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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Caracterización microbiológica de cepas candidatas vacunales de Leptospira interrogans serogrupo Ballum]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Two candidate vaccines of Ballum serogroup Leptospira interrogans were microbiologically characterized as part of the work directed to the obtention of new antileptospirosis vaccine formulations for human use. The growth kynetics of both strains was evaluated in EMJH protein medium and in 3 protein free media. The virulence was estimated in hamsters by the calculation of the mean lethal dose. The cellular and extracellular antigenic profiles were analyzed by unidimensional SDS-PAGE and compared with those from strains of Canicola, Icterohaemorrhaagiaae and Pomona serogroups.The antigenic homology among heterologous groups was analyzed by western blotting with serun from hasterms vaccinated with vax-SPIRAL®. The results obtained showed a fastidious growth of both strains of Ballum in the studied media, a high virulence in the animal model and a large antigenic homology with strains from other serogroups of Lepstospira prevailing in Cuba.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="left">Instituto Finlay </p><h2>Caracterizaci&oacute;n microbiol&oacute;gica  de cepas candidatas vacunales de <i>Leptospira interrogans</i> serogrupo Ballum</h2>    <p><a href="#cargo">Dr.  Andr&eacute;s Gonz&aacute;lez Rodr&iacute;guez,<span class="superscript">1</span>  Lic. Yoandra Rodr&iacute;guez Jim&eacute;nez,<span class="superscript">2</span>  T&eacute;c. Niurka Batista Santiesteban,<span class="superscript">3</span> T&eacute;c.  Yolanda Vald&eacute;s Abreu<span class="superscript">4</span> y Lic. Marta Gonz&aacute;lez  Gonz&aacute;lez<span class="superscript">5 </span></a><span class="superscript"><a name="autor"></a></span></p>    <p>&nbsp;</p><h4>Resumen</h4>    <p>Se  caracterizaron microbiol&oacute;gicamente 2 cepas candidatas vacunales de <i>Leptospira  interrogans</i> serogrupo Ballum, como parte de los trabajos encaminados a la  obtenci&oacute;n de nuevas formulaciones vacunales antileptospir&oacute;sicas  para uso humano. Se evalu&oacute; la cin&eacute;tica de crecimiento de ambas cepas  en medio proteico EMJH y en 3 medios libres de prote&iacute;nas. Se estim&oacute;  la virulencia en h&aacute;msters mediante el c&aacute;lculo de la dosis letal  media. Fueron analizados los perfiles antig&eacute;nicos celulares y extracelulares  mediante SDS-PAGE unidimensional y comparados con aquellos de cepas pertenecientes  a los serogrupos Canicola, Icterohaemorrhagiae y Pomona. La homolog&iacute;a antig&eacute;nica  entre serogrupos heter&oacute;logos se analiz&oacute; mediante <i>western blotting  </i>con suero de h&aacute;msters vacunados con vax-SPIRAL<font face="Symbol">&Ograve;</font>.  Los resultados obtenidos demostraron un crecimiento fastidioso de ambas cepas  de Ballum en los medios de cultivo estudiados, una alta virulencia en el modelo  animal y una gran homolog&iacute;a antig&eacute;nica, con cepas pertenecientes  a otros serogrupos de Leptospira de mayor circulaci&oacute;n en Cuba. </p>    <p><b>DeCS</b>:  LEPTOSPIRA INTERROGANS/ aislamiento &amp; purificaci&oacute;n; LEPTOSPIROSIS/  inmunolog&iacute;a; LEPOSPIROSIS/ prevenci&oacute;n &amp; control; MODELOS ANIMALES;  VACUNAS BACTERIANAS/ farmacocin&eacute;tica; MESOCRICETUS.</p>    <p>    <br>     <br> La  leptospirosis es una zoonosis bacteriana de amplia distribuci&oacute;n mundial,  causada por espiroquetas pat&oacute;genas pertenecientes al g&eacute;nero <i>Leptospira</i>.  Peque&ntilde;as variaciones en las cadenas polisacar&iacute;dicas del lipopolisac&aacute;rido  (LPS) de este microorganismo determinan la existencia de m&aacute;s de 200 serovariedades  (serovares) pat&oacute;genas, agrupadas en 24 serogrupos.<span class="superscript">1</span>    <br>      <br> Las graves p&eacute;rdidas econ&oacute;micas y humanas causadas por esta  enfermedad justifican el uso de vacunas profil&aacute;cticas en poblaciones humanas  y animales bajo riesgo de infecci&oacute;n. Dada la inmunodominancia del LPS las  vacunas antileptospir&oacute;sicas disponibles en la actualidad, constituidas  por c&eacute;lulas enteras inactivadas, confieren una inmunidad serovar espec&iacute;fica  predominantemente humoral.<span class="superscript">1,2</span>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>     <br> La aplicaci&oacute;n  en Cuba a grupos humanos de riesgo de la vacuna trivalente vax-SPIRAL<font face="Symbol">&acirc;</font>,  dise&ntilde;ada para establecer protecci&oacute;n contra los serogrupos Canicola,  Icterohaemorrhagiae y Pomona, ha logrado controlar y disminuir la morbilidad y  letalidad de la leptospirosis humana con una elevada efectividad.<span class="superscript">3,4</span>  Sin embargo, en los &uacute;ltimos a&ntilde;os la situaci&oacute;n inmunoepidemiol&oacute;gica  ha variado y en la actualidad el serogrupo Ballum es el m&aacute;s frecuentemente  aislado de pacientes con esta enfermedad en todo el pa&iacute;s,<span class="superscript">5</span>  por lo que son necesarias nuevas formulaciones vacunales como medida profil&aacute;ctica  eficaz.    <br>     <br> Previo a la inclusi&oacute;n del serogrupo Ballum en una formulaci&oacute;n  vacunal para uso en humanos, resulta imprescindible una adecuada selecci&oacute;n  y caracterizaci&oacute;n microbiol&oacute;gica de las cepas candidatas vacunales.  El presente trabajo se desarroll&oacute; con el objetivo de caracterizar el crecimiento,  la virulencia y los perfiles antig&eacute;nicos celulares y extracelulares de  2 cepas candidatas vacunales de <i>Leptospira interrogans</i> serogrupo Ballum.</p><h4>    <br>  M&eacute;todos</h4>    <p><i>Cepas bacterianas</i></p>    <p>Se utilizaron en el estudio  las cepas candidatas vacunales 12399 y 42600 de <i>Leptospira interrogans</i>  serogrupo Ballum (serovar no identificado), las cuales fueron originalmente aisladas  por hemocultivo a pacientes con leptospirosis en la provincia de Holgu&iacute;n.  Se incluyeron en diferentes ensayos las cepas vacunales 87, 169 y 108, pertenecientes  a los serogrupos Canicola (serovar canicola), Icterohaemorrhagiae (serovar copenhageni)  y Pomona (serovar mozdok) respectivamente, las cuales fueron originalmente aisladas  a partir de muestras animales remitidas al Centro Nacional de Epizootiolog&iacute;a  y Diagn&oacute;stico Veterinario de Ciudad de La Habana. Desde su aislamiento  todas las cepas fueron conservadas en medio semis&oacute;lido de Fletcher.<span class="superscript">2</span>  La virulencia en todos los casos fue mantenida mediante pases peri&oacute;dicos  en h&aacute;msters seg&uacute;n los m&eacute;todos descritos.<span class="superscript">2</span></p>    <p><i>Cin&eacute;tica  de crecimiento </i></p>    <p>Se evalu&oacute; la cin&eacute;tica de crecimiento de  cada cepa candidata vacunal en medio proteico EMJH2 bajo condiciones de cultivo  est&aacute;tico (30 &ordm;C) y agitado (130 rpm, 30 &ordm;C) y en las 3 variantes  de medio libre de prote&iacute;nas utilizadas en la planta de producci&oacute;n  del Instituto Finlay<span class="superscript">6</span> bajo cultivo agitado (130  rpm, 30 &ordm;C). Cada evaluaci&oacute;n se realiz&oacute; por triplicado y se  incorpor&oacute; como control de crecimiento la cepa vacunal perteneciente al  serogrupo Canicola. Para el an&aacute;lisis del crecimiento bajo condiciones est&aacute;ticas  se emplearon tubos de cristal con tap&oacute;n de algod&oacute;n, que conten&iacute;an  30 mL de medio fresco inoculado 10 % con un cultivo joven crecido en el mismo  medio bajo condiciones est&aacute;ticas. Para el an&aacute;lisis del crecimiento  bajo condiciones de agitaci&oacute;n se emplearon erlenmeyers con capacidad de  500 mL y tap&oacute;n de algod&oacute;n que conten&iacute;an 100 mL de medio fresco  inoculado; en todos los casos a 10 % con un cultivo joven crecido en medio EMJH  bajo condiciones de agitaci&oacute;n.    <br>     ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Se determin&oacute; la curva de  crecimiento obtenida en cada caso tomando muestras de los cultivos cada 24 h durante  7 d. La concentraci&oacute;n microbiana de cada muestra fue estimada mediante  espectrofotometr&iacute;a (<font face="Symbol">l</font>= 400 nm) y conteo directo  de c&eacute;lulas en c&aacute;mara de Petroff-Hausser. En cada muestreo se evaluaron  caracter&iacute;sticas culturales como motilidad y uniformidad celular por observaci&oacute;n  bajo el microscopio de campo oscuro y se realizaron controles de pureza a los  cultivos mediante tinci&oacute;n de Gram y siembra en caldo triptona soya y caldo  tioglicolato. Fueron analizados par&aacute;metros del crecimiento microbiano como  la velocidad espec&iacute;fica de crecimiento (m) y el tiempo de duplicaci&oacute;n  (Td).<span class="superscript">7</span></p>    <p><i>Dosis letal media en h&aacute;msters</i></p>    <p>Se  estim&oacute; cuantitativamente la virulencia de cada cepa candidata vacunal en  el modelo h&aacute;mster sirio dorado (<i>Mesocricetus aureatus</i>) mediante  la determinaci&oacute;n de la dosis letal media (DL<span class="subscript">50</span>)  seg&uacute;n la metodolog&iacute;a propuesta por <i>Fajardo</i> y otros.<span class="superscript">8</span>  Se utilizaron en el estudio animales de 45-50 g de peso (CENPALAB), mantenidos  bajo condiciones adecuadas. El c&aacute;lculo de la DL<span class="subscript">50</span>  para cada cepa fue realizado mediante el m&eacute;todo de<i> </i>Reed y Muench.<span class="superscript">9</span>  </p>    <p><i>Perfiles antig&eacute;nicos celulares y extracelulares</i></p>    <p>Muestras  de 8 <font face="Symbol">&acute;</font> 109 c&eacute;lulas de ambas cepas candidatas  vacunales de Ballum y de las cepas vacunales de los serogrupos Canicola, Icterohaemorrhagiae  y Pomona, crecidas todas en medio EMJH bajo condiciones de agitaci&oacute;n hasta  finales de fase exponencial, fueron colectadas por centrifugaci&oacute;n a 10  000 rpm durante 20 min, lavadas 3 veces con tamp&oacute;n fosfato salino pH 7,2  (TFS) y solubilizadas con 100 mL de soluci&oacute;n de lisis (62,5 mM Tris-HCl  pH: 6,8, 10 % glicerol, 5 % 2-mercaptoetanol, 2 % SDS) calentando durante 10 min  a 100 &ordm;C. Las muestras as&iacute; tratadas fueron mantenidas durante toda  la noche a 4 &ordm;C y luego separadas mediante SDS-PAGE unidimensional empleando  un gel separador 12,5 %.<span class="superscript">10</span> Luego de la separaci&oacute;n  de las prote&iacute;nas, los geles fueron te&ntilde;idos convenientemente con  azul brillante de Coomassie y analizados mediante analizador de im&aacute;genes  (ImageMaster VDS, Pharmacia) o transferidos a papel de nitrocelulosa.<span class="superscript">11</span>  La transferencia se realiz&oacute; toda la noche utilizando como<i> buffer</i>  48 mM Tris pH 9,2, 39 mM glicina, 1,3 mM SDS y 20 % metanol. Para la detecci&oacute;n  antig&eacute;nica la nitrocelulosa fue bloqueada con leche descremada 3 % en Tris-salina  y luego incubada a 37 &ordm;C durante 2 h con suero de h&aacute;msters inmunizados  con vax-SPIRAL<font face="Symbol">&Ograve;</font> diluido 1:20 en Tris-salina  con 3 % de leche descremada y 0,05 % de Tween 20 (TSLT). Para la visualizaci&oacute;n  de las bandas se incub&oacute; 1 h a 37 &ordm;C con conjugado prote&iacute;na  A-peroxidasa (SIGMA) diluido 1:1000 en TSLT y se revel&oacute; con 4-cloro-1-naftol  y per&oacute;xido de hidr&oacute;geno.    <br>     <br> Sobrenadantes totalmente libres  de c&eacute;lulas de todos los cultivos bacterianos fueron obtenidos por centrifugaci&oacute;n  al menos 3 veces sucesivas a 15 000 rpm durante 30 min. Muestras de 80 mL de cada  sobrenadante fueron tratadas con 20 mL de soluci&oacute;n de lisis concentrada  5x, calentadas durante 10 min a 100 &ordm;C y separadas mediante SDS-PAGE unidimensional  (12,5 %). Los geles fueron te&ntilde;idos convenientemente con azul brillante  de Coomassie y analizados mediante analizador de im&aacute;genes (ImageMaster  VDS, Pharmacia). En todas las corridas electrofor&eacute;ticas se incluy&oacute;  un patr&oacute;n de peso molecular comercial (LMW Marker Kit, Pharmacia) para  el an&aacute;lisis de los geles.</p><h4>Resultados</h4>    <p><i>Cin&eacute;tica de  crecimiento</i></p>    <p align="left">Partiendo de una misma concentraci&oacute;n  inicial de 5 <font face="Symbol">&acute;</font> 107 c&eacute;lulas/mL, ambas cepas  candidatas vacunales del serogrupo Ballum alcanzaron solo la mitad de los rendimientos  logrados por la cepa vacunal de Canicola (1,2 <font face="Symbol">&acute;</font>  109 c&eacute;lulas/mL) en medio EMJH, tras finalizar la fase exponencial de crecimiento  bajo condiciones de cultivo est&aacute;tico (fig. 1). Bajo estas condiciones de  cultivo las cepas de Ballum mostraron una velocidad espec&iacute;fica de crecimiento  ligeramente menor (&micro;<span class="subscript">12399</span> = 1,0<font face="Symbol">  &acute; </font>10<span class="superscript">-2</span> h<span class="superscript">-1</span>,  &micro;<span class="subscript">42600</span> = 0,9<font face="Symbol"> &acute;</font>  10<span class="superscript">-2</span> h<span class="superscript">-1</span>) y  un tiempo generacional superior (Td<span class="subscript">12399</span> = 69 h,  Td<span class="subscript">42600</span> = 77 h) a aquellos de la cepa vacunal de  Canicola (&micro;<span class="subscript">87</span> = 1,2 <font face="Symbol">&acute;</font>  10<span class="superscript">-2 </span>h<span class="superscript">-1</span>, Td<span class="subscript">87</span>  = 58 h).     <br> </p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">     <br> <span style='font-size:11.0pt;mso-bidi-font-size:12.0pt;mso-bidi-font-style:italic'><a href="/img/revistas/mtr/v55n3/f0103303.jpg"><b><img src="/img/revistas/mtr/v55n3/f0103303.jpg" width="167" height="129" border="0"></b></a></span>    
<br>  </p>    <p class=MsoNormal align="center"><span style='font-size:11.0pt;mso-bidi-font-size:12.0pt; mso-bidi-font-style:italic'><o:p><b><font size="2">Fig. 1</font></b><font size="2">.  Curvas de crecimiento seguidas por las cepas candidatas vacunales del serogrupo  Ballum (12399 y 42600) y la cepa vacunal del serogrupo Canicola (87) durante el  cultivo en medio proteico EMJH bajo condiciones est&aacute;ticas.</font></o:p></span></p>    <p class=MsoNormal align="left">    <br>  Resultados similares fueron observados al evaluar la cin&eacute;tica de crecimiento  de las 3 cepas en medio EMJH bajo condiciones de cultivo agitado, aunque los rendimientos  logrados en todos los casos fueron superiores a los obtenidos bajo cultivo est&aacute;tico.  Mientras la cepa vacunal de Canicola logr&oacute; alcanzar casi 2 <font face="Symbol">&acute;</font>  109 c&eacute;lulas/mL tras 4 d de incubaci&oacute;n, ambas cepas de Ballum alcanzaron  un rendimiento promedio de 7 <font face="Symbol">&acute;</font> 108 c&eacute;lulas/mL  al cabo de este tiempo (fig. 2). Bajo estas condiciones de cultivo las 3 cepas  mostraron velocidades de crecimiento espec&iacute;ficas (&micro;<span class="subscript">12399</span>  = 2,9 <font face="Symbol">&acute;</font> 10<span class="superscript">-2</span>  h<span class="superscript">-1</span>, &micro;<span class="subscript">42600</span>  = 2,9 <font face="Symbol">&acute;</font> 10<span class="superscript">-2</span>  h<span class="superscript">-1</span>, &micro;<span class="subscript">87</span>  = 3,0 <font face="Symbol">&acute;</font> 10<span class="superscript">-2</span>  h<span class="superscript">-1</span>) y tiempos de duplicaci&oacute;n (Td<span class="subscript">12399</span>=  23,9 h, Td<span class="subscript">42600</span>= 23,9 h, Td<span class="subscript">87</span>=  22,8 h) muy similares, aunque la fase de crecimiento exponencial en las cepas  de Ballum culmin&oacute; mucho m&aacute;s r&aacute;pido. </p>    <p class=MsoNormal align="center">    <br>      <br> <a href="/img/revistas/mtr/v55n3/f0103303.jpg"><img src="/img/revistas/mtr/v55n3/f0203303.jpg" width="169" height="142" border="0"></a>      
<br>     ]]></body>
<body><![CDATA[<br> <b>Fig. 2</b>. Curvas de crecimiento seguidas por las cepas candidatas  vacunales del serogrupo Ballum (12399 y 42600) y la cepa vacunal del serogrupo  Canicola (87) durante el cultivo en medio proteico EMJH bajo condiciones agitadas.    <br>  </p>    <p class=MsoNormal align="left">    <br> Ninguna de las 3 variantes de medio libre  de prote&iacute;nas analizadas logr&oacute; sustentar siquiera un discreto crecimiento  de alguna de las 2 cepas del serogrupo Ballum. Tras 24 h de incubaci&oacute;n  los cultivos mostraron un marcado efecto citol&iacute;tico con una mortalidad  generalizada y presencia de abundantes detritos. </p>    <p><i>Dosis letal media en  h&aacute;msters</i></p>    <p>La dosis letal media en h&aacute;msters para la cepa  12399 fue de 9 c&eacute;lulas, mientras que este valor para la cepa 42600 fue  de 77 c&eacute;lulas. Resultados similares fueron obtenidos tras 3 determinaciones  sucesivas. </p>    <p><i>Perfiles antig&eacute;nicos celulares y extracelulares</i></p>    <p align="left">El  an&aacute;lisis de lisados de c&eacute;lulas completas permiti&oacute; identificar  la expresi&oacute;n de 19 bandas antig&eacute;nicas comunes para ambas cepas de  Ballum, con pesos moleculares de 12, 13, 15, 16, 19, 25, 29, 32, 36, 39, 45, 48,  54, 64, 71, 82, 89 y 95 kDa. Estas bandas antig&eacute;nicas fueron igualmente  identificadas en las cepas correspondientes a los serogrupos Canicola, Icterohaemorrhagiae  y Pomona (fig. 3). La mayor&iacute;a de estos ant&iacute;genos celulares altamente  conservados fueron reconocidos por el suero de h&aacute;msters vacunados con vax-SPIRAL<font face="Symbol">&Ograve;</font>  (fig. 4).</p>    <p align="center">    <br>     ]]></body>
<body><![CDATA[<br> <a href="/img/revistas/mtr/v55n3/f0203303.jpg"><img src="/img/revistas/mtr/v55n3/f0203303.jpg" width="130" height="110" border="0"></a>      
<br>     <br> <b>Fig. 3</b>. An&aacute;lisis mediante SDS-PAGE unidimensional (gel  separador 12,5 % y tinci&oacute;n con azul brillante de Coomassie) de lisado de  c&eacute;lulas completas de las cepas 87 (Canicola), 169 (Icterohaemorrhagiae),  108 (Pomona), 12399 (Ballum) y 42600 (Ballum) crecidas en medio EMJH bajo condiciones  controladas (130 rpm, 30 &ordm;C) hasta finales de la fase exponencial.     <br>     <br>      <br> <a href="/img/revistas/mtr/v55n3/f0403303.jpg"><img src="/img/revistas/mtr/v55n3/f0403303.jpg" width="232" height="179" border="0"></a>      
<br>     <br> <b>Fig. 4</b>. An&aacute;lisis mediante western blotting con suero de  h&aacute;msters vacunados con vax-SPIRAL&reg; de lisado de c&eacute;lulas completas  de las cepas 87 (Canicola), 169 (Icterohaemorrhagiae), 108 (Pomona), 12399 (Ballum)  y 42600 (Ballum).     <br> </p>    <p align="left">El an&aacute;lisis de los sobrenadantes  libres de c&eacute;lulas revel&oacute; la expresi&oacute;n com&uacute;n de al  menos 7 bandas antig&eacute;nicas definidas con pesos moleculares de 15, 20, 30,  35, 41, 47 y 158 kDa (fig. 5). Una distorsi&oacute;n en el patr&oacute;n de bandas  se observ&oacute; en todos los casos entre los 60 y 70 kDa, producto de la gran  concentraci&oacute;n de alb&uacute;mina s&eacute;rica bovina del medio presente  en los sobrenadantes.</p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="left">    <br> </p>    <p align="center"><A HREF="/img/revistas/mtr/v55n3/f0503303.jpg"><IMG SRC="/img/revistas/mtr/v55n3/f0503303.jpg" WIDTH="159" HEIGHT="128" BORDER="0"></A>    
<br>      <br> </p>    <p align="center"><b>Fig. 5</b>. An&aacute;lisis mediante SDS-PAGE (gel  separador 12,5 % y tinci&oacute;n con azul brillante de Coomassie) de sobrenadantes  libres de c&eacute;lulas de las cepas 87 (Canicola), 169 (Icterohaemorrhagiae),  108 (Pomona), 12399 (Ballum) y 42600 (Ballum) crecidas en medio EMJH bajo condiciones  controladas (130 rpm, 30 &ordm;C) hasta finales de la fase exponencial. </p><h4>    <br>Discusi&oacute;n</h4>    <p>Uno  de los primeros pasos en la confecci&oacute;n de una vacuna antileptospir&oacute;sica  es la correcta selecci&oacute;n y caracterizaci&oacute;n de las cepas candidatas  vacunales<span class="superscript">.1,2 </span>Teniendo en cuenta este criterio  y dada la necesidad actual de obtenci&oacute;n de nuevas formulaciones vacunales  eficaces contra la infecci&oacute;n por el serogrupo Ballum, fueron caracterizadas  microbiol&oacute;gicamente 2 cepas candidatas vacunales pertenecientes a este  serogrupo de <i>Leptospira</i> de alta circulaci&oacute;n en humanos en Cuba.      <br>     <br> Ha sido reconocido que el serogrupo Ballum agrupa cepas de crecimiento  fastidioso, con requerimientos nutricionales m&aacute;s exigentes que otras cepas  pat&oacute;genas.<span class="superscript">2,12</span> Los bajos rendimientos  alcanzados por estas cepas candidatas vacunales en medio proteico EMJH y la ausencia  de crecimiento en medios libres de prote&iacute;nas corroboran esta afirmaci&oacute;n.  A pesar de ser considerado un medio superior a los tradicionales medios naturales  que contienen suero de conejo como constituyente esencial, el medio EMJH resulta  en ocasiones insuficiente para el aislamiento y cultivo de serovariedades de crecimiento  fastidioso. Estas en muchos casos requieren la adici&oacute;n de factores de crecimiento  mayormente proteicos como suero de conejo, suero fetal bovino, hidrolisado de  lactoalb&uacute;mina o super&oacute;xido dismutasa,<span class="superscript">13  </span>componentes nutricionales poco convenientes para el escalado tecnol&oacute;gico  y cultivo de ant&iacute;genos vacunales para uso humano, dada la conocida reactogenicidad  de peque&ntilde;as trazas de prote&iacute;nas s&eacute;ricas en el producto final.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>      <br> La ausencia de crecimiento en los medios libres de prote&iacute;nas pudiera  esperarse si se tiene en cuenta que estos medios sint&eacute;ticos contienen niveles  a&uacute;n menores de macronutrientes y factores de crecimiento.<span class="superscript">6</span>  Sin embargo, los resultados obtenidos indican no solo la carencia de un nutriente  esencial para el crecimiento de estas cepas candidatas vacunales de Ballum, sino  adem&aacute;s la presencia en las 3 variantes de medio evaluadas de al menos un  componente con marcado efecto citot&oacute;xico, dada la generalizada mortalidad  e incluso la apreciaci&oacute;n de abundantes detritos celulares tan solo con  24 h de incubaci&oacute;n. Para la incorporaci&oacute;n del serogrupo Ballum en  una nueva formulaci&oacute;n vacunal resultar&aacute; de marcado inter&eacute;s  la obtenci&oacute;n y optimizaci&oacute;n de un medio libre de prote&iacute;nas  que sustente un buen crecimiento de estas cepas fastidiosas, sin afectaci&oacute;n  de otras propiedades importantes como su virulencia, antigenicidad e inmunogenicidad.      <br>     <br> Varios estudios demuestran diferencias sustanciales en la expresi&oacute;n  de ant&iacute;genos entre cepas isog&eacute;nicas virulentas y avirulentas.<span class="superscript">14  </span>Estas diferencias en la arquitectura antig&eacute;nica, al parecer, se  revierten en una desigual capacidad protectora de unas y otras cepas al ser incluidas  en preparados vacunales de c&eacute;lulas enteras; de ah&iacute; la vital importancia  de que cepas candidatas vacunales de Leptospira muestren una elevada virulencia  en modelos animales. Los h&aacute;msters se encuentran entre los animales de laboratorio  m&aacute;s susceptibles a la leptospirosis y reproducen con gran fidelidad el  proceso cl&iacute;nico patol&oacute;gico de la enfermedad humana, teniendo en  cuenta sus caracter&iacute;sticas biol&oacute;gicas y el conocimiento acerca de  los aspectos sanitarios y gen&eacute;ticos que sobre esta se tienen.<span class="superscript">15  </span>Ambas cepas candidatas vacunales de Ballum mostraron una elevada virulencia  en este modelo animal. Los valores de DL<span class="subscript">50 </span>obtenidos  en ambos casos est&aacute;n en correspondencia con aquellos com&uacute;nmente  mostrados por cepas de <i>Leptospira</i> altamente virulentas.<span class="superscript">16</span>    <br>      <br> Una gran diversidad de ant&iacute;genos proteicos ha sido identificada mediante  el estudio de los perfiles electrofor&eacute;ticos de c&eacute;lulas completas  de <i>Leptospira</i>.<span class="superscript">9,16-19</span> Estos ant&iacute;genos  en su mayor&iacute;a se ubican entre los 20 y 80 kDa e incluyen prote&iacute;nas  citoplasm&aacute;ticas, periplasm&aacute;ticas y de membrana interna y externa.  El tratamiento de las muestras con enzimas proteol&iacute;ticas ha demostrado  que el LPS, principal ant&iacute;geno inmunoprotector de<i> Leptospira</i>, se  ubica por debajo de los 20 kDa.<span class="superscript">17</span> La conservaci&oacute;n  antig&eacute;nica de las prote&iacute;nas ha sido demostrada mediante immunoblotting;  el suero de animales inmunizados con una cepa reconoce com&uacute;nmente numerosas  prote&iacute;nas de una gran variedad de serovares.<span class="superscript">17,19</span>  Muchos de los ant&iacute;genos proteicos celulares identificados en las cepas  de este estudio pudieran corresponderse con algunas de las prote&iacute;nas descritas  y ampliamente caracterizadas en la literatura de la &uacute;ltima d&eacute;cada,  todas altamente conservadas entre cepas pat&oacute;genas de <i>Leptospira</i>.  El reconocimiento de estos ant&iacute;genos celulares por el suero de h&aacute;msters  vacunados con la vacuna trivalente vax-SPIRAL<font face="Symbol">&Ograve;</font>  corrobora no solo la expresi&oacute;n com&uacute;n de estos, sino tambi&eacute;n  su inmunorrelevancia. No fue posible identificar el reconocimiento de ant&iacute;genos  proteicos con pesos moleculares inferiores a 25 kDa dado el gran reconocimiento  del LPS en esta zona, por lo que queda enmascarado el reconocimiento de prote&iacute;nas  de bajo peso molecular.     <br>     <br> A diferencia del creciente inter&eacute;s en  el estudio de componentes estructurales de <i>Leptospira</i> y el gran n&uacute;mero  de investigaciones realizadas con esta finalidad en la &uacute;ltima d&eacute;cada,  relativamente pocos son los trabajos encaminados al estudio y la caracterizaci&oacute;n  de componentes extracelulares; a pesar de su papel potencial en la patog&eacute;nesis  de la leptospirosis.<span class="superscript">20 </span>La identificaci&oacute;n  y neutralizaci&oacute;n de estas potencialidades pudiera constituir un punto clave  en la protecci&oacute;n contra la leptospirosis y su evoluci&oacute;n cl&iacute;nica,  por tal motivo result&oacute; de gran inter&eacute;s la identificaci&oacute;n  en las cepas de este estudio de ant&iacute;genos proteicos extracelulares, los  cuales pudieran constituir potenciales componentes de una formulaci&oacute;n vacunal  de nueva generaci&oacute;n. Aun cuando no fue objetivo de este trabajo la detecci&oacute;n  de actividades enzim&aacute;ticas o citot&oacute;xicas en el sobrenadante de los  cultivos bacterianos, los resultados obtenidos permiten concluir que de forma  similar a lo que ocurre con los ant&iacute;genos proteicos celulares, existe una  gran homolog&iacute;a en la expresi&oacute;n de prote&iacute;nas extracelulares  entre los 4 serogrupos de Leptospira de mayor circulaci&oacute;n en humanos en  Cuba. Estudios futuros deber&aacute;n ser encaminados a la evaluaci&oacute;n de  la citotoxicidad de estas prote&iacute;nas extracelulares altamente conservadas  y su posible efecto inmunoprotector.    <br>     <br> Como resultado del presente estudio  se lograron caracterizar microbiol&oacute;gicamente 2 cepas candidatas vacunales  de <i>Leptospira interrogans</i> serogrupo Ballum, las cuales mostraron un crecimiento  fastidioso en los medios de cultivo utilizados para el aislamiento, mantenimiento,  escalado y producci&oacute;n final de ant&iacute;genos vacunales, una alta virulencia  en el modelo h&aacute;mster sirio dorado y una gran homolog&iacute;a antig&eacute;nica  con las cepas vacunales de los serogrupos Canicola, Icterohaemorrhagiae y Pomona.  Estudios adicionales deber&aacute;n comprobar la capacidad inmunoprotectora de  formulaciones vacunales obtenidas a partir de estas cepas. </p><h4>Agradecimientos</h4>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Al  doctor Rudy Hartskeerl del Royal Tropical Institute (KIT), Holanda por la clasificaci&oacute;n  serol&oacute;gica de las cepas candidatas vacunales del serogrupo Ballum.</p><h4>      <br> Summary</h4>    <p>Two candidate vaccines of Ballum serogroup <i>Leptospira interrogans</i>  were microbiologically characterized as part of the work directed to the obtention  of new antileptospirosis vaccine formulations for human use. The growth kynetics  of both strains was evaluated in EMJH protein medium and in 3 protein free media.  The virulence was estimated in hamsters by the calculation of the mean lethal  dose. The cellular and extracellular antigenic profiles were analyzed by unidimensional  SDS-PAGE and compared with those from strains of Canicola, Icterohaemorrhaagiaae  and Pomona serogroups.The antigenic homology among heterologous groups was analyzed  by western blotting with serun from hasterms vaccinated with vax-SPIRAL<font face="Symbol">&Ograve;</font>.  The results obtained showed a fastidious growth of both strains of Ballum in the  studied media, a high virulence in the animal model and a large antigenic homology  with strains from other serogroups of <i>Lepstospira</i> prevailing in Cuba.</p>    <p><b>Subject  headings</b>: LEPTOSPIRA INTERROGANS/ isolated &amp; purification; LEPTOSPIROSIS/  immunology; LEPOSPIROSIS/ prevention &amp; control; MODEL, ANIMAL; BACTERIAl VACCINES/  pharmacokinetic; MESOCRICETUS</p><H4>Referencias bibliogr&aacute;ficas</H4><ol>      <!-- ref --><li> Levett PN. Leptospirosis. Clin Microbiol Rev 2001;14(2):296-326. </li>    <!-- ref --><li>  Faine S, Adler B, Bolin C, Perolat P. Leptospira and leptospirosis, 2nded. Melbourne:  MediSci; 1999.</li>    <!-- ref --><li> Bedevia A. Disminuye en grupos de riesgo cifras de morbilidad  por Leptospira. 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New Jersey: Prentice Hall; 1994.</li>    <!-- ref --><li> Fajardo EM,  Ortiz B, Ch&aacute;vez A, Gainza N, Izquierdo L, Hern&aacute;ndez Y, et al. Estandarizaci&oacute;n  de la dosis letal 50 de las cepas de Leptospira interrogans utilizadas en el control  de la vacuna cubana contra la leptospirosis humana. Rev Cubana Med Trop 1998;50(1):22-6.</li>    <!-- ref --><li>  Reed LJ, Muench H. A simple method of estimating the fifty percent endpoints.  Am J Hyg 1938;27:493-7.</li>    <!-- ref --><li> Brown JA, LeFebvre RB, Pan MJ. Protein and antigen  profiles of prevalent serovars of Leptospira interrogans. Infect Immun 1991;59:1772-7.</li>    <!-- ref --><li>  Burnette WN. Western blotting: Electrophoretic transfer of protein from Sodium  Dodecyl Sulfate Polyacrylamide gel to unmodified nitrocellulose and radiographic  detection with antibodies and radioiodinated protein A. Anal Biochem 1980;112:192-200.  </li>    <!-- ref --><li> Johnson RC, Walby J, Henry RA, Auran NE. 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AP 16017, CP 11600, Ciudad de La Habana, Cuba.  Fax: (53-7) 208 6075; Tel&eacute;fono: (53-7) 202 0986; Correo electr&oacute;nico:  <A HREF="mailto:andresglez@finlay.edu.cu">andresglez@finlay.edu.cu</A>    <br>     <br>  </p>    <p><span class="superscript"><a href="#autor">1</a></span><a href="#autor">  Maestro en Microbiolog&iacute;a.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> <span class="superscript">2 </span>Licenciada  en Bioqu&iacute;mica.    <br> <span class="superscript">3</span> T&eacute;cnico Medio  en Qu&iacute;mica Industrial.    <br> <span class="superscript">4</span> T&eacute;cnico  Medio en Veterinaria.    <br> <span class="superscript">5</span> Licenciada en Biolog&iacute;a.  </a><a name="cargo"></a></p>      ]]></body><back>
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