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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Modificación del hR3 con DOTA-NHS. Marcaje con 90Y y biodistribución]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[ABSTRACT The conjugation, characterization and biodistribution of <img width=19 height=14 src="http://img/revistas/nuc/n49/e01054911.jpg">-DOTA-hR3 radioimmunoconjugate are reported in this work. DOTA was used as bifunctional chelating agent. Molar ratios 320:1, 160:1 and 88:1 DOTA/monoclonal antibody hR3 were studied in order to evaluate their influence on the integrity of conjugate and labeling efficiency. In vivo stability of <img width=19 height=14 src="http://img/revistas/nuc/n49/e01054911.jpg">-DOTA-hR3 radioimmunoconjugates was determined in healthy Wistar rats at 4, 24 and 48 h after the injection. Stability studies performed by means of DTPA challenge showed that the compound is stable in a wide period of time (up to 216 h). In vivo stability studies, based on the bone uptake, showed that the radiometal release from the radioimmunoconjugate is not significant in the first 48 hours.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>CIENCIAS    NUCLEARES</b></font></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p><strong><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Modificaci&oacute;n del hR3 con DOTA-NHS.  Marcaje con 90Y y biodistribuci&oacute;n</font></strong></p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">hR3 modification with DOTA-NHS. 90Y labeling and biodistribution</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Dianelys Ondarse    &Aacute;lvarez<sup>1</sup>, Rene Leyva Monta&ntilde;a<sup>2</sup>, Minely Zamora Barrab&iacute;<sup>2</sup>,    Luis Ducat Pages<sup>2</sup>, Ignacio Hern&aacute;ndez<sup>2</sup>, Luis Michel Alonso<sup>2</sup></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><sup>1</sup>Universidad de    Matanzas, Autopista a Varadero, km 3&frac12;, Matanzas 44740, Cuba    <br>   <sup>2</sup>Centro de Is&oacute;topos, (CENTIS) AP 3415 San Jos&eacute; de las Lajas (Cuba)    <br>   <a href="mailto:dianelys.ondarse@umcc.cu">dianelys.ondarse@umcc.cu</a></font></p> <hr>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En el trabajo se reporta la conjugaci&oacute;n y biodistribuci&oacute;n del radioinmunoconjugado <img src="/img/revistas/nuc/n49/e01054911.jpg" width="19" height="14">-DOTAhR3.    Se emple&oacute; el &aacute;cido 1, 4, 7, 10 tetraazaciclododecano N, N&rsquo;, N&rsquo;&rsquo;, N&rsquo;&rsquo;&rsquo; tetraac&eacute;tico (DOTA)    como agente quelatante bifuncional (AQB) y se estudiaron las relaciones molares 320:1, 160:1    y 88:1 DOTA/anticuerpo monoclonal (hR3), evalu&aacute;ndose su influencia en la integridad del conjugado    y la eficiencia de marcaje. La estabilidad <em>in vivo</em> de los radioinmunoconjugados <img src="/img/revistas/nuc/n49/e01054911.jpg" width="19" height="14">-DOTAhR3    se determin&oacute; en ratas Wistar sanas a las 4, 24 y 48 horas. Los estudios de estabilidad    realizados mediante reto versus &aacute;cido dietilentriaminopentaac&eacute;tico (DTPA) demostraron que el    compuesto es estable en un amplio intervalo de tiempo (hasta 216 h). Los estudios de estabilidad    in vivo basados en la captaci&oacute;n en hueso del radioinmunoconjugado demostraron que no es    apreciable la p&eacute;rdida del radiometal en el radioinmunoconjugado hasta las 48 horas.</font></p>     
]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Palabras    claves:</strong></font> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">itrio    90, reglas de embalaje, anticuerpos monoclonales, in vivo.</font></p> <hr>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">The conjugation, characterization and biodistribution of <img src="/img/revistas/nuc/n49/e01054911.jpg" width="19" height="14">-DOTA-hR3 radioimmunoconjugate    are reported in this work. DOTA was used as bifunctional chelating agent. Molar ratios 320:1,    160:1 and 88:1 DOTA/monoclonal antibody hR3 were studied in order to evaluate their influence    on the integrity of conjugate and labeling effi ciency. In vivo stability of <img src="/img/revistas/nuc/n49/e01054911.jpg" width="19" height="14">-DOTA-hR3 radioimmunoconjugates    was determined in healthy Wistar rats at 4, 24 and 48 h after the injection. Stability    studies performed by means of DTPA challenge showed that the compound is stable in a wide    period of time (up to 216 h). In vivo stability studies, based on the bone uptake, showed that the    radiometal release from the radioimmunoconjugate is not signifi cant in the first 48 hours.</font></p>     
<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Key words:</b>    yttrium 90, labelling, monoclonal antibodies, in vivo.</font></p> <hr>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b>    <br>   </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En la actualidad el empleo de anticuerpos monoclonales    contin&uacute;a ganando popularidad como plataforma    para la radioinmunoterapia (RIT) de c&aacute;ncer. </font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Los radiof&aacute;rmacos para terapia involucran mol&eacute;culas    con afinidad por blancos espec&iacute;ficos acopladas    a radion&uacute;clidos [1-6]. Los ligandos aminocarboxilatos    como el DTPA, el DOTA y sus an&aacute;logos son los    agentes quelatantes m&aacute;s empleados para acomplejar    radiometales con n&uacute;mero de oxidaci&oacute;n 3+   como el <img src="/img/revistas/nuc/n49/e01054911.jpg" width="19" height="14">[7-10].    
<br> </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En el trabajo se reporta la preparaci&oacute;n y caracterizaci&oacute;n del radioinmunoconjugado <img src="/img/revistas/nuc/n49/e01054911.jpg" width="19" height="14">-DOTA-hR3,    as&iacute; como su estudio de estabilidad <em>in vitro</em> y biodistribuci&oacute;n en ratas Wistar sanas. De los resultados se sugiere que el <img src="/img/revistas/nuc/n49/e01054911.jpg" width="19" height="14">-DOTA-hR3 puede ser un candidato    potencial para su empleo en procedimientos    radioinmunoterap&eacute;uticos.    
<br> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><strong>Materiales y M&eacute;todos    <br> </strong></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><strong>Reactivos y equipos</strong>    <br> </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El hR3 (5 mg/mL), fue suministrado por el Centro    de Inmunolog&iacute;a Molecular (CIM). El <img src="/img/revistas/nuc/n49/e01054911.jpg" width="19" height="14"> se obtuvo en forma de <img src="/img/revistas/nuc/n49/e03054911.jpg" width="33" height="16"> a partir de un generador de <img src="/img/revistas/nuc/n49/e02054911.jpg" width="23" height="14">/<img src="/img/revistas/nuc/n49/e01054911.jpg" width="19" height="14"> fabricado en el Centro de Is&oacute;topos (CENTIS).    El DOTA se adquiri&oacute; de Macrocyclics Dallas </font>TX. <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El patr&oacute;n de punto isoel&eacute;ctrico y el de peso molecular    fueron suministrados por Bio-Rad. Se utiliz&oacute;    un sistema modular de HPLC Shimadzu equipado    con bombas LC-10, detector SPD-6AV, detector    radiom&eacute;trico Berthold (Alemania) y columna Protein    Pack SW300 Waters (7,5 X 300 mm, 10 &mu;m,    Waters). La electroforesis SDS-PAGE se realiz&oacute;    en un equipo con fuente de alto voltaje (Mini-PROTEAN&reg; 3 Cell) y la determinaci&oacute;n del punto isoel&eacute;ctrico  se desarroll&oacute; en un equipo PhastSystem. La  medici&oacute;n de la actividad se realiz&oacute; en un contador  de centelleo l&iacute;quido LKB-WALLAC-RacBeta 1209,    Finlandia) y en un calibrador de dosis CMR 35C    (Capintec, EE.UU.). En procesamiento estad&iacute;stico    se utilizaron los paquetes estad&iacute;sticos de MS Excel.    Se aplicaron m&eacute;todos no param&eacute;tricos; se utiliz&oacute; el    test de Kolmogorov-Smirnov con un nivel de significaci&oacute;n <img src="/img/revistas/nuc/n49/e08054911.jpg" width="10" height="11"> = 0,05.    
<br> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Conjugaci&oacute;n del hR3 con DOTA-NHS</strong>    <br> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se trabaj&oacute; con las relaciones molares (88:1,    160:1 y 320:1) DOTA/hR3, donde para 10 mg de    hR3 en soluci&oacute;n se pesaron 5,6 mg, 8,1mg y 20 mg    de DOTA. Al DOTA s&oacute;lido se le a&ntilde;adieron 400 &mu;L    de buffer fosfato 0,1M pH-8,5 y posteriormente se    le a&ntilde;adi&oacute; el hR3. Luego se a&ntilde;adi&oacute; NaOH 2M para    ajustar el pH hasta 8,5. La mezcla reaccionante se    incub&oacute; a 16 &ordm;C durante toda la noche con agitaci&oacute;n    en un Vortex. Los inmunoconjugados se purificaron por columna PD-10 calibrada con aproximadamente 20 mL de buffer acetato de amonio (<img src="/img/revistas/nuc/n49/e05054911.jpg" width="38" height="17">(ac))    0,1 M (1,0% HSA) pH-7,0 purificado. La elusi&oacute;n se    llev&oacute; a cabo igualmente con buffer <img src="/img/revistas/nuc/n49/e05054911.jpg" width="38" height="17"> (ac). Para    determinar la concentraci&oacute;n de los inmunoconjugados    se utiliz&oacute; el m&eacute;todo de Bradford [11]. Paralelamente    se midi&oacute; la absorbancia del inmunoconjugado    obtenido a 280 nm, empleando el coeficiente de    extinci&oacute;n molar del hR3 (1,4), usando buffer fosfato    (0,01M) como blanco. Para determinar los agregados    de alto peso molecular, la pureza y la integridad    de los conjugados se utiliz&oacute; HPLC de exclusi&oacute;n molecular (HPLC-EM).    
<br> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Para realizar la electroforesis SDS-PAGE se    prepararon los geles de poliacrilamida al 12,5% (p/v), seg&uacute;n el procedimiento descrito por Laemmli    (1970). La corrida electrofor&eacute;tica se realiz&oacute; en una    c&aacute;mara BioRad (BioRad Cat. 1610318, Suecia).    <br> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Para realizar el isoelectroenfoque se prepararon    los geles embebiendo un Phastgel DYR en una    soluci&oacute;n de 7,5% Pharmalyte 8-10,5 y 10% glicerol    durante 30 min con agitaci&oacute;n. Adem&aacute;s, se utiliz&oacute;    el servicio on line del Instituto Europeo de Bioinform&aacute;tica    (EMBL WWW Gateway to Isoelectric Point    Service), para la estimaci&oacute;n te&oacute;rica de los puntos    isoel&eacute;ctricos. Para determinar el n&uacute;mero promedio    de mol&eacute;culas de DOTA enlazados a una mol&eacute;cula    de hR3 se mezclaron 50 &mu;L de una soluci&oacute;n estandarizada    de Y(III) (1,4 x 10-4 &mu;M, 7 nmol) que    conten&iacute;a ~5,5 x 107 cpm/&mu;L de <img src="/img/revistas/nuc/n49/e03054911.jpg" width="33" height="16">; 50 &mu;l de buffer    acetato de amonio 0,5 M pH-7,0 y 50 &mu;L del    conjugado DOTA-hR3 con relaci&oacute;n molar DOTA/   hR3 160:1. La mezcla se hizo reaccionar por 3 horas    a 42 oC y posteriormente se le a&ntilde;adi&oacute; 16 &mu;L    de DTPA 10 mM pH-6 y se incub&oacute; 15 min zax a    temperatura ambiente. La mezcla de reacci&oacute;n se    analiz&oacute;, utilizando cromatograf&iacute;a ITLC-SG (1 X   10 cm) y las mediciones se realizaron en un contador    de centelleo l&iacute;quido (LKB-WALLAC-RacBeta    1209, Finlandia). La relaci&oacute;n ligando/prote&iacute;na (L/P)    se determin&oacute; con la <a href="#e0405">expresión</a>:</font></p>     
<p><img src="/img/revistas/nuc/n49/e04054911.jpg" width="232" height="44"><a name="e0405"></a></p>     
<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Marcaje de los inmunoconjugados    DOTA-hR3 con </strong><img src="/img/revistas/nuc/n49/e01054911.jpg" width="19" height="14"><strong>    
<br>   </strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En tubos Eppendorf se mezclaron al&iacute;cuotas de<img src="/img/revistas/nuc/n49/e03054911.jpg" width="33" height="16"> (2-8 mCi, 2,5-5 &mu;L) en una soluci&oacute;n de HCl    0,05 N, 100 &mu;L de buffer <img src="/img/revistas/nuc/n49/e05054911.jpg" width="38" height="17"> 0,5 M pH-7,0 y    100 &mu;L del conjugado DOTA-hR3 seg&uacute;n el caso. </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La mezcla de reacci&oacute;n se incub&oacute; a 42 &deg;C por 1 h,    transcurrido este tiempo se le adicion&oacute; 1/9 del volumen    de reacci&oacute;n de una soluci&oacute;n de DTPA 10 mM    pH-6,0 para acomplejar el <img src="/img/revistas/nuc/n49/e01054911.jpg" width="19" height="14"> que no reaccion&oacute; y    se incub&oacute; por 15 min a temperatura ambiente. La    eficiencia de marcaje se determin&oacute; mediante cromatograf&iacute;a    ITLC-SG. Como fase m&oacute;vil se us&oacute; una    mezcla de acetato de amonio (10% m/v) y metanol    (1:1). La medici&oacute;n del <img src="/img/revistas/nuc/n49/e01054911.jpg" width="19" height="14"> se bas&oacute; en el efecto Cherenkov. </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La purificaci&oacute;n de los radioinmunoconjugados    se realiz&oacute; de forma similar a la purificaci&oacute;n de    los inmunoconjugados, pero la columna de purificaci&oacute;n    y el resto de las operaciones se realizaron dentro    de una cabina de plexiglass con blindaje interno    como protecci&oacute;n contra las radiaciones del <img src="/img/revistas/nuc/n49/e01054911.jpg" width="19" height="14">.    
<br> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Estudio de estabilidad</strong>    <strong>del </strong><img src="/img/revistas/nuc/n49/e01054911.jpg" width="19" height="14"><strong>-DOTA-hR3 en reto contra de DTPA</strong></font></p>     
<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La estabilidad del radioinmunoconjugado <img src="/img/revistas/nuc/n49/e01054911.jpg" width="19" height="14">DOTA-   hR3 se evalu&oacute; en presencia de exceso de    DTPA. Una al&iacute;cuota del conjugado radiomarcado (25-90 &mu;L) con aproximadamente 2x<img src="/img/revistas/nuc/n49/e06054911.jpg" width="19" height="13"> cpm de <img src="/img/revistas/nuc/n49/e01054911.jpg" width="19" height="14"> se adiciona a 1 mL de DTPA 1 mM en soluci&oacute;n salina    que contiene 1% HSA, pH 6,0; en estas condiciones    la relaci&oacute;n molar DTPA/ <img src="/img/revistas/nuc/n49/e01054911.jpg" width="19" height="14">-DOTA-hR3 fue    20800:1. Esta soluci&oacute;n se incub&oacute; a 37 &deg;C durante el    tiempo de estudio, y se analiz&oacute; por HPLC de exclusi&oacute;n    molecular, utilizando como fase m&oacute;vil 0,01 M    de buffer fosfato y 0,05% <img src="/img/revistas/nuc/n49/e07054911.jpg" width="28" height="15"> a pH 7,0 en r&eacute;gimen    isocr&aacute;tico. Las muestras se analizaron en intervalos    de 0 a 216 h.    
]]></body>
<body><![CDATA[<br> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Estudio de biodistribuci&oacute;n    del <img src="/img/revistas/nuc/n49/e01054911.jpg" width="19" height="14">-DOTA-hR3    
<br> </strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El producto del marcaje del anticuerpo con <img src="/img/revistas/nuc/n49/e01054911.jpg" width="19" height="14"> purificado se adicion&oacute; a una soluci&oacute;n del anticuerpo    sin marcar hasta obtener una disoluci&oacute;n de    533 &mu;g/mL de anticuerpo y una concentraci&oacute;n radiactiva de 66,7 MBq/mL.    
<br> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se utilizaron ratas Wistar machos, suministradas    por el Centro Nacional para la Producci&oacute;n de    Animales de Laboratorio (CENPALAB), en un rango    de masa corporal de 241,3 a 318 g. Se formaron    tres grupos experimentales de tres ratas cada    uno para ser sacrificados a tres tiempos diferentes    despu&eacute;s de la administraci&oacute;n, 4, 24 y 48 horas. Se    administraron en la vena marginal de la cola 0,3 mL    (20 MBq) de la disoluci&oacute;n preparada para una dosis    de 160 &mu;g de anticuerpo por animal.    <br> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Resultados</strong>    <br> </font></p>     <p><strong><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Conjugaci&oacute;n del hR3 con DOTA</font></strong><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La concentraci&oacute;n de los conjugados fue    2,0 mg/mL (1,36 &plusmn; 0,01) x 10-5 M y 2,1 mg/mL (1,48&plusmn; 0,04) x 10-5 M determinada por el m&eacute;todo directo y de Bradford respectivamente.    <br> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En la <a href="#f0105">Fig.1</a> se aprecia el perfil cromatogr&aacute;fico    del inmunocojugado con relaci&oacute;n molar 160:1 antes    y despu&eacute;s de la purificaci&oacute;n. Las relaciones molares    320:1 y 88:1 se comportan de manera similar,    por lo que para estas solo se muestran los cromatogramas    de los inmunoconjugados despu&eacute;s de ser purificados.    <br> </font></p>     <p><img src="/img/revistas/nuc/n49/f01054911.jpg" width="530" height="333"><a name="f0105"></a></p>     
<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En la <a href="#f0205">Fig. 2</a> se muestran las placas electrofor&eacute;ticas SDS-PAGE en condiciones no reductoras (A) y reductoras (B).</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    <br> </font><img src="/img/revistas/nuc/n49/f02054911.jpg" width="531" height="280"><a name="f0205"></a></p>     
<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El perfil electrofor&eacute;tico de punto isoel&eacute;ctrico (pI)    (<a href="#f0305">Fig. 3 A</a>) mostr&oacute; valores para el hR3 nativo, dentro    del intervalo de valores reportados en sus especificaciones de calidad; valores de pI entre 8,1-8,7;    resultados que se comprobaron mediante la estimaci&oacute;n    te&oacute;rica de los pI a partir de su secuencia primaria    por el servicio on line del Instituto Europeo de    Bioinform&aacute;tica (EMBL WWW Gateway to Isoelectric Point Service) (<a href="#f0305">Fig. 3B</a>).    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> </font></p>     <p><img src="/img/revistas/nuc/n49/f03054911.jpg" width="533" height="291"><a name="f0305"></a></p>     
<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Marcaje del conjugado DOTA-hR3 con 90Y</strong>    <br> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los resultados de la <a href="#t0105">Tabla 1</a> no mostraron diferencias    significativas (<img src="/img/revistas/nuc/n49/e08054911.jpg" width="15" height="16"> = 0,05) entre las formulaciones    320:1 y 160:1, sin embargo las diferencias    s&iacute; fueron significativas al comparar estas formulaciones con la formulaci&oacute;n de 88:1 que mostr&oacute; efi   ciencias de marcaje inferiores al 90%. Los resultados    de la pureza radioqu&iacute;mica mayor que 97% se corresponden con otros estudios [12], en los cuales se han alcanzado resultados superiores al 99%.</font></p>     
<p><img src="/img/revistas/nuc/n49/t01054911.jpg" width="261" height="194"><a name="t0105"></a></p>     
<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Determinaci&oacute;n de la cantidad de grupos    DOTA enlazados a una mol&eacute;cula de hR3    Se obtuvieron alrededor de 14,1 &plusmn; 0,9 mol&eacute;culas    de DOTA por cada mol&eacute;cula de anticuerpo monoclonal.    <br> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Estudio de estabilidad <em>in vitro</em></strong>      <br> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los resultados del estudio de estabilidad del radioinmunoconjugado    en relaci&oacute;n molar DTPA/<img src="/img/revistas/nuc/n49/e01054911.jpg" width="19" height="14">DOTA-   hR3 (20800:1) se muestran en la <a href="#f0405">Fig.4</a>.</font></p>     
<p><img src="/img/revistas/nuc/n49/f04054911.jpg" width="256" height="221"><a name="f0405"></a></p>     
<p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Estudio de biodistribuci&oacute;n</strong> </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El objetivo fundamental del estudio de biodistribuci&oacute;n    fue determinar preliminarmente la estabilidad      <em>in vivo</em> del radioinmunoconjugado. Los posibles    sitios de acumulaci&oacute;n del radiometal son el tejido &oacute;seo y el tejido hematopoy&eacute;tico. <a href="#tabla2">Tabla 2</a>.</font></p>     <p><img src="/img/revistas/nuc/n49/t02054911.jpg" width="260" height="180"><a name="tabla2"></a></p>     
<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Se conjug&oacute; el DOTA-NHS con el hR3, aprovechando    la relativa facilidad que tiene el DOTA de    reaccionar con los grupos amino de los residuos    de lisina de las cadenas laterales del anticuerpo en    medio acuoso suavemente b&aacute;sico (pH 8-9). Con    anterioridad se hab&iacute;a estudiado las relaciones molares    DOTA-NHS/hR3 en el intervalo 200:1 a 600:1,    obteniendo buenos resultados [13]. Tratando de    disminuir estas, se compararon tres proporciones diferentes, una dentro del intervalo ya estudiado y otras dos por debajo de este.    <br> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La purificaci&oacute;n de los inmunoconjugados permite    separar adecuadamente las especies de alto    peso molecular de los contaminantes m&aacute;s ligeros    (DOTA en exceso y posibles fragmentos del anticuerpo),    evitando prolongados tiempos de purificaci&oacute;n    por di&aacute;lisis empleados por Lewis y cols [10].    La muestra purificada se caracteriz&oacute; por HPLC. En    el espectro no se observa la presencia del AQBF    libre ni de agregados moleculares, lo cual es una    medida de la alta pureza del inmunoconjugado y    la conservaci&oacute;n &iacute;ntegra del anticuerpo despu&eacute;s del    proceso de conjugaci&oacute;n.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En la caracterizaci&oacute;n por electroforesis SDSPAGE,    se observ&oacute; c&oacute;mo mediante el tratamiento    de la muestra con 2 &ndash; mercaptoetanol fue posible    detectar la presencia de grupos DOTA acoplados al anticuerpo monoclonal. Esto se debe a que los   puentes disulfuro intra e intercatenario de las cadenas    pesadas tipo gamma y liviana tipo kappa y    lambda son disociados por la acci&oacute;n de este agente    reductor, permitiendo que se pierda la estructura    cuaternaria con mayor facilidad y se favorezca la    interacci&oacute;n del anticuerpo monoclonal distendido    en cadena pept&iacute;dicas individuales con el SDS.    <br> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En la caracterizaci&oacute;n por isoelectroenfoque se    aprecia c&oacute;mo a medida que aumenta la relaci&oacute;n    molar DOTA/hR3 el punto isoel&eacute;ctrico se hace menor    en magnitud. Ello muestra una posible relaci&oacute;n    entre el n&uacute;mero de grupos DOTA y la cantidad de    residuos lisina ocupados por este ligando que no    aportan carga a la determinaci&oacute;n de pI. Los resultados    se comprobaron mediante la estimaci&oacute;n te&oacute;rica    de los pI a partir de su secuencia primaria por    el servicio online del Instituto Europeo de Bioinform&aacute;tica    (EMBL WWW Gateway to Isoelectric Point    Service). La <a href="#f0305">Fig. 3 B</a> muestra un comportamiento    similar al obtenido en la determinaci&oacute;n experimental.    <br> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">A pesar de que estos resultados no son a&uacute;n    definitorios, se concluye que existe cierta relaci&oacute;n    entre el n&uacute;mero de grupos DOTA-NHS enlazados a    los residuos lisina del hR3 y el valor del pI, el cual disminuye sin afectar la identidad del anticuerpo monoclonal.    <br> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Estudios anteriores del conjugado DOTA-hR3    mostraron que con relaciones molares DOTA/hR3    en el intervalo 600:1-200:1, se obtienen eficiencias    de marcaje superiores al 90% [13]. Utilizando las    relaciones molares 320:1, 160:1 y 88:1, los resultados    de la <a href="#t0105">Tabla 1</a> no mostraron diferencias significativas entre las formulaciones 320:1 y 160:1;    sin embargo, las diferencias s&iacute; fueron signifi cativas    cuando se compararon con la formulaci&oacute;n de    88:1 que mostr&oacute; eficiencias de marcaje inferiores    al 90%. Teniendo en cuenta este resultado se continuaron    los estudios con la formulaci&oacute;n de 160:1,    debido a que es necesario emplear menor cantidad    de DOTA, mostrando resultados satisfactorios. En    la purificaci&oacute;n de los radioinmunoconjugados se eliminan impurezas como el <img src="/img/revistas/nuc/n49/e01054911.jpg" width="19" height="14">-DTPA, coloides marcados y <img src="/img/revistas/nuc/n49/e01054911.jpg" width="19" height="14">-Acetato.</font></p>     
<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La relaci&oacute;n L/P estuvo en correspondencia con    lo obtenido en la determinaci&oacute;n te&oacute;rica del punto    isoel&eacute;ctrico (<a href="#f0305">Fig. 3 B</a>); sin embargo, algunas publicaciones    se&ntilde;alan que un elevado n&uacute;mero de AQB    unido al anticuerpo puede afectar su inmunoreactividad,    por lo que la evaluaci&oacute;n de esta es pr&aacute;cticamente inevitable para caracterizar correctamente al radioinmunoconjugado.    <br> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los resultados en la incubaci&oacute;n del radioinmunoconjugado    en exceso de DTPA evidencian su estabilidad [14,17] para radioinmunoconjugados de este tipo. El <img src="/img/revistas/nuc/n49/e01054911.jpg" width="19" height="14"> que se encuentra libre puede ser    consecuencia de que parte de este no se haya enlazado    al DOTA y se haya acoplado a otros sitios en    el anticuerpo, en este caso el radis&oacute;topo se pudiera    desacoplar de estos sitios, cuyos enlaces son m&aacute;s    d&eacute;biles que los enlaces con DOTA y transquelar al    DTPA que es un AQB con capacidad de acomplejar    r&aacute;pidamente al radiometal.    
<br> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En los estudios de biodistribuci&oacute;n se aprecia (<a href="#tabla2">Tabla 2</a>), que no existe una acumulaci&oacute;n significativa    de radiactividad en ninguno de los &oacute;rganos o tejidos    muestreados. Se discute acerca de la acumulaci&oacute;n    del <img src="/img/revistas/nuc/n49/e01054911.jpg" width="19" height="14"> en tejido &oacute;seo cuando se presenta como impureza    o cuando se libera del radioinmunoconjugado    por inestabilidad del mismo [14,15]. Solamente    podemos apreciar un ligero aumento de la captaci&oacute;n    espl&eacute;nica y hep&aacute;tica que no supera el 1% de la dosis    por gramo de tejido, siendo el tejido donde, adem&aacute;s,    se encuentra la mayor acumulaci&oacute;n. Esto pudiera    explicarse porque la excreci&oacute;n de los anticuerpos    ocurre por v&iacute;a biliar, por lo que al ser parte del radioinmunoconjugado    un anticuerpo monoclonal, es posible    que haya mayor captaci&oacute;n hep&aacute;tica. De estos    resultados podemos aseverar que no existe una p&eacute;rdida    del radionucleido que implique una captaci&oacute;n indeseada en tejido no blanco.    
<br> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Conclusiones</strong>    <br> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se obtuvieron conjugados DOTA-hR3 en las relaciones    molares 88:1, 160:1 y 320:1, a los cuales    se le realizaron estudios de HPLC, electroforesis    SDS e isoelectroenfoque, demostr&aacute;ndose que se    preserva la integridad y pureza del inmunoconjugado.    Los rendimientos de marcaje fueron superiores    al 95% para la relaci&oacute;n molar 160:1 y 320:1; la primera    fue seleccionada como resultado de la aplicaci&oacute;n    del test Kolmogorov-Smirnov para continuar    los estudios, debido a que emplea menor cantidad    de DOTA. Los estudios de estabilidad realizados a    la formulaci&oacute;n seleccionada (160:1) hasta 216 h se    basaron en estudios de reto contra DTPA, siendo la    pureza radioqu&iacute;mica superior al 97%, y estudios de    biodistribuci&oacute;n, los cuales evidenciaron que el radioinmunoconjugado    no presenta especial afinidad    por ning&uacute;n &oacute;rgano sano, siendo los ri&ntilde;ones, el bazo    y el h&iacute;gado los &oacute;rganos donde se acumula el mayor porcentaje de actividad.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Referencias Bibliogr&aacute;ficas</strong>    <br> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">1. LIU S, EDWARDS DS. Bifunctional chelator for therapeutic lanthanide radiopharmaceutical. Bioconjugate Chem.    2001; 12(1): 7-34.    <!-- ref --><br>   2. ILLIDGE TM, BROCK S. Radioinmunotherapy of cancer: using monoclonal antibodies to target radiotherapy. Curr. Pharm. Res. 2000; 6(14): 1399-1418.    <!-- ref --><br>   3. VRIESENDORP HM, QUADRI SM, BORCHARD PE. Tumor therapy with radiolabeled antibodies: optimization of therapy. BioDrugs. 1998; 10(4): 275-293.    <br>   4. POTAMIANOS S, VARVARIGOU AD, ARCHIMANDRITIS SC. Radioimmunoscintigraphy and radioimmunotherapy in cancer: principles and applications. Anticancer Res. 2000;    20(2A): 925&ndash;948.    <br>   5. WUN T, KWON DS, TUSCANO JM. Radioimmunotherapy:    potential as a therapeutic strategy in non-Hodgekin&rsquo;s lymphoma. BioDrugs. 2001; 15(3): 151-162.    <br>   6. WITZIG TE. The use of ibritumomab tiuxetan radioimmunotherapy    for patients with relapsed B-cell non-Hodgekin&rsquo;s lymphoma. Semin. Oncol. 2000; 27 (6 suppl 12)1: 74-78.    <!-- ref --><br>   7. HIDER RC, HALL AD. Iron chelating agents medicine. The    application of bidentate hydroxypyridin-4-ones. In: Perspectives Bioinorganic Chemistry. JAI Press, 1991. vol. 1. p. 209-253.    <!-- ref --><br>   8. DADACHOVA E, CHAPPELL LL, BRECHBIEL MW. Spectrophotometric    method for determination of bifuncional macrocyclic ligands in macrocyclic ligand-protein conjugates. Nucl Med and Biology. 1999; 26(8): 977-982.    <!-- ref --><br>   9. PIPPIN CG, PARKER TA, MCMURRY TJ, BRECHBIEL MW. Spectrophotometric method for the determination of a bifuncional DTPA ligand in DTPA-monoclonal antibody    conjugates. Bioconjug Chem. 1992; 3(4): 342-345.    <!-- ref --><br>   10. LEWIS MR, KAO JY, ANDERSON ALJ, et. al. An improved method for conjugating monoclonal antibodies with NHydroxysulfosuccinimidyl    DOTA. Bioconjug Chem. 2001; 12(2): 320-324.    <!-- ref --><br>   11. BRADFORD MM. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal Biochem. 1976; 72: 248.    <!-- ref --><br>   12. LIU S, et. al. Comparison of Yttrium and indium complexes of DOTA-BA and DOTA-MBA: Models for 90Y- and 111Inlabelled DOTA- biomolecule conjugates. Bioconjug Chem.    2002. 13(4): 902-913.    <!-- ref --><br>   13. BECKFORD VERA DR, XIQUES CASTILLO A, LEYVA    MONTA&Ntilde;A R, et. al. Nuevo radioinmunoconjugado 90Y-DOTA-   hR3. S&iacute;ntesis y radiomarcaje. Nucleus. 2007; (41): 3-8.    <br>   14. GRIFFITHS GL, GOVINDAN SV, SHARKEY RM, et. al.    90Y-DOTA-hLL2: An agent for radioimmunotherapy of non-   Hodgkin&rsquo;s lymphoma. J. Nucl. Med. 2003; 44(1): 77-84.    <!-- ref --><br>   15. HANCOCK RD, MARTELL AE, MOTEKAITIS RJ. Factors    affecting stabilities of chelate, macrocyclic and macrobicyclic complexes in solution. Coord. Chem. Rev. 1994; 133: 39-65.    <!-- ref --><br>   16. MORALES AA, NU&Ntilde;EZ G, PEREZ N, et. al. Freeze-dried    formulation for direct 99mTc-labeling ior-egf/r3 MAb: Additives,    biodistribution and stability. Nucl. Med. &amp; Biol. 1999; 26(6): 717-723.    <!-- ref --><br>   17. IZNAGA N, MORALES A, DUCONG&Eacute; J, et. al. Pharmacokinetics,    biodistribution and dosimetry of 99mTc-labeled    anti-human epidermal growth factor receptor humanized    monoclonal antibody R3 in rats. Nucl. Med. &amp; Biol. 1998; 25(1): 17- 23.    <br> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Recibido: </strong>14 de marzo de 2011    <br>     <strong>Aceptado:</strong> 28 de abril de 2011</font></p>     ]]></body>
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