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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Identificación de infección primaria y secundaria al virus de la rubéola mediante la detección de la avidez de la IgG en muestras de un brote en el 2004 en Cuba]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Rubella infectious diseases affect children and young adults and when they occur during the first trimester of pregnancy, cause congenital malformations in the newborn. In the National Reference Laboratory (NLR) of measles, rubella and mumps from the Tropical Medicine Institute ¨Pedro Kourí¨, the IgG Avidity Index (AI) detection was carried out to 15 paired serum samples, which corresponded to same number of patients infected with this virus in two Cuban provinces in 2004. The samples were positive to virus- specific IgM antibodies, in addition seroconversion or an increase of > 4 fold of the titers in the sera of the acute and convalescence phase using the hemagglutination inhibition assay (HIA). The AI value showed a primary infection to rubella virus in 13 (86.6%) of the patients studied, and a secondary infection in 2 (13.3%) of them. The IgG avidity antibody detection is a reliable alternative tool for distinguishing between primary and secondary rubella virus infection and for strengthing the diagnosis of this disease in Cuba]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font face="Verdana" size="2"><b>ART&Iacute;CULO ORIGINAL</b></font></p>    <p align="right">&nbsp;</p>    <p><font face="Verdana",  size="4"><b>Identificaci&oacute;n  de infecci&oacute;n primaria y secundaria al virus de la rub&eacute;ola mediante  la detecci&oacute;n de la avidez de la IgG en muestras de un brote en el 2004  en Cuba </b></font></p>    <p>&nbsp;</p>    <p align="left"><font face="Verdana " size="3"><b>Identification  of primary and secondary infection to rubella virus by the detection of IgG avidity  in samples of an outbreak occurred in 2004 in Cuba </b></font>     <p align="left">&nbsp;      <p align="left">&nbsp;     <p><font face="Verdana" size="2"><b>Mar&iacute;a de los Angeles  Ribas,<sup>1</sup></b>*<b> Yahisel Tejero,<sup>1</sup> Marlen Valc&aacute;rcel,<sup>2</sup>  Miguel Galindo,<sup>2</sup> Gretel Acosta,<sup>1</sup> Deneb Garc&iacute;a,<sup>1</sup>  Yanislet Cordero<sup>1</sup> </b></font></p>    <p><font face="Verdana" size="2"><sup>1.</sup>  Instituto de Medicina Tropical &quot;Pedro Kour&iacute;&quot;. Autopista Novia  del Mediod&iacute;a km 61/2. La Lisa, La Habana, Cuba.    <br> <sup>2.</sup> Ministerio  de Salud P&uacute;blica. Calle 23 No. 201 e/ M y N. Vedado, La Habana, Cuba.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>  email:<a href="mailto:maribas@ipk.sld.cu%20">maribas@ipk.sld.cu </a></font>     <br>  <font face="Verdana" size="2">* Doctor en Medicina, Doctor en Ciencias, Especialista  de Segundo Grado en Microbiolog&iacute;a, Profesor Auxiliar e Investigador Titular.  </font></p>    <p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp; </p><hr align="left" />     <p><font face="Verdana"><strong><font size="2">RESUMEN</font></strong></font>      <p  align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">La rub&eacute;ola es una enfermedad  infectocontagiosa que afecta a ni&ntilde;os y adultos j&oacute;venes, y cuando  esta se produce en el primer trimestre del embarazo ocasiona malformaciones cong&eacute;nitas  en el feto. En el Laboratorio Nacional de Referencia de Sarampi&oacute;n, Rub&eacute;ola  y Parotiditis del Instituto de Medicina Tropical &quot;Pedro Kour&iacute;&quot;,  se realiz&oacute; la detecci&oacute;n del &iacute;ndice de avidez relativo (IAR)  de la IgG en 15 pares de sueros correspondientes a igual n&uacute;mero de pacientes  adultos que enfermaron durante un brote de rub&eacute;ola ocurrido en dos provincias  de Cuba en el 2004, los cuales fueron positivos a anticuerpos de tipo IgM espec&iacute;ficos  al virus, y en algunos se encontr&oacute; seroconversi&oacute;n o un aumento de  cuatro veces el t&iacute;tulo entre los sueros de la fase aguda y convaleciente  con la t&eacute;cnica de inhibici&oacute;n de la hemaglutinaci&oacute;n. En 13  (86,6%) de los pacientes estudiados se detect&oacute; infecci&oacute;n primaria,  mientras que en dos (13,3%) de ellos la infecci&oacute;n fue secundaria. La detecci&oacute;n  de la avidez de la IgG constituye un m&eacute;todo alternativo &uacute;til para  distinguir una infecci&oacute;n primaria de una secundaria al virus de la rub&eacute;ola  y fortalece el diagn&oacute;stico de esta enfermedad en Cuba. </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2"><b>Palabras  clave:</b> rub&eacute;ola, avidez, ELISA, IgG. </font> <hr align="left" />     <p><font face="Verdana"><strong><font size="2">ABSTRACT</font></strong></font>      <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">Rubella infectious diseases affect  children and young adults and when they occur during the first trimester of pregnancy,  cause congenital malformations in the newborn. In the National Reference Laboratory  (NLR) of measles, rubella and mumps from the Tropical Medicine Institute &#168;Pedro  Kour&iacute;&#168;, the IgG Avidity Index (AI) detection was carried out to 15  paired serum samples, which corresponded to same number of patients infected with  this virus in two Cuban provinces in 2004. The samples were positive to virus-  specific IgM antibodies, in addition seroconversion or an increase of &gt; 4 fold  of the titers in the sera of the acute and convalescence phase using the hemagglutination  inhibition assay (HIA). The AI value showed a primary infection to rubella virus  in 13 (86.6%) of the patients studied, and a secondary infection in 2 (13.3%)  of them. The IgG avidity antibody detection is a reliable alternative tool for  distinguishing between primary and secondary rubella virus infection and for strengthing  the diagnosis of this disease in Cuba. </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2"><b>Key  words</b>: rubella, avidity, ELISA, IgG. </font> <hr align="left" />     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp;</p>    <p><font face="Verdana"><strong><font size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></strong></font>  </p>    <p  align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">La rub&eacute;ola es una enfermedad  exantem&aacute;tica aguda, generalmente moderada que se manifiesta por una erupci&oacute;n  maculopapular, linfadenopat&iacute;as y fiebre no muy elevada. Afecta a ni&ntilde;os  y adultos j&oacute;venes, es capaz de ocasionar el s&iacute;ndrome de rub&eacute;ola  cong&eacute;nita (SRC) y, cuando se presenta en una mujer susceptible durante  el primer trimestre del embarazo, trae graves implicaciones para el feto (1,2).  </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">El diagn&oacute;stico  serol&oacute;gico de la infecci&oacute;n por el virus de la rub&eacute;ola se  realiza casi siempre a trav&eacute;s de la detecci&oacute;n de los anticuerpos  de tipo IgM e IgG, pero los anticuerpos de clase IgM pueden estar presentes ante  una reinfecci&oacute;n, lo que dificulta la interpretaci&oacute;n de si se trata  de un caso primario o secundario (2). </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">La  incorporaci&oacute;n de la vacuna triple viral (sarampi&oacute;n, rub&eacute;ola  y parotiditis) al programa de inmunizaci&oacute;n de muchos pa&iacute;ses y la  meta de eliminaci&oacute;n de la rub&eacute;ola/SRC en el mundo, reduce de forma  considerable la incidencia de infecci&oacute;n por este virus y crece la reactividad  inespec&iacute;fica a la IgM, lo que ocasiona una disminuci&oacute;n del valor  predictivo positivo de los ensayos de tipo IgM y comienza la detecci&oacute;n  de resultados falsos positivos. Esta situaci&oacute;n conduce a la implementaci&oacute;n  de t&eacute;cnicas de laboratorio que permitan distinguir entre una respuesta  primaria y una reinfecci&oacute;n, mediante la incorporaci&oacute;n de un m&eacute;todo  alternativo o complementario a la detecci&oacute;n de la IgM, tal como la determinaci&oacute;n  de la avidez de los anticuerpos de tipo IgG (3,4). </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">En  1984 se introduce el t&eacute;rmino avidez en la pr&aacute;ctica cl&iacute;nica,  aplic&aacute;ndose a los sistemas tipo ELISA y a la inmuno-fluorescencia, m&eacute;todos  que permiten diferenciar una infecci&oacute;n reciente de una residual. La determinaci&oacute;n  de la avidez de la IgG en el suero muestra su gran utilidad en el diagn&oacute;stico  de las enfermedades virales, bacterianas y parasitarias, fundamentalmente en las  mujeres embarazadas, donde se necesita conocer si la infecci&oacute;n ocurre antes  o durante la gravidez (4,5). </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">En  Cuba, en el a&ntilde;o 2004, tras m&aacute;s de 10 a&ntilde;os de no notificarse  casos de rub&eacute;ola, se produce un brote de esta enfermedad en una poblaci&oacute;n  adulta, que por la edad que ten&iacute;an los casos estos deb&iacute;an estar  vacunados contra la rub&eacute;ola o padec&iacute;an la infecci&oacute;n natural.  Con el objetivo de confirmar si se trataba de una infecci&oacute;n primaria o  secundaria al virus de la rub&eacute;ola, se realiz&oacute; la detecci&oacute;n  de la avidez de los anticuerpos IgG en el suero de estos pacientes.</font>     <p align="JUSTIFY">&nbsp;      <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana"><strong><font size="3">MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</font></strong></font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2"><strong>Muestras </strong></font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">En  el presente estudio se investigaron 15 pares de sueros pertenecientes a igual  n&uacute;mero de pacientes que enfermaron con el virus de la rub&eacute;ola en  un brote ocurrido en dos provincias de Cuba (Santiago de Cuba y La Habana) en  el a&ntilde;o 2004. El estudio se realiz&oacute; en el Laboratorio Nacional de  Referencia de Sarampi&oacute;n, Rub&eacute;ola y Parotiditis, del Instituto de  Medicina Tropical &quot;Pedro Kour&iacute;&quot;, donde se recepcionaron y conservaron  las muestras a -20 &#176;C hasta el momento de su procesamiento. </font>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>Detecci&oacute;n  de anticuerpos de tipo IgM al virus de la rub&eacute;ola </b></font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">Se  emple&oacute; el estuche comercial Enzygnost antirubella IgM, Dade Behring (Marburg,  Germany), basado en el principio de captura de anticuerpos, el que se utiliz&oacute;  siguiendo las instrucciones del fabricante. </font>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>T&eacute;cnica  de Inhibici&oacute;n de la Hemaglutinaci&oacute;n (IH) para la detecci&oacute;n  de anticuerpos al virus de la rub&eacute;ola </b></font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">Para  la realizaci&oacute;n de esta t&eacute;cnica se aplic&oacute; el m&eacute;todo  descrito por Gershon y Krugman en 1979, en el cual se consideraron positivas al  virus de la rub&eacute;ola aquellas muestras de suero que presentaron una seroconversi&oacute;n  o aumento del t&iacute;tulo del segundo suero cuatro veces o m&aacute;s con respecto  al primero (6). </font>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>ELISA para detecci&oacute;n  del &iacute;ndice de avidez relativo (IAR, porcentaje de avidez) de los anticuerpos  de tipo IgG al virus de la rub&eacute;ola </b></font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">Para  medir la avidez de la IgG se emple&oacute; el estuche comercial Avidity Anti-Rubella  ELISA (IgG) (EUROIMMUN, Medizinische Labordiagnostika AG, Holanda), con un principio  indirecto y en el cual se siguieron las instrucciones del fabricante. </font>      <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">A todos los pocillos de la placa  de reacci&oacute;n se les adicionaron 100 &#181;L de las muestras a estudiar y  en la misma se realiz&oacute; la t&eacute;cnica ELISA, de manera convencional  y a&ntilde;adiendo 200 &#181;L de una soluci&oacute;n de urea entre la incubaci&oacute;n  de la muestra y la adici&oacute;n del conjugado (anti IgG humana marcada con peroxidasa),  en hileras alternas. </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">Se  incub&oacute; 1 h a 37 &#176;C y despu&eacute;s de realizar los lavados con el  tamp&oacute;n fosfato suministrado en el estuche, se aplicaron 100 &#181;L del  crom&oacute;geno TMB/sustrato y se incub&oacute; durante 15 min a temperatura  ambiente (20-25 &#176;C), protegido de la luz. Posteriormente, la reacci&oacute;n  se detuvo con la soluci&oacute;n de parada. </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">La  lectura se realiz&oacute; con los filtros de 450 y 620 nm como referencia, en  un lector de ELISA (Reader 25, Biom&eacute;rieux). </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">El  IAR se calcul&oacute; dividiendo la densidad &oacute;ptica (DO) de la muestra  tratada con urea, entre la DO de la muestra sin tratar y luego se multiplic&oacute;  por 100. </font>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>Interpretaci&oacute;n de  los resultados </b></font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">El  l&iacute;mite superior del rango considerado como anticuerpos de baja avidez (valor  de corte) recomendado en el estuche fue de 40%. Valores de IAR por debajo del  corte recomendado indicaron la presencia de anticuerpos de baja avidez (&lt; 40%);  resultados entre 40 y 60% se interpretaron como moderados y los valores por encima  de 60% se consideraron como de alta avidez. </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">A  las muestras que despu&eacute;s de tratadas presentaron una DO por debajo de 0,150,  no se les realiz&oacute; la detecci&oacute;n del IAR, y se consideraron como no  detectables (ND). </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2"><b>Criterio  de infecci&oacute;n primaria:</b> Aquellos casos donde el valor del IAR fue moderado,  por debajo del valor l&iacute;mite o no se pudo detectar. </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2"><b>Criterio  de infecci&oacute;n secundaria: </b>Aquellos casos donde el valor del IAR fue  mayor de 60%. </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2"><b>Definici&oacute;n  de infecci&oacute;n primaria:</b> Cuando el individuo se expuso por primera vez  al virus de la rub&eacute;ola, ya sea por infecci&oacute;n natural o por vacunaci&oacute;n  (7). </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2"><b>Definici&oacute;n  de infecci&oacute;n secundaria (reinfecci&oacute;n):</b> Cuando despu&eacute;s  de que se produjeron los anticuerpos contra el virus de la rub&eacute;ola por  enfermar naturalmente o por la vacunaci&oacute;n, los anticuerpos disminuyen significativamente  despu&eacute;s de transcurrir varios a&ntilde;os. Cuando el individuo se expone  de nuevo al virus se vuelve a infectar, pero generalmente con menor intensidad  (7). </font>     <p align="JUSTIFY">&nbsp;     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="JUSTIFY"><font face="Verdana"><strong><font size="3">RESULTADOS</font></strong></font><font face="Verdana" size="2">  </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">En la <a href="/img/revistas/vac/v22n3/t0102313.jpg">Tabla  </a> se muestra la presencia de anticuerpos de tipo IgM, IH y el IAR de la IgG,  en los 15 pares de sueros de los pacientes que enfermaron en el brote del a&ntilde;o  2004. </font>     
<p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">La respuesta de  anticuerpos de tipo IgM fue positiva en todos los sueros (100%): el 73,3% (11/15)  de las muestras present&oacute; seroconversi&oacute;n o aumento del t&iacute;tulo  cuatro veces o m&aacute;s del segundo suero con respecto al primero con la IH,  mientras que en el primer suero de 11 (73,3%) de los 15 casos no se pudo determinar  el valor del IAR, por ser la DO inferior a 0,15; en 2 (13,3%) el IAR fue bajo  (&lt; 40%) y en los otros 2 (13,3%) fue alto (&gt; 60%). </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">En  las segundas muestras los valores de IAR variaron y aquellos que al inicio fueron  ND (11) pasaron a ser: altos, 3 casos (27,3%), moderados, 5 (45,5%) y bajos, 3  (27,3%). </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">Al realizar  el an&aacute;lisis de los resultados obtenidos se consider&oacute; que 13 (86,6%)  de los casos estudiados presentaron una infecci&oacute;n primaria y dos de ellos  tuvieron una rub&eacute;ola secundaria (casos 12 y 14). </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">La  edad promedio de los pacientes fue de 31,7 a&ntilde;os, todos presentaron manifestaciones  cl&iacute;nicas de rub&eacute;ola y a pesar de que reportaron haber recibido la  vacuna monovalente de rub&eacute;ola o la triple viral, esta informaci&oacute;n  no pudo verificarse por no contar con la tarjeta de vacunaci&oacute;n. </font>      <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">Se muestra la distribuci&oacute;n  de los valores de los IAR de los primeros y segundos sueros de los pares estudiados,  donde el mayor n&uacute;mero de las segundas muestras se distribuy&oacute; por  encima de 40% del valor del IAR, incluso algunas sobrepasaron el 60% (<a href="/img/revistas/vac/v22n3/f0102313.jpg">Figura</a>).</font>      
<p align="JUSTIFY">&nbsp;     <p align="JUSTIFY"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong><font size="3">DISCUSI&Oacute;N</font></strong></font><font face="Verdana" size="2">  </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">Una vez que los anticuerpos  se producen, las c&eacute;lulas B permanecen en la circulaci&oacute;n y son responsables  de la respuesta de memoria ante una nueva exposici&oacute;n a ese mismo ant&iacute;geno,  produci&eacute;ndose un incremento en el IAR de la IgG, lo que hace a esta prueba  muy &uacute;til para diferenciar entre una infecci&oacute;n primaria o secundaria  (8). </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">A pesar de que los  pacientes estudiados expresaron haber recibido la vacuna contra la rub&eacute;ola  cuando ten&iacute;an un a&ntilde;o de edad o en alguna de las campa&ntilde;as  de vacunaci&oacute;n realizadas en Cuba contra este virus, la presencia de anticuerpos  de tipo IgM, as&iacute; como la ausencia o baja avidez de los anticuerpos IgG  en el primer suero obtenido de la mayor&iacute;a de los casos, sugiri&oacute;  que los mismos padecieron una infecci&oacute;n primaria. </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">En  los casos 12 y 14 (de 26 y 56 a&ntilde;os de edad, respectivamente), cuya respuesta  de anticuerpos se elev&oacute; entre el primer y segundo suero con la IH y el  IAR fue alto. </font>     <p><font face="Verdana" size="2">Se consider&oacute; que  ten&iacute;an una infecci&oacute;n secundaria, la que pudo producirse por p&eacute;rdida  de los anticuerpos frente a la rub&eacute;ola, ya que la vacuna se aplic&oacute;  en etapas tempranas de la vida (al a&ntilde;o de edad) o en el caso 14, por una  disminuci&oacute;n de los anticuerpos, despu&eacute;s de muchos a&ntilde;os de  haber enfermado de forma natural. </font> </p>    <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">Todos  los individuos estudiados presentaron anticuerpos de tipo IgM en ambos sueros.  Algunos autores plantean que la evidencia de reinfecci&oacute;n se expresa con  el aumento de los anticuerpos de memoria ante una nueva exposici&oacute;n al virus,  lo que puede acompa&ntilde;arse o no de una respuesta positiva de la IgM, la cual  por lo general es d&eacute;bil, produci&eacute;ndose picos muy reducidos de la  misma que generalmente no se captan por los sistemas serol&oacute;gicos empleados  (9, 10). </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">En el caso de  brotes, el aumento de la IgM compatible con una historia epidemiol&oacute;gica  confirma la positividad de infecci&oacute;n. Sin embargo, una respuesta IgM positiva  puede encontrarse durante las seis primeras semanas de la infecci&oacute;n y persistir  hasta 3 o 12 meses despu&eacute;s de iniciarse los s&iacute;ntomas, observ&aacute;ndose  un aumento en el rango de detecci&oacute;n en la fase convaleciente (11, 12).  </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">En los casos 4, 5, 10  y 11 (Tabla 1), al realizarse la IH no hubo un cambio significativo en el t&iacute;tulo  de los anticuerpos entre el primer y segundo suero, resultado quiz&aacute;s vinculado  con un intervalo de colecci&oacute;n menor a 15 d&iacute;as entre la primera y  segunda muestra del suero. </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">Cl&aacute;sicamente,  la infecci&oacute;n o reinfecci&oacute;n con el virus de la rub&eacute;ola, se  determina a trav&eacute;s del incremento del t&iacute;tulo de los anticuerpos  IgG en sueros pareados, donde el segundo suero se extrae entre los 15 y 21 d&iacute;as  despu&eacute;s del primero. En la mayor&iacute;a de las muestras estudiadas, los  anticuerpos IH mostraron seroconversi&oacute;n o aumento del t&iacute;tulo cuatro  veces o m&aacute;s del segundo suero con respecto al primero. Tipples en 2011  plantea que para interpretar los resultados obtenidos en los estudios serol&oacute;gicos,  donde se realiza la titulaci&oacute;n de anticuerpos, se necesita tener en cuenta  el momento de colecci&oacute;n de la muestra, ya que cuando el primer suero se  obtiene varios d&iacute;as despu&eacute;s de iniciados los s&iacute;ntomas y el  segundo entre los 10 y 14 d&iacute;as despu&eacute;s del primero, puede no producirse  un aumento significativo en el nivel de anticuerpos entre una y otra muestra (3).  </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">En los pacientes cuyo  IAR del primer suero no se determin&oacute; o este fue bajo, se observ&oacute;  un incremento en el valor de la avidez de la IgG cuando el tiempo de recolecci&oacute;n  transcurrido tras la primera y segunda muestra fue mayor de 20 d&iacute;as. Algunos  autores expresan que el cambio del porcentaje de avidez de bajo a alto ocurre  entre 100 a 150 d&iacute;as despu&eacute;s de iniciada la infecci&oacute;n. Sin  embargo, otros afirman la detecci&oacute;n de altos &iacute;ndices en muestras  de suero tomadas entre el tercer y el d&iacute;a 26 de la fecha del inicio de  los s&iacute;ntomas (11, 13). </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">En  los casos 12 y 14, clasificados como infecci&oacute;n secundaria, el valor del  IAR fue alto en ambos sueros. La avidez de los anticuerpos estriba en su fortaleza  de uni&oacute;n con el ant&iacute;geno y se considera que una vez obtenido un  alto porcentaje de avidez, el mismo no se modifica a lo largo de la vida del sujeto,  independientemente de las oscilaciones que se produzcan en el nivel de los anticuerpos  como consecuencia de reinfecciones o reactivaciones (14, 15). </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">Se  plantea que la avidez de la IgG para neutralizar al ant&iacute;geno viral se incrementa  r&aacute;pidamente despu&eacute;s de la infecci&oacute;n primaria y que es mucho  m&aacute;s lenta despu&eacute;s de la vacunaci&oacute;n, manteniendo un valor  moderado durante un periodo prolongado (meses) y las variaciones en el rango de  baja a alta avidez est&aacute; condicionada por factores tales como: el sistema  inmune del paciente, la fecha de toma de la muestra y del inicio de los s&iacute;ntomas,  la t&eacute;cnica empleada, la preparaci&oacute;n del ant&iacute;geno para el  estudio, la concentraci&oacute;n del reactivo que act&uacute;a como disociante  e incluso el m&eacute;todo para realizar el c&aacute;lculo de los resultados (16,  17). </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">La detecci&oacute;n  de la avidez de la IgG mostr&oacute; ser una t&eacute;cnica &uacute;til, no solo  en el diagn&oacute;stico de diferentes enfermedades donde se desea conocer si  se produjo una infecci&oacute;n primaria o secundaria, sino tambi&eacute;n en  aquellas donde las manifestaciones cl&iacute;nicas son poco espec&iacute;ficas,  no hay respuesta aparente de la IgM y se produce una aparici&oacute;n precoz de  la IgG, sin seroconversi&oacute;n demostrable o cuando la IgM es positiva a uno  o varios virus, por lo que se recomienda su inclusi&oacute;n en los laboratorios  como complemento de la detecci&oacute;n de la IgM, ante la posibilidad de que  la positividad de este anticuerpo no se deba, precisamente, a una infecci&oacute;n  primaria, sino a una recurrencia cl&iacute;nica o a un est&iacute;mulo policlonal  inespec&iacute;fico (18, 19).</font>     <p align="JUSTIFY">&nbsp;     <p align="JUSTIFY"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>REFERENCIAS</strong></font>      <!-- ref --><p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">1. Hamkar R, Jalilvand S, Abdolbaghi  M, Jelyani K, Esteghamati A, Hagh-goo A, et al. Distinguishing between primary  infection and reinfection with rubella vaccine virus IgG avidity assay in pregnant  women. East Med Health J 2009;15(1):94-103.     </font>     <!-- ref --><p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">2.  Wandinger K, Saschenbrecker S, Steinhagen K, Scheper T, Meyer W, Bartelt U, et  al. Diagnosis of recent primary rubella virus infections: significance of glycoprotein-based  IgM serology , IgG avidity and immunoblot analysis. J Virol Methods 2011;174:85-93.      </font>     <!-- ref --><p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">3. Tipples G. Rubella  diagnostic issues in Canada. J Infect Dis 2011;2004 (Suppl 2):659-63.     </font>      <!-- ref --><p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">4. Mubareka S, Richards H, Gray  M, Tipples G. Evaluation of Commercial Rubella Immunoglobulin G Avidity Assays.  J Clin Microbiol 2007;45(1):231-3.     </font>     <!-- ref --><p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">5.  Shepherd S, Kean J, Hutchinson S, Cameron S, Goldberg D, Carman W, et al. A hepatitis  C avidity test for determining recent and past infections in both plasma and dried  blood spot. J Clin Virol 2013;57(1):29-35.     </font>     <!-- ref --><p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">6.  Gershon A, Krugman S. Measles virus. En: Lennette E, Schmidt N. Diagnostic procedure  for viral, rickettsial and chlamidial infections. Washington DC: Am Public Health  Association; 1979. p. 665-93.     </font>     <!-- ref --><p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">7.  Pannuti C, Morello R, de Moraes J, Pires S, Alfonso A, Correa M, et al. Identification  of primary and secondary measles vaccine failures by measurement of immunoglobulin  G avidity in measles cases during the 1997 Sao Paulo epidemic. Clin Diag Lab Immunol  2004;11(1):119-22.     </font>     <!-- ref --><p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">8.  Kontio M, Jokinene S, Paunio M, Peltola H, Davidkin I. Waning antibody levels  and avidity: Implication for MMR vaccine induced protection. J Infect Dis 2012;206(10):1542-8.      </font>     <!-- ref --><p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">9. De Paschale M, Agrappi  C, Manco M, Clerici P. Positive predictive value of anti-HCMV IgM as an index  of primary infection. J Virol Meth 2010;168:121-5.     </font>     <!-- ref --><p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">10.  Rota J, Hickman C, Sowers S, Rota P, Mercader S, Bellini W. Two case studies of  modified measles in vaccinated physicians exposed to primary measles cases: hight  risk of infection but low risk of transmission. J Infect Dis 2011;204 (Suppl 1):559-63.      </font>     <!-- ref --><p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">11. Hickman C, Hyde T,  Sowers S, Mercader S, Mc Grew M, Williams N, et al. Laboratory characterization  of measles virus infection in previously vaccinated and unvaccinated individuals.  J Infect Dis 2011;204 (Suppl 1): 549-58.     </font>     <!-- ref --><p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">12.  Vicari A, Dietz V, Bellini W, Icenogle J, Castillo C. Interpretation of Measles  and Rubella Serology. In: Andrus J, de Quadros C. Recent Advances in Immunization.  Washington DC: Pan American Health Organization; 2006. p. 76-86.     </font>     <!-- ref --><p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">13.  Vauloup-Fellous C, Grangeot-Keros L. Humoral Immune Response after Primary Rubella  Virus Infection and after Vaccination. Clinical and Vaccine Immunology 2007;14(5):644-7.      </font>     <!-- ref --><p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">14. Binley JM, Arshad  H, Fouts TR, Moore J. An Investigation of the High-Avidity Anibody Response to  Glycoprotein 120 of Human Immunodeficiency Virus Type 1. AIDS Research and Human  Retroviruses 1997;13(12):1007-15.     </font>     <!-- ref --><p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">15.  Paunio M, Hedmon K, Davidkin I, Valle M, Heinonen O, Leinikki P, et al. Secondary  measles vaccine failure identified by mesearument of IgG avidity: high occurrence  among teenagers vaccinated at a young age. Epidemiol Infect 2000;124(2):263-71.      </font>     <!-- ref --><p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">16. Narita M, Matsuzono  Y, Takekoshi Y, Yamada S, Itakura O, Kubota M, et al. Analysis of Mumps Vaccine  Failure by Means of Avidity Testing for Mumps Virus-Specific Immunoglobulin G.  Clin Diagn Lab Immunol 1998;5(6):799-803.     </font>     <!-- ref --><p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">17.  Guti&eacute;rrez J, Maroto C. Serodiagn&oacute;stico de la infecci&oacute;n v&iacute;rica:  su inter&eacute;s cl&iacute;nico. Control de Calidad SEIMC 2004:1-8. Disponible  en: <a href="http://www.seimc.org/control/revi_Sero/Serovir.htm.%20" target="_blank">http://www.seimc.org/control/revi_Sero/Serovir.htm.      </a></font>     <!-- ref --><p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">18. Suresh S, Nor-Masniwati  S, Nor-Idhariani M, Wan-Hazabbah W, Zeehaida M, Zunaina E. Serological IgG avidity  test for ocular toxoplasmosis. Clin Ophthal 2012;6:147-50.     </font>     <!-- ref --><p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">19.  Mercader S, Garc&iacute;a P, Bellini W. Measles virus IgG avidity assay for use  in classification of measles vaccine failure in measles elimination setting. Clinical  and Vaccine immunology 2012;19(11):1810-7.     </font>     <p align="JUSTIFY">&nbsp;     <p align="JUSTIFY">&nbsp;      <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">Recibido: Febrero de 2013    <br>  Aceptado: Abril de 2013</font>     <p align="JUSTIFY">&nbsp;       ]]></body><back>
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