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</front><body><![CDATA[ <H5>Revista Cubana de Medicina Tropical, enero-junio, 1995</H5>     <P>Instituto de Medicina Tropical "Pedro Kour&iacute;" </P> <H2>Comparaci&oacute;n de los resultados obtenidos en la serolog&iacute;a de IgM y la neutralizaci&oacute;n anti-Coxsackie A9 (cepa 47) en casos de neuropat&iacute;a epid&eacute;mica y sus contactos</H2>     <P>Dra. MARIA DE LOS ANGELES RIBAS,&lt;1 Dr. PEDRO MAS,&lt;2 Dra. LICEL RODRIGUEZ,1 y Dr. ANGEL BALMASEDA1 </P> <H4>RESUMEN</H4>     <P>Se estudi&oacute; un total de 213 monosueros de pacientes con el diagn&oacute;stico de neuropat&iacute;a epid&eacute;mica y sus contactos, por las t&eacute;cnicas de inmunofluorescencia indirecta y neutralizaci&oacute;n, con el fin de demostrar la presencia de anticuerpos IgM y neutralizantes en los sueros frente a la cepa 47 IPK/93 identificada como Coxsackie A9. La edad promedio de estos pacientes oscil&oacute; entre 20 y 50 a&ntilde;os y la positividad a ambas t&eacute;cnicas no predomin&oacute; en un sexo determinado. No hubo diferencia significativa en los resultados obtenidos entre pacientes y contactos en las t&eacute;cnicas empleadas. </P> <B>    <P>Palabras clave:</B> NEURITIS OPTICA/l&iacute;quido cefalorraqu&iacute;deo; NEURITIS OPTICA/sangre; NEURITIS/l&iacute;quido cefalorraqu&iacute;deo; NEURITIS/sangre; IGM/an&aacute;lisis; TECNICA DEL ANTICUERPO FLUORESCENTE.</P> <H4>INTRODUCCION</H4>     <P>La neuropat&iacute;a epid&eacute;mica se presenta en Cuba en el segundo semestre de 1991, se extiende hasta el a&ntilde;o 1992 y principios de 1993, comienza en la provincia de Pinar del R&iacute;o y se disemina luego al resto de las provincias del pa&iacute;s.1 </P>     <P>En el transcurso de la epidemia se observaron diferentes manifestaciones cl&iacute;nicas, dadas, en sus inicios, por una forma predominantemente &oacute;ptica, caracterizada por disminuci&oacute;n de la agudeza visual, visi&oacute;n borrosa, hipersensibilidad a la luz y en el examen oftalmol&oacute;gico se encontr&oacute; disminuci&oacute;n o p&eacute;rdida de la visi&oacute;n de colores fundamentalmente al eje rojo-verde, escotoma sim&eacute;trico central o cecocentral, edema papilar y otras. Posteriormente estos pacientes comenzaron a presentar signos y s&iacute;ntomas propios de afecciones del sistema nervioso perif&eacute;rico dados por parestesias, dolor en miembros inferiores, p&eacute;rdida de la sensibilidad y otros s&iacute;ntomas. Tres formas cl&iacute;nicas fueron observadas durante la epidemia, una predominante mente &oacute;ptica, otra perif&eacute;rica y la combinaci&oacute;n de ambas.2 </P>     <P>La patogenia de la enfermedad ha sido asociada a factores t&oacute;xico-nutricionales y biol&oacute;gicos. A&uacute;n no se ha llegado a la conclusi&oacute;n de cu&aacute;l de estos factores puede ser el agente causal, pero la posibilidad de uno de naturaleza infecciosa asociado con otros factores no ha sido completa mente descartada. </P>     <P>En el Laboratorio de Virolog&iacute;a del Instituto de Medicina Tropical "Pedro Kour&iacute;", tratando de encontrar un agente viral relacionado con esta afecci&oacute;n, se aisl&oacute; en c&eacute;lulas de ri&ntilde;&oacute;n de mono verde (VERO) inoculadas con l&iacute;quido cefalorraqu&iacute;deo de un paciente con neuropat&iacute;a, un virus, el cual fue designado como cepa 47/93 IPK.2 </P>     <P>Esta cepa, identificada posteriormente como Coxsackie A9, fue la empleada en nuestro trabajo para realizar las t&eacute;cnicas de inmunofluorescencia indirecta (IFI) y neutralizaci&oacute;n a sueros de pacientes y sus contactos, con el fin de determinar la presencia de anticuerpos IgM y neutralizantes a este virus. </P> <H3>MATERIAL Y METODO</H3>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Para realizar este estudio se emple&oacute; un total de 213 sueros, de los cuales 174 monosueros pertenec&iacute;an a pacientes con el diagn&oacute;stico de neuropat&iacute;a epid&eacute;mica y 39 a sus contactos, procedentes de diferentes provincias del pa&iacute;s. Estos sueros fueron almacenados a -20 oC hasta su uso. </P>     <P>TECNICAS </P> <I>    <P>Inmunofluorescencia indirecta (IFI).3</I>Para realizar esta t&eacute;cnica se emplearon c&eacute;lulas VERO inoculadas con Coxsackie A9 (cepa 47/93 IPK) y c&eacute;lulas VERO no infectadas. Cuando las c&eacute;lulas inoculadas mostraron efecto citopatog&eacute;nico (ECP) caracter&iacute;stico, entre el 50 y el 75 %, las 2 clases de c&eacute;lulas se fijaron con acetona en l&aacute;minas propias para esta t&eacute;cnica. Estas l&aacute;minas fueron bloqueadas con alb&uacute;mina bovina (BSA) al 1 % durante 30 min a temperatura ambiente. </P>     <P>Pasado este tiempo se lavaron una vez r&aacute;pida mente con tamp&oacute;n fosfato (PBS). Los sueros fueron tratados en proporci&oacute;n volumen/volumen con absorbente de factor reumatoideo (IgG humana cadena gamma espec&iacute;fica, producida en el IPK) para eliminar falsos positivos y diluidos 1:10 en PBS. Posteriormente fueron distribuidos en las l&aacute;minas a raz&oacute;n de 10 mL por pocillo e incubados 3 horas a 37 oC en atm&oacute;sfera h&uacute;meda. </P>     <P>Se realizaron lavados sucesivos con PBS, y se adicion&oacute; el conjugado anti-IgM humano con azul de Evans 10 mL por pocillo y se incub&oacute; durante 30 min a 37 oC. </P>     <P>Se volvieron a realizar lavados sucesivos con PBS y posteriormente se a&ntilde;adi&oacute; glicerina al 1 %, se coloc&oacute; el cubreobjeto y se observ&oacute; en el microscopio de fluorescencia. </P>     <P>Se consider&oacute; una muestra positiva (criterio de positividad) aqu&eacute;lla que presentara fluorescencia citoplasm&aacute;tica espec&iacute;fica en las c&eacute;lulas infectadas y la ausencia de &eacute;sta en las c&eacute;lulas VERO control. </P> <I>    <P>Neutralizaci&oacute;n.4 </I>Se inocularon c&eacute;lulas VERO con la cepa 47/93 IPK. Posteriormente se realiz&oacute; la titulaci&oacute;n del virus por el m&eacute;todo de Reed y Muench. Los sueros fueron diluidos desde 1:10 hasta 1:320. A&ntilde;adimos las 100 TCID50 del virus a los sueros y se pusieron en contacto durante 4 horas a 37 oC. </P>     <P>Luego a&ntilde;adimos la suspensi&oacute;n de c&eacute;lulas VERO a la concentraci&oacute;n de 150 000-200 000 c&eacute;lulas/mL. Las placas fueron mantenidas a 37 oC en atm&oacute;sfera de CO2. Se observaron diariamente al microscopio &oacute;ptico hasta la lectura final (por ECP al 4to. o 5to. d&iacute;a). </P> <H3>RESULTADOS Y DISCUSION</H3>     <P>En trabajos llevados a cabo en Jap&oacute;n5-7 se realiz&oacute; el diagn&oacute;stico de una epidemia de neuropat&iacute;a mielo-&oacute;ptica subaguda (SMON), la cual fue asociada al uso de un medicamento (Clioquinol), adem&aacute;s en esta epidemia se pudieron aislar varios virus, cuyo papel en &eacute;sta no pudo ser esclarecido. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Al surgir la epidemia de neuropat&iacute;a epid&eacute;mica en Cuba, hizo recordar el SMON de Jap&oacute;n, ya que presentaban caracter&iacute;sticas cl&iacute;nicas y epidemiol&oacute;gicas similares, salvo algunas excepciones. </P>     <P>A partir del aislamiento obtenido del l&iacute;quido cefalorraqu&iacute;deo de un paciente con neuropat&iacute;a epid&eacute;mica (cepa 47/93 IPK), comenzamos a realizar este estudio con el objetivo de poder observar la presencia de anticuerpos espec&iacute;ficos a este virus y su relaci&oacute;n con los casos de neuritis. </P>     <P>Se estudi&oacute; un total de 213 monosueros pertenecientes a 174 pacientes con el diagn&oacute;stico de neuropat&iacute;a epid&eacute;mica y 39 de sus contactos. </P>     <P>Pudimos encontrar (tabla 1) que tanto en pacientes como en contactos, el mayor porcentaje de muestras estudiadas correspondi&oacute; al sexo femenino, observ&aacute;ndose el 53,4 % de este sexo en pacientes y el 56,4 % en contactos. </P>     <P>En cuanto a edad, en ambos grupos el intervalo oscil&oacute; entre 20 y 50 a&ntilde;os, dato que se relaciona con los estudios epidemiol&oacute;gicos realizados, donde se plante&oacute; que el mayor n&uacute;mero de casos en esta epidemia correspondi&oacute; al grupo de 25 a 64 a&ntilde;os.1 </P>     <P>Se realiz&oacute; la determinaci&oacute;n de IgM por IFI y la neutralizaci&oacute;n al 100 % de los casos estudiados (tabla 2). Los resultados de la IFI nos muestran que 93 (53,4 %) de los pacientes y 22 (56,4 %) de los contactos resultaron positivos a la IgM, la diferencia no es estad&iacute;sticamente significativa (p 0,05). </P>     <P>En la neutralizaci&oacute;n tampoco la diferencia fue significativa, ya que 147 (84,4 %) de los pacientes y 31 (79,4 %) de los contactos fueron positivos por esta t&eacute;cnica (p 0,05). Estos datos coinciden con los estudios realizados por <I>M&aacute;s Lago,</I>8 donde el 86,6 % de los pacientes y el 83,7 % de los contactos presentaron t&iacute;tulos de anticuerpos neutralizantes a la cepa 47/93 IPK. En la IFI, hay un porcentaje similar de los resultados positivos en los 2 grupos analizados (53,4 y 56,4 %). En la neutralizaci&oacute;n, la positividad tambi&eacute;n es igual en ambos grupos estudiados (84,4 y 79,4 %). Al comparar los resultados obtenidos por ambas t&eacute;cnicas en los 2 grupos de muestras estudiados, observamos una diferencia significa tiva en el n&uacute;mero de casos con resultados positivos (p &lt; 0,01). En la neutralizaci&oacute;n, en relaci&oacute;n con los pacientes, el n&uacute;mero de muestras con presencia de anticuerpos (84,4 %) fue mayor que el n&uacute;mero de pacientes con anticuerpos de la clase IgM por IFI (53,4 %), mientras que en los contactos el n&uacute;mero de muestras positivas por neutralizaci&oacute;n fue del 79,4 % y por IFI fue del 56,4 %. </P> <I>    <P>Wulff et al. </I>en el estudio de un brote de conjuntivitis hemorr&aacute;gica por Enterovirus 70 en el Brasil, encontraron el 55 % de positividad a la IgM en sueros de convalescientes utilizando un ELISA de captura, y el 69 % de los sueros pares mostraron aumento de 4 veces o m&aacute;s el t&iacute;tulo de anticuerpos neutralizantes;9 <I>Kono et al. </I>en un estudio serol&oacute;gico de esta misma enfermedad, obtuvieron del 65 al 90 % de aumento de 4 veces o m&aacute;s el t&iacute;tulo de anticuerpos neutralizantes.10 </P>     <P>Mediante un ELISA de captura de IgM, empleando una combinaci&oacute;n de 9 ant&iacute;genos de Enterovirus, en sueros de fase aguda y convales ciente de individuos infectados, Samuelson et al. encontraron una positividad en el 75 % de los casos, y demostraron adem&aacute;s gran variabilidad en la cin&eacute;tica de la respuesta de IgM.11 </P>     <P>Nuestros resultados se corresponden con los hallazgos de otros autores que coinciden en que, en el caso de los Enterovirus, la respuesta de los anticuerpos neutralizantes es m&aacute;s duradera y m&aacute;s espec&iacute;fica y que, por el contrario, la respuesta de la IgM es transitoria y menos espec&iacute;fica (reacci&oacute;n cruzada con otros serotipos).11-13 </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>La no diferencia significativa de los resultados por IFI y neutralizaci&oacute;n entre pacientes y contactos puede haber sido debida al desconocimiento que a&uacute;n se mantiene del per&iacute;odo de incubaci&oacute;n de la enfermedad, a la posible exposici&oacute;n de estos contactos a la cepa viral aislada y en general a la experiencia previa de la poblaci&oacute;n con ant&iacute;genos similares o relacionados, que en nuestro pa&iacute;s es elevada, debida a la amplia circulaci&oacute;n de Enterovirus. </P>     <P>Es conocido adem&aacute;s, la reactividad a ant&iacute;genos enterovirales en sueros de pacientes con signos cl&iacute;nicos de hepatitis A, Epstein Barr y Citomegalo virus, en estos 2 &uacute;ltimos casos por estimulaci&oacute;n policlonal de la s&iacute;ntesis de la IgM viral espec&iacute;fica.14 </P>     <P>Podemos concluir que el alto tanto por ciento de pacientes con neuropat&iacute;a epid&eacute;mica que presentaron anticuerpos IgM y neutralizantes al Coxsackie A9 (cepa 47/93 IPK), aislada en el laboratorio durante la epidemia, as&iacute; como sus contactos, se debe a la circulaci&oacute;n de dicho virus en este per&iacute;odo, as&iacute; como a la ocurrencia de infecci&oacute;n subcl&iacute;nica en el caso de los contactos. </P> <H3>AGRADECIMIENTOS</H3>     <P>Los autores agradecen a la UNESCO el financiamiento de parte de esta investigaci&oacute;n (Contrato No. 883579.3). </P>     <P>&lt;1Especialista de I Grado en Microbiolog&iacute;a. Investigador Agregado.     <BR> &lt;2Doctor en Ciencias M&eacute;dicas. Especialista de II Grado en Microbiolog&iacute;a. Investigador Titular. </P> <H3>REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS</H3> <OL>      <!-- ref --><LI>Llanos GC, Aschor D, Brown DC. Epidemic neuropathy in Cuba. Epidemiological Bulletin 1993;14:1-4.</LI>    <!-- ref --><LI>M&aacute;s Lago P. Resultados preliminares de laboratorio virol&oacute;gico en estudio de casos de neuropat&iacute;a epid&eacute;mica en Cuba. Bol Epidemiol IPK 1993;1:7.</LI>    <!-- ref --><LI>Knapp W, Holubar K, Wick G, eds. Immunofluorescence and related staining techniques. Workshop report on Microbiology and Parasitology. Amsterdam: Elsevier 1978:299-308.</LI>    <!-- ref --><LI>The standard procedure for determining immunity to poliovirus using the microneutralization test. WHO/EPI/GEN. 9;1993.</LI>    <!-- ref --><LI>Sohue I, Ando K, Lida M. Myeloneuropathy with abdominal disorders in Japan. A clinical study of 752 cases. Neurology 1971;21:168-73.</LI>    <!-- ref --><LI>Inoue YK, Nishide Y, Nakamura Y. Virus associated with SMON in Japan. Lancet 1971; 1:853-4.</LI>    <!-- ref --><LI>Nakamura Y, Inoue YK. Pathogenicity of virus associated with subacute myelo-optico neuropathy. Lancet 1972;1:223-6.</LI>    <!-- ref --><LI>M&aacute;s Lago P, Balmaseda A, Avalos I, Castillo A, Guzm&aacute;n MG, Llop A, et al. Neuropat&iacute;a epid&eacute;mica cubana: parte III: anticuerpos neutralizantes a cepas aisladas y otros enterovirus en pacientes y personas sanas. Rev Cubana Med Trop 1995;47(1):21-25.</LI>    <!-- ref --><LI>Wulff H, Anderson LJ, Pallansch MA, Piza de Souza Carvalho R. Diagnosis of Enterovirus 70 by demonstration of IgM antibodies. J Med Virol 1987;21:321-7.</LI>    <!-- ref --><LI>Komo R, Miyamura K, Tajin E, Sasagawa A, Phvapradit P, Roongwithu N, et al. Virological and serological studies of neurological complications of acute hemorrhagic conjunctivitis in Thailand. J Infect Dis 1977;135:706-13.</LI>    <!-- ref --><LI>Samuelson A, Skoog E, Forsgren M. Aspects on the serodiagno sis of enterovirus infections by ELISA. Serodiag Immunother Infect Dis 1990; 4:395-406.</LI>    <!-- ref --><LI>Waldamn EA, Takimoto S, Ishida MA. Enterovirus 70 na regiao metropolitana de Sao Paulo, Brasil, de 1984 a 1987: aspectos da infeccao em periodos epidemico e endemico. Rev Inst Med Trop Sao Paulo 1990;32(3):221-8.</LI>    <!-- ref --><LI>Fields B, Knipe D. Virology. Diagnostic Virology. 2 ed. New York: Raven, 1990:411-40.</LI>    <!-- ref --><LI>Morgan-Capner P, Tedder RS, Mace JE. Rubella-specific IgM reactivity in sera from cases of infectious mononucleosis. J Hyg 1983;90:407-13.</LI>    </OL>      <P>Recibido: 2 de octubre de 1994. Aprobado: 10 de enero de 1995. </P>     <P>Dra. <I>Mar&iacute;a de los Angeles Ribas. </I>Instituto de Medicina Tropical "Pedro Kour&iacute;". Apartado 601, Marianao 13, Ciudad de La Habana, Cuba. </P>     ]]></body><back>
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