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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Phagocytosis in vivo and in vitro of a suspension of chromic phosphate (III) labeled with <img width=27 height=15 src="http://img/revistas/nuc/n57/img/e01035715.jpg">and <img width=24 height=15 src="http://img/revistas/nuc/n57/img/e02035715.jpg">is studied. The radioactive particles dispersed in a media of 2 % gelatin in acetate buffer pH 4-4.5 have a predominant size of 0.8 &#956;m and 5 &#956;m. According with biodistribution experiments in rats after 30 minutes near the 80 % of radioactivity is registered in the liver, probably associated with phagocytosis of the particles by liver Kupffer cells. Is also showed that the suspension particles are phagocytized in vitro by mouse peritoneal macrophages. This facts indicate that the studied suspension have appropriate characteristics to be used in adiosynoviorthesis according to the principal action mechanism described for this procedure, particles phagocytosis by cells present in the inflamed synovium]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[fagocitosis]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>CIENCIAS NUCLEARES</b></font></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p><font size="4"><strong><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Fagocitosis de suspensiones de fosfato de cromo (III)</font></strong></font></p>     <p><font size="4"><strong><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> </font></strong></font></p>     <p><strong><font size="3"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Phagocytosis in phosphate chromium (III) suspensions </font></font></strong> </p>     <p><font size="3"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">&nbsp;&nbsp;</font></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><strong>Jorge Cruz Arencibia, Yoiz Fano Mach&iacute;n, Amed Cruz Morales, Radam&eacute;s Tamayo Fuente,    Jos&eacute; Mor&iacute;n Zorrilla</strong>    <br> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Centro de Is&oacute;topos (CENTIS)    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Ave. Monumental y Carretera La Rada, km 3, Guanabacoa. La Habana, Cuba     <br> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">jcruz@ceniai.inf.cu</font>    <br></p>     <p>&nbsp;</p> <hr>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">  En el trabajo se estudia la fagocitosis in vivo e in vitro de una suspensi&oacute;n de fosfato de cromo (III)    marcada con <img src="/img/revistas/nuc/n57/e01035715.jpg" width="27" height="15"> y <img src="/img/revistas/nuc/n57/e02035715.jpg" width="24" height="15">. Las part&iacute;culas radiactivas, dispersas en un medio de gelatina al 2 % en    buffer acetato de pH 4-4.5, tienen principalmente tama&ntilde;os entre 0.8 &mu;m y 5 &mu;m. De acuerdo con los    experimentos de distribuci&oacute;n biol&oacute;gica en ratas a los 30 minutos se registra una acumulaci&oacute;n de radiactividad    cercana al 80 % en h&iacute;gado, lo que se atribuye a la fagocitosis por las c&eacute;lulas de Kupffer    de este &oacute;rgano. Tambi&eacute;n se evidencia que las part&iacute;culas de la suspensi&oacute;n son fagocitadas in vitro por    macr&oacute;fagos peritoneales de rat&oacute;n. Todo ello indica que la suspensi&oacute;n estudiada re&uacute;ne caracter&iacute;sticas   apropiadas para su uso en radiosinoviortesis de acuerdo con el mecanismo principal de acci&oacute;n en  este procedimiento, fagocitosis de las part&iacute;culas por c&eacute;lulas presentes en la sinovia inflamada.</font></p>     
<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Palabras claves: </strong>fagocitosis; radiof&aacute;rmacos; fosfatos de cromo; articulaciones de los huesos; enfermedades reum&aacute;ticas</font>.</p> <hr>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Phagocytosis in vivo and in vitro of a suspension of chromic phosphate (III) labeled with <img src="/img/revistas/nuc/n57/e01035715.jpg" width="27" height="15"> and <img src="/img/revistas/nuc/n57/e02035715.jpg" width="24" height="15"> is studied. The radioactive particles dispersed in a media of 2 % gelatin in acetate buffer pH 4-4.5    have a predominant size of 0.8 &mu;m and 5 &mu;m. According with biodistribution experiments in rats after    30 minutes near the 80 % of radioactivity is registered in the liver, probably associated with phagocytosis    of the particles by liver Kupffer cells. Is also showed that the suspension particles are phagocytized    in vitro by mouse peritoneal macrophages. This facts indicate that the studied suspension    have appropriate characteristics to be used in adiosynoviorthesis according to the principal action  mechanism described for this procedure, particles phagocytosis by cells present in the inflamed synovium.</font></p>     
]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Key words: </strong></font> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">phagocytosis; radiopharmaceuticals; chromium phosphates; bone joints; rheumatic diseases</font>.</p> <hr> <h1>&nbsp;</h1>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>INTRODUCCI&Oacute;N</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La sinovitis cr&oacute;nica, complicaci&oacute;n articular frecuente    de artritis reumatoide, hemofilia y otras enfermedades    sist&eacute;micas, se trata mediante inyecciones intrarticulares    de dispersiones radiactivas, procedimiento conocido    como radiosinoviortesis (RSV). Esta modalidad terap&eacute;utica    se realiza de forma ambulatoria y se caracteriza    por su elevada tasa de &eacute;xito, bajo costo y limitados    efectos secundarios [1-3]. Los esfuerzos investigativos    se han encaminado a la b&uacute;squeda de radiof&aacute;rmacos de    alta efi cacia cl&iacute;nica y baja irradiaci&oacute;n, principalmente    de n&oacute;dulos linf&aacute;ticos regionales e h&iacute;gado, resultado    de una distribuci&oacute;n uniforme de las part&iacute;culas inyectadas,    dep&oacute;sito de altas dosis en la sinovia da&ntilde;ada, sin    afectar el cart&iacute;lago subyacente y baja o ninguna migraci&oacute;n    (fuga) articular [4-7]. Un factor clave a estos efectos    es el tama&ntilde;o de las part&iacute;culas inyectadas, que debe ser    lo sufi cientemente peque&ntilde;o como para que sean fagocitadas    por las c&eacute;lulas presentes en la sinovia infl amada,    distribuirse en esta de manera uniforme, evitando excesiva    irradiaci&oacute;n local y lo suficientemente grande como    para que no tenga lugar migraci&oacute;n de la articulaci&oacute;n y se    irradien innecesariamente &oacute;rganos vecinos [2].</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se han considerado &oacute;ptimos, tama&ntilde;os entre 2 &mu;m y    5 &mu;m [8], aunque se han recomendado tambi&eacute;n tama&ntilde;os    mayores [2,9]. Los sinoviocitos durante sinovitis pueden    llegar a fagocitar eritrocitos enteros y restos de fi brina,    y la matriz extracelular est&aacute; expuesta tambi&eacute;n a la cavidad    [10], lo que favorece la acci&oacute;n de las radiaciones    sobre la sinovia enferma, adem&aacute;s de la acci&oacute;n directa    sobre las c&eacute;lulas que han incorporado las part&iacute;culas radiactivas.    Como quiera que en el mecanismo principal    se considera la fagocitosis, en el presente trabajo se estima    la capacidad de ser fagocitada suspensiones de  fosfato de cromo (III) marcadas con <img src="/img/revistas/nuc/n57/e01035715.jpg" width="27" height="15"> y <img src="/img/revistas/nuc/n57/e02035715.jpg" width="24" height="15"> mediante estudios de fagocitosis in vivo e in vitro. El tama&ntilde;o  predominante de part&iacute;culas de estas suspensiones est&aacute;  entre 0.8 &mu;m y 5 &mu;m.</font></p>     
<p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong><font size="3">MATERIALES Y M&Eacute;TODOS </font></strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las suspensiones marcadas de fosfato de cromo    (III) con m&aacute;s del 90 % de las part&iacute;culas, con un tama&ntilde;o    entre 0.8 &mu;m y 5 &mu;m, dispersas en buffer acetato de pH   4- 4.5, se obtuvieron seg&uacute;n la metodolog&iacute;a descrita en    <br>   [11]. La distribuci&oacute;n biol&oacute;gica se estudi&oacute; inyectando en    la vena dorso lateral de la cola de ratones OF-1, de 20 g    a 30 g de peso, suministrados por el Centro para la Producci&oacute;n    de Animales de Laboratorio (CENPALAB) de    Cuba; 0.2 mL de la suspensi&oacute;n marcada con <img src="/img/revistas/nuc/n57/e01035715.jpg" width="27" height="15">, resultado    de diluir 1 mL de la suspensi&oacute;n original en 5 mL de    soluci&oacute;n de gelatina en tamp&oacute;n acetato. El ensayo se    realiz&oacute; en 5 animales y la dispersi&oacute;n se agit&oacute; fuertemente    antes de la administraci&oacute;n. Los conteos de actividad    de las jeringas se registraron antes y despu&eacute;s de la inyecci&oacute;n.    Los ratones se sacrifi caron a los 30 minutos    mediante extracci&oacute;n de sangre por punci&oacute;n cardiaca.    Se colectaron sangre, h&iacute;gado, bazo, pulmones, ri&ntilde;ones,    f&eacute;mur y m&uacute;sculo, as&iacute; como la cola y orina (en papel absorbente    colocado en la jaula en la que se confi naron los    animales). Las mediciones se realizaron en contador LB    2040 (Berthold) con detector de NaI(Tl) calibrado para    <img src="/img/revistas/nuc/n57/e01035715.jpg" width="27" height="15">. El c&aacute;lculo de las dosis administradas y acumuladas    se hizo con ayuda del programa Biodist, en plataforma    de Microsoft Excel. Las hojas de c&aacute;lculo se dise&ntilde;aron    para la entrada directa de los datos: actividad de las    jeringuillas llenas y vac&iacute;as, actividad de las muestras y    de una diluci&oacute;n est&aacute;ndar de referencia y fecha, y hora    de medici&oacute;n de cada muestra. El programa da como resultado    los porcentajes de captaci&oacute;n por masa de tejido  (%D/g) [DCC.PNO.033, 2004].</font></p>     
]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En el caso de la sangre, para calcular la dosis total    acumulada, se asumi&oacute; que representa el 7.4 % del    peso del animal [12]. Para los ensayos de fagocitosis in    vitro se utilizaron macr&oacute;fagos de rata obtenidos a partir    de fluido peritoneal extra&iacute;do cuatro d&iacute;as despu&eacute;s de    una inyecci&oacute;n intraperitoneal de 1 mL de soluci&oacute;n de    tioglicolato al 3 % (Merck, Alemania) [13]. Una vez lavadas,    las c&eacute;lulas se resuspendieron en soluci&oacute;n salina    balanceada de Hank a una concentraci&oacute;n de 2 x <img src="/img/revistas/nuc/n57/e03035715.jpg" width="22" height="15">  c&eacute;lulas/mL. La suspensi&oacute;n de macr&oacute;fagos peritoneales    se coloc&oacute; en tubos Lp3 (200 &mu;L por tubo) y se incub&oacute;    durante dos horas a 37 &deg;C. Las c&eacute;lulas no adheridas    se eliminaron por lavado con soluci&oacute;n salina 0.9 %. La    capa de macr&oacute;fagos adherida se cubri&oacute; con 400 &mu;L de    suspensi&oacute;n de part&iacute;culas de <img src="/img/revistas/nuc/n57/e04035715.jpg" width="66" height="18"> en medio de cultivo  DMEM (Dulbbeco&rsquo;s Modifi</font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">ed Eagle M&eacute;dium, Gibco    BRL, EE.UU), al que se le a&ntilde;adi&oacute; un suplemento de suero    bovino fetal, L-glutamina y una mezcla de antibi&oacute;ticos    al 1 %. Se realizaron cinco series de experimentos en    las que se evaluaron cinco concentraciones de part&iacute;culas    obtenidas por diluciones sucesivas de la suspensi&oacute;n,    desde 1:2 hasta 1:48. Despu&eacute;s de la incubaci&oacute;n durante    18 h a 37 &deg;C (Incubadora Jouan IG 150, Francia), se midi&oacute;  la actividad a cada uno de los tubos (actividad inicial,</font> <img src="/img/revistas/nuc/n57/e05035715.jpg" width="16" height="18">). <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">A cada tubo se a&ntilde;adi&oacute; 1 mL de soluci&oacute;n de NaCl  0.9 % y se descart&oacute; el sobrenadante. Los tubos se lavaron  2 veces con 1 mL de soluci&oacute;n salina 0.9 % y se secaron  sobre papel absorbente. Posteriormente se midi&oacute;  la actividad que permaneci&oacute; en los tubos (actividad final, <img src="/img/revistas/nuc/n57/e06035715.jpg" width="12" height="16">) y se calcul&oacute; el porcentaje de actividad retenida mediante  la relaci&oacute;n (<img src="/img/revistas/nuc/n57/e06035715.jpg" width="12" height="16">/ <img src="/img/revistas/nuc/n57/e05035715.jpg" width="16" height="18">) x100. El por ciento de actividad  retenida en los tubos de manera inespec&iacute;fi ca se calcul&oacute;  a trav&eacute;s de la medici&oacute;n de la actividad que permaneci&oacute;  unida a tubos que no conten&iacute;an c&eacute;lulas. Las mediciones  se realizaron en contador LB 2040 (Berthold) con detector  de NaI(Tl) calibrado para <img src="/img/revistas/nuc/n57/e02035715.jpg" width="24" height="15">.</font></p>     
<p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los resultados de la distribuci&oacute;n biol&oacute;gica en ratones   y los del estudio de fagocitosis se muestran en las <a href="#t01035715">tablas 1</a> y <a href="#t02035715">2</a>.</font></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/nuc/n57/t01035715.jpg" width="321" height="183"><a name="t01035715"></a></p>     
<p align="center"><img src="/img/revistas/nuc/n57/t02035715.jpg" width="430" height="204"><a name="t02035715"></a></p>     
<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Como se aprecia en la <a href="#t01035715">tabla 1</a>, cerca del 80 % de    la dosis inyectada se registra en h&iacute;gado y bazo. La baja    retenci&oacute;n en pulmones (3.8 %) permite afirmar que la    fracci&oacute;n m&aacute;s abundante tiene un tama&ntilde;o menor de    10 &mu;m, pues se conoce que las part&iacute;culas con tama&ntilde;os    mayores de 10 &mu;m son retenidas por los capilares    pulmonares [3,14]. Los datos de distribuci&oacute;n biol&oacute;gica    de otras dispersiones de fosfato de cromo (III) indican    que cuando se administran por v&iacute;a endovenosa preparaciones    con tama&ntilde;os de part&iacute;culas entre 0.1 &mu;m    y 1 &mu;m, estas son r&aacute;pidamente aclaradas en sangre y    fagocitadas por h&iacute;gado y bazo [14-19]. Si se usa v&iacute;a    intracavitaria (principalmente intraperitoneal) las soluciones    coloidales alcanzan tambi&eacute;n estos &oacute;rganos del    Sistema Ret&iacute;culo Endotelial (SER), no as&iacute; si se inyectan    suspensiones (de mayores tama&ntilde;os de part&iacute;culas) dada  la dificultad en la migraci&oacute;n por v&iacute;a linf&aacute;tica. La observa</font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">ci&oacute;n de una acumulaci&oacute;n r&aacute;pida y persistente en hueso,  principalmente en m&eacute;dula &oacute;sea, seguida sobre todo de  inyecci&oacute;n intracavitaria, indica tambi&eacute;n que se deben  extremar los cuidados en el uso terap&eacute;utico del fosfato  de cromo (III)-<img src="/img/revistas/nuc/n57/e02035715.jpg" width="24" height="15"> de peque&ntilde;os tama&ntilde;os de part&iacute;culas.   Esto puede acentuar el riesgo del efecto delet&eacute;reo de  una irradiaci&oacute;n prolongada a m&eacute;dula &oacute;sea por part&iacute;culas  beta de dif&iacute;cil detecci&oacute;n por rastreo centelleogr&aacute;fi co superfi cial [14-19]. El empleo de macroagregados de alb&uacute;mina  s&eacute;rica humana con tama&ntilde;os predominantes entre  0.5 &mu;m y 2.0 &mu;m ha evidenciado fagocitosis por parte  de las c&eacute;lulas de Kupffer del h&iacute;gado, indic&aacute;ndose que  aproximadamente el 65 % se acumula en ese &oacute;rgano a  los 4 min despu&eacute;s de la inyecci&oacute;n [20]. Las evidencias  y resultados de la distribuci&oacute;n biol&oacute;gica indican que las  uspensiones tienen tama&ntilde;os que favorecen su fagocitosis.  Como elemento de comprobaci&oacute;n de este importante  hallazgo se emple&oacute; un modelo in vitro a partir de  macr&oacute;fagos obtenidos en el fl uido peritoneal de ratas  [13]. En la bibliograf&iacute;a especializada no se encontraron  estudios de fagocitosis in vitro de los radiof&aacute;rmacos  aprobados actualmente para uso en RSV. En un experimento  inicial orientativo se demostr&oacute; la existencia de  retenci&oacute;n de las part&iacute;culas en presencia de c&eacute;lulas tipo  macr&oacute;fago, estad&iacute;sticamente diferente de la retenci&oacute;n  inespec&iacute;fica (en ausencia de c&eacute;lulas), lo que permite  afi rmar que la retenci&oacute;n se debe a la interacci&oacute;n part&iacute;culas- c&eacute;lulas. En experimentos posteriores se demostr&oacute;  que la retenci&oacute;n var&iacute;a al disminuir la concentraci&oacute;n  de las part&iacute;culas <a href="#t02035715">(tabla 2)</a>, con un aumento de la actividad  retenida y, por lo tanto, de las que son fagocitadas.  Como la retenci&oacute;n est&aacute; expresada en porcentaje, este  resulta mayor con un menor n&uacute;mero de part&iacute;culas, lo  que apoya la idea de la fagocitosis en lugar de otro tipo  de interacci&oacute;n. Estos resultados evidencian que las part&iacute;culas  de fosfato de cromo (III) obtenidas por el procedimiento  establecido, con un tama&ntilde;o mayoritario entre  0.8 &mu;m y 5 &mu;m, son fagocitadas por c&eacute;lulas del SRE del  h&iacute;gado al ser inyectadas en ratones y por macr&oacute;fagos  peritoneales aislados de rata, lo que permite considerar  se comporten de manera similar in vivo. Es presumible  por tanto, que los radiof&aacute;rmacos de fosfato de cromo  (III) marcados con adecuados emisores beta (<img src="/img/revistas/nuc/n57/e02035715.jpg" width="24" height="15">) en  particular, sean efi caces en el tratamiento de sinovitis  cr&oacute;nica mediante RSV.</font></p>     
<p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>CONCLUSIONES</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las suspensiones de fosfato de cromo (III) marcado    con <img src="/img/revistas/nuc/n57/e01035715.jpg" width="27" height="15">, con tama&ntilde;o predominante de part&iacute;culas entre    0.8 &mu;m y 5 &mu;m, se acumulan cerca de un 80 % en h&iacute;gado    de ratas. Ello es atribuible a fagocitosis por las c&eacute;lulas    del SER de este &oacute;rgano, presumiblemente c&eacute;lulas    de Kupffer. Marcado con <img src="/img/revistas/nuc/n57/e02035715.jpg" width="24" height="15">, el producto es asimismo    fagocitado in vitro por macr&oacute;fagos peritoneales de rat&oacute;n.    Ello hace a estas suspensiones marcadas con un    radion&uacute;clido apropiado como <img src="/img/revistas/nuc/n57/e02035715.jpg" width="24" height="15">, potencialmente eficaces  para su uso en radiosinoviortesis.</font></p>     
<p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>REFERENCIAS </strong></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong></strong></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">[1] FISCHER M,  MODDER G. Radionuclide therapy of inflammatory joint diseases. Nucl.Med.  Commun. 2002; 23(9): 829-831.    <br>   [2] SCHNEIDER  P, FARAHATI J, REINERS C. Radiosynovectomy in rheumatology, orthopedics and  hemophilia. J. Nucl. Med. 2005; 46 (suppl 1): 48S&ndash;54S.     <!-- ref --><br>   [3] LLIN&Aacute;S A.  The role of synovectomy in the management of a target joint. Hemophilia World  Congress. 2008. June 1-5. Istanbul,   Turkey.    <!-- ref --><br>   [4] KROP&Aacute;CEK M,  MELICHAR F, SRANK J, et. al. Preparation and quality control of  [166Ho]-macroaggregates for radiosynoviorthesis. Cancer Biother Radiopharm.  2007; 22(3): 450-452.    <!-- ref --><br> [5] PANDEY U,  KETAKI B, GRACE S, et. al. Evaluation of 90Y phosphate particles as a possible  radiation synoviorthesis agent. Nucl Med Commun. 2005; 26(5): 459-463.    <!-- ref --><br> [6] SRIVASTAVA SC. The role of electron-emitting  radiopharmaceuticals in the palliative treatment of metastatic bone pain and  for radiosynovectomy: applications of conversion electron emitter Tin-117m. Braz  Arch Biol Technol. 2007; 50: 49-62.    <!-- ref --><br> [7] UNNI PR,  VENKATESH CHM, RAMAMOORTHY N, PILLAI MRA. Preparation and bioevaluation of  166Ho labeled hydroxyapatite (HA) particles for radiosynovectomy. Nucl. Med.  Biol. 2002; 29(2):199-209.    <!-- ref --><br> [8] NOBLE J,  JONES AG, DAVIS  MA et. al. Leakage of radioactive particle systems from a synovial joint  studied with a gamma camera. Its application to radiation synovectomy. J. Bone  Joint Surg. Am. 1983; 65(3): 381-389.    <!-- ref --><br> [9] BUTOESCU  IN, JORDAN O, DOELKER E. Intra-articular drug delivery systems for the  treatment of rheumatic diseases: a review of the factors influencing their  performance. Eur J Pharm Biopharm. 2009; 73(2): 205-218.    <!-- ref --><br> [10] GHADIALLY  FN, Overview article: the articular reticuloendothelial system. Ultrastructural  Pathology.1980; 1(2): 249-264.    <!-- ref --><br> [11] CRUZ ARENCIBIA J, MOR&Iacute;N ZORRILLA J, CRUZ MORALES A, et. al.  Fosfato de cromo (III) marcado con diferentes radion&uacute;clidos para uso&nbsp;en  radiosinoviortesis. Rev Cub  Farm. 2012; 46 (2): 162-172.    <!-- ref --><br> [12] BROWN RP,  DELP MD, LINDSTEDT SL. Physiological parameter values for physiologically based  pharmacokinetic models. Toxicol Ind Health. 1997; 13(4): 407-484.    <br> [13] CARDOSO M, ALVAREZ M,  AGUIRRE M, et. al.  Efecto &ldquo;in vitro&rdquo; del formocresol y el sulfato f&eacute;rrico sobre macr&oacute;fagos  peritoneales murinos. Comunicaciones Cient&iacute;ficas y Tecnol&oacute;gicas. Universidad  Nacional del Nordeste, Argentina. M-095. 2006.    <!-- ref --><br> [14] ARSHADY R.  Microsphere, microcapsule &amp; liposome radioladeled and magnetic particulates  in medicine y biology. Vol. 3. Londres: Citus Books; 2001. p. 99.    <!-- ref --><br> [15] ANGHILERI  LJ. In Vivo Distribution of radioactive chromic phosphate: influence of the  particle size and route of injection. Int J. Appl. Radiat. Isotop. 1965;  16(11): 623-630.    <br> [16] ANGHILERI  LJ, MARQUES R. New colloidal chromic radiophosphate for local iIrradiation of  the central nervous systema. Int. J. Appl. Radiat. Isotop. 1967; 18(2): 97-100.     <!-- ref --><br> [17] ANGHILERI  LJ, PRPIC B. A New colloidal (68Ga)-compound for liver scanning. Int. J. Appl.  Radiat. Isotop. 1967; 18(2): 734-735.    <!-- ref --><br> [18] LEVINE B,  HOFFMAN H, FREEDLANDER S. Distribution and effect of colloidal chromic  phosphate (32P) inyected into the hepatic artery and portal vein of dogs and  man. Cancer 1957; 10(1): 164-172.    <!-- ref --><br> [19] COOPER JAD,  ZORN EM. Distribution of colloidal chromic phosphate after intracavitary  administration in the rat. J Lab Clin Med. 1954; 42(6): 867-871.    <!-- ref --><br> [20] RESKE SN,  VYSKA K, FEINENDEGEN LE. In Vivo Assessment of phagocytic properties of kupfer  cells. J. Nucl. Med. 1981; 22(5): 405-410.    </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Recibido:</strong> 2 de diciembre de 2014    <br>     <strong>Aceptado:</strong> 23 de abril de 2015</font></p>      ]]></body><back>
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