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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[This paper reported the appraisal of a novel thechnology for the detection of enterovirus in sewage based on a viral recovery method using polyethilenglycol as a concentrating agent and on the combined use of viral isolation and polymerase chain reaction as viral detection and identification techniques. It was also confirmed that the viral recovery method is highly efficient since it allows to recover all viruses present in sewage and to preserve their infective capacity. It was proved that the polymerase chain reaction (PCR) is less sensitive than cell culture for detecting enteroviruses in sewage. It is also possible to use guadinine isothiocyanate, whose components can be prepared in the lab, as an alternative method for taking out and purifying nucleic acids instead of using the conventional TRIZOL method wich is the one recommended in these cases by the World Health Organization.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[AGUAS RESIDUALES]]></kwd>
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<kwd lng="es"><![CDATA[REACCION EN CADENA POR POLIMERASA]]></kwd>
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<kwd lng="en"><![CDATA[POLYMERASE CHAIN REACTION]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <P>Instituto de Medicina Tropical "Pedro Kour&iacute;" </P> <H2>Valoraci&oacute;n de una novedosa tecnolog&iacute;a para la detecci&oacute;n de enterovirus en aguas negras</H2>     <P><A HREF="mtr05399.htm"><I>Lic. Luis Sarmiento P&eacute;rez,<SUP>1</SUP> Dr. Pedro M&aacute;s Lago,<SUP>2</SUP> Dra. Ivonne &Aacute;valos Red&oacute;n,<SUP>3</SUP> T&eacute;c. Rosa Palomera Puentes,<SUP>4</SUP> Dr. Julio Barrios Olivera<SUP>5</SUP> y Lic. Marit&eacute; Bello Corredor<SUP>6</sup></I></A> </P> <H4>Resumen</H4>     <P>Se report&oacute; la valoraci&oacute;n de una novedosa tecnolog&iacute;a para la detecci&oacute;n de enterovirus en aguas negras, basada en un m&eacute;todo de recuperaci&oacute;n viral que emplea el polietilenglicol como agente concentrador y el uso combinado del aislamiento viral y la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa, como t&eacute;cnicas de detecci&oacute;n e identificaci&oacute;n viral. Se confirm&oacute; que el m&eacute;todo de recuperaci&oacute;n viral es de alta eficiencia pues permite recuperar la totalidad de virus presentes en las aguas negras, y preservar su capacidad infectiva. Se demostr&oacute; que la reacci&oacute;n en cadena de polimerasa (RCP) es menos sensible que el cultivo celular para la detecci&oacute;n de enterovirus en aguas negras. Tambi&eacute;n el m&eacute;todo del isotiocianato de guanidina (GnTCN), cuyos componentes se pueden preparar en el laboratorio, es posible utilizarlo como alternativa para la extracci&oacute;n y purificaci&oacute;n de &aacute;cidos nucleicos en sustituci&oacute;n del m&eacute;todo comercial del TRIZOL, que es el recomendado por la Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud en estos casos. </P>     <P>Descriptores DeCS: AGUAS RESIDUALES/virolog&iacute;a; ENTEROVIRUS/aislamiento &amp; purificaci&oacute;n; REACCION EN CADENA POR POLIMERASA/m&eacute;todos. </P><DIR> <DIR>      <P>&nbsp;</P></DIR> </DIR>      <P>Poliomielitis anterior aguda o par&aacute;lisis infantil epid&eacute;mica son los t&eacute;rminos con que se ha denominado a la infecci&oacute;n aguda de la neurona motora de la m&eacute;dula espinal, que ha tenido como principales v&iacute;ctimas a los ni&ntilde;os. Los poliovirus son los agentes causales y cualquiera de sus 3 serotipos puede provocarla.<SUP>1</SUP> </P>     <P>Como resultado del empleo de las vacunas, tanto inactivas como atenuadas, los casos de esta enfermedad han disminuido considerablemente y en la actualidad el poliovirus salvaje se encuentra circunscripto a zonas geogr&aacute;ficas restringidas.<SUP>2</SUP> </P>     <P>Por causa de estos progresos la Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud (OMS) se ha planteado para el a&ntilde;o 2000 la erradicaci&oacute;n del poliovirus salvaje, mediante la inmunizaci&oacute;n en forma de programas mantenidos y d&iacute;as nacionales de inmunizaci&oacute;n (campa&ntilde;as masivas). Una vez alcanzada la meta trazada ser&aacute; necesario seguir una estrategia para suspender la administraci&oacute;n de la vacuna antipoliomiel&iacute;tica oral de virus vivo atenuado (VOP).<SUP>3</SUP> Esta estrategia debe tener en consideraci&oacute;n: el tiempo de circulaci&oacute;n y la permanencia en el medio ambiente del poliovirus vacunal, su regresi&oacute;n a variantes m&aacute;s virulentas y la r&aacute;pida acumulaci&oacute;n de poblaci&oacute;n susceptible. </P>     <P>La detecci&oacute;n de poliovirus vacunales en las aguas negras puede brindar una informaci&oacute;n muy valiosa sobre la circulaci&oacute;n de estos virus en la comunidad, ya que cantidades abundantes de poliovirus son excretadas en las heces fecales de las personas inmunizadas. Las aguas negras y otros desechos fecales pueden actuar como un veh&iacute;culo de infecci&oacute;n con las cepas vacunales, a la poblaci&oacute;n susceptible que se acumula en los meses siguientes a la suspensi&oacute;n de la VOP.<SUP>4</SUP> </P>     <P>Por estas razones, en el presente trabajo se propone la valoraci&oacute;n de una novedosa tecnolog&iacute;a para la detecci&oacute;n de enterovirus (EV) en aguas negras. </P> <H4>M&eacute;todos</H4> <H4>Muestra de aguas negras</H4>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Una muestra de 1 L de aguas alba&ntilde;ales fue colectada de una alcantarilla accesible seleccionada en la localidad de Punta Brava en la ciudad de La Habana, donde no exist&iacute;an contaminantes industriales que pudieran inactivar los virus. &Eacute;sta fue trasladada a 4 <SUP>o</SUP>C al laboratorio de enterovirus del Instituto de Medicina Tropical (IPK), donde se le adicionaron 0,4 mL de la cepa de poliovirus vacunal Sabin 1 con un t&iacute;tulo infectivo de 10-6TCID50/0,1 mL, previamente determinado por el m&eacute;todo descrito por Melnick y otros.<SUP>5</SUP> </P> <H4>Recuperaci&oacute;n del virus de las aguas negras</H4>     <P>La recuperaci&oacute;n viral a partir de las aguas negras se realiz&oacute; con la metodolog&iacute;a descrita por Shieh y otros.<SUP>6</SUP> De forma general el m&eacute;todo consisti&oacute; en una separaci&oacute;n inicial de los s&oacute;lidos contenidos en la muestra, que fueron tratados 2 veces con extracto de carne a 3 % y cloroformo para eluir part&iacute;culas virales asociadas con el material org&aacute;nico. El material resultante de este tratamiento fue unido con la muestra original y los virus fueron precipitados de esta soluci&oacute;n con cloruro de sodio 0,3N y polietilenglicol 6 000 a 8 %. Por &uacute;ltimo, el sedimento fue resuspendido con tamp&oacute;n fosfato salino (PBS) y extracto de carne a 3 % para obtener el virus concentrado en un volumen final de casi 6 mL. </P>     <P>Para determinar la cantidad de poliovirus recuperado por este m&eacute;todo se realizaron diluciones seriadas en base 10 (10-1 - 10-6) de la muestra concentrada con medio m&iacute;nimo esencial (MEM) en un volumen de 5 mL y se sometieron a 2 m&eacute;todos de detecci&oacute;n viral: el aislamiento viral y la amplificaci&oacute;n de &aacute;cidos nucleicos mediante la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (RCP). </P> <H4>Aislamiento viral</H4>     <P>La muestra concentrada y cada una de las diluciones correspondientes se inocularon por duplicado a raz&oacute;n de 200 mL por tubo en 2 sistemas celulares.     <BR> &nbsp; </P>  <UL>     <LI>C&eacute;lulas de l&iacute;nea de Rhabdomiosarcoma humano (RD) en el rango de pases del 253 al 258.7 </LI>     <LI>C&eacute;lulas de l&iacute;nea derivadas de la transfecci&oacute;n de la l&iacute;nea celular L de rat&oacute;n con el clon de ADNc (20B) del gen del receptor humano para poliovirus (L20B), en el rango de pases del 30 al 40.7,8 </LI>    </UL>      <P>Como controles celulares se dej&oacute; un tubo de cada sistema sin inocular. Los cultivos se incubaron a 37 <SUP>o</SUP>C y se realiz&oacute; la observaci&oacute;n diaria hasta detectarse el efecto citop&aacute;tico (ECP) caracter&iacute;stico de enterovirus. La identificaci&oacute;n de los aislamientos se realiz&oacute; mediante la RCP. </P> <H4>Amplificaci&oacute;n de &aacute;cidos nucleicos</H4>     <P>Extracci&oacute;n de &aacute;cido ribonucleico (ARN): Para la obtenci&oacute;n del ARN viral de la muestra concentrada y de cada una de las diluciones correspondientes se emplearon 2 metodolog&iacute;as. </P>  <UL>     ]]></body>
<body><![CDATA[<LI>M&eacute;todo del isotiocianato de guanidina (GnTCN): Se realiz&oacute; mediante el procedimiento empleado por Lanciotti y otros.<SUP>9</SUP> </LI>     <LI>M&eacute;todo del TRIZOL: Se utiliz&oacute; el m&eacute;todo del TRIZOL LS Reagent comercial (BRL life thecnologies) seg&uacute;n las instrucciones del fabricante. </LI>    </UL>      <P>RCP: Se tom&oacute; 1 <FONT FACE=Symbol>m</FONT> L de sobrenadante de cultivo celular o de ARN extra&iacute;do, y se adicion&oacute; a una mezcla de reacci&oacute;n, preparada en un volumen de 17 <FONT FACE=Symbol>m</FONT> L que conten&iacute;a 100 ng de cada uno de los cebadores a utilizar (tabla 1), tamp&oacute;n de amplificaci&oacute;n 10 x (tris HCl 67 mM y pH 8,8, NH<SUB>4</SUB>SO<SUB>4</SUB> 17 mM, EDTA 6 <FONT FACE=Symbol>m</FONT> M, MgCl<SUB>2</SUB> 2 mM, 2-mercaptoetanol 1 mM) y 100 mM de cada deoxinucle&oacute;tido trifosfatado (dATP, dGTP, dCTP, dTTP) (Pharmacia Biotech). Cada tubo de reacci&oacute;n se incub&oacute; durante 5 min a 95 <SUP>o</SUP>C en un bloque t&eacute;rmico (bioblock, Francia) para provocar la liberaci&oacute;n del ARN viral. Al concluir esta incubaci&oacute;n los tubos se colocaron inmediatamente en hielo y se adicionaron 32 <FONT FACE=Symbol>m</FONT>L de la mezcla de las enzimas que conten&iacute;a 5 U de inhibidor de Rnasa (Promega), 1,66 U de transcriptasa inversa AMV (Promega), 1,26 U de Taq ADN Polimerasa (Promega). Los tubos fueron puestos en un termociclador (PTC 100 TM. MJ Research, Inc. Watertown Mass.) a las temperaturas de 42 <SUP>o</SUP>C durante 20 min, para la transcripci&oacute;n inversa, a lo que siguieron 30 ciclos con temperaturas de 95 <SUP>o</SUP>C por 45 s, 55 <SUP>o</SUP>C por 45 s y 70 <SUP>o</SUP>C durante 45 s, por &uacute;ltimo, la mezcla de reacci&oacute;n se dej&oacute; durante 5 min a 70 <SUP>o</SUP>C.     <BR> &nbsp; </P>     <P ALIGN="CENTER">Tabla 1. Secuencia nucleot&iacute;dica y posici&oacute;n en el genoma de los cebadores</P>     <P ALIGN="CENTER">    <CENTER><TABLE CELLSPACING=0 BORDER=0 WIDTH=623> <TR><TD WIDTH="21%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">C&oacute;digo</TD> <TD WIDTH="24%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">Posici&oacute;n</TD> <TD WIDTH="55%" VALIGN="TOP">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="CENTER">Secuencia</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="21%" VALIGN="TOP">     <P>EV/RCP-1</TD> <TD WIDTH="24%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">(584-603)</TD> <TD WIDTH="55%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">5’ACCGACGAATACCACTGTTA 3'</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="21%" VALIGN="TOP">     <P>EV/RCP-2</TD> <TD WIDTH="24%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">(450-474)</TD> <TD WIDTH="55%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">5’CCTCCGGCCCCTGAATGCGGC TAAT 3'</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="21%" VALIGN="TOP">     <P>Sabin 1/RCP-1</TD> <TD WIDTH="24%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">(2584-2601)</TD> <TD WIDTH="55%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">5’TCCACTGGCTTCAGTGTT 3'</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="21%" VALIGN="TOP">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Sabin 1/RCP-2</TD> <TD WIDTH="24%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">(2505-2523)</TD> <TD WIDTH="55%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">5’AGGTCAGATGCTTGAAAGC 3</TD> </TR> </TABLE> </CENTER>    <p></P>      <P ALIGN="CENTER">EV/RCP1-2: Cebadores complementarios y paralelos que hibridan con sitios altamente conservados dentro de la regi&oacute;n 5’NTR del genoma de los enterovirus.     <BR> Sabin 1/RCP1-2: Cebadores complementarios y paralelos que permiten la amplificaci&oacute;n de secuencias de la zona VP1 de la cepa vacunal Sabin 1.</P>     <P>Para la detecci&oacute;n del producto amplificado se analizaron 10 mL de cada tubo de reacci&oacute;n en una electroforesis en gel de agarosa a 4 % con bromuro de etidio, a una concentraci&oacute;n final de 0,1-0,2 mg/mL. </P> <H4>Resultados</H4> <H4>Aislamiento viral</H4>     <P>Se obtuvo ECP hasta la diluci&oacute;n 10<SUP>-6</SUP>, tanto en las c&eacute;lulas RD como en las L20B. Al identificar estos aislamientos mediante la RCP se pudo demostrar la presencia de agentes virales del g&eacute;nero enterovirus, por la obtenci&oacute;n de bandas de 154 pb con los cebadores EV/RCP-1 y EV/RCP-210 en ambas l&iacute;neas celulares. Se pudo corroborar adem&aacute;s que la cepa de Sabin 1 era la responsable del ECP producido, por la obtenci&oacute;n de bandas de 97 pb en todas las diluciones con los cebadores Sabin 1/RCP-1 y Sabin 1/RCP-211 en ambas l&iacute;neas celulares (tabla 2). </P>     <P ALIGN="CENTER">Tabla 2. Resultados de los aislamientos y su identificaci&oacute;n por RCP</P>     <P ALIGN="CENTER">    ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER><TABLE CELLSPACING=0 BORDER=0 WIDTH=623> <TR><TD WIDTH="17%" VALIGN="TOP" HEIGHT=95>     <P>    <BR> &nbsp;     <BR> &nbsp; </P>     <P>Diluciones</TD> <TD WIDTH="27%" VALIGN="TOP" COLSPAN=2 HEIGHT=95>     <P>    <BR> &nbsp; </P>     <P ALIGN="CENTER">Aislamiento&nbsp;     <BR> RD L20b RD</TD> <TD WIDTH="23%" VALIGN="TOP" COLSPAN=2 HEIGHT=95>     <P ALIGN="CENTER">EV/RCP-1&nbsp;     ]]></body>
<body><![CDATA[<BR> EV/RCP-2&nbsp;     <BR> RD L20b&nbsp;</TD> <TD WIDTH="17%" VALIGN="TOP" HEIGHT=95>     <P ALIGN="CENTER">Sabin&nbsp;     <BR> Sabin&nbsp;     <BR> RD</TD> <TD WIDTH="16%" VALIGN="TOP" HEIGHT=95>     <P ALIGN="CENTER">1/RCP-1&nbsp;     <BR> 1/RCP-2&nbsp;     <BR> L20b</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="17%" VALIGN="TOP">     <P>Puro</TD> <TD WIDTH="13%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="11%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+&nbsp;</TD> <TD WIDTH="11%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="17%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="16%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="17%" VALIGN="TOP">     <P>10-1</TD> <TD WIDTH="13%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="11%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+&nbsp;</TD> <TD WIDTH="11%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="17%" VALIGN="TOP">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="16%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="17%" VALIGN="TOP">     <P>10-2</TD> <TD WIDTH="13%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="11%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="11%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="17%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="16%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="17%" VALIGN="TOP">     <P>10-3</TD> <TD WIDTH="13%" VALIGN="TOP">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="11%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="11%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="17%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="16%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="17%" VALIGN="TOP">     <P>10-4</TD> <TD WIDTH="13%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="11%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+&nbsp;</TD> <TD WIDTH="11%" VALIGN="TOP">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="17%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="16%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="17%" VALIGN="TOP">     <P>10-5</TD> <TD WIDTH="13%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="11%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+&nbsp;</TD> <TD WIDTH="11%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="17%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="16%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="17%" VALIGN="TOP">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>10-6</TD> <TD WIDTH="13%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="14%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="11%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+&nbsp;</TD> <TD WIDTH="11%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="17%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> <TD WIDTH="16%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">+</TD> </TR> </TABLE> </CENTER>    <p></P>  <H4 ALIGN="CENTER">&nbsp;</H4> <H4 ALIGN="CENTER">Amplificaci&oacute;n de &aacute;cidos nucleicos</H4>     <P>Los resultados de la detecci&oacute;n de poliovirus presentes en la muestra de aguas alba&ntilde;ales mediante la RCP, con el uso de los 2 m&eacute;todos de extracci&oacute;n de &aacute;cidos nucleicos se muestran a continuaci&oacute;n. </P>  <UL>     <LI>GnTCN-RCP: Se obtuvieron bandas de amplificaci&oacute;n de 154 pb hasta la diluci&oacute;n 10-1 con los cebadores EV/RCP-1 y EV/RCP-2, y de 97 pb hasta la diluci&oacute;n 10-1 con los cebadores Sabin 1/RCP-1 y Sabin 1/RCP-2 (fig. 1A). </LI>     ]]></body>
<body><![CDATA[<LI>TRIZOL-RCP: Se obtuvieron fragmentos amplificados hasta la diluci&oacute;n 10-1 para los cebadores de Rotbart y hasta la diluci&oacute;n 10-2 para los cebadores de Yang (fig. 1B). </LI>    </UL>      <P ALIGN="CENTER"><A HREF="/img/revistas/mtr/v51n3/f0105399.gif"><IMG SRC="/img/revistas/mtr/v51n3/f0105399.gif" BORDER=0 WIDTH=241 HEIGHT=179 ALT="Figura 1"></A></P>     
<P ALIGN="CENTER">Leyenda: M: Patr&oacute;n de peso molecular; P: productos de amplificaci&oacute;n de la muestra concentrada; 1, 2, 3, 4, 5, 6:     <BR> productos de amplificaci&oacute;n de las diluciones en base 10 (10-1 - 10-6) de la muestra concentrada     <BR> respectivamente: N: control celular; R: control de reactivos.     <BR> Fig.1. Eficiencia del m&eacute;todo de concentraci&oacute;n viral a partir de aguas negras     <BR> mediante la RCP. Parte superior de la figura, con el uso los cebadores EV/RCP-1     <BR> y EV/RCP-2 y parte inferior, utilizando los cebadores Sabin 1/RCP-1     <BR> y Sabin 1/RCP-2. A: M&eacute;todo del GnTCN-RCP. B: M&eacute;todo del TRIZOL-RCP.</P> <H4>&nbsp;Discusi&oacute;n</H4>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Han pasado m&aacute;s de 45 a&ntilde;os desde que se iniciaron los primeros estudios intensivos sobre la presencia de virus ent&eacute;ricos humanos en el agua.<SUP>12</SUP> Muchos estudios en aguas negras han demostrado la prevalencia estacional de los poliovirus, fundamentalmente en &eacute;pocas de lluvia y su persistencia en este medio por algunos meses. En estos estudios se han usado distintos m&eacute;todos que permiten concentrar los virus a partir de las muestras de agua como son la adsorci&oacute;n directa, floculaci&oacute;n f&iacute;sico-qu&iacute;mica directa, hidroextracci&oacute;n, ultrafiltraci&oacute;n y separaci&oacute;n en 2 fases.<SUP>13</SUP> </P>     <P>En Cuba, en particular, se han efectuado investigaciones que indican de forma aproximada el tiempo de permanencia y circulaci&oacute;n del poliovirus en la poblaci&oacute;n; no obstante, no se ha definido con exactitud el tiempo de circulaci&oacute;n y permanencia en el medio ambiente.<SUP>14 </SUP>Estos estudios se han basado en la b&uacute;squeda de dichos agentes en aguas negras mediante el m&eacute;todo de adsorci&oacute;n-eluci&oacute;n con sales de calcio, seguido del aislamiento en c&eacute;lulas Vero7 y MRC-57 e identificaci&oacute;n con sueros hiperinmunes a poliovirus.<SUP>15</SUP> </P>     <P>Para estudiar el comportamiento de los poliovirus vacunales en el ambiente, en el presente trabajo se propuso la valoraci&oacute;n de una novedosa tecnolog&iacute;a basada en un m&eacute;todo de recuperaci&oacute;n viral, con el empleo del polietilenglicol como agente concentrador y el uso combinado del aislamiento viral y la RCP como t&eacute;cnicas de detecci&oacute;n e identificaci&oacute;n viral. </P>     <P>Se evalu&oacute; la eficiencia del m&eacute;todo de recuperaci&oacute;n viral mediante la determinaci&oacute;n de la cantidad de poliovirus recuperado a partir de 1 L de aguas negras con una cantidad conocida de virus. </P>     <P>El aislamiento se realiz&oacute; mediante las c&eacute;lulas RD y un nuevo sistema celular, las c&eacute;lulas L20B, que son altamente espec&iacute;ficas para poliovirus. Los resultados obtenidos en las c&eacute;lulas RD indicaron que agentes virales del g&eacute;nero enterovirus son responsables de los ECP obtenidos en cada una de las diluciones. Sin embargo, las c&eacute;lulas RD permitieron la multiplicaci&oacute;n de un amplio n&uacute;mero de enterovirus presentes en las aguas alba&ntilde;ales, por lo que los ECP en este sistema celular no representaron la presencia de poliovirus en la muestra. </P>     <P>Por otro lado, el resultado obtenido con las c&eacute;lulas L20B permiti&oacute; plantear que la presencia de poliovirus en la muestra concentrada era la responsable de los efectos obtenidos en cada una de las diluciones, pues las c&eacute;lulas L20B expresan el receptor humano para poliovirus y por tanto son susceptibles s&oacute;lo a la infecci&oacute;n por esos agentes. </P>     <P>Para corroborar estos hallazgos se procedi&oacute; a la identificaci&oacute;n de los aislamientos mediante el sistema de RCP con cebadores universales del g&eacute;nero EV y cebadores espec&iacute;ficos a la cepa Sabin 1. Los resultados de estos ensayos coincidieron con los obtenidos en ambas l&iacute;neas celulares y permitieron afirmar que la presencia de la cepa de Sabin 1 en la muestra de aguas negras concentrada era la responsable de los ECP obtenidos, tanto en las c&eacute;lulas RD como las L20B. </P>     <P>De esta forma se demostr&oacute; que el m&eacute;todo de recuperaci&oacute;n de virus a partir de las aguas alba&ntilde;ales es altamente eficiente, pues brinda la posibilidad de recuperar la totalidad de virus en la muestra y preservar su capacidad infectiva. Estos resultados tienen una extraordinaria importancia pues numerosos estudios que utilizan los enterovirus como modelos, han demostrado que el tratamiento de las aguas negras no siempre es efectivo, y en muchos casos se obtiene una reducci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de virus.<SUP>16</SUP> </P>     <P>Al aplicar la RCP como m&eacute;todo de detecci&oacute;n de virus directamente en las aguas negras, se obtuvieron resultados que no est&aacute;n en correspondencia con los que deben esperarse al relacionar la sensibilidad del sistema<SUP>17 </SUP>y los resultados del aislamiento. Esta diferencia puede ser por causa de la presencia en las aguas negras de una gran cantidad de inhibidores de la amplificaci&oacute;n, entre los que se pueden citar: compuestos org&aacute;nicos y fen&oacute;licos, metales pesados, urea y extractos bacterianos,<SUP>18,19</SUP> que pueden actuar en uno o m&aacute;s pasos esenciales de la reacci&oacute;n de amplificaci&oacute;n, ya sea al provocar interferencia con la extracci&oacute;n de &aacute;cidos nucleicos, degradarlos o impedir la actividad de las enzimas necesarias para la reacci&oacute;n.<SUP>20</SUP> </P>     <P>Aunque se aplicaron 2 m&eacute;todos de extracci&oacute;n de &aacute;cidos nucleicos que usan reactivos potentes inhibidores de las Rnasas,<SUP>9</SUP> el m&eacute;todo de recuperaci&oacute;n viral no elimina todos los inhibidores de la amplificaci&oacute;n, lo que trae como consecuencia los niveles tan bajos de detecci&oacute;n viral encontrados en la RCP con respecto al aislamiento viral. Este resultado est&aacute; en correspondencia con el de otros investigadores si se tiene en cuenta que la presencia de inhibidores de la RCP es un hecho frecuente, encontrado en la mayor&iacute;a de los m&eacute;todos de recuperaci&oacute;n viral a partir de aguas negras reportados en la literatura.<SUP>6,21,22</SUP> </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Es de destacar que con ambos m&eacute;todos de extracci&oacute;n de &aacute;cidos nucleicos se obtuvieron resultados similares. Esto es de gran importancia pues permite que el m&eacute;todo del GnTCN, cuyos componentes se pueden preparar en el laboratorio, se pueda utilizar como alternativa para la extracci&oacute;n y purificaci&oacute;n de &aacute;cidos nucleicos a partir de muestras de aguas negras, en sustituci&oacute;n del m&eacute;todo comercial del TRIZOL que es el recomendado por la OMS en estos casos. La diferencia en los l&iacute;mites de detecci&oacute;n al utilizar los cebadores Sabin 1 y EV puede ser explicada por la sensibilidad reportada para cada uno.<SUP>10,11</SUP> </P>     <P>Por &uacute;ltimo es necesario aclarar, que estos resultados no indican que la RCP se deje de utilizar como m&eacute;todo de detecci&oacute;n viral a partir de aguas negras. Tanto el aislamiento viral como la RCP deben ser utilizados para estudiar el comportamiento del poliovirus vacunal en el ambiente. Con el cultivo celular podemos detectar la presencia de virus infectivo en las aguas negras, esto es una alerta pues si el virus persiste en esta forma por largo tiempo en el ambiente, se corre el riesgo de que circulen en la poblaci&oacute;n susceptible que se acumula despu&eacute;s de suspendida la vacunaci&oacute;n y reviertan a sus formas virulentas. Sin embargo, el cultivo celular no brinda toda la informaci&oacute;n necesaria sobre el comportamiento del virus en el ambiente, pues con la obtenci&oacute;n de un cultivo celular negativo no se puede discernir si es por causa de la ausencia de poliovirus en la muestra o a la presencia de &eacute;ste, pero sin capacidad infectiva. Con la RCP se pudiera llegar a demostrar, que las cepas de poliovirus vacunales pueden persistir en el ambiente sin capacidad infectiva, lo cual ser&iacute;a extremadamente valioso pues de esta forma se elimina el riesgo de que circulen en la poblaci&oacute;n susceptible. </P>     <P>Los resultados de la evaluaci&oacute;n de esta novedosa tecnolog&iacute;a para la detecci&oacute;n de EV en aguas negras demuestran que puede ser utilizada para estudiar la persistencia del poliovirus vacunal en el ambiente y poder brindar conocimientos b&aacute;sicos que le permitan a la OMS formular una estrategia mundial para la interrupci&oacute;n de la VOP una vez erradicada en el mundo la circulaci&oacute;n del poliovirus salvaje. Adem&aacute;s la tecnolog&iacute;a queda disponible para acometer cualquier estudio relacionado con la circulaci&oacute;n de enterovirus en el ambiente. </P> <H4>Summary</H4>     <P>This paper reported the appraisal of a novel thechnology for the detection of enterovirus in sewage based on a viral recovery method using polyethilenglycol as a concentrating agent and on the combined use of viral isolation and polymerase chain reaction as viral detection and identification techniques. It was also confirmed that the viral recovery method is highly efficient since it allows to recover all viruses present in sewage and to preserve their infective capacity. It was proved that the polymerase chain reaction (PCR) is less sensitive than cell culture for detecting enteroviruses in sewage. It is also possible to use guadinine isothiocyanate, whose components can be prepared in the lab, as an alternative method for taking out and purifying nucleic acids instead of using the conventional TRIZOL method wich is the one recommended in these cases by the World Health Organization. </P>     <P>Subject headings: SEWAGE/virology; ENTEROVIRUS/isolation and purification; POLYMERASE CHAIN REACTION/methods. </P> <H4>Referencias bibliogr&aacute;ficas</H4> <OL>      <!-- ref --><LI>Melnick JL. Enterovirus: Poliovirus, Coxsackievirus, Echovirus and newer enteroviruses. En: Fields BN, Knipe DM. Virology. 2nd ed. New York: Raven, 1990;549-609.</LI>    <!-- ref --><LI>Olen MK, Mick NM, Galina YL, Edson ES, Mark AP. Molecular epidemiology of poliovirus Semin Virol 1995;6:401-14.</LI>    <!-- ref --><LI>Cochi SL, Hull HF, Sutter RW, Wilfert CM, Katz SL. Commentary: the unfolding story of global Poliomielitis eradication. 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<body><![CDATA[<BR> Lic. <I>Luis Sarmiento P&eacute;rez</I>. Instituto de Medicina Tropical "Pedro Kour&iacute;". Apartado 601, Marianao 13, Ciudad de La Habana, Cuba.     <BR> &nbsp;     <BR> &nbsp; </P><DIR>      <P><SUP><A NAME="BM_"></A>1</sup> M&aacute;ster en Virolog&iacute;a. Licenciado en Microbiolog&iacute;a. Aspirante a Investigador.     <BR> <SUP>2</SUP> Doctor en Ciencias M&eacute;dicas. Especialista de II Grado en Microbiolog&iacute;a. Investigador de M&eacute;rito.     <BR> <SUP>3 </SUP>M&aacute;ster en Virolog&iacute;a. Especialista de I Grado en Microbiolog&iacute;a.     <BR> <SUP>4</SUP> T&eacute;cnica en Microbiolog&iacute;a.     <BR> <SUP>5 </SUP>Especialista de I Grado en Microbiolog&iacute;a.     <BR> <SUP>6 </SUP>M&aacute;ster en Virolog&iacute;a. Licenciada en Microbiolog&iacute;a. Investigadora Auxiliar.     <BR> &nbsp;</P></DIR>     ]]></body>
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