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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Resistencia cruzada a piretroides en Aedes aegypti de Cuba inducido por la selección con el insecticida organofosforado malation]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto de Medicina Tropical Pedro Kourí  ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[A strain from Aedes aegypti (L) collected in the municipality of Santiago de Cuba with low levels of resistance to malathion (1.79 x) was subjected to selection pressure aimed at evaluating the evolution of the resistance to this organophosphate and its usefulness for control. After 5 generations of selection (SAN-F5) with malathion, it was not possible to increase the resistance and it was obtained a value of resistance factor (FR50) of 2.22x None or little cross resistance to the following organophosphate insecticides was observed: fenthion, temephos and fenitrotion; however, it was found an elevated cross resistance to deltamethrin pyrethroid, with a value of 287.5x in the third generation of selection. It was also observed cross resistance to other pyrethroids (lambda-cyhalothrin, cypermethrin and ciflutrine). The mechansim of elevated esterases did not generate resistance to pyrethroids, which was corroborated through inhibition gel studies and through the calculation of the frequency in microtitering plaques. Nevertheless, there was an increase in the frequency of the glutathione-s-transferase mechanism from 0.049 in Santiago de Cuba to 0.42 in SAN-F5, which may be associated with the resistance to pyrethroids. The cross resistance to pyrethroids, mainly to deltamethrin, resulting from the selection with malathion may limit the use of these insecticides in the control unless a good strategy for their use is laid down.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p>Instituto de Medicina Tropical &#147;Pedro Kour&iacute;&#148;</p><h2>Resistencia  cruzada a piretroides en <i>Aedes aegypti</i> de Cuba inducido por la selecci&oacute;n  con el insecticida organofosforado malation</h2>    <p><a href="#cargo">Lic. Mar&iacute;a  Magdalena Rodr&iacute;guez,<span class="superscript">1</span> Dr. Juan A. Bisset,<span class="superscript">2</span>  Lic. Cristina D&iacute;az<span class="superscript">3</span> y T&eacute;c. L&aacute;zaro  A. Soca<span class="superscript">4 </span></a><span class="superscript"><a name="autor"></a></span></p><h4>&nbsp;  </h4><h4>Resumen</h4>    <p>Se someti&oacute; a presi&oacute;n de selecci&oacute;n  una cepa de <i>Aedes aegypti</i> (L.), colectada en el municipio de Santiago de  Cuba, con niveles bajos de resistencia a malation (1,79 x), para evaluar la evoluci&oacute;n  de la resistencia a este organofosforado y su utilidad en el control. Despu&eacute;s  de 5 generaciones de selecci&oacute;n con malation no se logr&oacute; incrementar  la resistencia. Se obtuvo luego de 5 generaciones de selecci&oacute;n (SAN-F5),  un valor de factor de resistencia (FR50 de 2,22x). Se observ&oacute; poca o ninguna  resistencia cruzada a los insecticidas organofosforados fention, temefos y fenitrotion,  sin embargo, se encontr&oacute; una elevada resistencia cruzada al insecticida  piretroide deltametrina, con un valor de 287,5X en la tercera generaci&oacute;n  de selecci&oacute;n, se observ&oacute; tambi&eacute;n resistencia cruzada a otros  piretroides (lambdacialotrina, cipermetrina y ciflutrina). El mecanismo de esterasas  elevadas no gener&oacute; resistencia a los piretroides, hecho que fue corroborado  a trav&eacute;s de estudios de inhibici&oacute;n en gel y a trav&eacute;s del  c&aacute;lculo de la frecuencia en placas de microtitulaci&oacute;n. No obstante,  hubo un incremento en la frecuencia del mecanismo de glutation-s-transferasa desde  0,049 en SANTIAGO DE CUBA hasta 0,42 en SAN-F5, lo cual puede estar asociado con  la resistencia a piretroides. La resistencia cruzada a piretroides, principalmente  a deltametrina, producto de la selecci&oacute;n con malation, pudiera limitar  el uso de estos insecticidas para el control, si no se lleva a cabo una buena  estrategia. </p>    <p><b>DeCS:</b> MALATHION; INSECTICIDAS ORGANOFOSFORADOS; CULICIDAE.</p>    <p>&nbsp;</p>    <p>El  uso de insecticidas ha desempe&ntilde;ado un papel importante en los programas  de control de <i>Aedes aegypti</i>, no solo en Cuba sino en las Am&eacute;ricas.  La alta resistencia a DDT y otros insecticidas organoclorados llev&oacute; al  comienzo del uso de insecticidas organofosforados. </p>    <p>Dentro de los insecticidas  organofosforados m&aacute;s utilizados en los programas de control de <i>Aedes  aegypti</i> est&aacute; el temefos, fention y fenitrotion como larvicidas y malation  como adulticida. A pesar de que malation ha sido utilizado en la regi&oacute;n  del Caribe por m&aacute;s de 25 a&ntilde;os, solo moderados niveles de resistencia  (5-to 10 x) han sido reportados a es-te insecticida en poblaciones de <i>Aedes  aegypti.</i><span class="superscript">1-6 </span></p>    <p>Una intensa campa&ntilde;a  para el control de <i>Aedes aegypti</i> comenz&oacute; en Cuba en 1981 y malation  fue el principal insecticida utilizado como adulticida hasta 1986, en esta etapa  <i>Aedes aegypti</i> fue exitosamente controlado por este insecticida, sin embargo  este fue reemplazado por piretroides en 1986 porque otra especie de mosquito,  Culex quinquefasciatus, que ocup&oacute; los sitios de cr&iacute;a de <i>Aedes  aegypti</i> en ambiente urbano<span class="superscript">7,8</span> desarroll&oacute;  resistencia a malation. </p>    <p>El extensivo uso de malation en los programas de  control de <i>Aedes aegypti</i> ha provocado el desarrollo de resistencia en Culex  quinquefasciatus, pero no en <i>Aedes aegypti,</i> no solo en Cuba, sino tambi&eacute;n  en otros pa&iacute;ses de Am&eacute;rica Latina.<span class="superscript">9 </span></p>    <p>En  este trabajo, se investig&oacute; c&oacute;mo evoluciona la resistencia a este  insecticida bajo presi&oacute;n de selecci&oacute;n y el efecto que implica sobre  la resistencia cruzada a otros insecticidas que est&aacute;n en uso o pueden ser  utilizados como alternativos para el control de <i>Aedes aegypti </i>en Cuba.  </p><h4>M&eacute;todos</h4>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Insectos: se utilizaron 2 cepas de <i>Aedes aegypti</i>,  ROCKEFELLER, una cepa de referencia susceptible de laboratorio, colonizada en  1930 y suministrada por el Centro de Control de Enfermedades (CDC) de San Juan  de Puerto Rico y Santiago de Cuba, una poblaci&oacute;n colectada del campo, procedente  de Santiago de Cuba (Cuba) en 1997, cuando ocurri&oacute; el brote de dengue en  este municipio. Esta poblaci&oacute;n fue sometida a presi&oacute;n de selecci&oacute;n  por 5 generaciones, las larvas de cuarto estadio tard&iacute;o o cuarto temprano  se expusieron a dosis de malation que causaron 90 % de mortalidad, 10 % sobreviviente  en cada selecci&oacute;n; es decir, el resultado de cada generaci&oacute;n de  selecci&oacute;n se design&oacute; como SAN-Fx (donde x es el # de cada generaci&oacute;n).  </p>    <p>Bioensayos: la evaluaci&oacute;n de la resistencia a insecticidas en larvas  de SANTIAGO DE CUBA y en la tercera generaci&oacute;n de selecci&oacute;n (SAN-F3)  fue analizada a trav&eacute;s de los bioensayos.<span class="superscript">1</span>  Fueron evaluados 7 insecticidas, 3 organofosforados (temefos, fention y fenitrotion)  y 4 piretroides (deltametrina, cipermetrina, lambdacialotrina y ciflutrina). En  los bioensayos se emplearon 5 r&eacute;plicas de cada concentraci&oacute;n del  insecticida (20 larvas por r&eacute;plica), se registraron entre 2 y 98 % de mortalidad.  Todas las soluciones se ajustaron a un volumen final de 1 mL con acetona. Esta  concentraci&oacute;n de acetona no caus&oacute; mortalidad en los controles. La  lectura de las mortalidades se realiz&oacute; a las 24 h; la Cl<span class="subscript">50</span>  y la CL<span class="subscript">90</span> se hallaron mediante el programa probit-  log,<span class="superscript">10 </span>el cual est&aacute; basado en el programa  Finney.<span class="superscript">11</span></p>    <p>Ensayos bioqu&iacute;micos: se  determin&oacute; la actividad de esterasas en larvas de tercer estadio tard&iacute;o  o cuarto temprano, de acuerdo con el m&eacute;todo estandarizado para Aedes aegypti  por Rodr&iacute;guez y otros.12 Se homogeneiz&oacute; cada larva con 200 &micro;L  de buffer fosfato 0,01 M, pH 7,5. En una placa de microtitulaci&oacute;n de ELISA,  a 20 &micro;L del homogenato se le a&ntilde;adi&oacute; 200 &micro;L del sustrato  (0,7-mM de <font face="Symbol">b</font>-naftil acetato). Despu&eacute;s de dejar  transcurrir la reacci&oacute;n por 10 min, se le a&ntilde;adi&oacute; 40 &micro;L  de Fast blue y se ley&oacute; la densidad &oacute;ptica (DO) a 570 nm en lector  de placas de ELISA Labsystems iMS, manufacturado en Finlandia.</p>    <p>La actividad  de glutation-S-transferasa (GST) fue determinada de acuerdo con el m&eacute;todo  de <i>Booth </i>y otros,<span class="superscript">13</span> y modificado para  <i>Aedes aegypti</i> (Rodr&iacute;guez y otros).<span class="superscript">12 </span>A  20 &micro;L de cada homogenato de larva se le a&ntilde;adi&oacute; 250 &micro;L  de una mezcla de reacci&oacute;n de 1-chloro-2, 4 dinitrobenzene50 mM; y de glutathion  reducido 20 mM. Se deja transcurrir la reacci&oacute;n por 3 min y se ley&oacute;  la DO a 340 nm. Se calcul&oacute; la actividad espec&iacute;fica de GST, despu&eacute;s  de calcular la concentraci&oacute;n de prote&iacute;nas en cada homogenato y se  expres&oacute; como &micro;mol/ mg.min. </p>    <p>Se determin&oacute; la actividad  de la acetilco-linesterasa (Ache) normal e inhibida con propoxur seg&uacute;n  el m&eacute;todo de Rodr&iacute;guez y otros.<span class="superscript">14</span>  La preparaci&oacute;n de las muestras es similar a la descrita anteriormente,  con la diferencia de que las muestras se homogeneizaron en 50 mL de <i>buffer  </i>fosfato, queconten&iacute;a trit&oacute;n X-100 1 %. Se prepararon adem&aacute;s  2 placas, una para la determinaci&oacute;n de la actividad AchE normal y otra  para la actividad AchE inhibida con propoxur. En ambas placas se adicionaron 20  &micro;L de DTNB (&aacute;cido 5-5&#146; ditiobis 2 nitrobenzoico) 0,07 M, pH  7,5 y 20 &micro;L de acetiltiocolina yodada (AchI) 0,06 M. En la placa donde se  midi&oacute; la actividad Ache inhibida se adicionaron adem&aacute;s 10 &micro;L  de propoxur 0,025 M. Despu&eacute;s de preparadas estas 2 placas se adicion&oacute;  en cada pocillo de ambas 20 &micro;L del homogeneizado de las larvas. La reacci&oacute;n  se dej&oacute; transcurrir durante 30 min y se ley&oacute; la DO a 405 nm.</p>    <p>Un  estimado de la frecuencia de los mecanismos de esterasas, GST y Ache fue calculado  a partir del n&uacute;mero de individuos susceptibles para cada ensayo, asumiendo  que la poblaci&oacute;n se encuentra en equilibrio de Hardy- Weinberg.</p>    <p>Se  realiz&oacute; electroforesis en gel de poliacrilamida (10 %). En tubos Eppendorf  (1,5 ml), se adicionaron 10 &micro;L de muestra m&aacute;s 10 &micro;L del indicador  xilene cianol (0,02 % en sacarosa 15 %). Se aplicaron 20 &micro;L de esta mezcla  en el gel y se realiz&oacute; la corrida a 150 V, durante 45 min. Para la tinci&oacute;n  de las bandas de esterasas, se sumergieron los geles en 50 mL de buffer fosfato  (0,1 M) que conten&iacute;an 4 mL de cada uno de los sustratos inespec&iacute;ficos  de las esterasas (y <font face="Symbol">b</font>-naftilacetato). Despu&eacute;s  se a&ntilde;adieron 0,5 g del colorante fast blue RR, disuelto previamente en  agua destilada y SDS (sodio dodecil sulfato) 5 %. Para fijar la coloraci&oacute;n  de las bandas se sumergi&oacute; el gel en una soluci&oacute;n de &aacute;cido  ac&eacute;tico 10 %. A cada una de las bandas se le determin&oacute; la movilidad  relativa.</p>    <p>Para el estudio de inhibici&oacute;n, se corrieron los geles bajo  las mismas condiciones y cortados en tiras. Cada tira correspondiente a un homogenato  individual de larva de la cepa seleccionada con malation. El gel se incub&oacute;  en el mismo buffer que conten&iacute;a 10 &micro;L de cada soluci&oacute;n de  inhibidor (0,1 mM concentraci&oacute;n final de cada piretroide, lambdacyhalothrin,  cypermetrhin o cyfluthrin o del organofosforado malation) por 10 min, a temperatura  ambiente antes de la tinci&oacute;n del gel. Para cada ensayo de inhibici&oacute;n  se utiliz&oacute; una tira de gel como control, la cual no se incub&oacute; con  ning&uacute;n inhibidor.</p><h4>Resultados</h4>    <p>Los valores de la recta de regresi&oacute;n  dosis-respuesta para el insecticida malation y los factores de resistencia (FR)  en las cepas de SANTIAGO DE CUBA y las sucesivas generaciones de selecci&oacute;n  (SAN-F1, SAN-F2, SAN-F3, SAN-F4 y SAN-F5) se muestran en la tabla 1. Despu&eacute;s  de 5 generaciones de selecci&oacute;n con este insecticida, no se observ&oacute;  incremento en los valores de factor de resistencia, oscilando desde un valor de  FR de 1,79 en SANTIAGO DE CUBA hasta 2,22x en SAN-F5. </p>    <p align="center"><img src="/img/revistas/mtr/v55n2/tab0108203.jpg" width="758" height="272" border="0"></p>    
]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los  valores elevados de las pendientes en todas las cepas indicaron que estas resultaron  ser homog&eacute;neas con respecto a la susceptibilidad a malation.</p>    <p>Sin  embargo, el proceso de selecci&oacute;n con malation en la cepa de A. aegypti  de SANTIAGO DE CUBA gener&oacute; resistencia cruzada a piretroides, muy marcada  a deltametrina, con una variaci&oacute;n de valor de FR de 4,75 en SANTIAGO DE  CUBA hasta 283,75 en SAN-F3 y 275 x en SAN-F5 (tabla 2). Tambi&eacute;n se observ&oacute;  resistencia cruzada, a los piretroides cipermetrina, ciflutrina y lambdacialotrina.  La selecci&oacute;n con malation increment&oacute; la resistencia a cipermetrina  4,57 veces, desde un valor de 7,23x en SANTIAGO DE CUBA hasta 33,07x en SAN-F5,  4 veces se increment&oacute; para ciflutrina, obteni&eacute;ndose un valor de  FR en SAN-F5 de 24,61x y solamente 2,34 veces a lambdacialotrina.</p>    <p align="center"><img src="/img/revistas/mtr/v55n2/tab0208203.jpg" width="765" height="493" border="0"></p>    
<p>&nbsp;</p>    <p>La  variaci&oacute;n de la resistencia a los insecticidas organofosforados temefos,  fention y fenitrotion se muestran en la tabla 3. La cepa original de SANTIAGO  DE CUBA mostr&oacute; alta resistencia a temefos (59,16x), la cual no tuvo significantes  cambios hasta la F5 con un valor de 65,83x. La resistencia a fention y a fenitrotion  se mantuvo moderada (FR entre 5 y 10x) desde la cepa original hasta SAN-F5.</p>    <p align="center"><img src="/img/revistas/mtr/v55n2/tab0308203.jpg" width="738" height="413" border="0"></p>    
<p>Los  valores de frecuencia de los mecanismos de resistencia de esterasas, Ache y GST,  utilizando los m&eacute;todos bioqu&iacute;micos en placas de microtitulaci&oacute;n  de ELISA para la cepa de SANTIAGO DE CUBA y despu&eacute;s de 3 (SAN-F3) y 5 generaciones  de selecci&oacute;n (SAN-F5) se muestran en la figura 1. Se observ&oacute; incremento  de la frecuencia del mecanismo de GST desde un valor de frecuencia en larvas de  SANTIAGO DE CUBA de 0,049 a 0,42 en SAN-F5, no observ&aacute;ndose ning&uacute;n  incremento significante en la frecuencia de esterasas, ni de la Ache.</p>    <p align="center"><a href="/img/revistas/mtr/v55n2/f0108203.jpg"><img src="/img/revistas/mtr/v55n2/f0108203.jpg" width="223" height="188" border="0"></a></p>    
<p align="center"><b>Fig.  1</b>. Frecuencia de los mecanismos de resistencia de Ache alterasa, GST y de  esterasas en SANTIAGO DE CUBA y despu&eacute;s de 3 (SAN-F3 y 6 (SAN-F6) generaciones  de selecci&oacute;n con malation. </p>    <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Mediante estudios de inhibici&oacute;n  de la actividad de esterasas en gel de poliacrilamida, se corrobor&oacute; que  las esterasas no eran responsable de la resistencia cruzada a piretroides durante  el proceso de selecci&oacute;n. Como se muestra en la figura 2, la esterasa denominada  previamente como est. A4. no se inhibi&oacute; con ninguno de los piretroides,  cipermetrina, lambdacialotrina ni ciflutrina, sin embargo un fen&oacute;meno curioso  result&oacute; ser que esta esterasa s&iacute; se inhibi&oacute; con malaox&oacute;n,  esto revela que esas enzimas pudieran ser mecanismo de resistencia a este insecticida,  pero hasta d&oacute;nde se necesitar&iacute;a presionar con este insecticida para  lograrlo, ser&iacute;a objeto de investigaci&oacute;n. De hecho se calcul&oacute;  la frecuencia en que aparec&iacute;a amplificada la est. A4. en cada generaci&oacute;n  de selecci&oacute;n y no se encontr&oacute; ninguna variaci&oacute;n significante  hasta la la quinta generaci&oacute;n (fig. 3). </p>    <p align="center"><a href="/img/revistas/mtr/v55n2/f0208203.jpg"><img src="/img/revistas/mtr/v55n2/f0208203.jpg" width="150" height="143" border="0"></a></p>    
<p align="center"><b>Fig.  2.</b> Inhibici&oacute;n de la actividad de esterasas con malaox&oacute;n, deltametrina  y lambdacialotrina en larvas individuales de SAN-F5. Enumeradas de izquierda a  derecha, las muestras 1, 4 y 7, corresponden a la actividad normal de esterasas;  las muestras 2, 5 y 8 al control con acetona; la muestra 3 a inhibici&oacute;n  con lambdacialotrina (10&#150;2 M); la muestra 6 a inhibici&oacute;n con deltametrina  (10&#150;2 M); y la &uacute;ltima muestra, la 9, corresponde a la inhibici&oacute;n  con malaox&oacute;n (10&#150;2 M).</p>    <p align="center">&nbsp;</p>    <p align="center"><a href="/img/revistas/mtr/v55n2/f0308203.jpg"><img src="/img/revistas/mtr/v55n2/f0308203.jpg" width="213" height="172" border="0"></a></p>    
<p align="center"><b>Fig.  3</b>. Variaci&oacute;n de la frecuencia en que aparece amplificada la esterasa  A4 en las cepas de SANTIAGO DE CUBA, y las sucesivas generaciones de selecci&oacute;n  (SAN-F1-SAN-F5). Se evalu&oacute; un total de 100 muestras de cada cepa.    <br>     <br>  </p><h4>Discusi&oacute;n</h4>    <p>No se observ&oacute; incremento alguno en la cepa  de SANTIAGO DE CUBA, despu&eacute;s de haber sido sometida a presi&oacute;n de  selecci&oacute;n con malation durante 5 generaciones. Es de destacar que a pesar  del uso de malation en las campa&ntilde;as de control de <i>Aedes aegypti </i>en  la regi&oacute;n del Caribe, existen pocos reportes de resistencia a este insecticida  en <i>Aedes aegypti</i>.<span class="superscript">1-6</span> Sin embargo hay notables  diferencias en cuanto a los niveles de resistencia a este insecticida y sus mecanismos  en <i>Culex quinquefasciatus</i>, especie que ha sido sometida a la misma presi&oacute;n  de selecci&oacute;n con malation en ambiente urbano.<span class="superscript">9  </span></p>    <p>La selecci&oacute;n con malation en <i>Cx. quinquefasciatus</i>  por 22 generaciones increment&oacute; la resistencia a 1208x.<span class="superscript">15</span>  Sin embargo, cepas de <i>Aedes aegypti</i> que han sido presionadas en el laboratorio  con malation, se ha observado solo un incremento de 3x16 and 5x,<span class="subscript">17</span>  despu&eacute;s de sucesivas generaciones de selecci&oacute;n. Existe alg&uacute;n  mecanismo, tanto en condiciones de laboratorio como en el terreno, que impide  la evoluci&oacute;n de la resistencia a este insecticida en <i>Aedes aegypti</i>,  pero su uso s&iacute; pudiera generar resistencia a otros insecticidas, los cuales  son esenciales para el control de mosquitos, como son los piretroides.</p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Es  de destacar que durante el proceso de selecci&oacute;n se desarroll&oacute; un  fen&oacute;meno de resistencia cruzada a piretroides, principalmente a deltametrina.  Este mismo fen&oacute;meno tambi&eacute;n se report&oacute; al seleccionar una  cepa de <i>Culex quinquefasciatus </i>de Cuba con malation.<span class="superscript">18</span></p>    <p>En  el presente trabajo se encontr&oacute; amplificada la esterasa A4, previamente  descrita por <i>Rodr&iacute;guez</i> y otros,<span class="superscript">19</span>  pero este mecanismo no gener&oacute; resistencia a malation, sin embargo por los  resultados de la inhibici&oacute;n se puede concluir que s&iacute; pudieran generar  resistencia, pero, al parecer, no por un mecanismo de amplificaci&oacute;n gen&eacute;tica,  sino de secuestro del malaox&oacute;n. Existen algunos reportes sobre la asociaci&oacute;n  del mecanismo de esterasas con la resistencia a malation. Utilizando electroforesis  en gel de poliacrilamida, Field y otros<span class="superscript">20</span> encontraron  la presencia de una banda de esterasa amplificada (Est A6) en una cepa tolerante  a malation (10x) Villa Palmeras (VP), la cual no se observaba en la cepa Ae. aegypti  no seleccionada, ni en la cepa de referencia susceptible. Mazarri <span class="superscript">21</span>  report&oacute; una esterasa clasificada como A5, la cual se encontr&oacute; en  mayor frecuencia en la cepa resistente a malation.</p>    <p>La est. A4 se encontr&oacute;  amplificada en SANTIAGO DE CUBA, la cual se demostr&oacute; por estudios de sinergismo  estar asociada con la resistencia a temefos en esta cepa.<span class="superscript">9</span>  Durante el proceso de selecci&oacute;n no hubo cambios significantes en la resistencia  a temefos, lo cual se correlaciona con la novariaci&oacute;n de la frecuencia  en que se encuentra amplificada la est. A4 durante todo el proceso de selecci&oacute;n.  La asociaci&oacute;n entre la resistencia a temefos y la elevada actividad de  esterasas s&iacute; ha sido reportada por algunos autores.<span class="superscript">12,19,  22-24 </span></p>    <p>Existen reportes sobre resistencia a piretroides en <i>Aedes  aegypti </i>de Puerto Rico,<span class="superscript">25</span> Rep&uacute;blica  Dominicana,<span class="superscript">3 </span>Venezuela.<span class="superscript">20  </span>Esta resistencia ha sido asociada con resistencia cruzada a DDT.<span class="subscript">26-27</span>  En este trabajo se encontr&oacute; un incremento en la frecuencia del mecanismo  de GST, que parece estar asociado con el incremento de la resistencia cruzada  a piretroides, aunque otros mecanismos tambi&eacute;n pueden estar actuando. Hemingway  y otros<span class="superscript">25</span> encontraron que la resistencia a piretroides  en cepas de <i>Ae. aegypti </i>de Puerto Rico era debido a un incremento en sitios  alterados que provocaban insensibilidad nerviosa (gen Kdr), m&aacute;s que a mecanismos  metab&oacute;licos. </p>    <p>Sibien todav&iacute;a el uso de malation controla eficazmente  las poblaciones de <i>Aedes aegypi</i>, porque la evoluci&oacute;n de la resistencia  es lenta, su continuado uso limita la utilidad de otros insecticidas muy buenos  para el control como son los piretroides. Teniendo en cuenta estos resultados  se recomienda el monitoreo de la susceptibilidad a los insecticidas piretroides,  principalmente deltametrina y sobre todo, en aquellos lugares donde todav&iacute;a  se contin&uacute;a utilizando malation para el control de <i>Ae. aegypti. </i>    <br>  </p><h4>Summary</h4>    <p>A strain from Aedes aegypti (L) collected in the municipality  of Santiago de Cuba with low levels of resistance to malathion (1.79 x) was subjected  to selection pressure aimed at evaluating the evolution of the resistance to this  organophosphate and its usefulness for control. After 5 generations of selection  (SAN-F5) with malathion, it was not possible to increase the resistance and it  was obtained a value of resistance factor (FR50) of 2.22x None or little cross  resistance to the following organophosphate insecticides was observed: fenthion,  temephos and fenitrotion; however, it was found an elevated cross resistance to  deltamethrin pyrethroid, with a value of 287.5x in the third generation of selection.  It was also observed cross resistance to other pyrethroids (lambda-cyhalothrin,  cypermethrin and ciflutrine). The mechansim of elevated esterases did not generate  resistance to pyrethroids, which was corroborated through inhibition gel studies  and through the calculation of the frequency in microtitering plaques. Nevertheless,  there was an increase in the frequency of the glutathione-s-transferase mechanism  from 0.049 in Santiago de Cuba to 0.42 in SAN-F5, which may be associated with  the resistance to pyrethroids. The cross resistance to pyrethroids, mainly to  deltamethrin, resulting from the selection with malathion may limit the use of  these insecticides in the control unless a good strategy for their use is laid  down.     <br> </p>    <p><b>Subject headings:</b> MALATHION; INSECTICIDES, ORGANOPHOSPHATE;  CULICIDAE.</p><h4>Referencias bibliogr&aacute;ficas </h4><ol>     <!-- ref --><li> Georghiou GP,  Wirth M, Tran H, Saume F, Knudsen AB. Potential for organophosphate resistance  in Aedes aegypti in the Caribbean area and neighboring countries. J Med Entomol  1987;24:290-4.    <br> </li>    <!-- ref --><li> Rawlins SC, Ragoonansingh R. Comparative organophosphorous  insecticide susceptibility in Caribbean populations of Aedes aegypti and Toxorynchites  moctezuma. J Am Mosq Control Assoc 6:315-7.    <br> </li>    <!-- ref --><li> Mekuria Y, Gwinn TA,  Williams DC, Tidwell MA. Insecticide susceptibility of Aedes aegypti from Santo  Domingo, Dominican Republic. 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