eacute;ctrica (CE) y Jiguan&iacute; (5,8 dS m<sup>-1</sup> EC), dos localidades del Valle  del R&iacute;o Cauto (Provincia de Granma, Cuba). Se utilizaron 12 cepas de referencia  de la colecci&oacute;n internacional como patr&oacute;n de control. Los aislados, los sitios  de origen y las cepas de referencia se describen en la <a href="#t1">Tabla I</a>. El aislamiento  de bacterias se realiz&oacute; a partir de n&oacute;dulos recuperados directamente de las  variedades de caup&iacute; establecidas en &aacute;reas experimentales. Los n&oacute;dulos se  desinfectaron superficialmente con etanol (95 % v/v) durante 30 s, luego se  sometieron a HgCl<sub>2</sub> 0,1 % (p/v) durante 45 s, y se lavaron con agua  destilada est&eacute;ril. Los n&oacute;dulos se cortaron y se transfiri&oacute; un asa llena de  c&eacute;lulas infectadas al medio s&oacute;lido de extracto de levadura (YEM) (10). Se  obtuvieron colonias individuales y se verific&oacute; su pureza mediante rayas  repetidas y examen microsc&oacute;pico. Los aislados se cultivaron rutinariamente a 28  &ordm;C en medio l&iacute;quido YEM (10). Las cepas de referencia de colecciones  internacionales se usaron como patr&oacute;n de control (<a href="/img/revistas/ctr/v38n4/t0205417.gif">Tabla </a></span><a href="/img/revistas/ctr/v38n4/t0105417.gif"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">II</span></a><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">).</span></p>     
<p class="MsoNormal" style="text-align:center;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "><a name="t1" id="t1"></a><br /> <img src="/img/revistas/ctr/v38n4/t0105417.gif" width="493" height="546" />  </span></p>     
<p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "><strong>CARACTERIZACI&Oacute;N  FENOT&Iacute;PICA<br />         <br />       </strong>Para evaluar su capacidad de tolerancia al estr&eacute;s abi&oacute;tico las cepas  VIBA-1, VIBA-2, VIBA-3, VIBA-4, VIBA-5 y VIBA-6 y las cepas de referencia CCBAU  10071 (<em>Bradyrhizobium</em> <em>yuanmingense</em>) se sometieron a sal, pH y  temperaturas extremas (11).<br />       <br />     ]]></body>
<body><![CDATA[  Se us&oacute; un cultivo est&aacute;ndar para llevar a cabo los experimentos (50 &mu;l de  cultivo en fase exponencial sobre 5 ml de cultivo final, diluci&oacute;n 1:100). Se  colocaron 5 ml de medio YEM l&iacute;quido est&eacute;ril en tubos de vidrio Vimex  esterilizados.<br />       <br />       Cada cepa se sembr&oacute; en condiciones est&eacute;riles y luego, se coloc&oacute; en una  incubadora a 28 <sup>o</sup>C y 100 rpm hasta alcanzar el crecimiento  exponencial.<br />       <br />       <strong>TOLERANCIA AL  ESTR&Eacute;S SALINO<br />       <br />       </strong>Cada aislamiento se someti&oacute; a 0,17; 2,6; 3,4; 4,2; 5,00; 5,8 y 6,6  dS m<sup>-1</sup> de NaCl respectivamente y luego se colocaron en tres tubos de  vidrio. El nivel de NaCl recomendado para los cultivos de <em>Rhizobium</em> (0,1  g L<sup>-1</sup> = 1,7 mM = 0,17 dS m<sup>-1</sup> se consider&oacute; como control  (10). El crecimiento microbiano de cada t<span style="letter-spacing:.2pt; ">ratamiento  se determin&oacute; a 120 h despu&eacute;s de sembrar los cultivos (fase estacionaria) a  trav&eacute;s de la densidad &oacute;ptica (medida de absorbancia a 680 nm) utilizando un  espectrofot&oacute;metro Spectronic 2000 (Bausch &amp; Lomb).<br />       <br />       </span><strong>TOLERANCIA  AL ESTR&Eacute;S DE pH<br />       <br />     ]]></body>
<body><![CDATA[  </strong>Los aislados se sometieron a tres tratamientos de medio YEM de  cultivo regulado a pH 4,5, 7 y 9. Se usaron &aacute;cido 2,2-dimetilsucc&iacute;nico (30 mM)  y clorhidrato de tris (50 mM) para obtener soluciones a pH 4,5 y pH 9, respectivamente.  Los pH se verificaron despu&eacute;s del tratamiento en autoclave y no cambiaron en  m&aacute;s de &plusmn; 0,1 unidades. Se sigui&oacute; el crecimiento microbiano de cada tratamiento  como en los ensayos de salinidad.<br />       <br />       <strong>TOLERANCIA AL  ESTR&Eacute;S DE TEMPERATURA<br />       <br />       </strong>Los aislados se cultivaron en placas de Petri en medio s&oacute;lido YEM  (10, y se sometieron a 28 (control), 37, 40, 45 <sup>o</sup>C, en los que se  observ&oacute; su crecimiento cada 24 horas durante 12 d&iacute;as (11).<br />       <br />       <strong>PRUEBA DE  NODULACI&Oacute;N<br />       <br />       </strong><span style="letter-spacing:-.1pt; ">Se llev&oacute; a cabo una prueba de  inoculaci&oacute;n para evaluar la capacidad de los aislados para formar n&oacute;dulos de  ra&iacute;ces (10). Las plantas de Caup&iacute; se inocularon con todas las cepas nativas, se  utiliz&oacute; un control sin inoculaci&oacute;n. Las plantas de semillero se cultivaron en  una c&aacute;mara de crecimiento bajo un fotoper&iacute;odo de 14 h de luz (23 &ordm;C)/10 h de  oscuridad (20 &ordm;C) durante un mes. Las plantas se regaron con agua destilada  esterilizada durante la primera semana despu&eacute;s de la siembra y con soluci&oacute;n  nutritiva sin nitr&oacute;geno el resto del tiempo.<br />       <br />     ]]></body>
<body><![CDATA[  </span><strong>CARACTERIZACI&Oacute;N  MOLECULAR<br />       <br />       Aislamiento del DNA gen&oacute;mico<br />       <br />       </strong>Se emple&oacute; una colecci&oacute;n de cepas de rizobios conocidas como referencia  (<a href="/img/revistas/ctr/v38n4/t0205417.gif">Tabla II</a>).<br />     
  <br />       Se us&oacute; un asa de cada aislado para inocular 20 ml        de caldo YEM. Despu&eacute;s de la incubaci&oacute;n (10), las c&eacute;lulas se recogieron, se  lavaron dos veces con soluci&oacute;n salina tamponada con fosfato (PBS) y se aisl&oacute; el  ADN usando el kit de aislamiento de ADN microbiano UltraClean TM (MOBIO). La  concentraci&oacute;n e integridad del ADN se analizaron mediante electroforesis con  geles de agarosa al 0,8 % y se compararon con cantidades conocidas de ADN del  fago lambda (12).<br />       <br />       <strong>AMPLIFICACI&Oacute;N POR PCR DE 16S ADNr<br />     ]]></body>
<body><![CDATA[  <br />       </strong>El gen 16S ADNr de todas las cepas se  amplific&oacute; por PCR. Los cebadores fD1 y rP2 se emplearon a una concentraci&oacute;n  final de 1 &mu;M y se sintetizaron por Genotek (Espa&ntilde;a). La amplificaci&oacute;n se  desarroll&oacute; utilizando un termociclador (Veriti 96 Well, Applied Biosystems)  (13).<br />       <br />       <strong>AN&Aacute;LISIS DE  RESTRICCI&Oacute;N (ARDRA)<br />       <br />       </strong><span style="letter-spacing:-.4pt; ">Las endonucleasas de restricci&oacute;n <em>Msp</em>I, <em>Hinf</em>I, <em>Dde</em>I y <em>Hha</em>I (New England Biolabs) se usaron en  reacciones de digesti&oacute;n separadas con ADNr 16S amplificado por PCR de todos los  aislados enumerados en la <a href="/img/revistas/ctr/v38n4/t0205417.gif">Tabla II</a>. Se digiri&oacute; una porci&oacute;n de 15 &mu;l de  reacciones de amplificaci&oacute;n de acuerdo </span>con  las recomendaciones del fabricante y los an&aacute;lisis de restricci&oacute;n del ADNr 16S  amplificado (ARDRA) (13).<br />     
  <br />       <strong>SECUENCIA  DE ADNr 16S<br />       <br />       </strong>Las secuencias de productos de  PCR se obtuvieron con un secuenciador ABI PRISM 3700 (Applied Biosystems)  usando los sistemas de ciclo Taq Dyedeoxi Terminator (Automatic Sequencing  Service SAAD, CIB, CSIC, Madrid). Se usaron 14 &mu;l de producto de PCR para  reacciones de secuenciaci&oacute;n y 1,4 &mu;l de los cebadores 1050R, 800R, 800F e IRF1  a 5 &mu;M (12). La secuencia de cada aislado se determin&oacute; mediante alineamientos  por pares utilizando el an&aacute;lisis Clustal W. Las secuencias de similitudes  fueron identificadas y analizadas por el programa BLASTN en el servicio de red  del GeneBank (http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi). Los valores de  porcentaje de similitud con respecto al gen 16S rRNA se calcularon mediante  alineaciones m&uacute;ltiples de Clustal W (http://www.npsa-pbil.ibcp.fr/) (13).<br />     ]]></body>
<body><![CDATA[  <br />       <strong>AN&Aacute;LISIS  FILOGEN&Eacute;TICO<br />       <br />       </strong>Los an&aacute;lisis filogen&eacute;ticos se  realizaron utilizando el programa MEGA versi&oacute;n 4 (14). El &aacute;rbol filogen&eacute;tico se  construy&oacute; utilizando el m&eacute;todo de uni&oacute;n de vecinos basado en el modelo de  distancia de dos par&aacute;metros de Kimura (15). Para evaluar el soporte relativo  para cada grupo taxon&oacute;mico, los valores de arranque (bootstrap) se calcularon a  partir de 1,000 an&aacute;lisis replicados.<br />       <br />       <strong>DISE&Ntilde;O  EXPERIMENTAL Y AN&Aacute;LISIS ESTAD&Iacute;STICO<br />       <br />     </strong>Los experimentos se organizaron en dise&ntilde;os completamente  aleatorizados y se repitieron al menos dos veces, con tres repeticiones cada  vez. Los datos de tolerancia al estr&eacute;s salino y a los experimentos de estr&eacute;s  por pH se analizaron mediante un an&aacute;lisis de varianza simple (p&lt;0,05). Las  medias de cada tratamiento se compararon usando la prueba de Tukey (16). Todos  los an&aacute;lisis estad&iacute;sticos se realizaron con <em>Statistica</em> para <em>Windows</em>,  versi&oacute;n 10 (17).</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">RESULTADOS</span></strong></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">CARACTERIZACI&Oacute;N FENOT&Iacute;PICA<br />   <br />   </span></strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Todos los aislados fueron Gram  negativos y se produjo una cantidad considerable</span><span style="line-height:107%; letter-spacing:-.4pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> de polisac&aacute;ridos en VIBA-2.    </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">El per&iacute;odo de crecimiento de las cepas fue diferente,  VIBA-1 </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">comenz&oacute; a crecer al quinto d&iacute;a despu&eacute;s de la siembra, y  por lo tanto tom&oacute; el per&iacute;odo de tiempo m&aacute;s </span><span style="line-height:107%; letter-spacing:-.6pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">largo.  El resto de las cepas mostraron un crecimiento intermedio en </span><span style="line-height:107%; letter-spacing:-.5pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">el rango de tres o cuatro d&iacute;as (datos no mostrados).<br />   <br />   </span><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">TOLERANCIA  AL ESTR&Eacute;S SALINO<br />   <br />   </span></strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">El aumento de la concentraci&oacute;n de  salinidad en el medio de cultivo indujo una reducci&oacute;n significativa del  crecimiento en las cepas, particularmente para niveles superiores a 4,2 dS m<sup>-1</sup>,  donde los valores de absorbancia disminuyeron con el aumento de la  concentraci&oacute;n de sal (<a href="/img/revistas/ctr/v38n4/f0105417.gif">Figura 1</a>). </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Los aislados VIBA-1 y  VIBA-2 mostraron el mayor crecimiento en el rango de 2,6 a 3,4 dS m<sup>-1</sup> de NaCl, con resultados similares al control. El crecimiento de todas las cepas  se redujo significativamente con 4,2 dS m<sup>-1</sup> de NaCl.<br />   <br />     Por otro lado, CCBAU 10071 (<em>Bradyrhizobium</em> <em>yuanmingense</em>) revel&oacute;  un mayor crecimiento que el nivel de salinidad de control (0,17 dS m<sup>-1</sup>)  a 2,6 dS m<sup>-1</sup> de NaCl. Incluso esta cepa alcanz&oacute; un crecimiento  similar al control con los niveles m&aacute;s altos de sal (6,6 dS m<sup>-1</sup>)  (<a href="/img/revistas/ctr/v38n4/f0105417.gif">Figura 1</a>). Esta cepa podr&iacute;a considerarse la m&aacute;s tolerante al estr&eacute;s salino.<br />   <br />   <strong>TOLERANCIA AL  ESTR&Eacute;S DE pH<br />   <br />   </strong>Ninguna de las cepas pudo crecer a pH 4,5. El crecimiento de los  aislados, VIBA-1, VIBA-2, VIBA-3 y VIBA-6 aument&oacute; significativamente a pH 7 en  comparaci&oacute;n con pH 9. Sin embargo, VIBA-4, VIBA-5 y la cepa de referencia CCBAU  10071 fueron similares para ambos niveles de pH, incluso este &uacute;ltimo, tuvo la  tendencia a crecer mejor en pH 9 (<a href="/img/revistas/ctr/v38n4/f0205417.gif">Figura 2</a>).<br />   <br />   <strong>TOLERANCIA AL  ESTR&Eacute;S DE TEMPERATURA</strong><br />   <br />     Todos los aislamientos, incluida la cepa de referencia, podr&iacute;an crecer  hasta 40 <sup>o</sup>C a la misma velocidad que 28 &ordm;C (<a href="/img/revistas/ctr/v38n4/t0105417.gif">Tabla I</a>). Las excepciones fueron  VIBA-4 y VIBA-5, que crecieron a 45 <sup>o</sup>C aunque a menor velocidad.  Estos resultados sugieren una muy buena adaptaci&oacute;n de estos aislamientos a las  altas temperaturas que son caracter&iacute;sticas de las &aacute;reas donde se aislaron las  bacterias. </span></p>     
<p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">PRUEBA DE NODULACI&Oacute;N<br />   <br />   </span></strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">La inoculaci&oacute;n de las plantas con VIBA-1, VIBA-2, VIBA-3,  VIBA-5 y VIBA-6, induj&oacute; la formaci&oacute;n de n&oacute;dulos lo que indica que estas cepas  pertenecen a la familia <em>Rhizobiaceae</em>. Adem&aacute;s, el color rosado dentro de los  n&oacute;dulos revel&oacute; su actividad de fijaci&oacute;n de nitr&oacute;geno, debido a la presencia de  leghemoglobina en la zona infectada (18). Sin embargo, VIBA-4 no fue capaz de  inducir la nodulaci&oacute;n en las tres ocasiones en que se realiz&oacute; el experimento.<br />   <br />   <strong>CARACTERIZACI&Oacute;N  MOLECULAR</strong> <br />   <br />   <strong>An&aacute;lisis de restricci&oacute;n del ADNr 16S amplificado (ARDRA)<br />   <br />   </strong>El 16S ADNr de cada aislado y las cepas  de referencia se amplificaron produciendo una banda caracter&iacute;stica de 1,500 pb.  El an&aacute;lisis de restricci&oacute;n mostr&oacute; de cuatro a ocho patrones para cada enzima  utilizada (no se muestran los patrones de restricci&oacute;n). Se obtuvieron doce  genotipos ARDRA (1-12), que representan las diferentes combinaciones de  patrones de restricci&oacute;n, de todas las cepas investigadas (<a href="/img/revistas/ctr/v38n4/t0205417.gif">Tabla </a></span><a href="/img/revistas/ctr/v38n4/t0205417.gif"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">II</span></a><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">).<br />   <br />   </span><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">TIPO DE CEPA<br />   <br />   </span></strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Los  seis aislados de caup&iacute; se clasificaron en tres genotipos diferentes de ADNr.  VIBA-2, VIBA-3, VIBA-5 y VIBA-6 exhibieron el mismo patr&oacute;n de genotipo que <em>Bradyrhizobium  yuanmingense</em> CCBAU 10071 (<a href="/img/revistas/ctr/v38n4/t0205417.gif">Tabla II</a>),  mientras que los genotipos de VIBA-1 y VIBA-4 no coincidieron con ninguna cepa  de referencia. Utilizando los resultados de referencia ARDRA, se realiz&oacute; la  determinaci&oacute;n de las secuencias del gen 16S ADNr para lograr la afiliaci&oacute;n de  la especie y su identidad gen&eacute;tica.<br />   <br />   <strong>16S AN&Aacute;LISIS DE  SECUENCIA DE ADNr<br />   <br />   </strong>Las secuencias se introdujeron en la base de datos <em>GeneBank</em> con los siguientes n&uacute;meros de acceso: FJ941843, VIBA-1; FJ941844, VIBA-2;  FJ941845, VIBA-3; GU784791, VIBA-4; GU784792, VIBA-5 y VIBA-6. Las alineaciones  llevadas a cabo con alineaciones m&uacute;ltiples <em>Clustal W Multiple Alignments</em> comprend&iacute;an todas estas nuevas cepas y empleaban 1434 nucle&oacute;tidos de VIBA-1,  1279 de VIBA-2, 1252 de VIBA-3, 1432 de VIBA-4 y 1261 de VIBA-5 y 6. El  an&aacute;lisis <em>Blast N</em> revel&oacute; que todos los aislamientos pertenec&iacute;an a linajes  rizobiales de &alpha;-Proteobacteria. La cepa cercana a VIBA-1 con una homolog&iacute;a del  99,80 % fue <em>Bradyrhizobium</em> <em>liaoningense</em> LYG2, (n&uacute;mero de acceso  DQ497619), mientras que la especie tipo/cepa m&aacute;s cercana fue <em>B. liaoningense</em> USDA 3622 (acceso AF208513) con un 99,70 % de similitud. Los aislamientos  VIBA-2 y VIBA-3 presentaron una similitud de 99,90 y 99,80, respectivamente,  con <em>Bradyrhizobium</em> <em>yuanmingense</em> TSC10 (FJ540961), mientras que la  homolog&iacute;a con la especie tipo/cepa <em>B. yuanmingense</em> CCBAU 10071  (AF193818) fue 99,53 y 99,52 %, respectivamente. De la misma manera, VIBA-5 y 6  presentaron 99,30 % de similitud con <em>Bradyrhizobium yuanmingense</em> M11 (n&uacute;mero  de acceso AB601666) y una homolog&iacute;a de 98,95 % con la especie tipo/cepa <em>Bradyrhizobium</em> <em>yuanmingense</em> CCBAU 10071, (n&uacute;mero de acceso AF193818). Por otro lado,  VIBA-4 tuvo una cercan&iacute;a del 100 % con <em>Agrobacterium</em> sp. JS71 (n&uacute;mero de  acceso AY174112) y 99,10 % con el tipo de especie/cepa <em>Rhizobium</em> <em>radiobacter</em> (anteriormente <em>Agrobacterium</em> <em>tumefaciens</em>) NCPPB2437 (n&uacute;mero de  acceso D14500).<br />   <br />   <strong>AN&Aacute;LISIS  FILOGEN&Eacute;TICO<br />   <br />   </strong>El an&aacute;lisis filogen&eacute;tico indic&oacute; una relaci&oacute;n evolutiva entre los  aislamientos y la colecci&oacute;n de cepas m&aacute;s importante (<a href="/img/revistas/ctr/v38n4/f0305417.gif">Figura 3</a>).<br />   <br />     La cepa VIBA-1 se localiz&oacute; en la misma rama con la especie tipo/cepa <em>Bradyrhizobium</em> <em>liaoningense</em>, USDA 3622, mientras que VIBA-2, VIBA-3 y VIBA-5 y 6 se  localizaron en la misma rama de <em>Bradyrhizobium</em> <em>yuanmingense</em>, CCBAU  10071, que es similar a los resultados del genotipo ARDRA.</span></p>     
<p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">DISCUSI&Oacute;N</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">El hecho de que las cepas  nativas crecieron en medio de cultivo salino (6,6 dS m<sup>-1</sup> de NaCl)  implica algunas caracter&iacute;sticas de adaptaci&oacute;n al estr&eacute;s salino, aunque su  crecimiento fue obviamente menor que la especie tipo/cepa CCBAU 10071. De  hecho, la tolerancia a la sal de estas cepas fue menor que en otros informes,  incluso se aisl&oacute; de los mismos suelos cubanos notificados como altamente  salinos (Babiney con EC 4,76 dS m<sup>-1</sup>) y muy altamente salinos  (Jiguan&iacute; 5,8 dS m<sup>-1</sup>) (19). Con respecto a las especies de rizobios,  se ha documentado el alto nivel de tolerancia a la sal de <em>Phyllobacterium</em> <em>myrsinacearum</em>, que puede crecer a un 2,5 a 3 % de salinidad (11).  Mientras que <em>Mesorhizobium</em> <em>ciceri</em> (cepa GA-2) y <em>Ensifer  (Sinorhizobium</em>) <em>meliloti</em> (cepas AFL-2 y AFL-3) crecieron a 1,5 y 2 %  de los niveles de sal, al contrario que <em>Bradyrhizobium</em> <em>liaoningense</em> y <em>Bradyrhizobium</em> <em>canariense</em>, mostrando un verdadero desarrollo  solo al 0,1 % del nivel de sal (11).<br />       <br />       Sin embargo, <em>Bradyrhizobium</em> <em>japonicum</em> (E109) puede crecer en  medios con concentraciones de NaCl de hasta 75 mM, lo que demuestra que la  sensibilidad a la sal en esta especie se ve afectada por la fase de crecimiento  del cultivo y el tipo de prueba utilizada para medir la tolerancia a la sal  (20,21).<br />       <br />       Otro tipo de estr&eacute;s ampliamente conocido es la variaci&oacute;n del pH (&aacute;cido o  alcalino), que puede provocar da&ntilde;os en las bacterias rizobiales, principalmente  en la supervivencia, la capacidad de infecci&oacute;n y su diversidad (11,22).  Nuestros resultados confirman estos hallazgos previos; debido a que las cepas  no fueron capaces de desarrollarse en medio &aacute;cido (pH 4,5), pero al contrario,  todos los aislados crecieron en condiciones alcalinas (pH 9).<br />       <br />     ]]></body>
<body><![CDATA[  Aunque estos resultados parecen ser la  tendencia, las bacterias rizobiales adaptadas a ambientes &aacute;cidos, como <em>Bradyrhizobium</em> <em>canariense</em>, aislado de suelos &aacute;cidos de Espa&ntilde;a (pH 5,3 y 4,8), han sido  informadas por otros autores (11). Adem&aacute;s, hay informes para la adaptaci&oacute;n de  rizobios a condiciones alcalinas tambi&eacute;n; incluso los aislados tienen la tendencia  a ser m&aacute;s tolerantes a la alcalinidad que la acidez (22). Sin embargo, hay  diferencias entre los g&eacute;neros. Varios informes revelaron que <em>Bradyrhizobium</em> sp., es m&aacute;s tolerante a los &aacute;cidos que <em>Rhizobium</em> sp. Sin embargo,  tambi&eacute;n se ha demostrado su capacidad para crecer en medio alcalino (23,24). A  pesar de ello, se han encontrado y caracterizado cepas de <em>Bradyrhizobium</em> con tolerancia a pH 11 (25), mientras que otras, obtuvieron crecimiento en la  mayor&iacute;a de los aislamientos a pH 9 y unas pocas cepas alcanzaron su desarrollo  a pH 4 (11).<br />       <br />       Una posible explicaci&oacute;n de la tolerancia a la acidez o alcalinidad se  basa en la capacidad del microsimbionte para mantener el pH interno cerca de la  neutralidad, que podr&iacute;a estar relacionado con la exclusi&oacute;n de protones,  aumentar la capacidad del tamp&oacute;n citoplasm&aacute;tico y mantener altas  concentraciones de potasio y glutamato. (26,27). Sin embargo, el crecimiento demostrado de estas cepas a pH alcalino es  una buena respuesta ya que los suelos del valle del r&iacute;o Cauto son ligeramente  alcalinos (9).<br />       <br />       Por otro lado, los resultados de las variaciones de temperatura indican  que las cepas no solo tienen la capacidad de desarrollarse en ambientes salinos  y variaciones de pH, sino que tambi&eacute;n tienen capacidad para soportar altas temperaturas.  La adaptaci&oacute;n a alta temperatura de estas cepas puede estar relacionada con la  regi&oacute;n donde fueron aisladas, que tiene largos per&iacute;odos de sequ&iacute;a y altas  temperaturas (28,29), siendo esta una buena caracter&iacute;stica, con el fin de  obtener una mejora del proceso simbi&oacute;tico en plantas de caup&iacute; (30-32).  Asimismo, otros autores han encontrado una alta variabilidad en la capacidad de  crecimiento con temperaturas superiores a 35 <sup>o</sup>C, aunque la tendencia  fue a disminuir en el n&uacute;mero de c&eacute;lulas (30,33).<br />       <br />       Los resultados de esta experiencia fueron similares a los obtenidos por otros  investigadores, que aislaron y caracterizaron <em>Bradyrhizobium</em> sp. cepas  de <em>Centrosema</em> sp., que crecieron a 40 <sup>o</sup>C (29).<br />       <br />       En este estudio, logramos el aislamiento de cuatro cepas nativas de <em>Bradyrhizobium</em> a partir de n&oacute;dulos de plantas de caup&iacute; cultivadas en suelo afectado por estr&eacute;s  salino. Sin embargo, solo dos especies diferentes fueron representadas por las  cepas de <em>Bradyrhizobium</em> aisladas, que se obtuvieron a partir de la  secuencia de 16S ADNr. El aislado VIBA-1 se localiz&oacute; en especies de <em>Bradyrhizobium  liaoningense,</em> mientras que VIBA-2, VIBA-3, VIBA-5 y VIBA-6 en especies de <em>Bradyrhizobium  yuanmingense</em>. Sin embargo, VIBA-4 se identific&oacute; como <em>R. radiobacter</em> (anteriormente <em>Agrobacterium</em> <em>tumefaciens</em>).<br />       <br />     ]]></body>
<body><![CDATA[  El hecho de que solo se encontraron dos  especies de <em>Bradyrhizobium</em> en nuestra investigaci&oacute;n muestra una baja  diversidad del g&eacute;nero <em>Bradyrhizobium</em> en esta regi&oacute;n. La reducci&oacute;n de la  poblaci&oacute;n bacteriana en suelos salinos puede atribuirse al escaso uso de  especies leguminosas (29-33). La b&uacute;squeda y selecci&oacute;n de nuevos aislamientos  representados por un n&uacute;mero mayor de especies rizobiales es necesaria para  mejorar las poblaciones bacterianas y la calidad de la simbiosis.La especie <em>Bradyrhizobium  liaoningense</em> se aisl&oacute; inicialmente de las plantas de soja (34), mientras  que <em>Bradyrhizobium yuanmingense</em> se aisl&oacute; de los n&oacute;dulos de Lespedeza  (35). Esto mostr&oacute; la capacidad de formar n&oacute;dulos en <em>Medicago</em> <em>sativa</em> y <em>Melilotus</em> <em>albus</em>, mientras que no fue posible encontrar n&oacute;dulos  en la soja.<br />       <br />       Sin embargo, se ha encontrado que <em>B. yuanmingense</em> es capaz de  infectar ra&iacute;ces y establecer simbiosis en plantas de caup&iacute;, en contraste con <em>B.  liaoningense</em> que no fue capaz de producir n&oacute;dulos (36). En Cuba, estas  especies no han sido reportadas en plantas de caup&iacute; cultivadas bajo condiciones  de suelo salino. Sin embargo, <em>B. liaoningense</em> y <em>B. yuanmingense</em> se han aislado de suelos salinos, alcalinos y s&oacute;dicos en seco (37,38).<br />       <br />       Tambi&eacute;n se aisl&oacute; una cepa de <em>Rhizobium</em> <em>radiobacter</em> (anteriormente <em>Agrobacterium</em> <em>tumefaciens</em>, VIBA-4) de los n&oacute;dulos muestreados;  sin embargo, este aislado no fue capaz de formar estructuras nodulares en  plantas de caup&iacute; cuando &eacute;stas fueron inoculadas nuevamente. Esta especie  tambi&eacute;n ha sido aislada de n&oacute;dulos de <em>Retama</em> <em>sphaerocarpa</em> (11);  sin embargo, las cepas de <em>A</em>. <em>tumefaciens</em> pierden la capacidad de  formar n&oacute;dulos, lo que indica que este tipo de cepas puede pertenecer a una  procesi&oacute;n de bacterias endof&iacute;ticas que se deslizan en n&oacute;dulos para protecci&oacute;n  (39, 40).<br />       <br />       Varios hallazgos han reportado la presencia de otros microorganismos en los  n&oacute;dulos como proteobacterias no simbi&oacute;ticas, bacterias desnitrificantes,  pat&oacute;genas y fototr&oacute;picas de numerosos g&eacute;neros entre los que se encuentra el <em>Agrobacterium</em> (11,41,42). Del mismo modo, aislados de las cepas de <em>Agrobaterium</em> se  obtuvieron de n&oacute;dulos de diferentes leguminosas, pero la mayor&iacute;a de las cepas  aisladas de <em>Agrobacterium</em> no pudieron nodular en sus hospederos  originales, debido a que no se hibridaron con sondas g&eacute;nicas <em>nif</em> y <em>nod</em> al verificar que no eran bacterias simbi&oacute;ticas. (43-45). No obstante, otros  autores han informado que algunas cepas de <em>Agrobacterium</em> podr&iacute;an formar  n&oacute;dulos efectivos en algunas plantas leguminosas (46-48).<br />       <br />       La especie <em>Bradyrhizobium</em> <em>yuanmingense</em> utilizada en los  experimentos fue aislada en primer lugar de los n&oacute;dulos de <em>Lespedeza cuneata</em> en el norte de China (36). Esta especie se ha aislado en una amplia gama de  regiones de temperatura, regiones secas y c&aacute;lidas del sudeste asi&aacute;tico y el sur  de &Aacute;frica, as&iacute; como de diferentes plantas hospedadoras. Por esta raz&oacute;n, esta  cepa se ha utilizado como referencia para identificar nuevos aislamientos, as&iacute;  como para investigar la adaptaci&oacute;n de cepas en condiciones de estr&eacute;s, debido a  sus caracter&iacute;sticas tolerantes y su f&aacute;cil adaptaci&oacute;n a bajas y altas  temperaturas, pH diferente y estr&eacute;s hiperosm&oacute;tico (49 -52).<br />       <br />     ]]></body>
<body><![CDATA[  Por &uacute;ltimo, los resultados demostraron que en los suelos afectados por la sal  del valle del r&iacute;o Cauto, existen cepas nativas de <em>Bradyrhizobium</em> capaces  de crecer bajo diferentes condiciones de estr&eacute;s como la salinidad, el pH y la  temperatura alta. Esto significa la posibilidad de utilizar nuevos inoculantes  de cepas adaptadas a estas condiciones ambientales y mejorar la fijaci&oacute;n  simbi&oacute;tica de nitr&oacute;geno en caup&iacute; (9). <br />       Adem&aacute;s, el hecho de que solo se encontraron dos especies de bradirizobios (<em>B.  yuanmingense</em> y <br />       <em>B. liaoningense</em>) pone &eacute;nfasis en la necesidad de encontrar y  caracterizar nuevas cepas de rizobios de los suelos salinos del Valle del r&iacute;o  Cauto con el fin de aumentar la diversidad.</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">CONCLUSIONES </span></strong></p> <ul>       <li>    <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Se aislaron y caracterizaron seis cepas de  rizobios de los g&eacute;neros de <em>Bradyrhizobium</em> a partir de n&oacute;dulos de frijol  cultivado en suelos salinos del valle del r&iacute;o Cauto. <em>Bradyrhizobium</em> <em>liaoningense</em> y <em>Bradyrhizobium</em> <em>yuanmingense</em> fueron las especies  representativas, que se informaron por primera vez en estas &aacute;reas.</span></li>       <li>    <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Las  cepas mostraron buenas respuestas a diferentes estreses abi&oacute;ticos (salinidad,  alta temperatura y pH alcalino) que se&ntilde;alan su adaptaci&oacute;n a las condiciones  ambientales.</span></li>       <li>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">La  creaci&oacute;n de la primera colecci&oacute;n de cepas de <em>Bradyrhizobium</em> adaptadas a  los suelos del valle del r&iacute;o Cauto es un importante &eacute;xito para lograr nuevos  inoculantes para mejorar la fijaci&oacute;n del nitr&oacute;geno simbi&oacute;tico y, en  consecuencia, mejorar el rendimiento de las plantas de caup&iacute;. </span></li>       <li>    <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Esta investigaci&oacute;n es un paso m&aacute;s all&aacute; para  obtener nuevos bioinoculantes/biofertilizantes para dinamizar los suelos  salinos cubanos y contribuir al desarrollo de la agricultura org&aacute;nica en esta  regi&oacute;n.</span></li>     </ul>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">AGRADECIMIENTOS</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Este trabajo se llev&oacute; a  cabo como parte del proyecto AECID, referencia A/8500/07 y A/019119/08, y  desarrollado entre CSIC, (Madrid, Espa&ntilde;a) y la Universidad de Granma, Cuba. BRD  fue respaldado por los contratos de la Junta de Comunidades de Castilla-La  Mancha (POII09-0182-3834 y POII10-0211-5015).</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">BIBLIOGRAF&Iacute;A</span></strong></p>     <!-- ref --><p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="line-height:107%; letter-spacing:-.35pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">1. Bui EN. Soil salinity: A  neglected factor in plant ecol&shy;ogy and biogeography. Journal of Arid  Environments. 2013;92 (Supplement C):14&ndash;25. doi:10.1016/j.jaridenv.2012.12.014<br />   <br />   </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">2. Setia R, Gottschalk P, Smith  P, Marschner P, Baldock J, Setia D, et al. 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