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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Utilización del ELISA y el ultramicroELISA en la identificación de una cepa de Coxsackie A9 aislada durante la epidemia de neuropatía en Cuba]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto de Medicina Tropical Pedro Kourí  ]]></institution>
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<kwd lng="es"><![CDATA[NEURITIS]]></kwd>
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<kwd lng="es"><![CDATA[VIRUS COXSACKIE A]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[TEST DE NEUTRALIZACION; ELISA]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <H5>Revista Cubana de Medicina Tropical, enero-junio, 1995</H5>     <P>Instituto de Medicina Tropical "Pedro Kour&iacute;" </P> <H2>Utilizaci&oacute;n del ELISA y el ultramicroELISA en la identificaci&oacute;n de una cepa de Coxsackie A9 aislada durante la epidemia de neuropat&iacute;a en Cuba</H2>     <P>Dr. ANGEL BALMASEDA,&lt;1 Lic. JOSE LAFERTE,&lt;2 Lic. MARITZA SOLER,2 Lic. SUSANA VAZQUEZ,2 Dra. LICEL RODRIGUEZ,1 Lic. ANSELMO OTERO&lt;3 y Lic. VALEXIS VAZQUEZ2 </P> <H4>RESUMEN</H4>     <P>Durante 1993, nuestro pa&iacute;s se vio afectado por un brote de neuropat&iacute;a epid&eacute;mica (NE) caracterizado por 2 formas cl&iacute;nicas fundamentales: &oacute;ptica y perif&eacute;rica. Aunque la causa de la enfermedad fue considerada multifactorial (fundamentalmente agentes neurot&oacute;xicos y deficiencia nutricional), fue aislado un Enterovirus del l&iacute;quido cefalorraqu&iacute;deo de un paciente (cepa 47/93, IPK), el cual fue posteriormente clasificado como Coxsackie A9 (Cox A9) mediante la prueba de neutralizaci&oacute;n (Nt) utilizando los <I>pools </I>de suero de Lim Benyesh Melnick (LBM). Se presentan los resultados obtenidos durante la aplicaci&oacute;n del ELISA y del ultramicroELISA en la identificaci&oacute;n de este agente a partir del sobrenadante de cultivo de c&eacute;lulas infectadas, as&iacute; como en la detecci&oacute;n de anticuerpos a la cepa en poblaciones con baja y alta incidencias de la enfermedad. </P> <B>    <P>Palabras clave:</B> NEURITIS/l&iacute;quido cefalorraqu&iacute;deo; NEURITIS OPTICA/l&iacute;quido cefalorraqu&iacute;deo; VIRUS COXSACKIE A/aislamiento &amp; purificaci&oacute;n; TEST DE NEUTRALIZACION; ELISA/m&eacute;todos.</P> <H4>INTRODUCCION</H4>     <P>Los Enterovirus son agentes causales de una amplia gama de enfermedades, los cuales pueden cursar desde una infecci&oacute;n subcl&iacute;nica hasta una enfermedad fatal.1,2 El diagn&oacute;stico de laboratorio de la infecci&oacute;n se basa en el aislamiento e identificaci&oacute;n del virus y en la demostraci&oacute;n de un aumento significativo del t&iacute;tulo de anticuerpos s&eacute;ricos mediante la t&eacute;cnica de neutralizaci&oacute;n.2 </P>     <P>Desde hace algunos a&ntilde;os se est&aacute; utilizando la t&eacute;cnica del ELISA para el diagn&oacute;stico de algunas infecciones causadas por Enterovirus, se obtienen resultados con altas sensibilidad y especificidad.1-3 </P>     <P>Las t&eacute;cnicas de ultramicroELISA (UMELISA) y el sistema SUMA han sido aplicados en nuestro laboratorio para el diagn&oacute;stico de diferentes enfermedades infecciosas, lo que significa no s&oacute;lo un ahorro de reactivos y tiempo sino, adem&aacute;s, un incremento de la sensibilidad debido al uso de un sustrato fluorig&eacute;nico.4-7 </P>     <P>Teniendo en cuenta que durante la epidemia de neuropat&iacute;a se aisl&oacute; un virus Coxsackie A9 del l&iacute;quido cefalorraqu&iacute;deo (LCR) de un paciente,8 nos propusimos aplicar las t&eacute;cnicas de ELISA y UMELISA tanto para la identificaci&oacute;n r&aacute;pida de este agente en el sobrenadante de cultivo de c&eacute;lulas infectadas, as&iacute; como para la detecci&oacute;n de anticuerpos totales a &eacute;ste en muestras de suero de poblaciones con alta y baja incidencias de la enfermedad, con el objetivo de determinar el patr&oacute;n de circulaci&oacute;n del virus. </P> <H3>MATERIAL Y METODO</H3>     <P>Ant&iacute;geno. Frascos Roux con c&eacute;lulas Vero fueron infectados con la cepa 47/93, IPK; cuando el efecto citop&aacute;tico (ECP) fue del 100 % el medio se someti&oacute; a 3 ciclos de congelaci&oacute;n-descongelaci&oacute;n y posteriormente se centrifug&oacute; a 2 000 r.p.m. durante 20 minutos. El sobrenadante fue recuperado y almacenado a -70 oC hasta su uso. </P> <I>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Virus. </I>Se evaluaron 25 cepas de Enterovirus las cuales fueron donadas por el Laboratorio Nacional de Referencia de Enterovirus (LNRE) del Instituto de Medicina Tropical "Pedro Kour&iacute;" (IPK) de Cuba. Siete de ellas hab&iacute;an sido previamente clasificadas como Cox A9. </P>     <P>La cepa M2 del virus de la hepatitis A (VHA) aislada en Cuba,9 fue donada por el Laboratorio Nacional de Referencia de Hepatitis Viral del IPK. </P> <I>    <P>Obtenci&oacute;n de la IgG anticepa 47/93, IPK.</I> Fueron donados por el LNRE 20 mL de un suero de conejo con un t&iacute;tulo de anticuerpos neutralizantes a la cepa 47 de 1:16 000. La fracci&oacute;n gamma de este antisuero fue obtenida por precipitaci&oacute;n salina y la IgG mediante cromatograf&iacute;a de intercambio i&oacute;nico. La concentraci&oacute;n de prote&iacute;na de la IgG purificada (13 mg/mL) fue estimada por el m&eacute;todo de Lowry.10 </P> <I>    <P>Sueros hiperinmunes. </I>Para evaluar la especificidad de los ensayos serol&oacute;gicos, se utilizaron 7 sueros hiperinmunes a diferentes Enterovirus (sueros a los 6 serotipos de Coxsackie B y 1 a la cepa 47). </P> <I>    <P>Muestras de sueros. </I>Se evalu&oacute; un total de 2 767 muestras de sueros las cuales fueron divididas en los siguientes grupos: </P>     <P>Grupo I: 165 muestras de sueros procedentes de pacientes con NE y 250 sueros de contactos de estos pacientes. </P>     <P>Grupo II: 1 345 muestras de sueros de individuos procedentes de zonas de baja incidencia de la enfermedad. </P>     <P>Grupo III: 1 007 muestras de sueros de individuos procedentes de zonas de alta incidencia de la enfermedad. </P> <I>    <P>Sueros controles de referencia. </I>Se utiliz&oacute; como control positivo para ambos ensayos (ELISA y UMELISA) el suero de un paciente con un t&iacute;tulo de anticuerpos neutralizantes a la cepa 47 superior a 1/320. Como control negativo se utiliz&oacute; un <I>pool</I> de suero humano con un t&iacute;tulo de anticuerpos neutralizantes a esta cepa inferior a 1/10. </P>     <P>Como t&eacute;cnica de referencia para detectar anticuerpos a la cepa 47 se utiliz&oacute; la prueba de neutralizaci&oacute;n (Nt), la cual fue realizada por la t&eacute;cnica del microm&eacute;todo.2 </P> <I>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Inmunoensayos. </I>Se utilizaron 2 procedimientos, ELISA Y UMELISA. Fue aplicado el m&eacute;todo <I>sandwich </I>para la identificaci&oacute;n r&aacute;pida de cepas de Cox A9 a partir de sobrenadante de cultivo de c&eacute;lulas infectadas. El m&eacute;todo de inhibici&oacute;n fue empleado para la detecci&oacute;n de anticuerpos a la cepa 47. </P>     <P>INMUNOENSAYOS PARA LA IDENTIFICACION DE LAS CEPAS COX A9 </P> <I>    <P>ELISA. </I>Se utilizaron placas de cloruro de polivinilo (PVC), las cuales fueron sensibilizadas con 100 mL/pozo de una soluci&oacute;n de IgG anticepa 47 a una concentraci&oacute;n de 10 mg/mL en <I>buffer</I> carbonato-bicarbonato, pH 9,6. La incubaci&oacute;n se realiz&oacute; durante 18 horas a temperatura ambiente en c&aacute;mara h&uacute;meda. </P>     <P>Posterior a todas las incubaciones las placas fueron lavadas 3 veces con una soluci&oacute;n de PBS, pH 7,4; conteniendo 0,05 % de Tween-20 (PBS-T). </P>     <P>Se adicionaron 100 mL/pozo del sobrenadante obtenido de la inoculaci&oacute;n de las diferentes cepas virales y las placas fueron incubadas a 37 oC durante 1 hora. Despu&eacute;s del lavado se a&ntilde;adieron 100 mL/pozo de la IgG anticepa 47 conjugada a la enzima peroxidasa del r&aacute;bano picante (Sigma, Tipo VI), diluida 1/1 000 en PBS-T conteniendo 5 % de suero de ternera (PBS-T/ST). Despu&eacute;s de 1 hora de incubaci&oacute;n se adicionaron 100mL/pozo del sustrato, compuesto por ortofenilendiamina (OPD) 1mg/mL y 0,4 mL/mL de H202 diluidos ambos en <I>buffer </I>fosfatocitrato, pH 5. La reacci&oacute;n fue detenida despu&eacute;s de 30 minutos a temperatura ambiente con 100 mL/pozo de H2SO4 al 12,5 %. La lectura se realiz&oacute; en un lector de ELISA a una longitud de onda de 492 nm. Las muestras con densidades &oacute;pticas (DO) superiores a 0,21 fueron consideradas positivas. </P> <I>    <P>UMELISA. </I>Se utilizaron ultramicroplacas de poliestireno de 96 pozos (SUMA), las cuales fueron recubiertas con 10 mL/pozo de IgG anti 47 (10 mL/mL) diluidas en <I>buffer </I>carbonato-bicarbonato, pH 9,6. </P>     <P>Posterior a cada tiempo de incubaci&oacute;n, las placas fueron lavadas 4 veces con PBS-T, se a&ntilde;adieron 10mL/pozo de cada cepa viral y se incubaron durante 1 hora a 37 oC. Posterior al lavado se adicionaron 10 mL/pozo de la IgG anti 47 conjugada a la enzima fosfatasa alcalina diluida 1/2 000 en PBS-T/ST; despu&eacute;s de 1 hora de incubaci&oacute;n a 37 oC se a&ntilde;adieron 10mL/pozo del sustrato fluorig&eacute;nico correspondiente a la fosfatasa alcalina (4 metil lumberiferil fosfato) a una concentraci&oacute;n de 0,13 mg/mL en <I>buffer</I> dietanolamina pH 9,8; y se incubaron 30 minutos a temperatura ambiente. La fluorescencia (F) resultante fue estimada en un equipo SUMA modelo 321. Una lectura mayor de 20 unidades de fluorescencia fue considerada positiva. </P>     <P>INMUNOENSAYOS PARA LA DETECCION DE ANTICUERPOS A LA CEPA 47 </P> <I>    <P>ELISA de inhibici&oacute;n. </I>Las placas fueron recubiertas del mismo modo que en el ensayo<I> sandwich, </I>posteriormente se a&ntilde;adi&oacute; una mezcla de 50 mL de las muestras previamente diluida 1/20 en PBS-T/ST y 100 mL de ant&iacute;geno. Los pasos siguientes se realizaron de la misma forma que en el ensayo de <I>sandwich. </I>En cada serie de determinaciones se incluy&oacute; un suero positivo y negativo de referencia. Los resultados fueron transformados utilizando la siguiente expresi&oacute;n: </P>     <P>Inhibici&oacute;n (%)=1 - (DO muestra/DO control negativo) x 100 </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Las muestras con porcentajes de inhibici&oacute;n superiores a 45, fueron consideradas positivas. </P> <I>    <P>UMELISA de inhibici&oacute;n. </I>Las placas fueron recubiertas del mismo modo que en el ensayo<I> sandwich, </I>posteriormente se a&ntilde;adi&oacute; una mezcla de 5 mL de las muestras previamente diluida 1/20 en PBS-T/ST y 10 mL de ant&iacute;geno, los pasos siguientes fueron id&eacute;nticos al ensayo <I>sandwich. </I>En cada serie de determinaciones se incluy&oacute; un suero positivo y negativo de referencia. Los resultados fueron transformados utilizando la siguiente expresi&oacute;n: </P>     <P>Inhibici&oacute;n (%)=100 - (F muestra/F control negativo) x 100 </P>     <P>Las muestras con porcentajes de inhibici&oacute;n superiores a 70, fueron consideradas positivas. </P>     <P>ANALISIS ESTADISTICO </P>     <P>La especificidad, sensibilidad y el porcentaje de coincidencia con el m&eacute;todo de referencia fueron calculados seg&uacute;n <I>Griner </I>et al., 1981.11 Se utiliz&oacute; un an&aacute;lisis de chi-cuadrado para determinar las diferencias significativas entre los grupos II y III. </P>     <P>RESULTADOS </P>     <P>La concentraci&oacute;n de los reactivos y las condiciones de reacci&oacute;n para ambos ensayos (ELISA y UMELISA) fueron determinadas mediante titulaci&oacute;n cruzada, se seleccionaron aqu&eacute;llas que ofrecieron una adecuada discriminaci&oacute;n entre los sueros controles de referencia utilizados. </P>     <P>IDENTIFICACION DE LAS CEPAS COX A9 </P>     <P>La tabla 1 muestra los resultados obtenidos cuando se evaluaron en ELISA y UMELISA 26 muestras de sobrenadante de cultivo de c&eacute;lulas infectadas con diferentes Enterovirus, incluyendo 1 infectado con el virus de la hepatitis A. S&oacute;lo las cepas de Cox A9 aisladas antes y durante la epidemia de neuropat&iacute;a, incluyendo la cepa 47/93, IPK, mostraron respuestas (DO o fluorescencia) superiores al valor de corte establecido para cada ensayo. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>DETECCION DE ANTICUERPOS A LA CEPA 47 </P>     <P>El ELISA y la Nt fueron comparados utilizando 415 sueros del Grupo I, se obtuvieron una sensibilidad del 95,1 %, una especificidad del 87,3 y una coincidencia del 93,7 (tabla 2). </P>     <P>La tabla 3 muestra los resultados obtenidos cuando se compararon el ELISA y el UMELISA utilizando 336 muestras de suero procedentes del Grupo III, las cuales pertenec&iacute;an a una zona de Ciudad de La Habana, controlada cl&iacute;nica y epidemiol&oacute;gicamente por la elevada incidencia de la enfermedad. El UMELISA present&oacute; una sensibilidad del 99,6 %, una especificidad del 88,0 y una coincidencia del 97,3. </P>     <P>El estudio serol&oacute;gico de diferentes poblaciones con alta y baja incidencias de la enfermedad se realiz&oacute; mediante el ELISA de inhibici&oacute;n (tabla 4). Aunque se detect&oacute; una seropositividad superior al 60 % para cada poblaci&oacute;n estudiada, se observ&oacute; una diferencia estad&iacute;sticamente significativa (p &lt; 0,05) entre &eacute;stas. </P> <H3>DISCUSION</H3>     <P>DETECCION DE ANTIGENO </P>     <P>El ELISA tipo <I>sandwich </I>ha sido de utilidad en la identificaci&oacute;n de diferentes Enterovirus, muestra ventajas sobre otros m&eacute;todos inmunoenzim&aacute;ticos utilizados para este prop&oacute;sito.12 </P>     <P>En este trabajo se reporta el uso de 2 sistemas inmunoenzim&aacute;ticos tipo <I>sandwich </I>(ELISA y UMELISA), para la identificaci&oacute;n de cepas de Cox A9 aisladas antes y durante el brote de NE, a partir de sobrenadante de cultivo de c&eacute;lulas infectadas. Ambos ensayos resultaron altamente espec&iacute;ficos, se pudieron identificar la cepa 47 y otros aislamientos clasificados como Cox A9 (incluyendo la cepa de referencia), del resto de los Enterovirus evaluados (tabla 1). </P>     <P>Aunque estos m&eacute;todos no sustituyen a la t&eacute;cnica de Nt, s&iacute; constituyen una r&aacute;pida alternativa para la identificaci&oacute;n de Cox A9 a partir de cultivo de c&eacute;lulas infectadas, ya que los resultados pueden ser obtenidos en un tiempo de 3 horas, facilit&aacute;ndose adem&aacute;s la interpretaci&oacute;n de &eacute;stos. </P>     <P>Estudios posteriores podr&iacute;an estar dirigidos a evaluar a la sensibilidad de dichos m&eacute;todos utilizando muestras de l&iacute;quido cefalorraqu&iacute;deo (LCR). </P> <H3>ESTUDIOS SEROLOGICOS</H3>     <P>La especificidad de los ensayos serol&oacute;gicos fue corroborada mediante la evaluaci&oacute;n de 7 sueros hiperinmunes a diferentes Enterovirus. S&oacute;lo el suero hiperinmune a la cepa 47 mostr&oacute; un tanto por ciento de inhibici&oacute;n superior al valor de corte establecido para cada ensayo (datos no presentados). </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Los resultados obtenidos al comparar el ELISA y la prueba de Nt, mostraron una mejor concordancia entre los resultados que los previamente reportados para los virus Coxsackie.1,13 En nuestro caso el ELISA mostr&oacute; ser tan espec&iacute;fico como la Nt en la detecci&oacute;n de anticuerpos a la cepa 47, se obtuvieron s&oacute;lo 30 sueros discordantes, cuyos valores se distribuyeron cercanos al valor de corte establecido para el ELISA. Estos resultados respaldan la utilizaci&oacute;n del ELISA como un m&eacute;todo confiable para la realizaci&oacute;n de estudios de seroprevalencia en relaci&oacute;n con el virus Cox A9. </P>     <P>En este trabajo se obtuvo una adecuada coincidencia entre los resultados al comparar los m&eacute;todos de ELISA y UMELISA de inhibici&oacute;n. Se obtuvieron s&oacute;lo 9 sueros discordantes, los cuales se distribuyeron alrededor del valor de corte de ambos ensayos (tabla 3). Los 8 sueros UMELISA positivos, ELISA negativos, resultaron negativos en la prueba de Nt. Estos resultados podr&iacute;an ser debidos a falsos positivos de la prueba UMELISA o a una mayor sensibilidad de este m&eacute;todo debido a la utilizaci&oacute;n de un sustrato fluorescente, lo cual ha sido reportado por otros autores.3,14,15 </P>     <P>El estudio serol&oacute;gico realizado a las poblaciones de baja y alta incidencias de NE, mediante la t&eacute;cnica de ELISA de inhibici&oacute;n, detect&oacute; una elevada prevalencia de anticuerpos a la cepa 47, y se observ&oacute; una diferencia estad&iacute;sticamente significativa entre las respuestas de ambas poblaciones. Estos resultados confirman la hip&oacute;tesis de que estaba ocurriendo una mayor circulaci&oacute;n de este agente entre los individuos con mayor incidencia de NE. </P>     <P>La causa de la NE no ha sido a&uacute;n esclarecida, se plantean de forma fundamental factores de &iacute;ndole t&oacute;xico-nutricional. Sin embargo, el aislamiento e identificaci&oacute;n de un agente viral en el LCR de pacientes con esta enfermedad, as&iacute; como los diferentes estudios serol&oacute;gicos, que demostraron un aumento progresivo de la circulaci&oacute;n del agente aislado en nuestra poblaci&oacute;n,16 constituyen hallazgos virol&oacute;gicos que deben ser tomados en consideraci&oacute;n cuando se trata de explicar la causa de la NE. </P>     <P>Los resultados obtenidos mediante la aplicaci&oacute;n de los m&eacute;todos inmunoenzim&aacute;ticos complementan los hallazgos virol&oacute;gicos antes mencionados y apoyan la necesidad de enfocar las causas de la epidemia de neuropat&iacute;a desde un punto de vista multifactorial. </P> <H3>AGRADECIMIENTOS</H3>     <P>Agradecemos a la UNESCO por haber colaborado en parte con el financiamiento para la realizaci&oacute;n de esta investigaci&oacute;n. </P>     <P>&lt;1Especialista de I Grado en Microbiolog&iacute;a.     <BR> &lt;2Licenciado en Bioqu&iacute;mica.     <BR> &lt;3Doctor en Ciencias Biol&oacute;gicas. </P> <H3>REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS</H3> <OL>      <!-- ref --><LI>Torfason EG, Galindo R, Keyserling HL. Comparison of five ELISA assays for IgG antibodies against Coxsackievirus B1. J Med Virol 1988;25:53-60.</LI>    <!-- ref --><LI>Melcnick JL, Wenner HA, Philips CA. Enteroviruses. En: Lennette EH, Smith NJ, eds. Diagnostic procedures for viral, rickettsial and chlamydial infections. 5 ed. Washington: American Public Health Association, 1979;471-534.</LI>    <!-- ref --><LI>Yolken RH, Stopa PJ. Enzyme-linked fluorescence assay: ultrasensitive solid phase assay for detection of human rotavirus. J Clin Microbiol 1979;10:317-21.</LI>    <!-- ref --><LI>Otero A, Sarracen J, Fern&aacute;ndez Yero JL, Rodr&iacute;guez I. A ten microliter indirect ultramicroELISA for detection of monoclonal antibodies against human alphafetoprotein. Hybridoma 1984;3:331-94.</LI>    <!-- ref --><LI>Lafert&eacute; J, Marrero M, Alvarez M, Jomarr&oacute;n L, Garc&iacute;a S, V&aacute;zquez S, et al. UltramicroELISA indirecto para la detecci&oacute;n de anticuerpos totales al citomegalovirus en muestras de suero humano. Rev Inst Med Trop Sao Paulo 1992; 34(1):43-7.</LI>    <!-- ref --><LI>Ribas MA, V&aacute;zquez S, Lafert&eacute; J, Alvarez M. Normalizaci&oacute;n de un ultramicroELISA indirecto para la detecci&oacute;n de anticuerpos al virus HSV. Rev Cubana Med Trop 1992;44(2):104-8.</LI>    <!-- ref --><LI>Guzm&aacute;n MG, Alberti E, Lafert&eacute; J, Rosario D, Gonz&aacute;lez G, Otero A, et al. Standarization and evaluation of an indirect ultrami croELISA for Rubella serology (Rubella-UME). Biotecnolog&iacute;a Aplicada 1993;10(3):166-70.</LI>    <!-- ref --><LI>PAHO. Epidemiological Bulletin. 1993;14(2).</LI>    <!-- ref --><LI>M&aacute;s P, Balmaseda A, Castillo A. Aislamiento del virus de la hepatitis A en cultivo de tejidos. Rev Cubana Med Trop 1991;43(2):95-6.</LI>    <!-- ref --><LI>Lowry DH, Rosebrough NJ, Farr AL, Randall RJ. Protein measurement with the Folin phenol reagent. J Biol Chem 1951;193:265-75.</LI>    <!-- ref --><LI>Griner PF, Mayewski RJ, Mushlin AI, Greenland P. Selection and interpretation of diagnostic test and procedure: principles and applications. Ann Intern Med 1981; 94:553-600.</LI>    <!-- ref --><LI>Katze MG, Crowell R. Immunological studies of the group B Coxsackieviruses by the sandwich ELISA and immunoprecipita tion. J Gen Virol 1980;50:357-67.</LI>    <!-- ref --><LI>Balmaseda A, M&aacute;s P, V&aacute;zquez S, Comellas M. Normalizaci&oacute;n de un ELISA de inhibici&oacute;n para la detecci&oacute;n de anticuerpos a los virus Cox B. Rev Cubana Med Trop 1993;45(1):106-8.</LI>    <!-- ref --><LI>Fernley HN, Walker PG. Kinetic behaviour of calf intestinal alkaline phosphatase with 4 methyl lumbelliferyll phosphate. Biochem J 1985;97:95-103.</LI>    <!-- ref --><LI>Kato KY, Hamaguchi Y, Fukui H, Ichikawa E. Enzyme-linked immunoassay: conjugation of rabbit anti human immunoglobulin G antibody with B-D galactosidase from <I>E. coli </I>and its use for human IgG assays. Eur J Biochem 1976; 62:285-92.</LI>    <!-- ref --><LI>M&aacute;s P, Balmaseda A, Avalos I, Castillo A, Guzm&aacute;n MG, Llop A, et al. Neuropat&iacute;a epid&eacute;mica cubana: parte III: anticuerpos neutralizantes a cepas aisladas y otros enterovirus en pacientes y personas sanas. Rev Cubana Med Trop 1995; 47(1):21-25.</LI>    </OL>      <P>Recibido: 17 de noviembre de 1994. Aprobado: 2 de febrero de 1995. </P>     <P>Dr. <I>Angel Balmaseda. </I>Instituto de Medicina Tropical "Pedro Kour&iacute;". Apartado 601, Marianao 13, Ciudad de La Habana, Cuba. </P>     ]]></body><back>
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