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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Conservación de cepas vacunales de Leptospira a -70 ºC]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Preservation of vaccine strains of Leptospira at - 70 °C]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The goal of this study was to evaluate the cryopreservation at -70ºC with the use of 9 different cryoprotectants as a preservation method for the strains of Leptospira interrogans used as antigens in the leptospiral vaccine vax-SPIRALâ. Viability was systematically evaluated according to the cell yield achieved by the just thawed strains in EMJH medium. Virulence stability was estimated in Hamsters and antigenicity was evaluated by microscopic agglutination test using reference antisera before and after cryopreservation. Only the use of 2,5% and 5% dimethyl sulfoxide or 5% skim milk allowed a quick recovery of the three strains without virulence or antigenicity depletions after 7 months of cryopreservation while glycerol had a variable effect on the degree of recovery of each strain. The results showed the feasibility of the cryopreservation at -70 °C with the use of a suitable cryoprotectant as a preservation method for vaccine strains of Leptospira.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Leptospira interrogans]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <div class=Section1>        <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD>Instituto Finlay</span></p>   <h2 class=limpio0><span lang=ES-TRAD>Conservación de cepas vacunales de <i style='mso-bidi-font-style:normal'>Leptospira</i> a -70 ºC</span></h2>       <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD><a href="#creditos">Lic. Reinier Borrero      Maura,<sup>1</sup> MC. Andrés González Rodríguez,<sup>2</sup> MC. Carmen del      Puerto Sardiñas,<sup>3</sup> Ing. Niurka Batista Santiesteban<sup>4</sup>      y Téc. Yolanda Valdés Abreu<sup>5</sup></a><sup><a name="autor"></a></sup></span></p>   <h4 class=limpio0><span lang=ES-TRAD>Resumen</span></h4>       <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD>Se evaluó la crioconservación a - 70 ºC      con 9 variantes de crioprotectores como método de conservación de las cepas      de <i style='mso-bidi-font-style:normal'>Leptospira interrogans</i>,<i style='mso-bidi-font-style:normal'> </i>utilizadas como antígenos en la vacuna      antileptospirósica vax-SPIRAL</span><sup><span lang=ES-TRAD style='font-family: Symbol;mso-ascii-font-family:Arial;mso-hansi-font-family:Arial;mso-char-type: symbol;mso-symbol-font-family:Symbol'><span style='mso-char-type:symbol; mso-symbol-font-family:Symbol'>â</span></span></sup><span lang=ES-TRAD>. La viabilidad      se evaluó periódicamente según el rendimiento celular alcanzado por las cepas      recién descongeladas en medio EMJH. La estabilidad de la virulencia fue estimada      en hámster. La antigenicidad antes y después de la crioconservación fue comparada      mediante microaglutinación frente a antisueros de referencia. Solo el empleo      de dimetilsulfóxido a 2,5 y 5 % o leche descremada 5 % como agentes crioprotectores      permitió una rápida recuperación de las 3 cepas tras 7 meses de crioconservación      sin afectación de su virulencia y antigenicidad, mientras el glicerol tuvo      un efecto variable sobre el grado de recuperación de las cepas evaluadas.      Los resultados obtenidos demuestran la factibilidad de la crioconservación      a - 70 ºC con un apropiado agente crioprotector como método de conservación      de cepas vacunales de <i style='mso-bidi-font-style: normal'>Leptospira</i>. </span></p>       <p class=limpio0><b style='mso-bidi-font-weight:normal'><span lang=ES-TRAD>Palabras      clave</span></b><span lang=ES-TRAD>: <i style='mso-bidi-font-style:normal'>Leptospira      interrogans</i>, cepas vacunales, crioconservación.</span></p>       <p class=limpio0>&nbsp;</p>       <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD>La vacuna antileptospirósica trivalente      vax-SPIRAL</span><span lang=ES-TRAD style='font-family:Symbol;mso-ascii-font-family: Arial;mso-hansi-font-family:Arial;mso-char-type:symbol;mso-symbol-font-family: Symbol'><span style='mso-char-type:symbol;mso-symbol-font-family:Symbol'>â</span></span><span lang=ES-TRAD> es una suspensión de células inactivadas de 3 cepas autóctonas de      <i style='mso-bidi-font-style:normal'>Leptospira interrogans</i> pertenecientes      a los serovares Canicola, Copenhageni y Mozdok.<sup>1</sup> Dada la reconocida      disminución de la antigenicidad con la atenuación de la virulencia de este      microorganismo,<sup>2</sup> resulta indispensable la disponibilidad de cultivos      altamente virulentos para ser utilizados como semillas en el proceso productivo      o para los ensayos de potencia de la vacuna en modelos animales. De manera      tradicional las cepas vacunales de <i style='mso-bidi-font-style:normal'>Leptospira</i>      son conservadas en un medio semisólido con suero de conejo como constituyente      esencial, que potencialmente garantiza su viabilidad durante pocos meses sin      necesidad de frecuentes subcultivos que contribuyen a la disminución de la      virulencia. De forma periódica el microorganismo es inoculado y reaislado      de animales de laboratorio susceptibles, para emplear el sistema inmune animal      como mecanismo de selección de las células muy virulentas y eliminar aquellas      con una capacidad patogénica disminuida.<sup>3</sup> </span></p>       <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD>Sin embargo, dada la alta variabilidad nutricional      de los diferentes lotes de suero y como consecuencia, la inconsistencia en      el crecimiento del microorganismo, el medio de conservación tradicionalmente      empleado no garantiza una adecuada estabilidad de la viabilidad de las cepas      vacunales. Asimismo, los frecuentes pases por animal requeridos para el mantenimiento      de la virulencia resultan en ocasiones inapropiados por razones logísticas,      bioéticas o de seguridad del personal. En tal sentido, la introducción de      un método de conservación de <i style='mso-bidi-font-style:normal'>Leptospira</i> que garantice una duradera y      reproducible estabilidad en la viabilidad y virulencia del microorganismo,      permitirá incrementar la consistencia entre procesos productivos, disminuir      los costos de producción/investigación y minimizar riesgos para el personal.      </span></p>       <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD>La crioconservación con glicerol o dimetilsulfóxido      (DMSO) como agentes crioprotectores, ha ofrecido excelentes resultados en      la preservación de la viabilidad y virulencia de este microorganismo y es      en la actualidad un método tradicionalmente empleado para la conservación      de ceparios al nivel internacional.<sup>4-7</sup> El presente trabajo se enmarca      dentro de los estudios encaminados a evaluar la crioconservación, como método      de conservación de las cepas vacunales de <i style='mso-bidi-font-style:normal'>Leptospira</i> incluidas en la vacuna antileptospirósica      cubana. </span></p>   <h4 class=limpio0><span lang=ES-TRAD>Métodos</span></h4>       <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD><i>Cepas bacterianas</i></span></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p class=limpio0><span lang=ES-TRAD>Se utilizaron en el estudio las cepas vacunales      87, 169 y 108 de <i style='mso-bidi-font-style:normal'>Leptospira interrogans</i>,      pertenecientes a los serovares Canicola, Copenhageni y Mozdok, respectivamente,      las cuales fueron originalmente aisladas a partir de material remitido al      Centro Nacional de Epizootiología y Diagnóstico Veterinario de Ciudad de La      Habana y donadas al Instituto Finlay. Desde su aislamiento las cepas fueron      conservadas en medio semisólido de Fletcher.<sup>3</sup> La virulencia fue      mantenida a través de pases periódicos en hámster según los métodos descritos.<sup>3</sup><b style='mso-bidi-font-weight:normal'>      </b></span></p>       <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD><i>Cultivo para los estudios de crioconservación</i></span></p>       <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD>Las cepas fueron cultivadas en medio proteico      EMJH<sup>3</sup> durante 7 d bajo condiciones de cultivo agitado (130 rpm,      30 ºC). Se evaluaron características culturales como motilidad y uniformidad      celular mediante observación directa bajo el microscopio de campo oscuro y      pureza mediante tinción de Gram y siembra en caldo triptona soya y caldo tioglicolato.      Los cultivos puros con buena motilidad y uniformidad celular fueron considerados      apropiados para los estudios de crioconservación. </span></p>       <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD><i>Crioprotectores y procedimiento de crioconservación</i></span></p>       <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD>Se evaluó la capacidad crioprotectora de      diferentes concentraciones de glicerol (MERCK), DMSO (BDH) y leche descremada      (MERCK), así como de una mezcla de leche descremada y glicerol. Cultivos de      las 3 cepas de <i style='mso-bidi-font-style:normal'>Leptospira</i> fueron      mezclados separadamente con glicerol o DMSO estériles hasta una concentración      final de 2,5, 5 y 10 % de cada crioprotector, con leche descremada estéril      hasta una concentración final de 5 y 10 % y con una mezcla de leche y glicerol      (5 %:10 %). Las mezclas de cultivo y crioprotector fueron alicuotadas en volúmenes      de 1 mL empleando criotubos (Nalgene) de 2 mL de capacidad con tapa de rosca,      convenientemente rotuladas y congeladas a - 70 °C. Todo el procedimiento anterior      fue realizado en un tiempo máximo de 30 min. </span></p>       <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD><i>Estabilidad de la viabilidad</i></span></p>       <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD>La viabilidad de cada cepa conservada con      cada variante de crioprotector fue evaluada tras 24 h, 1, 3, 5 y 7 meses de      conservación. De cada variante cepa/crioprotector 3 criotubos fueron descongelados      rápidamente empleando baño de agua a 37 °C y el contenido total de cada uno      fue inoculado individualmente en 6 mL de medio EMJH. Tras 7 d de incubación      a 30 °C bajo condiciones estáticas se determinó la concentración celular de      cada cultivo mediante conteo en cámara de Petroff-Hausser y se evaluaron características      culturales como motilidad y uniformidad celular, por observación directa bajo      el microscopio de campo oscuro. En cada evaluación se incluyó como control      de crecimiento un cultivo en medio EMJH de cada cepa no crioconservada. </span></p>       <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD><i>Estabilidad de la virulencia</i></span></p>       <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD>Previo a la congelación fue determinada      la dosis letal media (DL<sub>50</sub>) de cada cepa en hámsters según la metodología      propuesta por <i style='mso-bidi-font-style:normal'>Fajardo</i> y otros.<sup>8</sup>      Tras cada descongelación y ulterior cultivo en medio EMJH se evaluó además      la estabilidad de la virulencia mediante el procedimiento descrito a continuación.      Grupos de 5 animales de 45-50 g de peso fueron inoculados por vía intraperitoneal      con dosis equivalentes a 100 y 1 000 veces el valor de DL<sub>50 </sub>mostrado      por la cepa antes de la congelación. Los animales así inoculados fueron observados</span><span lang=ES-TRAD style='mso-fareast-font-family:"Arial Unicode MS"'>      </span><span lang=ES-TRAD>durante 14 d posinoculación, registrando los niveles      de supervivencia y mortalidad en cada caso. <span style='text-transform:uppercase'></span></span></p>       <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD><i>Estabilidad de la antigenicidad</i></span><span lang=ES-TRAD style='mso-fareast-font-family:"Arial Unicode MS"'></span></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p class=limpio0><span lang=ES-TRAD>Fue evaluada la antigenicidad de cada cepa,      antes y después de cada descongelación, mediante la técnica de aglutinación      microscópica (MAT)<sup>9</sup> frente a antisueros policlonales de referencia      específicos a cada serovar.</span></p>   <h4 class=limpio0><span lang=ES-TRAD>Resultados </span></h4>       <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD><i>Estabilidad de la viabilidad</i></span></p>       <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD>El uso de los agentes crioprotectores evaluados      permitió mantener la viabilidad de las cepas vacunales de <i>Leptospira</i>      en el tiempo con diferentes grados de eficiencia. De forma general los agentes      crioprotectores que permitieron una completa estabilidad de la viabilidad      de las 3 cepas fueron el DMSO 2,5 y 5 % y la leche descremada<span style='text-transform:uppercase'> </span>5 % (figs 1-3), aunque la motilidad de      los cultivos en todos los casos fue visiblemente superior con el empleo de      DMSO. El glicerol 10 %, la leche descremada 10 % y la mezcla de leche y glicerol      (5 %:10 %) no permitieron mantener estable la viabilidad de ninguna de las      3 cepas en el período evaluado, mientras el glicerol 2,5 y glicerol 5 % tuvieron      un efecto variable en los diferentes serovares.</span></p>       <p class=Limpio align=center style='text-align:center'><a href="/img/revistas/mtr/v58n1/f0108106.jpg"><img src="/img/revistas/mtr/v58n1/f0108106.jpg" width="430" height="336" border="0"></a></p>       
<p class=Limpio align=center style='text-align:center'><b style='mso-bidi-font-weight: normal'><span style='font-size:10.0pt'>Fig. 1</span></b><span style='font-size: 10.0pt'>. Viabilidad de la cepa vacunal del serovar Canicola.</span></p>       <p class=Limpio align=center style='text-align:center'>&nbsp;</p>       <p class=Limpio align=center style='text-align:center'><a href="/img/revistas/mtr/v58n1/f0208106.jpg"><img src="/img/revistas/mtr/v58n1/f0208106.jpg" width="431" height="338" border="0"></a></p>       
<p class=Limpio align=center style='text-align:center'><b style='mso-bidi-font-weight: normal'><span style='font-size:10.0pt'>Fig. 2</span></b><span style='font-size: 10.0pt'>. Viabilidad de la cepa vacunal del serovar Copenhageni.</span></p>       <p class=Limpio align=center style='text-align:center'>&nbsp;</p>       <p class=limpio0 align=center style='text-align:center'><a href="/img/revistas/mtr/v58n1/f0308106.jpg"><img src="/img/revistas/mtr/v58n1/f0308106.jpg" width="430" height="321" border="0"></a></p>       
]]></body>
<body><![CDATA[<p class=limpio0 align=center style='text-align:center'><b style='mso-bidi-font-weight: normal'><span lang=ES-TRAD style='font-size:10.0pt'>Fig. 3</span></b><span lang=ES-TRAD style='font-size:10.0pt'>. Viabilidad de la cepa vacunal del serovar      Mozdok.</span><span lang=ES-TRAD></span></p>       <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD>Los rendimientos celulares alcanzados por      la cepa vacunal del serovar Canicola, tras 7 d de incubación en medio EMJH      luego de la descongelación, evidenciaron que para esta cepa no existieron      diferencias apreciables en la estabilidad de la viabilidad con el empleo de      glicerol 2,5 %, DMSO entre 2,5 y 10 % o leche descremada 5 % (fig. 1). El      glicerol 5 % permitió mantener la viabilidad durante el período evaluado,      aunque el grado de recuperación disminuyó apreciablemente a partir del quinto      mes.</span></p>       <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD>Ninguna de las concentraciones de glicerol      ensayadas permitió mantener estable la viabilidad de la cepa vacunal del serovar      Copenhageni durante todo el período evaluado (fig. 2). Una apreciable disminución      en la recuperación de la cepa se apreció también con el empleo de DMSO 10      %; sin embargo, el DMSO 2,5 y 5 % y la leche descremada 5 % evidenciaron excelentes      resultados como crioprotectores para este serovar. </span></p>       <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD>La cepa vacunal del serovar Mozdok evidenció      altos grados de recuperación con cualquiera de las concentraciones de DMSO      ensayadas, leche descremada 5 % o glicerol 2,5 %. Por encima de 2,5 % el glicerol      fue ineficiente como crioprotector tras 7 meses de evaluación (fig. 3). </span></p>       <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD><i>Estabilidad de la virulencia</i></span></p>       <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD>Ninguno de los procedimientos de crioconservación      ensayados condujo a una disminución cuantitativa de la capacidad de las 3      cepas vacunales de <i style='mso-bidi-font-style:normal'>Leptospira</i> de      producir infección letal en hámsters. Tras cada descongelación todos los cultivos      recuperados exitosamente e inoculados en animales con dosis equivalentes al      valor de 100 y 1 000 DL50 de cada cepa previo a la congelación produjeron      la muerte por leptospirosis en la totalidad de los animales, sin variación      aparente en el tiempo de aparición de los síntomas. </span></p>       <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD><i>Estabilidad de la antigenicidad</i></span></p>       <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD>Al comparar la antigenicidad de las cepas      mediante MAT antes y después de cada descongelación no se apreciaron diferencias      en la capacidad de reaccionar con los respectivos antisueros policlonales      homólogos. Durante todo el período de conservación evaluado las 3 cepas mantuvieron      títulos MAT homólogos idénticos a aquellos mostrados antes de la congelación.      </span></p>   <h4 class=limpio0><span lang=ES-TRAD>Discusión</span></h4>       <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD>El objetivo principal de la conservación      de cultivos microbianos es mantener al microorganismo vivo, no contaminado      y sin variación o mutación, en una condición lo más cercana posible al aislamiento      original. La crioconservación o conservación a bajas o ultrabajas temperaturas      permite detener los procesos metabólicos y el deterioro biológico durante      largos períodos, manteniendo la estabilidad genética del material crioconservado.      Con este método resulta muy importante el empleo de crioprotectores, grupo      heterogéneo de sustancias de alta afinidad por el agua que contribuyen a la      supervivencia de la célula durante la crioconservación. Los crioprotectores      disminuyen el punto de congelación del sistema y reducen la cantidad y el      tamaño de los cristales de hielo durante el enfriamiento, contribuyendo a      la protección física de las membranas y disminuyendo el incremento de la concentración      iónica producto de la congelación del agua.<sup>10</sup></span></p>       <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD>Varios estudios avalan el empleo de la crioconservación      como método eficaz para el mantenimiento de la viabilidad y virulencia de      cepas de <i style='mso-bidi-font-style:normal'>Leptospira</i> <i style='mso-bidi-font-style:normal'>interrogans</i> por períodos prolongados.<sup>4-7</sup>      </span></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p class=limpio0><span lang=ES-TRAD>Aunque la mayoría de los daños a las células      crioconservadas suelen ocurrir durante las etapas de congelación y descongelación,      resulta necesario tener en cuenta el posible efecto citotóxico de los crioprotectores      sobre el microorganismo, sobre todo a concentraciones elevadas donde un anhelado      incremento del efecto crioprotector resulte superado por un letal efecto tóxico      sobre la célula crioconservada. Ha sido estudiada con anterioridad la citotoxicidad      del glicerol y el DMSO para varios serovares de <i style='mso-bidi-font-style:normal'>Leptospira      interrogans</i>.<sup>4,5</sup> Algunos de estos estudios demostraron que por      encima de 10 % cualquiera de los 2 crioprotectores manifiesta determinado      grado de citotoxicidad, con un efecto variable en dependencia del serovar      incluido en el estudio. De cualquier forma el glicerol ha mostrado 10 veces      mayor capacidad citotóxica para <i style='mso-bidi-font-style:normal'>Leptospira</i> que el DMSO.<sup>5</sup> Los      resultados obtenidos en este trabajo sugieren igualmente una mayor toxicidad      del glicerol en comparación con el DMSO o la leche descremada, aunque ninguno      de los crioprotectores a las concentraciones ensayadas evidenció un efecto      citotóxico apreciable a corto plazo sobre cualquiera de las 3 cepas vacunales      de <i style='mso-bidi-font-style:normal'>Leptospira</i>, según los resultados      de las evaluaciones tras 24 h de congelación. En todos los casos la sola presencia      del agente crioprotector en el medio de cultivo no influyó negativamente en      los rendimientos celulares obtenidos. </span></p>       <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD>La incrementada fragilidad de las células      de <i style='mso-bidi-font-style:normal'>Leptospira</i> después de la congelación      y descongelación, unido a la desventaja práctica de un lento crecimiento que      dificulta la obtención de colonias tras el subcultivo en medio sólido, determinan      que el crioprotector incorporado no pueda ser eliminado tras el proceso de      crioconservación. En tal sentido podría resultar inconveniente la inclusión      de leche descremada como agente crioprotector en ceparios de <i style='mso-bidi-font-style:normal'>Leptospira</i> destinados a la producción de      vacunas para uso humano, dado su origen bovino y la posibilidad de su presencia      en trazas en el producto final, lo cual pudiera inducir un incremento de la      reactogenicidad de la vacuna. No obstante, los resultados obtenidos avalan      el empleo de este crioprotector en ceparios vacunales destinados a la investigación      o a ensayos de potencia de lotes vacunales. El DMSO, en cambio, está permitido      en trazas de hasta 50 mg en productos biofarmacéuticos para uso humano, al      ser un solvente orgánico de origen vegetal con baja toxicidad.<sup>11</sup></span></p>       <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD>Como resultado del presente estudio se logró      comprobar que la crioconservación a - 70 °C con el uso de un apropiado agente      crioprotector permite mantener estables la viabilidad, virulencia y antigenicidad      de las 3 cepas vacunales de <i style='mso-bidi-font-style:normal'>Leptospira</i>      durante al menos 7 meses de conservación. Estudios adicionales deberán comprobar      la estabilidad de estas propiedades por un mayor período de tiempo bajo las      mismas condiciones evaluadas, así como la factibilidad del empleo de temperaturas      inferiores como la congelación en nitrógeno líquido. </span></p>       <p class=limpio0>&nbsp;</p>   <h2 class=limpio0><span lang=EN-US style='mso-ansi-language:EN-US'>Preservation      of vaccine strains of <i style='mso-bidi-font-style:normal'>Leptospira</i>      at</span><span lang=EN-GB style='mso-ansi-language:EN-GB'> - 70 </span><span lang=EN-US style='mso-ansi-language:EN-US'>°C</span></h2>   <h4 class=limpio0><span lang=EN-US style='mso-ansi-language:EN-US'>Summary</span></h4>       <p class=limpio0><span lang=EN-US style='mso-ansi-language:EN-US'>The goal of      this study was to evaluate the cryopreservation at -70<sup>o</sup>C with the      use of 9 different cryoprotectants as a preservation method for the strains      of <i style='mso-bidi-font-style:normal'>Leptospira</i> <i style='mso-bidi-font-style: normal'>interrogans</i> used as antigens in the leptospiral vaccine vax-SPIRAL</span><sup><span lang=ES-TRAD style='font-family:Symbol;mso-ascii-font-family:Arial;mso-hansi-font-family: Arial;mso-char-type:symbol;mso-symbol-font-family:Symbol'><span style='mso-char-type:symbol;mso-symbol-font-family:Symbol'>â</span></span></sup><span lang=EN-US style='mso-ansi-language:EN-US'>. </span><span lang=ES-TRAD>Viability      was systematically evaluated according to the cell yield achieved by the just      thawed strains in EMJH medium. Virulence stability was estimated in Hamsters      and antigenicity was evaluated by microscopic agglutination test using reference      antisera before and after cryopreservation. Only the use of 2,5% and 5% dimethyl      sulfoxide or 5% skim milk allowed a quick recovery of the three strains without      virulence or antigenicity depletions after 7 months of cryopreservation while      glycerol had a variable effect on the degree of recovery of each strain. </span><span lang=EN-US style='mso-ansi-language:EN-US'>The      results showed the feasibility of the cryopreservation at -70 °C with the      use of a suitable cryoprotectant as a preservation method for vaccine strains      of <i style='mso-bidi-font-style:normal'>Leptospira</i>.</span></p>       <p class=limpio0><b style='mso-bidi-font-weight:normal'><span lang=ES-TRAD>Key      words</span></b><span lang=ES-TRAD>: <i style='mso-bidi-font-style:normal'>Leptospira      interrogans</i>, vaccine strains, cryopreservation.</span></p>       <p class=limpio0>&nbsp;</p>   <h4 class=limpio0><span lang=ES-TRAD>Referencias bibliográficas</span></h4> </div> <ol>       <li>         <div class=Section1> <span style='layout-grid-mode:line'>González M, Naranjo M, Rodríguez Y, Bebelagua Y,        Oliva R, Batista N, et al. Vacuna antileptospirósica trivalente adsorbida        para uso humano. Primer ensayo evaluativo de la reactogenicidad e inmunogenicidad        en un grupo de voluntarios adultos. VacciMonitor 1997;6(12):2-10.</span></div>   </li>       <li>         ]]></body>
<body><![CDATA[<div class=Section1> <span lang=ES-TRAD style='mso-ansi-language:ES-TRAD;layout-grid-mode:line'>Bernasovskaia        EP, Kondratenko VN, Melnitskaia EV. </span><span style='layout-grid-mode:line'>The        connection of the antigenic activity of <i>Leptospira</i> to its virulence.        Mikrobiol Z 1994;56(6):46-50.</span></div>   </li>       <li>         <div class=Section1> <span style='mso-fareast-font-family: Arial;layout-grid-mode:line'><span style='mso-list:Ignore'></span></span> <span style='layout-grid-mode:line'>Faine S, Adler B, Bolin C, Perolat P. <i style='mso-bidi-font-style:normal'>Leptospira</i> and leptospirosis. 2<sup>nd</sup>        ed. Melbourne: MedSci; 1999. </span></div>   </li>       <li>         <div class=Section1> Reed NE, Varney WC, Goddard RD, Wyeth PJ. The maintenance        of challenge strains used in the potency test for canine <i style='mso-bidi-font-style:normal'>Leptospira</i> vaccines. Biologicals 2000;28:25-8.      </div>   </li>       <li>         <div class=Section1> <span style='mso-fareast-font-family: Arial'><span style='mso-list:Ignore'></span></span> Palit A, Haylock LM, Cox JC.        Storage of pathogenic leptospires in liquid nitrogen. J Appl<i style='mso-bidi-font-style: normal'> </i>Bacteriol 1986;61:407-11.</div>   </li>       <li>         <div class=Section1> <span style='mso-fareast-font-family: Arial'><span style='mso-list:Ignore'></span></span> Alexander A, Lessel E, Evans        L, Frank E, Green S. Preservation of leptospiras by liquid-nitrogen refrigeration.        Int J Syst Bacteriol 1972;22:165-9.</div>   </li>       <li>         ]]></body>
<body><![CDATA[<div class=Section1> <span style='mso-fareast-font-family: Arial'><span style='mso-list:Ignore'></span></span> Stalhein O. Viable, avirulent        <i style='mso-bidi-font-style:normal'>Leptospira interrogans</i> serotype pomona        vaccine: Preservation in liquid nitrogen. Appl Microbiol 1971;22:726-7.      </div>   </li>       <li>         <div class=Section1> Fajardo ME, Ortiz B, Chávez A, Gainza N, Izquierdo L,        Hernández Y, et al<i style='mso-bidi-font-style:normal'>.</i> Normalización de la dosis letal 50 de        las cepas de <i style='mso-bidi-font-style:normal'>Leptospira interrogans</i>        utilizadas en el control de la vacuna antileptospirósica cubana para uso        humano. <span lang=EN-US style='mso-ansi-language:EN-US'>Rev Cubana Med        Trop 1998;50:22-6.</span></div>   </li>       <li>         <div class=Section1> <span lang=ES-TRAD style='mso-fareast-font-family:Arial;mso-ansi-language:ES-TRAD'><span style='mso-list:Ignore'></span></span> Cole JR, Sulzer CR, Pursell AR. Improved        microtechnique for the leptospiral microscopic agglutination test. <span lang=ES-TRAD style='mso-ansi-language:ES-TRAD'>Appl Microbiol 1973;5:65-9.</span></div>   </li>       <li>         <div class=Section1> Gherna R. Preservation. En: Gerhardt P. Manual of Methods        for General Bacteriology. <span lang=EN-US style='mso-ansi-language:EN-US'>2<sup>nd</sup> ed. </span><st1:place><st1:City><span   lang=EN-US style='mso-ansi-language:EN-US'>Washington</span></st1:City><span  lang=EN-US style='mso-ansi-language:EN-US'> </span><st1:State><span   lang=EN-US style='mso-ansi-language:EN-US'>DC</span></st1:State></st1:place><span lang=EN-US style='mso-ansi-language:EN-US'>: American Society for Microbiology;        1981. p.208-17.</span></div>   </li>       <li>         <div class=Section1> <span lang=ES-TRAD style='mso-fareast-font-family:Arial;mso-ansi-language:ES-TRAD'><span style='mso-list:Ignore'></span></span> <span lang=EN-US style='mso-ansi-language:EN-US'>ICH Steering Committee. Guideline for        residual solvents in pharmaceuticals for human use. International Conference        on Harmonisa</span>tion of Technical Requirements for Registration of Pharmaceuticals        for Humans Use. FDA Federal Register <span lang=ES-TRAD style='mso-ansi-language:ES-TRAD'>1997;62(247):673-77. </span></div>   </li>     </ol>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div class=Section1>        <p class=limpio0><span lang=ES-TRAD>Recibido: 9 de septiembre de 2005. Aprobado:      8 de febrero de 2006.    <br>     </span><span lang=ES-TRAD>Lic. <i style='mso-bidi-font-style:normal'>Reinier      Borrero Maura</i>. Instituto “Finlay”.Ave. 27 No. 19805, municipio La Lisa.      AP 16017, CP 11600, Ciudad de La Habana, Cuba. Fax: (53-7) 208 6075; Teléf.:      (53-7) 202 0986. Correo electrónico: <a href="mailto:%20andresglez@finlay.edu.cu">andresglez@finlay.edu.cu</a></span></p>       <p class=limpio0><sup><span lang=ES-TRAD><a href="#autor">1 </a></span></sup><a href="#autor"><span lang=ES-TRAD>Licenciado      en Microbiología.    <br>     </span><sup><span lang=ES-TRAD>2 </span></sup><span lang=ES-TRAD>Maestro en      Microbiología.    <br>     </span><sup><span lang=ES-TRAD>3 </span></sup><span lang=ES-TRAD>Maestro en      Microbiología.    <br>     </span><sup><span lang=ES-TRAD>4 </span></sup><span lang=ES-TRAD>Ingeniera      Química.    <br>     </span><sup><span lang=ES-TRAD>5 </span></sup><span lang=ES-TRAD>Técnico Medio      en Medicina Veterinaria.</span></a><span lang=ES-TRAD><a name="creditos"></a></span></p> </div>      ]]></body><back>
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