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<journal-title><![CDATA[Revista Archivo Médico de Camagüey]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Diseño y validación de un sistema inmunoenzimático ELISA para cuantificar lipoproteína (a) en suero humano]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Design and validation of an inmunoenzymatic system (ELISA) that quantifies lipoprotein(a) in human seru]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto Superior de Ciencias Médicas Carlos J. Finlay  ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Lipoprotein (a) is considered a cardiovascular risk factor. High blood concentrations of this lipoprotein are associated with an increased incidence and severety of atherosclerosis. Assessment of the cardiovascular risk associated with Lp(a) is carried out on the bases of plasmatic concentrations of the said lipoprotein. Serum concentrations of this lipoprotein has been measured by different methods, but inmunoenzymatic essays ELISA have had more application in this respect. In this work, design and validation of an indirect, sandwich type ELISA system validation was performed according to the proposed parameters by the European Committee for Clinical laboratory Standard. Among these parameters, the following are applied to our system: calibration curve, unpreciseness (within rum and between rum) determination of Lp(a) in the serum of patients.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[DISEÑO DE DROGAS]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[TEST DE ELISA]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>ART&Iacute;CULOS ORIGINALES</b></font></p>     <p align="right">&nbsp;</p>     <p align="left"><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Dise&ntilde;o  y validaci&oacute;n de un sistema inmunoenzim&aacute;tico ELISA para cuantificar lipoprote&iacute;na  (a) en suero humano</b></font></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="left"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Design and validation of an inmunoenzymatic system  (ELISA) that quantifies lipoprotein(a) in human seru</b></font></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="left"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Dra. Aidelian Jevey Gonz&aacute;lez; Dr. Andr&eacute;s Pedrosa Amado;  Dr. &Aacute;ngel N&aacute;poles Vega; Dra. Silvia Hern&aacute;ndez Gonz&aacute;lez; Dr. Roger Ram&iacute;rez Zayas</b></font></p>     <p align="left"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Instituto  Superior de Ciencias M&eacute;dicas Carlos J. Finlay. Camag&uuml;ey, Cuba.</font></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="left">&nbsp;</p> <hr>     <p align="left"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La lipoprote&iacute;na  (a) es considerada un factor de riesgo cardiovascular. Elevadas concentraciones  en sangre de esta lipoprote&iacute;na est&aacute;n asociadas con un incremento de la  incidencia y severidad de la ateroesclerosis. La evaluaci&oacute;n del riesgo  cardiovascular relacionada con la Lp(a) se realiza sobre la base de las  concentraciones plasm&aacute;ticas de dicha lipoprote&iacute;na. Las concentraciones s&eacute;ricas  de esta lipoprote&iacute;na se miden a trav&eacute;s de diferentes m&eacute;todos, pero los ensayos  inmunoenzim&aacute;ticos ELISA son los de mayor aplicaci&oacute;n en esta finalidad. En  nuestra investigaci&oacute;n se describe el dise&ntilde;o y la validaci&oacute;n de un sistema ELISA,  indirecto, tipo s&aacute;ndwich, que utiliza anticuerpos poligonales anti-Lp(a)  humana. La validaci&oacute;n del sistema se realiz&oacute; seg&uacute;n los par&aacute;metros propuestos  por el Europeun Committee for Clinical Laboratory Standard y se aplicaron los  siguientes par&aacute;metros: curva de calibraci&oacute;n, imprecisi&oacute;n (within-rum y  between-rum), sensibilidad, especificidad y determinaci&oacute;n de Lp(a) en suero de  pacientes.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>DeCS: </b>DISE&Ntilde;O DE DROGAS; TEST DE ELISA; LIPOPROTE&Iacute;NAS.</font></p> <hr>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Lipoprotein  (a) is considered a cardiovascular risk factor. High blood concentrations of  this lipoprotein are associated with an increased incidence and severety of  atherosclerosis. Assessment of the cardiovascular risk associated with Lp(a) is  carried out on the bases of plasmatic concentrations of the said lipoprotein.  Serum concentrations of this lipoprotein has been measured by different  methods, but inmunoenzymatic essays ELISA have had more application in this  respect. In this work, design and validation of an indirect, sandwich type  ELISA system validation was performed according to the proposed parameters by  the European Committee for Clinical laboratory Standard. Among these  parameters, the following are applied to our system: calibration curve, unpreciseness  (within rum and between rum) determination of Lp(a) in the serum of patients.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>DeCS</b>: DRUG DESIGN; ENSYME&ndash;LINKED  INMUNOSORBENT ASSAY; LIPOPROTEINS.</font></p> <hr>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El &iacute;ndice  actual de morbilidad y mortalidad por enfermedad de la arteria coronaria, la  enfermedad cerebrovascular y la enfermedad vascular perif&eacute;rica, ha aumentado en  la poblaci&oacute;n mundial. Estas enfermedades est&aacute;n relacionadas con el desarrollo  de la ateroesclerosis, afecci&oacute;n multifactorial de causa no precisada, pero de  la que se conocen actualmente algunos factores de riesgo, cuyo control puede  detener la progresi&oacute;n de la misma. <sup>1</sup></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La Lp(a), una  part&iacute;cula similar a la lipoprote&iacute;na de baja densidad (LDL), es considerada como  un factor mayor e independiente de riesgo cardiovascular <sup>2</sup> y de  ateroesclerosis precl&iacute;nica <sup>3</sup> Elevadas concentraciones en sangre de  esta lipoprote&iacute;na est&aacute;n asociadas con un incremento de la incidencia y  severidad de la ateroesclerosis. <sup>4, 5 </sup></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La evaluaci&oacute;n  del riesgo cardiovascular asociado con la Lp(a) se realiza sobre la base de las  concentraciones plasm&aacute;ticas de dicha lipoprote&iacute;na. <sup>6</sup>    <br>   Se han medido  las concentraciones de Lp(a) en suero o plasma mediante inmunodifusi&oacute;n radial,  electroinmunoensayo, inmunoelectroforesis, radioinmunoensayo y ensayo  inmunoenzim&aacute;tico. <sup>7, 8 </sup> Dentro de estos, los ensayos inmunoenzim&aacute;ticos  en fase s&oacute;lida, ELISA HGhg, tienen una gran aplicaci&oacute;n debido a su alta  sensibilidad y especificidad. <sup>9, 10 </sup></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En esta  investigaci&oacute;n se describe el dise&ntilde;o de un sistema ELISA indirecto tipo sandwich  que utiliza anticuerpos policlonales anti-Lp(a) humana. </font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>M&Eacute;TODO</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En este  sistema, la retenci&oacute;n de enzimas presentes en el conjugado, es proporcional a  la cantidad de elementos a determinar, inmovilizados por el anticuerpo captura;  que constituye la base te&oacute;rica del sistema ELISA dise&ntilde;ado. <sup>11</sup></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La validaci&oacute;n  del sistema se realiza seg&uacute;n los par&aacute;metros propuestos por el European  Committee for Clinical Laboratory Standard. <sup>12</sup> Los aplicados en este  fueron:    <br>   -. Curva de  calibraci&oacute;n, confeccionada con las concentraciones conocidas de los controles positivos.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   -. Imprecisi&oacute;n,  la cual implica el comportamiento de la precisi&oacute;n del sistema intraplaca  (within-rum) e interplaca (between-rum).    <br>   -. Sensibilidad,  se define como la concentraci&oacute;n de Lp(a) que se corresponde con la absorbancia  de los blancos, m&aacute;s dos desviaciones est&aacute;ndar.    <br>   -. Especificidad,  se ensayan las posibles reacciones cruzadas contra metabolitos s&eacute;ricos.    <br>   -. Determinaci&oacute;n  de Lp(a) en suero de pacientes.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>1. Dise&ntilde;o del sistema ELISA</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se dise&ntilde;a un  ELISA-HADAS no competitivo, de tipo s&aacute;ndwich, que utiliza doble anticuerpo  heter&oacute;logo. Consta de ocho fases:     <br>   -. Fase I de  sensibilizaci&oacute;n, fase s&oacute;lida en placa de microtitulaci&oacute;n de cloruro de  polivinilo y el anticuerpo de captura una IgG policlonal de carnero anti-Lp(a)  humana.    <br>   -. Fase II de  bloqueo con PBS1X/Tween 200, 05 % / 200mg leche descremada.    <br>   -. Fase III de  muestras y controles con suero humano; C Reference Standart Human Lp(a) y C+  BSA (BDH. England).    <br>   -. Fase IV del  segundo anticuerpo con IgG policlonal de conejo anti-Lp(a) humana. (Laboratorio  de Inmunolog&iacute;a y Biol&oacute;gicos)    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   -. La fase V de  conjugado con IgG de carnero anti-IgG de conejo conjugada con peroxidasa  1:3000;     <br>   -. Fase VI del  sustrato con OPD;     <br>   -. Fase VII de  detener la reacci&oacute;n con &aacute;cido sulf&uacute;rico 2N.     <br>   -. Fase VIII  de&nbsp; lectura de la placa en Labsysterms  Multiskaan Plus a 492nm.     <br>   Al final de  cada fase, hasta la V se realiza un lavado con PBS 1X/Tween 20 0, 05 %</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>I. ESTANDARIZACI&Oacute;N DEL SISTEMA</b>    <br>   1. Sensibilizaci&oacute;n:  se ensayan concentraciones de anticuerpos captura (recubrimiento) entre 1 y 10 mg/mL. Se incuba en  c&aacute;mara h&uacute;meda durante toda la noche a 4oC.</font> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">(<a href="#Grafico1">Graf. 1</a>).</font></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/amc/v9n1/g01060105.gif" alt="Grafico 1" width="546" height="276" longdesc="Img/g01060105.gif"><a name="Grafico1"></a></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">2. Bloqueo:  leche descremada al 0,05 % en Buffer Bicarbonato pH: 9, 6. Una hora a 37oC.    <br>   3. Ant&iacute;geno: se  aplican cuatro muestras duplicadas a concentraciones conocidas del ant&iacute;geno  utilizado. (Reference Standart Human Lp(a) 67 mg/dl. Lot. No. BG  38003. 7032900ZC08. Immuno AG. Vienna.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   C&nbsp; + - 4,18 mg/L    <br>   C&nbsp; + - 8,37 mg/L    <br>   C&nbsp; + - 16,17 mg/L     <br>   C&nbsp; + - 33,5 mg/L    <br>   C-  - Alb&uacute;mina s&eacute;rica bovina (BSA) (BDH. England) a una concentraci&oacute;n de 33, 5 mg/L.    <br>   Blanco: control  del conjugado, no se pone ni ant&iacute;geno ni&nbsp;  segundo anticuerpo, en su lugar se ponen 100 mL de diluente.    <br>   Control segundo  anticuerpo: no se pone el Ag, en su lugar se ponen 100 mL de diluente.    <br>   1. Segundo  anticuerpo: IgG de conejo anti-Lp(a) humana. En diluciones de 1:1000, 1:2000,  1:3000 para cada recubrimiento.    <br>   2. Conjugado:  IgG de carnero Anti-IgG de conejo conjugada con Peroxidasa. Diluci&oacute;n de trabajo  1:3000 (CIGB-Camag&uuml;ey).    <br>   3. Soluci&oacute;n de  lavado y diluente: PBS 1X / Tween-20 0,05%.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>II. VALIDACI&Oacute;N  DEL SISTEMA</b>    <br>   Se tienen en  cuenta los par&aacute;metros propuestos por el European Committee for Clinical  Laboratory Standard. <sup>11</sup>    <br>   Los par&aacute;metros  a observar en este sistema son:    <br>   1. Curva de  calibraci&oacute;n. Para su confecci&oacute;n se utilizan las concentraciones de los  controles positivos.    <br>   2. Imprecisi&oacute;n.  Se utilizan tres muestras con concentraciones dentro del rango anal&iacute;tico.    <br>   Precisi&oacute;n  intraplaca. (Within-rum): se ensayan doce veces, por duplicado, cada una de las  muestras en una misma placa de microtitulaci&oacute;n. Se calcula la media, la  desviaci&oacute;n est&aacute;ndar y el coeficiente de variaci&oacute;n (CV).    <br>   Precisi&oacute;n  interplaca. (Between-rum): el ensayo se realiza con dos muestras, por  duplicado, en nueve placas diferentes. Se calcula la media, la desviaci&oacute;n  est&aacute;ndar y el coeficiente de variaci&oacute;n. (CV) (<a href="#Tabla1">Tabla 1</a>). <sup>12</sup></font></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/amc/v9n1/t01060105.gif" alt="Tabla 1" width="618" height="157" longdesc="Img/t01060105.gif"><a name="Tabla1"></a></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">3. Sensibilidad:  para determinar el l&iacute;mite de detecci&oacute;n, se ensaya el reactivo blanco (diluente)  en n&uacute;mero de cuarenta veces por duplicado, en una placa. Se calcula la media y  la desviaci&oacute;n est&aacute;ndar. El valor de detecci&oacute;n l&iacute;mite es la media, m&aacute;s dos veces  la desviaci&oacute;n est&aacute;ndar (M + 2 x SD).    <br>   4. Especificidad:  se descarta las posibles reacciones cruzadas, utilizando metabolitos presentes  en suero humano. Los ensayos se realizan contra alb&uacute;mina s&eacute;rica, hemoglobina, y  el pigmento bilirrubina. Estos metabolitos sustituyen al ant&iacute;geno en el ensayo.  Los sueros utilizados se aplican a la placa en diluciones de 1:25, 1:50, 1:100.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   5. Determinaci&oacute;n  en suero de pacientes: se utiliza suero de pacientes convalecientes de infarto  agudo del Miocardio. Se utilizan diluciones para cada muestra de 1:25, 1:50 y  1:100. Las muestras se conservan a -70 oC hasta el momento de su  utilizaci&oacute;n.    <br>   6. Aspectos subjetivos.  Se tiene en cuenta:    <br>   -. Precisi&oacute;n  del operador.    <br>   -. Claridad de  los protocolos de trabajo.    <br>   -. Calidad de  los reactivos y materiales utilizados.    <br>   -. Equipos  calibrados y declarados aptos para el uso (CEN)</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>III. PROCESAMIENTO DE LOS DATOS</b>    <br>   Los datos se  procesaron mediante el equipo Labsystems Multiskan Plus, que incluye tarjetas  para el procesamiento estad&iacute;stico. Otros an&aacute;lisis estad&iacute;sticos se realizaron  mediante el Microsoft Excel.     <br>   Se dise&ntilde;&oacute; un  sistema ELISA tipo s&aacute;ndwich no competitivo.    <br>   La fase s&oacute;lida  utilizada&nbsp; fue la placa de  microtitulaci&oacute;n de cloruro de polivinilo.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   La  concentraci&oacute;n &oacute;ptima de IgG de carnero en el recubrimiento fue de 2, 8 mg / mL    <br>   Las condiciones  de incubaci&oacute;n para esta fase en c&aacute;mara h&uacute;meda, a 4oC durante toda la  noche.     <br>   Para el bloqueo  result&oacute; adecuada la utilizaci&oacute;n de leche descremada al 0, 05 %    <br>   El ant&iacute;geno  utilizado como control positivo se diluy&oacute; en orden descendente con PBS 1X. Se  incub&oacute; 1h a temperatura ambiente y con agitaci&oacute;n mec&aacute;nica.    <br>   El segundo  anticuerpo (IgG de conejo anti-Lp(a) humana) se utiliz&oacute; a una diluci&oacute;n de  1:2000 por ser la diluci&oacute;n en la que mostr&oacute; menor reacci&oacute;n inespec&iacute;fica. Las  condiciones de incubaci&oacute;n son las mismas que la fase anterior.    <br>   El conjugado se  utiliz&oacute; a la diluci&oacute;n de trabajo que recomienda el productor. (1:3000) y las  condiciones de trabajo son iguales a la fase anterior. Luego de 30 min de  incubar el sustrato (OPD) a temperatura ambiente y protegido de la luz, se  detiene la reacci&oacute;n con &aacute;cido sulf&uacute;rico 2N.     <br>   Se hace la  lectura a 492 nm en el Labsystems Multiskan Plus.    <br>   Los lavados se  realizaron entre cada fase con PBS 1X/Tween-20 0,05 % como agente tensoactivo.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Evaluaci&oacute;n de sistema</b>    <br>   Se construy&oacute; curva de  calibraci&oacute;n.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Los valores de  la evaluaci&oacute;n de la precisi&oacute;n intraplaca se localizaron entre el 5 y el     <br>   10 %.    <br>   Los valores de  la evaluaci&oacute;n de la precisi&oacute;n interplaca se localizaron entre el 10 y el     <br>   20 %.    <br>   El l&iacute;mite de  detecci&oacute;n del sistema fue fijado en 2, 79 mg/l.    <br>   Se determin&oacute;  que el sistema era espec&iacute;fico.    <br>   Se realizaron  determinaciones en suero de pacientes.    <br>   La curva de  calibraci&oacute;n se construy&oacute; utilizando los controles positivos.     <br>   Los resultados de la  evaluaci&oacute;n de la precisi&oacute;n intraplaca (within-rum)</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>&nbsp;</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>RESULTADOS</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los valores del  CV se localizaron entre el 5 % y 10 %. Seg&uacute;n el European Committee for Clinical  Laboratory Standard (ECCLS) estos valores est&aacute;n dentro del rango aceptable  (<a href="#Tabla2">Tabla 2</a>).</font></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/amc/v9n1/t02060105.gif" alt="Tabla 2" width="573" height="145" longdesc="../Img/t02060105.gif"><a name="Tabla2"></a></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Con respecto a  la evaluaci&oacute;n de la precisi&oacute;n interplaca (between-rum), el coeficiente de  variaci&oacute;n (CV) en las nueve placas analizadas para las dos muestras oscil&oacute;  entre </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">10 % y 20 %,  estos valores est&aacute;n dentro del rango aceptable (<a href="#Tabla3">Tabla 3</a>).</font></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/amc/v9n1/t03060105.gif" alt="Tabla 3" width="564" height="123" longdesc="../Img/t03060105.gif"><a name="Tabla3"></a></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La sensibilidad  del sistema se determin&oacute; por ensayo repetitivo (n=40) del reactivo blanco. El  l&iacute;mite de detecci&oacute;n del sistema fue fijado en 2, 79 mg/l (media &plusmn; 2 X SD)</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La  especificidad del sistema se determin&oacute; descartando reacciones cruzadas con  metabolitos s&eacute;ricos, las lecturas estuvieron por debajo del valor l&iacute;mite del  sistema (<a href="#Tabla4">Tabla 4</a>).</font></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/amc/v9n1/t04060105.gif" alt="Tabla 4" width="564" height="123" longdesc="../Img/t04060105.gif"><a name="Tabla4"></a></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las muestras de  los resultados de la lectura realizada a sueros de pacientes se ensayaron  diluidas 1:25, 1:50 y 1:100 (<a href="#Tabla5">Tabla 5</a>).</font></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/amc/v9n1/t05060105.gif" alt="Tabla 5" width="564" height="123" longdesc="../Img/t05060105.gif"><a name="Tabla5"></a></p>     
]]></body>
<body><![CDATA[<p align="left">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El sistema  ELISA tipo s&aacute;ndwich, no competitivo, utiliza fijado a la fase s&oacute;lida como  anticuerpo captura un anticuerpo policlonal de carnero anti-Lp(a) humana. El  segundo anticuerpo es una IgG de conejo anti-Lp(a) humana, obtenida y  purificada en el Centro de Inmunolog&iacute;a y Biol&oacute;gicos del ISCM-Camag&uuml;ey. El  dise&ntilde;o incluye una IgG de carnero anti-IgG de conejo conjugada con peroxidasa.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>ESTANDARIZACI&Oacute;N DEL SISTEMA</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La fase s&oacute;lida  utilizada (placa de microtitulaci&oacute;n de cloruro de polivinilo) en ocasiones  muestra una fuerte coloraci&oacute;n de fondo, pero son recomendadas cuando se utiliza  en esta fase de sensibilizaci&oacute;n inmunoglobulinas, al ser el fen&oacute;meno de  desabsorci&oacute;n menos frecuente. 10</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La  concentraci&oacute;n &oacute;ptima de IgG de carnero en el recubrimiento fue de 2, 8 mg / mL. Esta  selecci&oacute;n se hace en base a los resultados que permiten una mayor  diferenciaci&oacute;n entre los controles positivos m&aacute;s d&eacute;biles y los controles  negativos.10, 11Las condiciones de incubaci&oacute;n para esta fase en  c&aacute;mara h&uacute;meda, se realiza durante toda la noche a 4oC. <sup>11, 12 </sup></font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">1. Se dise&ntilde;&oacute; un  sistema ELISA indirecto que utiliza doble anticuerpo heter&oacute;logo que cuantifica  Lp(a) en suero humano.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">2. El sistema  propuesto cumple con los par&aacute;metros de evaluaci&oacute;n que exige el ECCLS como son  imprecisi&oacute;n (precisi&oacute;n interplaca y precisi&oacute;n intraplacas), sensibilidad y  especificidad.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">3. El sistema  dise&ntilde;ado es de utilidad en la cuantificaci&oacute;n s&eacute;rica de Lp(a) en suero de  pacientes.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">1. Cantin B. Association of fibrinogen and lipoprotein (A) as a coronary heart disease risk factor in men (The Quebec Cardiovascular Study). Am J Cardiol. 2002;89(6):662-6.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">2. Chimienti G, Lamanuzzi BL, Nardulli M. APO(A) variants and lipoprotein (A) in men with or without myocardial infarction. Exp Mol Pathol. 2002;73(1):28-34.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">3. Dionyssiou-Asteriou A, Papastamatiou M, Vatalas IA, Bastounis E. Serum apolipoprotein AI levels in atherosclerotic and diabetic patients. Eur J Vasc Endovasc Surg. 2002;24(2):161-5.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">4. Sasaki H, Konisi K. Pathophysiology and diagnosis for arteriosclerosis obliterans. Rinsho Byori. 2002;50(8):802-6.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">5. Glader CA, Birgander LS, Stenlund H, Dahlen GH. Is lipoprotein (A) a predictor for survival in patients with established coronary artery disease? Results from a prospective patient cohort study in northern Sweden. J Intern Med. 2002;252(1):27-35.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">6. Luc O. Lipoprotein (A)as a predictor of coronary heart disease: the prime study. Atherosclerosis. 2002;163(2):377-84.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">7. Misirli H, Somay G, Ozbal N, Yasar Erenoglu N. Relation of lipid and lipoprotein (A) to ischaemic stroke. J Clin Neurosci. 2002;9(2):127-32.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">8. Lundstam U, Herlitz J, Karlsson T, Linden T, Wiklund O. Serum lipids, lipoprotein (A) level, and apolipoprotein (A) isoforms as prognostic markers in patients with coronary heart disease. J Intern Med. 2002;251(2):111-8.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">9. Marz W, Grob W. Quantification of human serum lipoprotein (A). Clin Chem. 1989;9:15-26.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">10. Bracho D. Manual de inmunodiagnóstico. Fundamento y aplicaciones. La Habana: EDILVZ; 1997.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">11. Labeur C, Rosseneu M, Herdenson O. International Lp(A) Standarization. Chem Phys Lip. 1994;67:265-70.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">12. Peralta E, Frías M. Manual sobre técnicas inmunoenzimáticas ELISA. La Habana: Editorial Científico-Técnica; 1987.    </font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Recibido: 16 de  junio de 2003.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Aceptado: 18 de  enero de 2004.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Dra. Aidelian Jevey Gonz&aacute;lez.</i> Especialista  de I Grado en Bioqu&iacute;mica Cl&iacute;nica. Profesor Instructor. Facultad de Ciencias  M&eacute;dicas. Las Tunas. Instituto Superior de Ciencias M&eacute;dicas Carlos J. Finlay.  Camag&uuml;ey, Cuba.</font></p>      ]]></body><back>
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