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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Expresión de la enzima peroxidasa en plantas de Saccharum sp. híbrido inoculadas con Xanthomonas albilineans Ashby (Dowson)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In this study the expression of the peroxidase enzyme (POX) in two sugarcane cultivars (hybrid Saccharum sp.) and the correlation with the response of each one to the invasion of the pathogen Xanthomonas albilineans, its causative agent, were evaluated. The evaluated cultivars were Mayarí 55-14 (tolerant) and Cuba 85-102 (susceptible); they were both inoculated at five months of age with the bacteria, and the controls, with sodium phosphate buffer. A completely randomized design, with three replications was used. Variance analysis (ANOVA) was performed on the data, through the statistical package Statgraphics plus version 5.1. In both cultivars the POX specific activity increased after the inoculation with the bacteria; in My55-14 it was higher with regards to C85-102 since two hours. The response to the pathogen infection was detected faster in the tolerant cultivar (2 hours) than in the susceptible one (4 hours). It is concluded that the peroxidase activity is involved in the defense processes of sugarcane against the bacteria X. albilineans; hence it can be used, because of its importance, in the identification of resistant genotypes to this pathogen, in the framework of the breeding programs of this plant, in order to guarantee obtaining higher quality biomass, for the sugar industry as well as for animal feeding.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>ART&Iacute;CULO DE INVESTIGACI&Oacute;N </strong></font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><strong><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Expresi&oacute;n de la enzima peroxidasa en plantas de <I>Saccharum</I> sp. h&iacute;brido inoculadas con <I>Xanthomonas albilineans</I> Ashby (Dowson) </font></strong></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <P align="justify"><strong><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Expression of the peroxidase enzyme in hybrid        <I>Saccharum</I> sp. plants inoculated with        <I>Xanthomonas albilineans</I> Ashby (Dowson) </font> </strong>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Madyu Matos-Trujillo<SUP>1</SUP>, Maykelis    D&iacute;az-Solares<SUP>2</SUP>, Luz Mar&iacute;a    Samaniego-Fern&aacute;ndez<SUP>1</SUP>, Leydis    Cortegaza-&Aacute;vila<SUP>3</SUP>, Jos&eacute; R.    P&eacute;rez-Milian<SUP>3</SUP>, Yenima    Pell&oacute;n-Guzm&aacute;n<SUP>3</SUP>, Yordanka    Ruf&iacute;n-Hern&aacute;ndez<SUP>3 </SUP>y Josel    P&eacute;rez-P&eacute;rez<SUP>3</SUP></strong><SUP></SUP> </font>     <P align="justify">   <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><I><SUP>1</SUP>Facultad de Agronom&iacute;a,Universidad de Matanzas, Autopista a Varadero km 3, Matanzas, Cuba     <br>   <SUP>2</SUP>Estaci&oacute;n Experimental de Pastos y Forrajes Indio Hatuey, Matanzas, Cuba     <br>   <SUP>3</SUP>Estaci&oacute;n Provincial de Investigaciones de la Ca&ntilde;a de Az&uacute;car Antonio Mesa, Matanzas, Cuba     <br>   Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:madyu.matos@umcc.cu">madyu.matos@umcc.cu</a></I> </font>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr align="JUSTIFY">     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>RESUMEN</B>  </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En este estudio se evalu&oacute; la expresi&oacute;n de la enzima peroxidasa (POX) en dos cultivares de ca&ntilde;a de az&uacute;car  (<I>Saccharum</I>sp. h&iacute;brido) y la correlaci&oacute;n con la respuesta de cada uno ante la invasi&oacute;n del pat&oacute;geno <I>Xanthomonas albilineans</I>, su agente causal. Los cultivares evaluados fueron Mayar&iacute; 55-14 (tolerante) y Cuba 85-102 (susceptible); ambos se inocularon a los cinco  meses de edad con la bacteria, y los controles, con el tamp&oacute;n fosfato de sodio. Se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o totalmente aleatorizado, con  tres r&eacute;plicas. A los datos se les realiz&oacute; an&aacute;lisis de varianza (ANOVA), mediante el paquete estad&iacute;stico Stargraphic plus versi&oacute;n  5.1. En ambos cultivares la actividad espec&iacute;fica POX se increment&oacute; despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n con la bacteria; en el My55-14  fue superior respecto al C85-102 a partir de dos horas. La respuesta a la infecci&oacute;n del pat&oacute;geno se detect&oacute; m&aacute;s r&aacute;pido en el  cultivar tolerante (2 horas) que en el susceptible (4 horas). Se concluye que la actividad peroxidasa est&aacute; involucrada en los procesos  de defensa de la ca&ntilde;a de az&uacute;car contra la bacteria <I>X. albilineans;</I> de ah&iacute; que se pueda utilizar, por su importancia, en la  identificaci&oacute;n de genotipos resistentes a este pat&oacute;geno, en el marco de los programas de mejoramiento de esta planta, con vistas a  garantizar la obtenci&oacute;n de biomasa de mayor calidad, tanto para la industria azucarera como para la alimentaci&oacute;n animal. </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Palabras clave:</strong>actividad enzim&aacute;tica, organismos pat&oacute;genos, resistencia a la enfermedad. </font> <hr align="JUSTIFY">     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>ABSTRACT</B>  </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">In this study the expression of the peroxidase enzyme (POX) in two sugarcane cultivars (hybrid      <I>Saccharum</I> sp.) and the correlation with the response of each one to the invasion of the pathogen      <I>Xanthomonas albilineans</I>, its causative agent, were evaluated.  The evaluated cultivars were Mayar&iacute; 55-14 (tolerant) and Cuba 85-102 (susceptible); they were both inoculated at five months of age  with the bacteria, and the controls, with sodium phosphate buffer. A completely randomized design, with three replications was  used. Variance analysis (ANOVA) was performed on the data, through the statistical package Statgraphics plus version 5.1. In both  cultivars the POX specific activity increased after the inoculation with the bacteria; in My55-14 it was higher with regards to C85-102 since  two hours. The response to the pathogen infection was detected faster in the tolerant cultivar (2 hours) than in the susceptible one (4  hours). It is concluded that the peroxidase activity is involved in the defense processes of sugarcane against the bacteria <I>X. albilineans</I>; hence it can be used, because of its importance, in the identification of resistant genotypes to this pathogen, in the framework of the  breeding programs of this plant, in order to guarantee obtaining higher quality biomass, for the sugar industry as well as for animal feeding. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Keywords:</strong> enzymatic activity, pathogen organisms, resistance to disease.</font> <hr> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"></font>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>INTRODUCCI&Oacute;N </B> </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><I>Saccharum</I>sp<I>. </I>h&iacute;brido es uno de los cultivos que se utilizan en la alimentaci&oacute;n ganadera, debido a su  valor forrajero, a que su volumen de producci&oacute;n de biomasa es mayor que el de otras po&aacute;ceas y a que la cosecha se  realiza en la &eacute;poca de seca  (Hern&aacute;ndez<I> et al.</I>, 2004), cuando hay m&aacute;sescasez de alimento para los animales. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Uno de los factores que influyen notablemente en el rendimiento y, por tanto, en la calidad de la biomasa de la ca&ntilde;a  de az&uacute;cares la notable incidencia de plagas. La enfermedades caldadura foliar, causada por la bacteria <I>Xanthomonas albilineans</I> Ashby (Dowson), en su fase aguda, ha provocado p&eacute;rdidas de m&aacute;s del 90 %, debido a la reducci&oacute;nen la calidad y cantidad  de los jugos (Huerta-Lara<I> et al.</I>, 2009). </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Entre los cambios bioqu&iacute;micos que ocurrenen la ca&ntilde;a como consecuencia de la  invasi&oacute;n por<I> X. albilineans </I>se destaca la s&iacute;ntesis de mol&eacute;culas, como los polisac&aacute;ridos  (Blanch<I> et al.</I>, 2008; Legaz<I> et al.</I>, 2011); la de  compuestos fen&oacute;licos; y la de varios sistemas enzim&aacute;ticos, como, por ejemplo, las peroxidasas  (Santiago<I> et al.</I>, 2009), las cuales act&uacute;an  de forma combinada para evitar la diseminaci&oacute;n del pat&oacute;genoen la planta. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las peroxidasas vegetales (E.C.1.11.1.17), frecuentemente conocidas como peroxidasas clase III, son  enzimas monom&eacute;ricas que intervienen en una amplia gama de procesos fisiol&oacute;gicos, tales como: la lignificaci&oacute;n, la suberizaci&oacute;n, el metabolismo  de las auxinas, el ensamblado de las prote&iacute;nas de la pared celular, la tolerancia a sales, el estr&eacute;s h&iacute;drico (Ajithkumar  y Panneerselvam, 2014) y la defensa contra el ataque de pat&oacute;genos (Van  Loon<I> et al.</I>, 2006). Aparecen en los tejidos vegetales despu&eacute;s de la infecci&oacute;n por pat&oacute;genos,  y su expresi&oacute;n en plantas superiores puede ser inducida por bacterias  (Legaz<I> et al.</I>, 2011), hongos  (Machado-Assefh<I> et al.</I>, 2013) y virus (Quisti&aacute;n y Valadez, 2011). De ah&iacute; que la identificaci&oacute;n de marcadores,  tanto bioqu&iacute;micos como moleculares, puede resultar de gran valor en la identificaci&oacute;n varietal  (Arellano-Litardo<I> et al.</I>, 2012) y en la caracterizaci&oacute;n de  genotipos en un programa de mejoramiento gen&eacute;tico, ya que facilita la selecci&oacute;n de resistencia a determinados pat&oacute;genos  (Sharma<I> et al.</I>, 2012). </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En Cuba se han realizado varias investigaciones acerca de la interacci&oacute;n ca&ntilde;a de  az&uacute;car-<I> X. albilineans</I> para la evaluaci&oacute;n del comportamiento varietal; sin embargo, existe poca informaci&oacute;n sobre los cambios bioqu&iacute;micos  que tienen lugar en la planta como consecuencia de la invasi&oacute;n del pat&oacute;geno, espec&iacute;ficamente aquellos que se  relacionan con el estr&eacute;s oxidativo; as&iacute; como acerca de la relaci&oacute;n que pudiera existir entre estos y la tolerancia de un cultivar  ante la enfermedad. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Teniendo encuenta la importancia de este cultivo tanto en la producci&oacute;n de az&uacute;car y otros derivados como en la  alimentaci&oacute;n animal, el objetivo de este estudio fue evaluar la expresi&oacute;n de la enzimaperoxidasa en dos cultivares de ca&ntilde;a de az&uacute;car y  la correlaci&oacute;n con la respuesta de cada uno ante la invasi&oacute;n del  pat&oacute;geno <I>X. albilineans</I>, su agente causal. </font>     <p>&nbsp;</p>     <p><strong><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">MATERIALES Y M&Eacute;TODOS </font></strong></p>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Obtenci&oacute;n y caracterizaci&oacute;n de <I>X. albilineans.</I> La bacteria <I>X.  albilineans </I>se aisl&oacute; a partir de plantas  con s&iacute;ntomas de la enfermedad escaldadura foliar en el cultivar susceptible Lousiana 55-5 (L55-5), plantado en &aacute;reas  de la Estaci&oacute;n Provincial de Investigaciones de la Ca&ntilde;a de Az&uacute;car Antonio Mesa (EPICA) en el municipio  Jovellanos Matanzas, Cuba. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Para ello se obtuvieron extractos vegetales que se sembraron en medio Wilbrink y se incubaron a 28 &#186;C  durante 5 d&iacute;as, y a las colonias resultantes se les realizaron las pruebas bioqu&iacute;micas y serol&oacute;gicas pertinentes (siguiendo  la metodolog&iacute;a empleada por Matos, 2002), para comprobar la presencia de la bacteria <I>X. albilineans</I>y el serovar al que pertenecen. Para la descripci&oacute;n de las caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas, se tuvieron en cuenta los indicadores  tiempo de crecimiento, color y tama&ntilde;o de las colonias. La identificaci&oacute;n serol&oacute;gica se efectu&oacute; mediante la t&eacute;cnica  de aglutinaci&oacute;n en l&aacute;tex (Peralta <I>et al</I>., 1997). La patogenicidad de las colonias se comprob&oacute; mediante  inoculaci&oacute;n artificial en plantas sanas de ca&ntilde;a de az&uacute;car del cultivar L55-5, de seis semanas de edad. Las plantas inoculadas  se inspeccionaron diariamente y a los 15 d&iacute;as se realiz&oacute; el reaislamiento del pat&oacute;geno en medio de cultivo  Wilbrink, como se describi&oacute; anteriormente. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La suspensi&oacute;n bacteriana utilizada como in&oacute;culo se obtuvo a partir del cultivo de las colonias en medio  l&iacute;quido Wilbrink, durante cinco d&iacute;as e incubadas a 37 &#186;C. Las c&eacute;lulas se centrifugaron (5 000 rpm por 10 min. a 4 &#186;C),  se lavaron tres veces con agua destilada est&eacute;ril para eliminar los componentes del medio Wilbrink y se  resuspendieron en el tamp&oacute;n fosfato de sodio (10 mmol  L<SUP>-1</SUP> a pH 7,5). </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><em>Siembra del experimento.</em> En el banco de semillas de la EPICA se colectaron estacas de plantas sin  s&iacute;ntomas de los cultivares My55-14 y C85-102, que se informaron previamente como tolerante y susceptible a la  enfermedad, respectivamente (Matos, 2002). Las estacas se fragmentaron en trozos que pose&iacute;an una yema, a la que se le  aplic&oacute; tratamiento hidrot&eacute;rmico a 51 &#186;C durante una hora, y despu&eacute;s se plantaron en canteros de 1 x 3 m que ten&iacute;an  como sustrato suelo est&eacute;ril y materia org&aacute;nica, en &aacute;reas del vivero de la EPICA. El experimento se sembr&oacute; en el mes  de noviembre, en un dise&ntilde;o totalmente aleatorizado con tres r&eacute;plicas. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las medias de las condiciones climatol&oacute;gicas durante la etapa experimental fueron las siguientes:  temperatura-20,2 &#186;C; humedad-78 %; precipitaci&oacute;n- 9,5 mm; horas sol-7,6 h. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><em>Inoculaci&oacute;n de las plantas de ca&ntilde;a de az&uacute;car y toma de  muestras.</em> Se utilizaron cuatro tratamientos: plantas  de cada cultivar que se inocularon con la suspensi&oacute;n bacteriana de <I>X. albilineans</I>,y con el tamp&oacute;n fosfato de sodio  (10 mmol L<SUP>-1</SUP>, soluci&oacute;n base que se utiliz&oacute; para la preparaci&oacute;n de esa suspensi&oacute;n, con pH 7,5), estas &uacute;ltimas consideradas  como testigos. </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El m&eacute;todo que se utiliz&oacute; para la inoculaci&oacute;n de las plantas de ca&ntilde;a de az&uacute;car, con y sin la bacteria, fue el  de infiltraci&oacute;n con jeringuilla, seg&uacute;n D&iacute;az (2000). La infiltraci&oacute;n se efectu&oacute; en las hojas j&oacute;venes de las plantas  con cinco meses de edad. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se tomaron muestras aleatorias de hojas de diferentes plantas inoculadas de cada variedad y de las testigos, antes  de la infecci&oacute;n (t = 0), y posterior a la infecci&oacute;n a las 2, 4, 6, 24, 48, 72 horas; se tuvo en cuenta que la bacteria tiene  un crecimiento lento y los s&iacute;ntomas de la enfermedad se observan d&iacute;as despu&eacute;s de la infecci&oacute;n, acorde con lo informado  por Matos (2002). </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las muestras se tomaron por duplicado seg&uacute;n los tiempos se&ntilde;alados, se sumergieron en nitr&oacute;geno l&iacute;quido,  y posteriormente se conservaron a -20 &#186;C, hasta su procesamiento en el laboratorio. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><em>Obtenci&oacute;n de los extractos.</em> Se pes&oacute; 1 g de hojas sin la nervadura central, se macer&oacute; y homogeniz&oacute; con 2  mL de tamp&oacute;n fosfato de sodio (0,1 mmol  L<SUP>-1</SUP>, a pH 7,5). Se centrifug&oacute; a 7 000 rpm y a 4 &#186;C durante 15 minutos.  El sobrenadante obtenido se utiliz&oacute; para realizar determinaciones de la actividad enzim&aacute;tica. El extracto de  prote&iacute;nas se almacen&oacute; a -20 &#186;C hasta su uso. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><em>Determinaci&oacute;n de la actividad  peroxidasa.</em> La actividad peroxidasa se determin&oacute; por el m&eacute;todo continuo.  Se utilizaron como sustratos el guayacol (0,018 M) y el per&oacute;xido de hidr&oacute;geno (30 %, ajustando la  A<SUB>240 nm</SUB> a 0,4 contra agua destilada). Se determin&oacute; la velocidad de la oxidaci&oacute;n del guayacol por la enzima en presencia de per&oacute;xido de  hidrogeno, durante cinco minutos, y se midi&oacute; la absorbancia a 436 nm en un espectrofot&oacute;metro Ultrospec 2100 pro UV/visible.  Una unidad de actividad enzim&aacute;tica fue definida como la cantidad de enzima que puede catalizar la producci&oacute;n de 1  &igrave;moL por minuto por mililitro de  enz<SUP>-1</SUP>.  </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En tanto, la concentraci&oacute;n de prote&iacute;nas se analiz&oacute; por el m&eacute;todo de  Lowry<I> et al.</I> (1951), y se realiz&oacute; la lectura  de la absorbancia a 750 nm en un espectrofot&oacute;metro Ultrospec 2100 proUV/visible, para lo cual se confeccion&oacute;  una curva patr&oacute;n de alb&uacute;mina bovina (BSA) a partir de una soluci&oacute;n madre de 1 mg  mL<SUP>-1</SUP>. La actividad espec&iacute;fica de  la enzima peroxidasa se determin&oacute; seg&uacute;n la expresi&oacute;n: </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Actividad espec&iacute;fica = actividad enzim&aacute;tica / concentraci&oacute;n de prote&iacute;nas </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><em>Procesamiento de los datos.</em> Los datos se procesaron mediante un an&aacute;lisis de varianza  (ANOVA) de clasificaci&oacute;n simple, y las medias fueron comparadas mediante la d&oacute;cima de Duncan (1955) para un 5 % de  significaci&oacute;n, despu&eacute;s de verificarse que cumpl&iacute;an con la normalidad prueba de bondad de ajuste de Kolmogorov-Smirnov y  la homogeneidad de varianza prueba de Bartlett. Los indicadores que no cumplieron con los mencionados  supuestos fueron comparados a trav&eacute;s de la prueba de Kruskal-Wallis y las medias se contrastaron a trav&eacute;s de la prueba  de rangos m&uacute;ltiples de Student-Newman-Kwels (SNK), para un 5 % de significaci&oacute;n. Todo ello con el paquete  estad&iacute;stico Statgraphic plus versi&oacute;n 5.1 sobre Windows&#174;. </font>     <p>&nbsp;</p>     <P align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N </B>   </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las cepas de <I>X. albilineans</I> obtenidas a partir de plantas con s&iacute;ntomas de la escaldadura foliar en el  cultivar L55-5 coincidieron con las caracter&iacute;sticas informadas en la literatura para el g&eacute;nero y la especie, lo cual se  corrobor&oacute; a trav&eacute;s de las evaluaciones morfol&oacute;gicas, bioqu&iacute;micas y serol&oacute;gicas antes descritas (<a href="/img/revistas/pyf/v40n3/f0104317.gif">fig. 1</a>). </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En la comprobaci&oacute;n de la patogenicidad de la cepa aislada se logr&oacute; la reproducci&oacute;n de los s&iacute;ntomas de  escaldadura foliar en el cultivar L55-5, lo cual demostr&oacute; el poder patog&eacute;nico de los aislados obtenidos. En todos los casos  se reaisl&oacute; la bacteria <I>X.  albilineans</I> y a trav&eacute;s de la aglutinaci&oacute;n en l&aacute;tex se confirm&oacute; que los aislados pertenec&iacute;an  al serovar I informado con anterioridad (Matos, 2002). </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las bacterias fitopat&oacute;genas, en el momento de contacto con la planta, ponen en marcha un grupo amplio  de reacciones contra el hospedante que contribuyen al &eacute;xito de la invasi&oacute;n final  (Ryan<I> et al.</I> 2011). Entre los mecanismos inducidos por la planta ante la infecci&oacute;n se encuentra el estallido oxidativo, que tiene como objetivo detener  la infecci&oacute;n y la s&iacute;ntesis de compuestos que est&aacute;n involucrados con la  restricci&oacute;n del microorganismo invasor al &aacute;rea  de penetraci&oacute;n (Sharma<I> et al.</I>, 2012), como, por ejemplo, la enzima peroxidasa, que ha sido evaluada en tejidos  infectados, generalmente, despu&eacute;s de da&ntilde;os o infecci&oacute;n con incrementos en su actividad  (Machado-Assefh<I> et al.</I>, 2013). </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En la <a href="/img/revistas/pyf/v40n3/f0204317.gif">figura 2</a> se observan los resultados de la actividad POX en los cultivares estudiados. Ambos  alcanzaron valores constitutivos de la enzima, representados por el control (t = 0); estos valores basales corresponden a  la actividad metab&oacute;lica de la planta en condiciones normales. En el cultivar tolerante My 55-14 la actividad  POX comenz&oacute; a aumentar despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n, por lo que se alcanzaron las cifras m&aacute;s altas de la actividad  espec&iacute;fica a las 4 horas, lo cual coincide con lo esperado, ya que el cultivar tolerante es capaz de tener una mayor respuesta  ante la invasi&oacute;n del pat&oacute;geno  (Santiago<I> et al.</I>, 2009). </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En el cultivar susceptible C85-102, contrariamente, la actividad POX disminuy&oacute; a las 2 horas posteriores de  la inoculaci&oacute;n con respecto al valor de la actividad de la enzima a t = 0. A las 4 horas se observ&oacute; el mayor  incremento de la actividad espec&iacute;fica de la enzima, en comparaci&oacute;n con el tiempo anterior y los posteriores, aunque fue m&aacute;s  baja en el cultivar tolerante. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">De forma general, la actividad POX en las plantas infectadas  experiment&oacute; un incremento como respuesta al  estr&eacute;s bi&oacute;tico, lo que indica que la maquinaria responsable de la eliminaci&oacute;n de  H<SUB>2</SUB>O<SUB>2</SUB> no sufri&oacute; ning&uacute;n da&ntilde;o como  consecuencia del estr&eacute;s. Por su parte, el cultivar tolerante present&oacute; una activaci&oacute;n m&aacute;s intensa y temprana despu&eacute;s de la infecci&oacute;n que  el susceptible. Tales resultados indican que la acumulaci&oacute;n de este catalizador no est&aacute; restringida &uacute;nicamente a las  plantas tolerantes, sino que tambi&eacute;n se puede detectar en interacciones susceptibles; sin embargo, en estos casos, pueden diferir  en cuanto al tiempo de aparici&oacute;n e intensidad de la actividad  (B&uuml;low<I> et al.</I>, 2004). </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El estudio de la actividad enzim&aacute;tica tambi&eacute;n permiti&oacute; que se observara una cierta capacidad de  detoxificaci&oacute;n de  H<SUB>2</SUB>O<SUB>2</SUB> en las plantas infectadas respecto a las plantas control. El incremento de la actividad espec&iacute;fica coincide  con el proceso de penetraci&oacute;n del pat&oacute;geno, el cual demora entre 4 y 36 horas despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n; as&iacute; como con  la alta coordinaci&oacute;n entre las diferentes v&iacute;as de se&ntilde;alizaci&oacute;n en ca&ntilde;a de az&uacute;car, como respuesta a distintos tipos  de estr&eacute;s (Damaj<I> et al.</I>, 2005). </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La <a href="/img/revistas/pyf/v40n3/t0104317.gif">tabla 1</a> muestra los valores de la actividad POX en funci&oacute;n del cultivar y el tratamiento. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En ambos cultivares hubo un incremento de la actividad POX despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n con el pat&oacute;geno;  sin embargo, el cultivar tolerante My 55-14 difiri&oacute; significativamente en relaci&oacute;n con el testigo y el cultivar  susceptible. Es posible que tales diferencias puedan explicar la resistencia a la enfermedad en estos cultivares. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los resultados demostraron la importancia de la enzima peroxidasa en la respuesta defensiva de la planta, al  desempe&ntilde;ar su papel protector en la eliminaci&oacute;n de las especies reactivas del ox&iacute;geno en extractos de hojas  (D&iacute;az<I> et al.</I>, 2010); as&iacute; como su utilidad para la selecci&oacute;n del grado de tolerancia de los cultivares de ca&ntilde;a de az&uacute;car a la escaldadura foliar. </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Otros autores han informado resultados similares acerca de la expresi&oacute;n de la enzima peroxidasa y la tolerancia  a enfermedades. Santiago<I> et al.</I> (2009) correlacionaron la actividad espec&iacute;fica POX y  otros sistemas enzim&aacute;ticos en discos de hojas de dos cultivares de ca&ntilde;a de az&uacute;car: My55-14 (tolerante) y L55-5 (susceptible), con  diferentes fracciones de elicitores obtenidos a partir de <I>X. albilineans</I>. El cultivar tolerante My55-14 mostr&oacute; una elevada actividad  POX, en comparaci&oacute;n con L55-5. Todas las fracciones de elicitores incrementaron la actividad de la enzima respecto  al control en ambos cultivares; sin embargo, el valor de actividad espec&iacute;fica de la enzima fue superior en el  cultivar tolerante, posiblemente para reforzar las paredes celulares. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Machado-Assefh<I> et al.</I> (2013) reportaron resultados an&aacute;logos, al evaluar la actividad peroxidasa y  su posible relaci&oacute;n con la resistencia o la susceptibilidad de cultivares de ca&ntilde;a de az&uacute;car a la  roya marr&oacute;n causada por<I> Puccinia melanocephala</I> H. Sydow &amp; P. Sydow<I>, </I>la cual aument&oacute; despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;nen ambos cultivares, pero con mayor rapidezen el  resistente. Las diferencias en la actividad de la enzima se hallaron entre cultivares y tambi&eacute;n entre las plantas inoculadas y  los controles. Ello indica que el incremento de la actividad y expresi&oacute;n de genes de peroxidasa podr&iacute;a estar relacionado con la  resistencia a fitopat&oacute;genos, y ha sido informado por diferentes autores en plantas sometidas a estr&eacute;s bi&oacute;ticos: <I>Solanum lycopersicum </I>L. (Cer&oacute;n, 2000), <I>Cicer arietinum</I> L.  (Garc&iacute;a-Limones<I> et al.</I>, 2002), <I>Capsicum  annuum</I> L. (Do<I> et al.</I>, 2003),  <I>Bouteloua dactyloides </I>(Nutt.) Columbus  (Gulsen<I>et al.</I>, 2010) y  <I>Panicum virgatum</I> L. (Saathoff<I> et al.</I>, 2013). </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El H<SUB>2</SUB>O<SUB>2 </SUB>producido por la planta, como respuesta de defensa en las interacciones planta-pat&oacute;geno, induce la  expresi&oacute;n de genes relacionados con las defensas de las plantas, las v&iacute;as asociadas a la generaci&oacute;n de la cascada oxidativa  (Sofo<I> et al.</I>, 2015) y otros sistemas protectores celulares end&oacute;genos del hospedero, todo lo cual limita el tama&ntilde;o de la lesi&oacute;n  (Montoliu, 2010). El incremento de la actividad peroxidasa, como consecuencia del incremento del  H<SUB>2</SUB>O<SUB>2</SUB>en las plantas,  podr&iacute;a actuar como un catalizador en la polimerizaci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos para la formaci&oacute;n de lignina y suberina en la pared celular,  que act&uacute;a como barrera para bloquear la diseminaci&oacute;n del pat&oacute;genoen la planta  (Santiago<I> et al.</I>, 2009). </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">De los resultados descritos, se concluye que la evaluaci&oacute;n de la actividad peroxidasa se puede utilizar,  por su importancia, en la identificaci&oacute;n de genotipos resistentes de ca&ntilde;a de az&uacute;car a la escaldadura foliar, en el marco de los programas  de mejoramiento, con vistas a garantizar la obtenci&oacute;n de biomasa de mayor calidad, tanto para la  industria azucarera como para la alimentaci&oacute;n animal. Por tanto, se recomienda evaluar este sistema enzim&aacute;tico en la selecci&oacute;n de cultivares de  ca&ntilde;a de az&uacute;car ante esta enfermedad. </font>     <p>&nbsp;</p>     <P align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS </B> </font>     <!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">1.     Ajithkumar, I. P. &amp; Panneerselvam, R. ROS scavenging system, osmotic maintenance, pigment and growth status  of <I>Panicum sumatrense </I>roth under drought stress.  <I>Cell Biochem. Biophys</I>. 68 (3):587-595, 2014.     </font>     <!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">2.     Arellano-Litardo, Ana C.; Ramos-Leal, M.; Loor-M&aacute;rquez, Zaida; Cabanilla-Guam&aacute;n, Leyddi; Borisovna, Sof&iacute;a  &amp; Pincay-Flores, A. Identificaci&oacute;n de cultivares comerciales de ca&ntilde;a de az&uacute;car  (<I>Saccharum</I> spp. h&iacute;brido) mediante el empleo  de isoenzimas peroxidasas. <I>Revista CENIC Ciencias  Biol&oacute;gicas</I>. 43 (3):7-15, 2012.     </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">3.     Blanch, Mar&iacute;a I.; Legaz, Mar&iacute;a E. &amp; Vicente,  C.  Xanthan production by <I>Xanthomonas albilineans</I>infecting sugarcane stalks.  <I>J. Plant Physiol</I>.  </font> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">165 (4):366-374, 2008.     </font>     <!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">4.     B&uuml;low, L.; Schindler, M.; Choi, C. &amp; Hehl, R. PathoPlant&#174;: A database on plant-pathogen interactions in silico biology. <I>In. Silico Biol</I>. 4 (4):529-536, 2004.     </font>     <!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">5.     Cer&oacute;n, Laura E. <I>Determinaci&oacute;n y an&aacute;lisis comparativo de prote&iacute;nas relacionadas con patog&eacute;nesis  (PR) de los espacios intercelulares de plantas de tomate resistente (Lycopersicon esculentum ceraciforme) y  susceptible (Lycopersicon esculentum Mill) antes y despu&eacute;s de la infecci&oacute;n con Phytophthora infestans (Mont) de  Bary</I>. Trabajo de grado. Bogot&aacute;: Departamento de Qu&iacute;mica, Universidad Nacional de Colombia, 2000.     </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">6.     Damaj, M.; Beremand, P. P.; Al-Douri, A. F.; Silva, M. A.; Jifon, J. L.; Kumpatla, S.  P.<I> et al.</I>Coordinated defense responses in sugarcane revealed by transcriptional profiling.  <I>Abstracts of the Plant-Pathogen Interaction Workshop. Plant &amp;  Animal Genomes XIII Conference. W158: Intl. Consortium for Sugarcane Biotech.  (ICSB)</I>. San Diego, USA, 2005. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">7.     D&iacute;az, Maricela. <I>Escaldadura foliar de la ca&ntilde;a de az&uacute;car en Cuba: Caracterizaci&oacute;n, diversidad y diagn&oacute;stico  molecular de su agente causal (Xanthomonas albilineans (Ashby)  Dowson)</I>. Tesis en opci&oacute;n al grado de Doctor en  Ciencias Agr&iacute;colas. San Jos&eacute; de las Lajas, Cuba: Universidad Agraria de La Habana, 2000. </font>     <!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">8.     D&iacute;az, Maykelis; P&eacute;rez, Y.; Caza&ntilde;a, Yanet; Prieto, Marlene; Wencomo, Hilda B. &amp; Lugo, Yudith. Determinaci&oacute;n  de antioxidantes enzim&aacute;ticos en variedades e hibridos de <I>Morus alba</I>. <I>Pastos y Forrajes</I>. 33 (3):301-310, 2010.     </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">9.     Do, H. M.; Hong, J. K. Jung, H. W.; Kim, S. H. &amp; Hwang, B. K. Expression of peroxidase-like genes,  H<SUB>2</SUB>O<SUB>2</SUB>production and peroxidase activity during the hypersensitive response to  <I>Xanthomonas campestris</I>pv. vesicatoria in  <I>Capsicum annuum </I>bundle. <I>Mol. Plant Microbe.  Interact</I>. 16 (3):196-205, 2003.     </font>     <!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">10.     Duncan, D. B. Multipleranges and multiple F test.      <I>Biometrics</I>. 11 (1):1-42, 1955.     </font>     <!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">11.     Garc&iacute;a-Limones, Carmen; Herv&aacute;s, Ana; Navas-cort&eacute;s, J. A.; Jim&eacute;nez-D&iacute;az, R. M. &amp; Tena, M. Induction  of an antioxidant enzyme system and other oxidative stress markers associated with compatible and  incompatible interactions between chickpea  (<I>Cicer arietinum </I>L.) and <I>Fusarium  oxysporum</I> f. sp. ciceris. <I>Physiol. Mol.  Plant Pathol</I>. 61 (6):325-337, 2002.     </font>     <!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">12.     Gulsen, O.; Eickhoff, K. T.; Heng-Moss, Tiffany; Shearman, R.; Baxendale, F.; Sarath,  G.<I> et al.</I>Characterization of peroxidase changes in resistant and susceptible  warm-season turfgrasses challenged by<I> Blissus occiduus</I> . <I>Arthropod. Plant Interact</I>. 4 (1):45-55, 2010.     </font>     <!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">13.     Hern&aacute;ndez, Marta; Sim&oacute;n, L. &amp; S&aacute;nchez, Saray. Rendimiento forrajero de la ca&ntilde;a de az&uacute;car asociada  a leguminosas arb&oacute;reas. I. Primer a&ntilde;o de evaluaci&oacute;n. <I>Pastos y Forrajes</I>. 27 (1):51-54, 2004.     </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">14.     Huerta-Lara, M.; Rojas-Mart&iacute;nez, Reina I.; Bautista-Calles, Juliana; Reyes-L&oacute;pez, D.; Becerril-Herrera,  M.; Romero-Arenas, O.<I> et al.</I> Genetic and pathogenic diversity of  <I>Xanthomonas albilineans</I> (Ashby) Dowson, in  Mexico. <I>Res. J. Biol. Sci</I>.  4 (3):312-319, 2009.     </font>     <!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">15.     Legaz, M. E.; Blanch, M.; Pi&ntilde;&oacute;n, Dolores; Santiago, R.; Fontaniella, B.; Blanco,  Y.<I> et al.</I>Sugarcane glycoproteins mayact as signals for the production of xanthan in  the plant-associated bacterium <I>Xanthomonas albilineans</I> . <I>Plant Signal Behav</I>.  6 (8):1132-1139, 2011.     </font>     <!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">16.     Lowry, O. H.; Rosebrough, N. J.; Farr, A. L. &amp; Randall, R. J.  Protein measurement with the Folin phenol reagent. <I>J. Biol.  Chem</I>. 193 (1):265-275, 1951.     </font>     <!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">17.     Machado-Assefh, C. R.; Collavino, N. G.; Daz, M.; Pocov&iacute;, M. I. &amp; Mariotti, J. La actividad peroxidasa en ca&ntilde;a  de az&uacute;car (<I>Saccharum </I>spp): evoluci&oacute;n temporal de la reacci&oacute;n y su posible rol en la resistencia a la roya  marr&oacute;n (<I>Puccinia melanocephala</I>, H and P Sydow).  <I>RIA</I>. 39 (2):169-175, 2013.     </font>     <!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">18.     Matos, Madyu. <I>Evaluaci&oacute;n de la presencia de los serovares I y III de Xanthomonas albilineans en  plantas procedentes de &aacute;reas comerciales y vitroplantas de ca&ntilde;a de  az&uacute;car</I>. Tesis para optar el grado de M&aacute;ster en  Microbiolog&iacute;a General. La Habana: Facultad de Biolog&iacute;a, Universidad de La Habana, 2002.     </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">19.     Montoliu, Almudena. <I>Respuestas fisiol&oacute;gicas de los c&iacute;tricos sometidos a condiciones de estr&eacute;s bi&oacute;tico y  abi&oacute;tico: Aspectos comunes y  espec&iacute;ficos</I>. Tesis en opci&oacute;n al grado de Doctor en Ingenier&iacute;a Agr&oacute;noma. Castell&oacute;n de la  Plana, Espa&ntilde;a:Universitat Jaume, 2010.     </font>     <!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">20.     Peralta, E. L., Mart&iacute;nez, B.; Mart&iacute;n, D. &amp; Jones, P. Quality control for the production of pathogen-free  plantlets in Cuban sugarcane biofactories. ISSCT Pathology and Molecular Biology Workshop, Abstracts. South  Africa, 1997.     </font>     <!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">21.     Quisti&aacute;n, Deyanira &amp; Valadez, J. A. Estrategias de defensa vegetal. <I>Planta</I>. 6 (12):10-13, 2011.     </font>     <!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">22.     Ryan, R. P.; Vorh&ouml;lter, F. J.; Potnis, N.; Jones, J. B.; Van Sluys, M. A.; Bogdanove, A.  J.<I> et al.</I>Pathogenomics of Xanthomonas:  understanding bacterium-plant interactions <I>Nat. Rev.  Microbiol</I>. 9 (5):344-355, 2011.     </font>     <!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">23.     Saathoff, A. J.; Donze, Teresa; Palmer, N. A.; Bradshaw, J.; Heng-Moss, Tiffany; Twingg,  P.<I> et al.</I>Towards uncovering the roles of swithgrass peroxidases in plant processes.  <I>Front. Plant Sci</I>. 4:1-12, 2013.     </font>     ]]></body>
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