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<publisher-name><![CDATA[Centro Nacional de Información de Ciencias Médicas]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Identificación de una proteasa neutra en intestino de Boophilus microplus por electroforesis en geles de poliacrilamida copolimerizados con gelatina]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto de Medicina Tropical Pedro Kourí  ]]></institution>
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<self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0375-07602000000300002&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0375-07602000000300002&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0375-07602000000300002&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Se realizó la identificación de una actividad neutra en intestino de Boophilus microplus por electroforesis en geles de poliacrilamida copolimerizados con gelatina, y el máximo de actividad se obtuvo a pH 6,0. Con el sustrato caseína, se obtuvo la mayor actividad específica a ese pH. La desaparición de esta actividad fue demostrada para ambos sustratos después de la adición de fluoruro de fenil metil sulfonilo en las mezclas de reacción. Resulta muy interesante encontrar una actividad endopeptidasa con estas características en el intestino, a pesar de que la actividad digestiva en garrapatas es intracelular a pH muy ácido, a diferencia de los insectos.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[A neutral activity of Boophilus microplus in the intestine was identified by electrophoresis in polyacrilamide gel copolymerized with gelatin. The maximum of activity was attained at pH 6.0. The highest specific activity at that pH was obtained with casein substrate. The disappearance of this activity was observed in both substrates after the addition of phenylmethylsulphonyl fluoride in the reaction mixtures. It was very interesting to find out an endopeptidase activity with these characteristics in the intestine, in spite of the fact that the digestive activity in ticks is intracellular at very acid pH, which does not occur in other insects.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[ELECTROFORESIS EN GEL DE POLIACRILAMIDA]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <P>&nbsp;</P>     <P>Instituto de Medicina Tropical "Pedro Kour&iacute;" </P> <H2>Identificaci&oacute;n de una proteasa neutra en intestino de <I>Boophilus microplus</I> por electroforesis en geles de poliacrilamida copolimerizados con gelatina</H2>     <P><A HREF="#x"><I>Lic. Hilda M. Hern&aacute;ndez &Aacute;lvarez,<SUP>1</SUP> Lic. Judith Mendiola Mart&iacute;nez,<SUP>1</SUP> Lic. Aym&eacute; Fern&aacute;ndez-Calienes<SUP>2</SUP> y Lic. Mario Vald&eacute;z<SUP>3</sup></I></A> </P> <H4>RESUMEN</H4>     <P>Se realiz&oacute; la identificaci&oacute;n de una actividad neutra en intestino de <I>Boophilus microplus</I> por electroforesis en geles de poliacrilamida copolimerizados con gelatina, y el m&aacute;ximo de actividad se obtuvo a pH 6,0. Con el sustrato case&iacute;na, se obtuvo la mayor actividad espec&iacute;fica a ese pH. La desaparici&oacute;n de esta actividad fue demostrada para ambos sustratos despu&eacute;s de la adici&oacute;n de fluoruro de fenil metil sulfonilo en las mezclas de reacci&oacute;n. Resulta muy interesante encontrar una actividad endopeptidasa con estas caracter&iacute;sticas en el intestino, a pesar de que la actividad digestiva en garrapatas es intracelular a pH muy &aacute;cido, a diferencia de los insectos. </P>     <P><B>Descriptores DeCS</b>: ELECTROFORESIS EN GEL DE POLIACRILAMIDA/m&eacute;todos; GARRAPATAS/enzimolog&iacute;a; PEPTIDO PEPTIDO-HIDROLASAS/an&aacute;lisis; INTESTINOS. </P>     <P><I>Boophilus microplus</i> es un ectopar&aacute;sito del ganado, vector de hemopar&aacute;sitos como <I>Babesia sp.</I> y <I>Anaplasma sp</I>., que causa p&eacute;rdidas econ&oacute;micas significativas en &aacute;reas tropicales y subtropicales. </P>     <P>El intestino en garrapatas, es el sitio donde tiene lugar el proceso de digesti&oacute;n, de donde se obtienen la masa y la energ&iacute;a necesarias para la realizaci&oacute;n de m&uacute;ltiples procesos fisiol&oacute;gicos.<SUP>1</SUP> Los estudios realizados en <I>Rhiphicephalus sanguineus</I> y <I>Dermacentor variabilis</I> han demostrado que el est&oacute;mago es uno de los sitios de s&iacute;ntesis de vitelogenina,<SUP>2,3</SUP> la que es transportada al ovario v&iacute;a hemolinfa y convertida en vitelina, constituyente del huevo; adem&aacute;s de constituir una v&iacute;a de penetraci&oacute;n de microorganismos al interior de la garrapata.<SUP>4</SUP> </P>     <P>En 1983, <I>Raikhel</I><SUP>5</SUP> plante&oacute; que las garrapatas ix&oacute;didas se caracterizan por una combinaci&oacute;n de 3 tipos de digesti&oacute;n: externa, del lumen intra-intestinal, e intracelular. La fase digestiva externa ocurre mediante el efecto l&iacute;tico de la saliva; la segunda o intraluminal se limita a una lisis m&aacute;s completa de las c&eacute;lulas sangu&iacute;neas a trav&eacute;s de las secreciones de c&eacute;lulas secretoras; la intracelular ocurre en las c&eacute;lulas digestivas especializadas y tiene un papel dominante, ya que los componentes sangu&iacute;neos sufren hidr&oacute;lisis completa. </P>     <P>Sin embargo, diferentes autores est&aacute;n en desacuerdo en que s&iacute; ocurre digesti&oacute;n en el lumen intestinal. La presencia de amino&aacute;cidos libres en el lumen intestinal<SUP>6</SUP> y en el material fecal<SUP>7</SUP> en garrapatas se ha utilizado para sugerir la presencia de digesti&oacute;n en el lumen intestinal;<SUP>8</SUP> aunque, la fuente de estos amino&aacute;cidos puede ser la sangre del hospedero o c&eacute;lulas digestivas lisadas. Una enzima que pueda funcionar en el lumen intestinal de las garrapatas no ha sido todav&iacute;a identificada,<SUP>9</SUP> dado que el pH de los contenidos intestinales es 6,3 - 6,5<SUP>10</SUP> y lo que s&iacute; ha sido demostrado es que la digesti&oacute;n de prote&iacute;nas ocurre a pH &aacute;cido mediante asp&aacute;rtico proteinasas que son inactivas por encima de pH 6,0.<SUP>11,12</SUP> </P>     <P>En la &uacute;ltima d&eacute;cada el estudio de las serino proteinasas en artr&oacute;podos ha despertado gran inter&eacute;s por constituir mediadores esenciales de ciertos procesos fisiol&oacute;gicos.<SUP>13</SUP> Se ha demostrado que estas proteinasas est&aacute;n involucradas en la digesti&oacute;n del alimento dentro del intestino, en la activaci&oacute;n de la cascada de la fenoloxidasa en respuesta a las infecciones microbianas, en la destoxificaci&oacute;n de agentes nocivos como los insecticidas y en la modulaci&oacute;n del desarrollo embrionario. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>En el presente reporte se describe el hallazgo de una actividad endopeptidasa neutra de <I>B. microplus</I> por electroforesis en geles de poliacrilamida copolimerizados con gelatina.     <BR> &nbsp; </P> <H4>&nbsp;M&Eacute;TODOS</H4>     <P>Las garrapatas utilizadas en el estudio corresponden a una cepa de campo, libre de <I>Ba-besia sp.,</I> mantenidas en los laboratorios del Centro Nacional de Parasitolog&iacute;a Veterinaria por pases sucesivos en ganado Holstein. Posterior a la infestaci&oacute;n del bovino con larvas, las garrapatas repletas fueron colectadas y se les realiz&oacute; la disecci&oacute;n en salina fisiol&oacute;gica a 4 &amp;deg;C y el extracto fue preparado seg&uacute;n la metodolog&iacute;a descrita por <I>Mendiola</I> y otros en 1996.<SUP>12</SUP> </P>     <P>Un extracto crudo de c&eacute;lulas rojas fue preparado seg&uacute;n la metodolog&iacute;a descrita por <I>Pontremoli</I> y otros en 1979.<SUP>14</SUP> La concentraci&oacute;n de hemoglobina fue determinada para esta muestra y para el extracto crudo de garrapata seg&uacute;n la metodolog&iacute;a descrita por <I>Dacie</I> y <I>Lewis</I> en 1968.<SUP>15</SUP> </P>     <P>La actividad proteinasa fue detectada en geles de poliacrilamida 10 % impregnados en gelatina 0,1 % seg&uacute;n la metodolog&iacute;a descrita por <I>Heussen</I> y <I>Dowdle</I> en 1980.<SUP>16</SUP> Las muestras fueron diluidas en el tamp&oacute;n muestra (xilene cianol 0,02 % en sacarosa 15 %) a temperatura ambiente. El tamp&oacute;n de corrida empleado fue tris-borato 0,045 mol y EDTA 0,001 mol, pH 8,0 a 4 &amp;deg;C. Despu&eacute;s de transcurrida la electroforesis el gel fue cortado en tiras, y estas fueron incubadas durante la noche a 37 &amp;deg;C en los diferentes tampones (tamp&oacute;n fosfato dis&oacute;dico a pH 5,0, 6,0 y 7,0 y en tamp&oacute;n tris-clorh&iacute;drico a pH 8,0 y 9,0). Despu&eacute;s de la incubaci&oacute;n, las tiras fueron te&ntilde;idas en azul de Coomassie 0,1 % en fijador (metanol 40 % y &aacute;cido ac&eacute;tico 10 %) por 30 min y decolorados en metanol-&aacute;cido ac&eacute;tico-agua (5:1:5). </P>     <P>El ensayo enzim&aacute;tico frente a diferentes sustratos naturales (hemoglobina bovina, alb&uacute;mina de suero bovino, case&iacute;na, IgG, elastina y col&aacute;geno tipo II) se realiz&oacute; seg&uacute;n el m&eacute;todo de Anson modificado por <I>Barrett</I> en 1970.<SUP>17</SUP> </P>     <P>En el estudio de inhibici&oacute;n se incluy&oacute; pepstatin, 14 &amp;micro;mol; trans-epoxisuccinil-L-leucilamino (4-gua-nidino) - butano (E-64), 200 &amp;micro;mol; &aacute;cido etilen-diaminotetraac&eacute;tico (EDTA), 10 mmol; 1-10 fenantrolina, 5 mmol y fluoruro de fenil metil sulfonilo (PMSF), 4 mmol por separado, en la mezcla de reacci&oacute;n. Para ello se preincubaron, 50 &amp;micro;L del extracto crudo, 50 &amp;micro;L del tamp&oacute;n de ensayo trisclorh&iacute;drico pH 6,0, 50 &amp;micro;L de agua destilada y 10 &amp;micro;L de la soluci&oacute;n del inhibidor durante 1 h a 25 &amp;deg;C, previo al ensayo enzim&aacute;tico. En el ensayo de inhibici&oacute;n en geles de poliacrilamida copolimerizados con gelatina, 10 &amp;micro;L del extracto crudo, 10 &amp;micro;L del tamp&oacute;n muestra y 2 &amp;micro;L del inhibidor fueron incubados 1 h a 25 &amp;deg;C antes de aplicar la muestra. La electroforesis se realiz&oacute; seg&uacute;n se describi&oacute; anteriormente. Las tiras fueron incubadas durante la noche en el tamp&oacute;n triscloh&iacute;drico pH 6,0 con cada uno de los inhibidores mencionados. </P> <H4>RESULTADOS</H4>     <P>En los estudios de actividad proteol&iacute;tica sobre gelatina se obtuvo una banda gelatinol&iacute;tica a los pH 6,0; 7,0 y 8,0; el m&aacute;ximo de actividad se obtuvo a pH 6,0 (fig. 1). La desaparici&oacute;n de esa actividad fue demostrada s&oacute;lo despu&eacute;s de la adici&oacute;n de PMSF, no sucedi&oacute; as&iacute; para el resto de los inhibidores estudiados, lo que sugiri&oacute; la presencia de una actividad serino dependiente en el extracto. La presencia de hemoglobina, como indicador de la contaminaci&oacute;n con prote&iacute;nas sangu&iacute;neas en el extracto, fue despreciable. </P>     <P>Con el sustrato case&iacute;na se obtuvo la actividad espec&iacute;fica m&aacute;s alta a diferencia del resto de los sustratos ensayados (tabla). Estos resultados apuntan a favor de la selectividad de la actividad neutra en cuanto a la hidr&oacute;lisis de sustratos naturales. La hidr&oacute;lisis de case&iacute;na en presencia del extracto crudo fue inhibida por PMSF en 85 % y con EDTA y 1-10 fenantrolina en 25 % (fig. 2). Del estudio del perfil de inhibici&oacute;n frente a este sustrato se deriv&oacute; tambi&eacute;n la presencia de una actividad fundamentalmente del tipo serino dependiente. </P>     <P ALIGN="CENTER"><A HREF="/img/revistas/mtr/v52n3/f201300.gif"><IMG SRC="/img/revistas/mtr/v52n3/f201300.gif" BORDER=0></A></P>     
]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="CENTER"><B>Fig. 1.</b> Efecto del pH sobre la actividad proteol&iacute;tica en intestino de <I>Boophilus microplus</I> con el empleo de gelatina como sustrato. A: pH 5, B: pH 6, C: pH 7, D: pH 8, E: pH 9. </P>     <P ALIGN="CENTER"><A HREF="/img/revistas/mtr/v52n3/f202300.gif"><IMG SRC="/img/revistas/mtr/v52n3/f202300.gif" BORDER=0></A></P>     
<P ALIGN="CENTER"><B>Fig. 2.</b> Efecto de inhibidores sobre la actividad proteol&iacute;tica en intestino de <I>Boophilus microplus</I> con el empleo de case&iacute;na como sustrato. </P>     <P ALIGN="CENTER"><B>TABLA.</b> <I>Actividad proteol&iacute;tica neutra de extractos crudos de Boophilus microplus sobre sustratos espec&iacute;ficos</I> </P>     <P ALIGN="CENTER">    <CENTER><TABLE CELLSPACING=0 BORDER=0 CELLPADDING=4 WIDTH=624> <TR><TD WIDTH="50%" VALIGN="TOP">     <P>Sustratos&nbsp;</TD> <TD WIDTH="50%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">Actividad espec&iacute;fica<SUP>*</SUP></TD> </TR> <TR><TD WIDTH="50%" VALIGN="TOP">     <P>IgG bovina</TD> <TD WIDTH="50%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">0,09</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="50%" VALIGN="TOP">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Elastina</TD> <TD WIDTH="50%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">0,04</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="50%" VALIGN="TOP">     <P>Alb&uacute;mina</TD> <TD WIDTH="50%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">0,05</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="50%" VALIGN="TOP">     <P>Case&iacute;na</TD> <TD WIDTH="50%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">1,53</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="50%" VALIGN="TOP">     <P>Hemoglobina</TD> <TD WIDTH="50%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">0,15</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="50%" VALIGN="TOP">     <P>Col&aacute;geno tipo II</TD> <TD WIDTH="50%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">0,04</TD> </TR> </TABLE> </CENTER>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p></P>      <P ALIGN="CENTER">* Micromoles de L-Tirosina/min/mg</P> <H4>DISCUSI&Oacute;N</H4>     <P>Resulta muy interesante encontrar una actividad endopeptidasa con estas caracter&iacute;sticas en el intestino a pesar de que la actividad digestiva en garrapata es intracelular a pH muy &aacute;cido, a diferencia de los insectos. Sin embargo su especificidad de sustrato habla a favor de diferencias marcadas con las actividades semejantes a tripsina y quimotripsina que se presentan en el intestino de la mayor&iacute;a de los insectos, pues las actividades espec&iacute;ficas frente a hemoglobina y seroalb&uacute;mina bovinas, prote&iacute;nas principales en la digesti&oacute;n de sangre intraluminal de todo artr&oacute;podo hemat&oacute;fago, fueron significativamente menores. Las hembras adultas en estadios previos al engorde r&aacute;pido presentan tambi&eacute;n esta actividad caseinol&iacute;tica a niveles considerablemente mayores que la adulta repleta, a pesar de que las ingestas de sangre de ambos estadios son significativamente diferentes (resultados no mostrados). </P>     <P>Una de las actividades reportadas por el grupo de trabajo de este estudio en intestino de hembras adultas de <I>Boophilus microplus</I> mediante el estudio de hidr&oacute;lisis de p&eacute;ptidos sint&eacute;ticos, corresponde a una actividad endopeptidasa neutra semejante a catepsina G.<SUP>12 </SUP>Si ambas actividades se encuentran sobre una misma mol&eacute;cula; lo que solo podr&aacute; confirmarse a trav&eacute;s del aislamiento y purificaci&oacute;n de enzimas; se podr&iacute;a esperar que en el epitelio intestinal estas actividades neutras tambi&eacute;n est&eacute;n asociadas con gr&aacute;nulos, como sucede en los leucocitos de la m&eacute;dula &oacute;sea de vertebrados. </P>     <P>M&aacute;s recientemente <I>Kanost</I> &amp; <I>Jiang</I><SUP>18</SUP> aislaron clones de cDNA de 2 serino proteinasas de una librer&iacute;a de cDNA de hemocitos de <I>Manduca sexta</I> con secuencias similares a las enzimas de los granulocitos de vertebrados. Sin embargo, su funci&oacute;n a&uacute;n no se ha definido. </P>     <P>Han sido descritas 6 tipos de c&eacute;lulas en el intestino de garrapatas: c&eacute;lulas de reemplazo, las c&eacute;lulas digestivas, las c&eacute;lulas secretoras, las c&eacute;lulas indiferenciadas, las c&eacute;lulas endocrinas y las c&eacute;lulas vitelog&eacute;nicas. Todas ellas con excepci&oacute;n de las c&eacute;lulas vitelog&eacute;nicas han sido distinguidas solamente por su morfolog&iacute;a.<SUP>19</SUP> As&iacute; ning&uacute;n producto de las c&eacute;lulas secretoras ha sido identificado; ni se conoce el papel del producto secretado en alg&uacute;n proceso fisiol&oacute;gico.<SUP>2</SUP> </P>     <P>En la medida en que se disponga de anticuerpos contra las enzimas purificadas, la microscopia electr&oacute;nica con la utilizaci&oacute;n de conjugados de prote&iacute;na A-oro coloidal u otras t&eacute;cnicas inmunohistoqu&iacute;micas permitir&aacute; conocer la localizaci&oacute;n precisa de los ant&iacute;genos en los niveles celular y subcelular. Trabajos futuros son necesarios para profundizar en el conocimiento del papel que desempe&ntilde;an estas endopeptidasas neutras en la fisiolog&iacute;a de la garrapata. </P> <B>    <P>SUMMARY</P></B>      <P>A neutral activity of <I>Boophilus microplus</I> in the intestine was identified by electrophoresis in polyacrilamide gel copolymerized with gelatin. The maximum of activity was attained at pH 6.0. The highest specific activity at that pH was obtained with casein substrate. The disappearance of this activity was observed in both substrates after the addition of phenylmethylsulphonyl fluoride in the reaction mixtures. It was very interesting to find out an endopeptidase activity with these characteristics in the intestine, in spite of the fact that the digestive activity in ticks is intracellular at very acid pH, which does not occur in other insects. </P>     <P><B>Subject headings</b>: ELECTROPHORESIS, POLYACRYLA-MIDE GEL/methods; TICKS/enzimology; PEPTIDE PEP-TIDOHYDROLASES/analysis; INTESTINES. </P> <H4>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</H4> <OL>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><LI>Gransjean O. Blood digestion in <I>Ornithodorus moubata</I> females, I. Biochemical changes in the midgut lumen and ultrastructure of the midgut cell, related to intracellular digestion. Acarologia 1984;25:147-65.</LI>    <!-- ref --><LI>Coons L, Tarnowski B, Ourth D. <I>Rhiphicephalus sanguineus:</I> localization of vitellogenin synthesis by inmunological methods and electron microscopy. Experimental Parasitology 1982; 54:331-9.</LI>    <!-- ref --><LI>Tarnowski B. Blood meal digestion and vitellogenesis in the tick <I>Dermacentor variabilis</I> Say. Ph. D. Dissertation, Memphis State University, 1983.</LI>    <!-- ref --><LI>Kocan KM. Targeting ticks for control of selected hemoparasitic diseases of catle. Veterinary Parasitology 1995;57:121-51.</LI>    <!-- ref --><LI>Raikhel A. Atlas of Ixodid Tick Ultrastructure. Yu. S. Balashov, ed. The intestine. Entomological Society of America Special Publication. 1983:59-107.</LI>    <!-- ref --><LI>Boctor FN, Araman SF. Biochemical and physiological studies of certain ticks (Ixodoidea). Total free amino acids in gut, hemolymph and coxal fluids of <I>Argas (Persicargas) persicus (Oken)</I> and <I>arboreus </I>Kaiser, Hoogstraal and Kohls (Argasidae). J Med Entomol 1971;8:525-8.</LI>    <!-- ref --><LI>Hamdy BH. Biochemical and physiological studies of certain ticks (Ixodoidea). Excretion in ticks. J Med Entomol 1977;14:15-8.</LI>    <!-- ref --><LI>Adyei AD, Runham NW, Blackstock N. Histochemical changes in the midgut of two ixodid tick species. <I>Boophilus microplus</I> and <I>Rhiphicephalus appendiculatus</I> during digestion of the blood meal. Experimental Apllied Acarology 1992;11:187-212.</LI>    <!-- ref --><LI>Coons LB, Rosell-Davies E, Tarnowski BI. Bloodmeal digestion in ticks. J. R. Sauer and J. A. Hair, eds. Morphology, Phisiology and Behavioral Biology of ticks. Ellis Chichester: Horwwod, 1986;248-71.</LI>    <!-- ref --><LI>Bogin E, Hadani A. Digestive enzymes in ?hard ticks? (Ixodoidea), Ixodidae. I. Proteolytic enzyme activity in the gut of <I>Hyalomma excavatum</I> female ticks. Zeitschrift fur Parasitenkunde 1973;41:139-46.</LI>    <!-- ref --><LI>Vundla WR, Brossard M, Pearson DJ, Labongo VL. Characterization of aspartic proteinases from the gut of the tick, <I>Rhiphicephalus appendiculatus</I>. Insect Biochem Mol Biol 1992;22:405-10.</LI>    <!-- ref --><LI>Mendiola J, Alonso M, Marquetti M, Finlay CM. <I>Boophilus microplus:</I> multiple proteolitic activities in the Midgut. Exp Parasitol 1996;82:27-33.</LI>    <!-- ref --><LI>Rosenfeld A, Vanderberg JP. Identification of electrophoretically spareted proteasas from midgut and hemolymph of adult <I>Anopheles stephensi</I> mosquitoes. J Parasitol 1988;84:361-5.</LI>    <!-- ref --><LI>Pontremoli S, Salamino F, Sparatore B, Mellini E, Morelli A, Benatti U,<I> et a</I>l. Isolation and partial characterization of three acidic proteinases in erythrocites membranes. Biochem J 1979;181: 559-68.</LI>    <!-- ref --><LI>Dacie JV, Lewis SM. Practical Haematology. London: Churchill, 1968;</LI>    <!-- ref --><LI>Heussen C, Dowdle EB. Electrophoretic analysis of plasminogen activators in polyacrymide gels containing sodium dodecyl sulfate and copolymerized substrates. Anal Biochem 1988;102:196-202.</LI>    <!-- ref --><LI>Barret AJ, Cathepsin D. Purification of isoenzymes from human and chicken liver. Biochem J 1970; 117:601-7.</LI>    <!-- ref --><LI>Kanost MR, Jiang H. Chemistry and biology of serpins: serpins from an insect, <I>Manduca sexta.</I> New York: Planum, 1977:248-71.</LI>    <!-- ref --><LI>Grandjean O, Aeschilimann A. Contribution to the study of digestion in ticks: histology and fine structure of the mniut epithelium of <I>Ornithodorus moubata</I> Murray (Ixodoidea, Argasidae). Acta Trop 1973;30:193-212.</LI>    </OL>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Lic. <I>Hilda M. Hern&aacute;ndez</I>. Instituto de Medicina Tropical "Pedro Kour&iacute;". Apartado 601, Marianao 13, Ciudad de La Habana, Cuba. Correo electr&oacute;nico: ciipk@ipk.sld.cu </P><DIR>      <P><SUP><A NAME="x"></A>1</sup> Licenciada en Bioqu&iacute;mica. Investigadora Agregada.     <BR> <SUP>2</SUP> Licenciada en Bioqu&iacute;mica. Aspirante a Investigadora.     <BR> <SUP>3</SUP> Licenciado en Bioqu&iacute;mica.  </P></DIR>      ]]></body><back>
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