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<journal-title><![CDATA[Revista Cubana de Hematología, Inmunología y Hemoterapia]]></journal-title>
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<publisher-name><![CDATA[Centro Nacional de Información de Ciencias MédicasEditorial Ciencias Médicas]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Estudio de inmunofenotipo por citometría de flujo para el diagnóstico de inmunodeficiencias primarias]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Immunofenotype study by flow citometry for the diagnosis of primary immunodeficiencies]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto de Hematología e Inmonología  ]]></institution>
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<self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0864-02892017000200003&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0864-02892017000200003&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0864-02892017000200003&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Las inmunodeficiencias primarias (IDP) son un conjunto heterogéneo de enfermedades, en su mayoría de origen hereditario o congénito, cuyo diagnóstico requiere de la caracterización inmunológica de poblaciones y subpoblaciones celulares. Esta revisión, describe la metodología más actual a nivel internacional, basada en el proyecto denominado FITMaN (del inglés, Flow Immunophenotyping Technical Meeting at National Institute of Health ) para la caracterización celular que permite definir o avanzar en el diagnóstico correcto de estas entidades utilizando las bondades de la tecnología de la citometría de flujo. También, brinda nuevas opciones de investigación que permiten profundizar en el comportamiento del sistema inmunológico en estas enfermedades y su asociación con la expresión de marcadores moleculares y genéticos de interés.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Primary immunodeficiencies (PID) are a heterogenous group of diseases, mostly hereditary or congenital origin, which diagnosis requires the immunological characterization of cell populations and subpopulations. This review describes the international current methodology, based on the project called FITMAN (Flow Immunophenotyping Technical Meeting at National Institute of Health) for cell characterization that allows defines or forward to correct diagnosis of these entities using benefits of flow cytometry technology. Also, it provides new research options that allow deeper into the behavior of the immune system in these diseases and their association with the molecular expression and genetic markers of interest.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[inmunodeficiencias primarias]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>ART&#205;CULO    DE REVISI&#211;N</b> </font></p>     <p align="right">&nbsp;</p>     <p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b> <font size="4">Estudio    de inmunofenotipo por citometr&#237;a de flujo para el diagn&#243;stico de inmunodeficiencias    primarias </font></b> </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b> <font size="3">Immunofenotype    study by flow citometry for the diagnosis of primary immunodeficiencies </font></b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp; </p>     <p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Consuelo Mac&#237;as    Abraham</b> </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Instituto de Hematolog&#237;a    e Inmunolog&#237;a. La Habana, Cuba. </font></p>     <p>&nbsp; </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp; </p> <hr>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>RESUMEN</b>    </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Las inmunodeficiencias    primarias (IDP) son un conjunto heterog&#233;neo de enfermedades, en su mayor&#237;a    de origen hereditario o cong&#233;nito, cuyo diagn&#243;stico requiere de la    caracterizaci&#243;n inmunol&#243;gica de poblaciones y subpoblaciones celulares.    Esta revisi&#243;n, describe la metodolog&#237;a m&#225;s actual a nivel internacional,    basada en el proyecto denominado FITMaN (del ingl&#233;s, <i> Flow Immunophenotyping    Technical Meeting at National Institute of Health </i> ) para la caracterizaci&#243;n    celular que permite definir o avanzar en el diagn&#243;stico correcto de estas    entidades utilizando las bondades de la tecnolog&#237;a de la citometr&#237;a    de flujo. Tambi&#233;n, brinda nuevas opciones de investigaci&#243;n que permiten    profundizar en el comportamiento del sistema inmunol&#243;gico en estas enfermedades    y su asociaci&#243;n con la expresi&#243;n de marcadores moleculares y gen&#233;ticos    de inter&#233;s. </font></p>     <p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Palabras clave</b>:    inmunodeficiencias primarias; citometr&#237;a; inmunofenotipo. </font></p> <hr>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>ABSTRACT</b>    </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Primary immunodeficiencies    (PID) are a heterogenous group of diseases, mostly hereditary or congenital    origin, which diagnosis requires the immunological characterization of cell    populations and subpopulations. This review describes the international current    methodology, based on the project called FITMAN (Flow Immunophenotyping Technical    Meeting at National Institute of Health) for cell characterization that allows    defines or forward to correct diagnosis of these entities using benefits of    flow cytometry technology. Also, it provides new research options that allow    deeper into the behavior of the immune system in these diseases and their association    with the molecular expression and genetic markers of interest. </font></p>     <p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Keywords: </b>    primary immunodeficiencies; principio del formulario; cytometry; immunophenotype.    </font></p> <hr>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><br clear="all"/>   </font></p>     <p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><font size="3">INTRODUCCI&#211;N</font></b>    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Las inmunodeficiencias    primarias (IDP) son un conjunto hererog&#233;neo de enfermedades producto de    mutaciones monog&#233;nicas, en su mayor&#237;a de origen hereditario, que comprometen    la homeostasis del sistema inmunol&#243;gico y provocan enfermedad<sup>1-6</sup>.    El estudio de las IDP se encuentra en constante actualizaci&#243;n para lograr    la mejor caracterizaci&#243;n inmunol&#243;gica, diagn&#243;stico, tratamiento    y pron&#243;stico de estos enfermos. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> El estudio del    fenotipo linfocitario incluye diferentes marcadores espec&#237;ficos de linaje    en la superficie de la membrana celular, que se basa en el patr&#243;n de migraci&#243;n    y diferenciaci&#243;n de cada subpoblaci&#243;n en el contexto del sistema inmune    en el organismo. Por lo anterior, es de gran importancia conocer la cuantificaci&#243;n    de poblaciones y subpoblaciones linfocitarias para orientar el estudio que permite    profundizar en estas alteraciones y definir un diagn&#243;stico en enfermedades    que muestran un amplio polimorfismo cl&#237;nico. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> El protocolo FITMaN    (del ingl&#233;s, <i> Flow ImmunophenotypingTechnical Meeting at National Institute    of Health </i> ) forma parte del Proyecto de Inmunolog&#237;a Humana, en ingl&#233;s,	   <i>Human Immunology Project Consortium </i>(HIPC), que se realiz&#243; con el    objetivo de una correcta caracterizaci&#243;n del sistema inmune humano mediante    el conjunto de 4 paneles de 8 colores por citometr&#237;a de flujo para el inmunofenotipaje    de c&#233;lulas de sangre perif&#233;rica <sup>7-11</sup>. Su estandarizaci&#243;n    se realiz&#243; para conseguir una metodolog&#237;a y configuraci&#243;n com&#250;n    para el procesamiento y an&#225;lisis. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Para facilitar    el diagn&#243;stico, la Uni&#243;n Internacional de Sociedades Immunol&#243;gicas    (IUIS) ha elaborado la siguiente clasificaci&#243;n de los diferentes grupos,    en funci&#243;n de la afectaci&#243;n<sup>1</sup>: </font></p>     <blockquote>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 1. Immunodeficiencias      combinadas </font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 2. S&#237;ndromes      de immunodeficiencias bien definidos </font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 3. Deficiencias      predominantes de anticuerpos </font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 4. Enfermedades      de desregulaci&#243;n inmunol&#243;gica </font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 5. Defectos      cong&#233;nitos del n&#250;mero y funci&#243;n de los fagocitos </font></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 6. Defectos      de la immunidad innata </font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 7. Des&#243;rdenes      autoinflamatorios </font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 8. Deficiencias      del complemento </font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 9. Adquiridas      </font></p> </blockquote>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Las IDP combinadas    presentan anormalidades en la inmunidad mediada por c&#233;lulas (linfocitos    T), en la inmunidad mediada por anticuerpos (linfocitos B) y tambi&#233;n en    la inmunidad innata con ausencia o disminuci&#243;n de las c&#233;lulas <i>natural    killer</i> (NK), c&#233;lulas dendr&#237;ticas (DC) y monocitos. Es por ello    que es necesario el estudio de estos tipos celulares para definir o avanzar    en el diagn&#243;stico correcto de estas entidades. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> A continuaci&#243;n,    se describen las caracter&#237;sticas moleculares que definen fenotipos celulares    y aportan datos de inter&#233;s funcional que permiten profundizar en el comportamiento    del sistema inmunol&#243;gico en estas enfermedades y su asociaci&#243;n con    la expresi&#243;n de marcadores moleculares y gen&#233;ticos de inter&#233;s.    </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><font size="3">C&#201;LULAS    T</font></b> </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Los linfocitos    T se identifican mediante su separaci&#243;n de los linfocitos totales utilizando    el marcador caracter&#237;stico CD3. De estos se separan los linfocitos colaboradores    (CD4+) de los citot&#243;xicos (CD8+). A partir de cada uno de ellos, utilizando    los marcadores CD45RA y el receptor de quimiocina tipo 7(CCR7) se distinguen    los linfocitos <i>naive</i> o v&#237;rgenes (CCR7+CD45RA+), los linfocitos de    memoria central (CCR7+CD45RA-), los linfocitos de memoria efectora (CCR7-CD45RA-)y    los linfocitos efectores (CCR7-CD45RA+) <sup>7-10</sup>. (<a href="/img/revistas/hih/v33n2/f526_001.jpg">Fig.    1</a>) </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> La separaci&#243;n    de los linfocitos T CD4+ y CD8+ mediante CD45RA y CD45RO permite identificar    las c&#233;lulas T de memoria (CD45RA-/CD45RO+) y las c&#233;lulas T v&#237;rgenes    y efectoras (CD45RO-/CD45RA+). En cada grupo el marcador CCR7 permite diferenciar    dentro de las c&#233;lulas de memoria (CD45RA-), las de memoria central (CCR7+)y    las de memoria efectora (CCR7-); y dentro de las c&#233;lulas T que no son de    memoria (CD45RO-/CD45RA+),las c&#233;lulas v&#237;rgenes (CCR7+) y las c&#233;lulas    efectoras (CCR7-)<sup>7-10</sup>. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><i>C&#233;lulas    T colaboradoras</i></b> <b>: </b> Una vez separados mediante su marcador de    linaje (CD3+) y de los linfocitos citot&#243;xicos (CD8+), los linfocitos colaboradores    (CD4+)se separan en subtipos mediante la expresi&#243;n o no de los receptores    de quimiocinas tipo 3 (CXCR3) y 6 (CCR6) como son: Th1 (CXCR3+CCR6-) , Th2 (CXCR3-CCR6-),    Th17 (CXCR3-CCR6+)y Th1-Th17 (CXCR3+CCR6+).Con los marcadores de activaci&#243;n    HLA-DR y CD38 se diferencia el porcentaje de c&#233;lulas activadas de cada    subclase colaboradora y citot&#243;xica (<a href="/img/revistas/hih/v33n2/f526_001.jpg">Fig. 1</a>)<sup>11-15</sup>.    </font></p>     <p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><i>C&#233;lulas    T reguladoras</i></b> <b>:</b> Los linfocitos T CD4+ se separan mediante marcadores    caracter&#237;sticos (CD3+CD4+). La estrategia de enfrentar CD25 vsCD127 permite    identificar las c&#233;lulas T reguladoras (CD25+CD127<i>low</i>). Concretamente,    ser&#225;n c&#233;lulas T reguladoras aquellas que expresen el receptor de quimiocina    tipo 4 y el CD45RO (CCR4+CD45RO+)(<a href="/img/revistas/hih/v33n2/f526_002.jpg">Fig. 2</a>)<sup>16</sup>.    </font></p>     <p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><font size="3">C&#201;LULAS    B</font></b> </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Los linfocitos    B se identifican mediante la caracterizaci&#243;n (CD3-CD19+). La combinaci&#243;n    de los marcadores IgD y CD27 permite la identificaci&#243;n de los linfocitos    B v&#237;rgenes o <i>naive</i> (IgD+ CD27-), lasc&#233;lulas de memoria previas    al cambio de clase, en ingl&#233;s,<i>pre-switch memory</i>(IgD+ CD27+),las    de memoria con cambio de clase,en ingl&#233;s <i>switchmemory</i> (IgD-CD27+)    y las agotadas o <i>exhausted B cells</i>(IgD/CD27-) <sup>17</sup>. (<a href="/img/revistas/hih/v33n2/f526_003.jpg">Fig.    3</a>) </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">A partir de las    c&#233;lulas B v&#237;rgenes se distinguen lasc&#233;lulas transicionales (CD38<i>high</i>    CD24<i>high</i>), que est&#225;n en un estado m&#225;s inmaduro. A partir de    las <i>switch memory</i> se pueden distinguir los plasmablastos (CD38+CD24-),    que est&#225;n en un estadio de maduraci&#243;n previo a las c&#233;lulas plasm&#225;ticas;    y utilizando los marcadores CD38 y CD20, una poblaci&#243;n que incluye plasmablastos    y c&#233;lulas plasm&#225;ticas (CD38+CD20+)<sup>17</sup>. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Entre los linfocitos    B, a partir de su marcador de linaje CD19, se pueden identificar: linfocitos    B v&#237;rgenes(CD21+CD27-) ,de memoria (CD21+CD27+), CD21<i>low </i>(CD21<i>low</i>    CD27+) e inmaduros (CD21-CD27-) mediante la combinaci&#243;n de CD21 vs CD27.    A partir de CD21<i>low </i>y con los marcadores CD21 vsCD38 se puede discernir    entre los activados (CD21<i>low</i>CD38-) y los transicionales inmaduros Tambi&#233;n    se pueden diferenciar los linfocitos de memoria que han cambiado de clase y    los que no, mediante la combinaci&#243;n de marcadores IgD e IgM, as&#237; como    los que han pasado a plasmablastos (IgM-CD38+). Con los mismos marcadores, a    partir de los linfocitos B v&#237;rgenes se identifican los linfocitos B transicionales    y dentro de los linfocitos B,las c&#233;lulas plasm&#225;ticas (CD38+CD138+)(<a href="/img/revistas/hih/v33n2/f526_004.jpg">Fig.    4</a>) <sup>17</sup>. </font></p>     <p>&nbsp; </p>     <p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><font size="3">C&#201;LULAS    DENDR&#205;TICAS/C&#201;LULAS NK/ MONOCITOS</font></b> </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Por exclusi&#243;n    de los linfocitos T y los linfocitos B, se hace una selecci&#243;n negativa    de los CD3-CD19-CD20-; de esta, es que se seleccionan los monocitos y las c&#233;lulas    dendr&#237;ticas y las c&#233;lulas NK. Para diferenciar estos tipos celulares,    en la misma ventana mediante la lectura de la combinaci&#243;n de marcaje con    CD56 vs CD14 se distinguen los monocitos (CD56- CD14+) En los monocitos se puede    distinguir entre los cl&#225;sicos (CD14+CD16-) y los no cl&#225;sicos(CD14+CD16+).    (<a href="/img/revistas/hih/v33n2/f526_005.jpg">Fig. 5</a>) </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En las c&#233;lulas    NK(CD56+CD16+), mediante la combinaci&#243;n CD56 vs CD16 es posible distinguir    entre los <i>NKsbright</i> y los <i>NKsdim</i>. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Las c&#233;lulas    dendr&#237;ticas son CD56-CD14-HLA-DR+ y con la combinaci&#243;n del CD11c y    el CD123se pueden diferenciar las c&#233;lulas dendr&#237;ticas mieloides de    las plasmacitoides <sup>18-21</sup>. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> En la actualidad,    Cuba cuenta con un Programa de Atenci&#243;n Integral al enfermo con IDP, el    cual debe desarrollarse de manera m&#225;s acelerada en el pr&#243;ximo quinquenio.    La disponibilidad de tecnolog&#237;as de avanzada, como son: la citometr&#237;a    de flujo, la hibridizaci&#243;n <i>"in situ"</i> por fluorescencia (FISH) y    la biolog&#237;a molecular, permitir&#225; el diagn&#243;stico m&#225;s preciso    de estas enfermedades lo que, asociado a la experiencia cl&#237;nica, ubicar&#225;    al Sistema Nacional de Salud en una posici&#243;n favorable para la atenci&#243;n    m&#233;dica, con mejoras en el diagn&#243;stico, la calidad de vida de los enfermos    y la curaci&#243;n mediante el trasplante hematopoy&#233;tico de las IDP. </font></p>     <p>&nbsp; </p>     <p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><font size="3">REFERENCIAS    BIBLIOGR&#193;FICAS</font></b> </font></p>     <!-- ref --><p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 1.    Al-Herz W, Bousfiha A, Casanova JL, Chatila T, Conley ME, Cunningham-Rundles    Ch, et al. Primary immunodeficiency diseases: an update on the classification    from the International Union of Immunological Societies Expert Committee for    Primary Immunodeficiency. Front Immunol.2014; 22(5):162.     </font></p>     <!-- ref --><p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 2.    Crestani E, Choo Sh, Frugoni F, Nee Lee Y, Richards S, Joanne Smart J, et al.    RAG1 Mosaicismin a Patient with Omenn Syndrome. J Clin Immunol. 2014;34(5):551-4.        </font></p>     <!-- ref --><p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 3.    Corneo B, Moshous D , G&#252;ng&#246;r T , Wulffraat N , Philippet P , Le Deist    FL , et al. Identical mutations in RAG1 or RAG2 genes leading to defective V(D)J    recombinase activity can cause either T-B-severe combined immune deficiency    or Omenn syndrome. Blood. 2001;97(9):2772-6.     </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 4.    Boldt A, Borte S , Fricke S , Kentouche K , Emmrich F , Borte M , et al. Eight-color    immunophenotyping of T-, B-, and NK- cell subpopulations for characterization    of chronic immunodeficiencies. Cytometry B Clin Cytom. 2014 May;86(3):191-206.    doi: 10.1002/cyto.b.21162 </font><p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 5.    Van der Burg M &amp; Gennery AR. Educational paper: The expanding clinical and    immunological spectrum of severe combined immunodeficiency <b>. </b>Eur J Pediatr.    2011;170:561-71. </font></p>     <!-- ref --><p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 6.    Van der Burg M. A DNA-PKcs mutation in a radiosensitive T-B-SCID patient inhibits    Artemis activation and nonhomologous end-joining. J Clin Invest. 2009; 119(1):91-8.        </font></p>     <!-- ref --><p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 7.    Maecker HT, McCoy JP , Nussenblatt R .Standardizing immunophenotyping for the    Human Immunology Project. Nat Rev Immunol. 2012;12(3):191-200.     </font></p>     <!-- ref --><p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 8.    De Vries E. Patient-centred screening for primary immunodeficiency, a multi-stage    diagnostic protocol designed for non-immunologists:2011 update. Clin Exp Immunol.    2012;167(1):108-19.     </font></p>     <!-- ref --><p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 9.    Finak G, Langweiler M, Jaimes M, Malek M, Taghiyar J, Korin Y, et al. Standardizing    Flow Cytometry Immunophenotyping Analysis from the Human Immuno Phenotyping    Consortium. Sci Rep. 2016 Feb 10;6:20686. doi: 10.1038/srep20686.     </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 10.    Hasan M, Beitz B, Rouilly V, Libri V, Urrutia A, Duffy D, et al. Semi-automated    and standardized cytometric procedures for multi-panel and multi-parametric    whole blood immunophenotyping. Clin Immunol.2015 Apr; 157(2): 261-76. doi: 10.1016/j.clim.2014.12.008.        </font></p>     <!-- ref --><p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 11.    Duffy D, Rouilly V, Libri V, Hasan M, Beitz B, David M, et al. Functional Analysis    via Standardized Whole-BloodStimulation Systems Defines the Boundaries of a    Healthy Immune Response to Complex Stimuli. Immunity. 2014 Mar 20;40(3):436-50.    doi: 10.1016/j.immuni.2014.03.002.     </font></p>     <!-- ref --><p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 12.    Mateus J, Lasso P, Gonz&#225;lez JM, Puerta CJ, Cu&#233;llar A. Design of a    multicolor panel to assess intracellular and surface molecules by flow cytometry.    Biomedica 2013. 33(4):660-72.     </font></p>     <!-- ref --><p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 13.    Farber DL, Yudanin NA, Restifo NP. Human memory T cells: generation, compartmentalization    and homeostasis. Nat Rev Immunol. 2014 Jan;14(1):24-35. doi: 10.1038/nri3567.        </font></p>     <!-- ref --><p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 14.    Romero P, Zippelius A , Kurth I , Pittet MJ , Touvrey C , Iancu EM et al. Four    functionally distinct populations of human effector-memory CD8+ T lymphocytes.    J Immunol. 2007;178(7):4112-9.     </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 15.    Appay V, van Lier RA , Sallusto F , Roederer M . Phenotype and Function of Human    T Lymphocyte Subsets: Consensus and Issues. Cytometry A. 2008 Nov;73(11):975-83.    doi: 10.1002/cyto.a.20643.     </font></p>     <!-- ref --><p align="left"> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">16.    SalustoF, Lanzavecchia A. Heterogeneity of CD4+ memory T cells: Functional modules    for tailored immunity. Eur J Immunol. 2009 Aug;39(8):2076-82. doi: 10.1002/eji.200939722.        </font></p>     <!-- ref --><p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 17.    Sakaguchi S. Regulatory T cells in the past and for the future. Eur J Immunol.    2008 Apr;38(4):901-37. doi: 10.1002/eji.200890012.     </font></p>     <!-- ref --><p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 18.    BhattacharyaP, Wuerffel R, Kenter AL. Switch region identity plays an important    role in Ig class switch recombination. J Immunol. 2010;184(11):6242-8.     </font></p>     <!-- ref --><p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 19.    Banchereau J, Briere F, Caux C, Davoust J, Lebecque S, Liu YJ, et al. Immunobiology    of dendritic cells. Annu Rev Immunol. 2000;18:767-811.     </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 20.    Jardine L, BargeD, Ames-Draycott A, Pagan S, CooksonSh, Spickett G, et al. Rapid    detection of dendritic cell and monocyte disorders using CD4 as a lineage marker    of the human peripheral blood antigen-presenting cell compartment.Front Immunol.2013;4:495.        </font></p>     <!-- ref --><p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 21.    Heinze A, Elze MC, Kloess S, Ciocarlie O, Konigs C, Betz S, et al. Age-matched    dendritic cell subpopulations reference values in childhood. Scand J Immunol.    2013;77(3):213-20.     </font></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Recibido: agosto    08, 2016.    <br>   </font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Aceptado:    diciembre 27, 2016. </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><i>Prof. DraC.    Consuelo Mac&#237;as Abraham</i> . Instituto de Hematolog&#237;a e Inmunolog&#237;a.    Apartado 8070, La Habana, CP 10800, CUBA. </font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Tel    (537) 643 8695, 8268.     <br>   </font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Email: <a href="mailto:rchematologia@infomed.sld.cu">    rchematologia@infomed.sld.cu </a> </font></p>      ]]></body><back>
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