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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto analgésico del extracto acuoso liofilizado de Ocimum tenuiflorum L.]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Centro de Investigación y Desarrollo de Medicamentos (CIDEM)  ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Drugs with the capacity of inhibiting the synthesis or action of mediators such as eikosanoids, histamine, bradycine, and others, hinder the sensitizing action of them on the nociceptive nervous terminationes. Taking into account the shown antiinflammatory activity of the freeze-dried aqueous extract of Ocimum tenuiflorum L., it was the objective of this paper to evaluate the analgesic properties of it in animal models. Doses of O. tenuiflorum of 250, 500 and 1 000 mg/kg were evaluated in pain-induction models by chemical and thermic ways. As a result of this study it was observed that the freeze-dried aqueous extract of O. tenuiflorum. had an analgesic effect in the hot dish model at a dose of 1 000 mg/kg, and in that of contortions by acetic acid in mice and calorific focus in rats at doses of 250, 500 and 1 000 mg/kg. These results indicated that the freeze-dried aqueous extract of O. tenuiflorum has an antinociceptive effect, mainly on the peripheral pathway.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <h3>Art&iacute;culos Originales</h3>    <p>Centro de Investigaci&oacute;n y Desarrollo  de Medicamentos (CIDEM)</p><h2>Efecto analg&eacute;sico del extracto acuoso liofilizado  de <i>Ocimum tenuiflorum</i> L.</h2>    <p><a href="#autor">Lic. Pedro Barzaga Fern&aacute;ndez,<span class="superscript">1</span>  Lic.Yanier N&uacute;&ntilde;ez Figueredo,<span class="superscript">1</span> T&eacute;c.  Sarah Ag&uuml;ero Fern&aacute;ndez,<span class="superscript">2</span> MSc. Ismael  Ch&aacute;vez Hern&aacute;ndez,<span class="superscript">3</span> T&eacute;c.  Mar&iacute;a Lidia Gonz&aacute;lez Sanabria,<span class="superscript">4</span>  T&eacute;c. Yadira Iser Vald&eacute;s<span class="superscript">5</span> y T&eacute;c.  Maylin Olivera Carpio<span class="superscript">5</span></a><span class="superscript"><a name="cargo"></a></span></p><h4>Resumen</h4>    <p>Drogas  con capacidad de inhibir la s&iacute;ntesis o acci&oacute;n de mediadores como  los eicosanoides, histamina, bradicinina, entre otras, impiden la acci&oacute;n  sensibilizadora de &eacute;stos sobre las terminaciones nerviosas nociceptivas.  Teniendo en cuenta la actividad antiinflamatoria demostrada del extracto acuoso  liofilizado de <i>Ocimum tenuiflorum</i> L., fue objetivo de este trabajo evaluar  sus propiedades analg&eacute;sicas en modelos animales. Dosis de <i>O. tenuiflorum</i>  de 250, 500 y 1 000 mg/kg fueron evaluadas en modelos de inducci&oacute;n del  dolor por v&iacute;as qu&iacute;mica y t&eacute;rmica. Como resultado de este  estudio se obtuvo que el extracto acuoso liofilizado de <i>O tenuiflorum</i> mostr&oacute;  efecto analg&eacute;sico en los modelos del plato caliente a la dosis de 1 000  mg/kg; en el de contorsiones por &aacute;cido ac&eacute;tico en ratones y foco  calor&iacute;fico en ratas a las dosis de 250, 500 y 1 000 mg/kg. Estos resultados  indicaron que el extracto acuoso liofilizado de <i>O. tenuiflorum</i> ejerce un  efecto antinociceptivo, preferentemente sobre la v&iacute;a perif&eacute;rica.  </p>    <p><b><i>Palabras clave</i></b>: <i>Ocimum tenuiflorum </i>L<i>.</i>, Lamiaceae,  actividad analg&eacute;sica, contorsiones por &aacute;cido ac&eacute;tico, plato  caliente, hipnoanalgesia.</p>    <p>El dolor es una de las quejas m&aacute;s frecuentes  dentro de la poblaci&oacute;n. Acompa&ntilde;a a la inmensa mayor&iacute;a de  las enfermedades y constituye casi siempre la causa que lleva a la persona a buscar  ayuda o a tratar de obtener alivio. Los sistemas sensoriales juegan el papel de  informarle al cerebro acerca del estado del ambiente externo y del medio interno  del organismo. El dolor es una percepci&oacute;n y como tal, es una de las salidas  del sistema nociceptivo, el que por s&iacute; mismo es un componente del equipo  general de controles responsables de la homeostasia.<span class="superscript">1</span>    <br>      <br> Cl&aacute;sicamente se ha aceptado que la acci&oacute;n analg&eacute;sica  de los f&aacute;rmacos antiinflamatorios no esteroidales (AINEs) tiene lugar a  nivel perif&eacute;rico, mediante la inhibici&oacute;n de la s&iacute;ntesis de  las prostaglandinas (PGs) producidas en respuesta a una agresi&oacute;n o lesi&oacute;n  tisular, e impiden, por tanto, que los eicosanoides contribuyan con su acci&oacute;n  sensibilizadora sobre las terminaciones nerviosas nociceptivas, a aumentar la  acci&oacute;n estimulante del dolor de otros mediadores all&iacute; liberados  (histamina y bradicinina, entre otros).<span class="superscript">2</span>     <br>      <br> <i>Ocimum tenuiflorum</i> L. es una planta de la familia Lamiaceae conocida  popularmente como albahaca morada. Se considera nativa de Cuba y su empleo es  muy com&uacute;n en la medicina tradicional cubana como hipoglicemiante, antiasm&aacute;tico  y antiinflamatorio, fundamentalmente.<span class="superscript">3</span> En estudios  de tamizaje fitoqu&iacute;mico se ha identificado la presencia de aminas, flavonoides,  leuco-antocianinas, esteroles y triterpenos.<span class="superscript">4 </span>Teniendo  en cuenta las propiedades antiinflamatorias demostradas al extracto acuoso liofilizado  de <i>O. tenuiflorum</i>,<span class="superscript">5</span> se decidi&oacute;  evaluar su efecto en diferentes modelos de analgesia.</p><h4>M&eacute;todos </h4>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Sustancia  de ensayo: extracto acuoso liofilizado de <i>O. tenuiflorum</i> obtenido a partir  de la suspensi&oacute;n acuosa del follaje de la planta. El material vegetal fue  colectado en la Estaci&oacute;n Experimental de Plantas Medicinales &quot;Dr.  Juan Tom&aacute;s Roig&quot; (EEPM) del Centro de Investigaci&oacute;n y Desarrollo  de Medicamentos (CIDEM) en primavera, con No. de herbario 0019, lote 16-17 y secado  a 40 &ordm;C en estufa de recirculaci&oacute;n de aire. La suspensi&oacute;n acuosa  fue preparada por reflujo de 100 g de material vegetal con 1L de agua destilada  durante 15 min y preservada con metilparabeno 0,2 % y propilparabeno 0,02 %. El  perfil cromatogr&aacute;fico de la suspensi&oacute;n fue caracterizado por cromatograf&iacute;a  de capa delgada. Posteriormente la suspensi&oacute;n acuosa fue sometida a un  proceso de liofilizaci&oacute;n empleando para ello una liofilizadora Edward.    <br>      <br> Reactivos qu&iacute;micos: &aacute;cido ac&eacute;tico glacial de la BDH,  Inglaterra; indometacina y code&iacute;na, ambos de la casa comercial Sigma, Alemania.    <br>      <br> Animales: se emplearon ratas Wistar hembras procedentes de la colonia de  la UCTB Control Biol&oacute;gico del CIDEM, con una masa corporal comprendida  entre 170 y 200g para el ensayo de inmersi&oacute;n de la cola; y, ratones albinos  suizos machos de 25-30g para el ensayo de contorsiones inducidas por &aacute;cido  ac&eacute;tico y del plato caliente. Fueron alojados en sala con temperatura controlada  de 22&plusmn;2 &deg;C, cama con viruta con cambio cada 48 h y un ciclo de luz-oscuridad  de 12/12 h. El pienso CMO 1 000 en pelotillas, dieta proveniente del Centro para  la Producci&oacute;n de Animales de Laboratorio (CENPALAB), y el agua fueron administrados  a libre demanda.    <br>     <br> Ensayo de contorsiones inducidas por &aacute;cido ac&eacute;tico:  se sigui&oacute; el m&eacute;todo publicado por <i>Koster</i> y otros.<span class="superscript">6</span>  Se emplearon 50 ratones distribuidos aleatoriamente en 5 grupos, los que recibieron  agua, indometacina 10 mg/kg y <i>O. tenuiflorum</i> a las dosis de 250, 500 y  1 000 mg/kg por v&iacute;a intrag&aacute;strica. A los 30 min de la administraci&oacute;n  se inyect&oacute;, v&iacute;a intraperitoneal, una soluci&oacute;n de &aacute;cido  ac&eacute;tico al 3 % (0,25 mL/animal). El n&uacute;mero de contorsiones y estiramientos  se registr&oacute; durante 20 min para cada animal.    <br>     <br> Ensayo del plato  caliente: el ensayo se desarroll&oacute; seg&uacute;n la t&eacute;cnica descrita  por <i>Woolfe </i>y <i>MacDonald</i>.<span class="superscript">7</span> Se distribuyeron  50 ratones al azar en 5 grupos de tratamiento a los que mediante c&aacute;nula  intrag&aacute;strica se les administr&oacute; agua, code&iacute;na 50 mg/kg y  <i>O. tenuiflorum</i> 250, 500 y 1 000 mg/kg. Pasada 1 h, los animales fueron  colocados en un plato caliente con una temperatura de 55&plusmn;1 &deg;C para  determinar la latencia de la respuesta nociceptiva.    <br>     ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Ensayo de inmersi&oacute;n  de la cola: se trabaj&oacute; acorde a lo reportado por <i>Jansen </i>y otros<span class="superscript">8</span>  y por <i>Grotto</i> y <i>Sullman</i>.<span class="superscript">9</span> A 40 ratas,  distribuidas aleatoriamente en 5 grupos (n=8) se les trat&oacute; con: agua, indometacina  10 mg/kg, y <i>O. tenuiflorum</i> a 3 niveles de dosis 250, 500 y 1 000 mg/kg.  Al cabo de 30, 60, 90 y 120 min de la administraci&oacute;n de cada tratamiento,  se sumergi&oacute; 1/3 de la cola de cada rata en agua a 55 &ordm;C, 3 veces consecutivas  y se anot&oacute; el tiempo en que el animal retira la cola.    <br>     <br> Procesamiento  estad&iacute;stico: los resultados obtenidos, en los diferentes ensayos, se expresaron  en t&eacute;rminos de los valores resultantes del n&uacute;mero de contorsiones  y del tiempo de respuesta. Se calcul&oacute; la media &plusmn; desviaci&oacute;n  est&aacute;ndar. Los datos se procesaron mediante un an&aacute;lisis de varianza  de una v&iacute;a y posteriormente se realiz&oacute; la prueba de Duncan con un  nivel de significaci&oacute;n de <i>p</i>&lt;0,05.<span class="superscript">10</span></p><h4>Resultados</h4>    <p>Ensayo  de contorsiones inducidas por &aacute;cido ac&eacute;tico: en la fig. 1 se muestra  el n&uacute;mero de contorsiones abdominales observadas en cada uno de los grupos  experimentales. En la misma se puede apreciar que los animales tratados con las  diferentes dosis de extracto acuoso liofilizado de <i>O. tenuiflorum</i> y los  tratados con indometacina 10 mg/kg, disminuyeron este indicador significativamente  para <i>p</i>&lt; 0,001. Las dosis de 500 y 1 000 mg/kg de <i>O. tenuiflorum</i>  produjeron una disminuci&oacute;n significativa del n&uacute;mero de contorsiones  similar a la indometacina 10 mg/kg.</p>    <p align="center"><a href="/img/revistas/pla/v10n1/f0102105.jpg"><img src="/img/revistas/pla/v10n1/f0102105.jpg" width="283" height="228" border="0"></a>    
<br>  </p>    <p align="center">Fig. 1. Efecto de diferentes dosis de extracto acuoso liofilizado  de <i>O. tenuiflorum</i> e indometacina 10 mg/kg sobre el n&uacute;mero de contorsiones  inducidas por &aacute;cido ac&eacute;tico.     <br> Las barras representan la media  desviaci&oacute;n est&aacute;ndar (n=10). Grupos con al menos una letra en com&uacute;n  no son significativamente diferentes (<i>p</i>&lt;0,05, prueba de <i>Duncan</i>).      <br> </p>    <p align="left">Ensayo del plato caliente: el modelo de la reacci&oacute;n  al calor mide la latencia de la respuesta de fuga o autoprotecci&oacute;n contra  el est&iacute;mulo doloroso. Los resultados obtenidos en este ensayo se muestran  en la fig. 2, donde se puede observar que a la dosis de 1 000 mg/kg de <i>O. tenuiflorum</i>  se obtuvo un efecto protector frente al dolor, manifestado por un aumento del  tiempo de exposici&oacute;n de los animales ante el est&iacute;mulo calor&iacute;fico  (<i>p</i>&lt;0,05).</p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a href="/img/revistas/pla/v10n1/f0202105.jpg"><img src="/img/revistas/pla/v10n1/f0202105.jpg" width="292" height="203" border="0"></a>    
<br>  </p>    <p align="center">Fig. 2. Efecto de diferentes dosis de extracto acuoso liofilizado  de <i>O. tenuiflorum</i> y code&iacute;na 50 mg/kg en el ensayo del plato caliente.      <br> Las barras representan la media desviaci&oacute;n est&aacute;ndar (n=10).  Grupos con al menos una letra en com&uacute;n no son significativamente diferentes  (p&lt;0,05, prueba de <i>Duncan</i>).     <br> </p>    <p>Ensayo de inmersi&oacute;n de  la cola: el efecto analg&eacute;sico obtenido en los diferentes intervalos de  tiempo se muestran en la fig. 3. En la misma se puede observar que 30 min despu&eacute;s  de administrar a los animales con los diferentes tratamientos, solamente los tratados  con extracto acuoso liofilizado de <i>O. tenuiflorum </i>1 000 mg/kg e indometacina  10 mg/kg presentaron efecto analg&eacute;sico significativo (<i>p</i>&lt;0,001)  con respecto al grupo de animales que recibi&oacute; agua destilada. Los animales  tratados con extracto acuoso liofilizado de <i>O. tenuiflorum</i> 1 000 mg/kg  e indometacina 10 mg/kg no presentaron diferencias significativas entre s&iacute;.  Despu&eacute;s de 60 min de tratamiento, el tiempo de reacci&oacute;n de todos  los grupos present&oacute; diferencias significativas con respecto al grupo tratado  con agua destilada para <i>p</i>&lt;0,05. A los 90 min luego de que los animales  recibieran los diferentes tratamientos, se pudo observar que a excepci&oacute;n  del grupo tratado con la dosis de 250 mg/kg de extracto acuoso liofilizado de  <i>O. tenuiflorum</i>, los restantes presentaron diferencias significativas con  respecto al grupo tratado con agua destilada para <i>p</i>&lt;0,05. Transcurridos  120 min de administrados los animales, s&oacute;lo el grupo tratado con indometacina  10 mg/kg, aument&oacute; significativamente el tiempo de reacci&oacute;n con respecto  al grupo control.</p>    <p align="center">    <br> <a href="/img/revistas/pla/v10n1/f0302105.jpg"><img src="/img/revistas/pla/v10n1/f0302105.jpg" width="273" height="206" border="0"></a>  </p>    
<p align="center">Fig. 3. Efecto analg&eacute;sico alcanzado por diferentes  dosis de extracto acuoso liofilizado de <i>O. tenuiflorum</i> e indometacina 10  mg/kg a diferentes intervalos de tiempos en el ensayo de inmersi&oacute;n de la  cola.     <br> Cada valor representa la media desviaci&oacute;n est&aacute;ndar (n=10).  Grupos con al menos una letra en com&uacute;n no son significativamente diferentes  (* <i>p</i>&lt;0,05, ** <i>p</i>&lt;0,01, *** <i>p</i>&lt;0,001, prueba de <i>Duncan</i>).      ]]></body>
<body><![CDATA[<br> </p><h4>Discusi&oacute;n</h4>    <p>El extracto acuoso liofilizado de <i>O. tenuiflorum</i>  mostr&oacute; poseer un efecto antiinflamatorio significativo en ratas luego de  su administraci&oacute;n oral en modelos de inflamaci&oacute;n aguda. Este extracto  interfiri&oacute; en alguna forma en la liberaci&oacute;n o acci&oacute;n de las  PGs. En las inflamaciones condicionadas por la presencia de histamina se observ&oacute;  un mejor efecto, mientras que escasamente inhibi&oacute; el edema inducido por  serotonina.<span class="superscript">5</span> De esta forma se comport&oacute;  de manera similar a los AINEs.    <br>     <br> Los principales efectos terap&eacute;uticos  (analg&eacute;sico, antit&eacute;rmico y antiinflamatorio) y muchas de las reacciones  adversas de los AINEs pueden explicarse por su efecto inhibidor de la actividad  de las ciclooxigenasas, enzimas que convierten el &aacute;cido araquid&oacute;nico  que se encuentra en las membranas celulares en endoper&oacute;xidos c&iacute;clicos  inestables, los cuales se transforman en PGs y tromboxanos. En cuanto al dolor  y la inflamaci&oacute;n, la propia actividad antiinflamatoria contribuye a disminuir  la cascada de producci&oacute;n, liberaci&oacute;n y acceso de sustancias (PGs  y tromboxanos) que pueden sensibilizar o activar directamente las terminaciones  sensitivas.<span class="superscript">2</span>    <br>     <br> El &aacute;cido urs&oacute;lico  es un potente agente antiinflamatorio. Este compuesto no s&oacute;lo inhibe la  elastasa en leucocitos humanos, sino adem&aacute;s la actividad de la 5-lipoxigenasa  y de la cicloxigenasa.<span class="superscript">11,12 </span>Este mismo compuesto  mostr&oacute; ser el componente m&aacute;s activo en la degranulaci&oacute;n de  mastocitos y liberaci&oacute;n de histamina en presencia de alergenos.<span class="superscript">13</span>    <br>      <br> Como ya se ha mencionado, una gran variedad de compuestos biol&oacute;gicamente  activos han sido aislados a partir de las hojas de <i>O. tenuiflorum</i> y entre  ellos el &aacute;cido urs&oacute;lico, compuesto triterpenoide pentac&iacute;clico.<span class="superscript">14</span>  La presencia de este compuesto en el extracto en estudio pudiera justificar la  actividad analg&eacute;sica exhibida en los ensayos del presente trabajo.     <br>      <br> La capacidad de los AINEs para reducir la inflamaci&oacute;n es variable  (en general son m&aacute;s eficaces frente a inflamaciones agudas que cr&oacute;nicas)  y depende del tipo de proceso inflamatorio, participaci&oacute;n relativa de algunos  eicosanoides en &eacute;l y tambi&eacute;n de la posibilidad de que act&uacute;en,  adem&aacute;s, por mecanismos de acci&oacute;n independientes de la inhibici&oacute;n  de las cicloxigenasas. Al inhibir la s&iacute;ntesis de PGs y tromboxanos, los  AINE reducen su actividad sensibilizadora de las terminaciones nerviosas.     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>      <br> La actividad analg&eacute;sica de una sustancia se puede determinar mediante  pruebas antinociceptivas que se basan en la aplicaci&oacute;n de un est&iacute;mulo  doloroso (alg&eacute;sico) y la aparici&oacute;n de cambios t&iacute;picos observables  en la conducta del animal. No se puede asegurar en estas pruebas que el animal  tenga la sensaci&oacute;n dolorosa de la misma manera que el ser humano.<span class="superscript">3</span>    <br>      <br> La mayor parte de los m&eacute;todos de estudio se fundamentan en la administraci&oacute;n  previa del problema, pasando a determinar la elevaci&oacute;n del umbral de reacci&oacute;n  al dolor que dicha muestra posiblemente provoque, al aplicar un est&iacute;mulo  nociceptivo de intensidad conocida y bajo condiciones determinadas. Dichos est&iacute;mulos  suelen ser de tipo mec&aacute;nico, t&eacute;rmico, el&eacute;ctrico o qu&iacute;mico.  Casi todos las pruebas ponen de manifiesto la actividad de los analg&eacute;sicos  narc&oacute;ticos. Los primeros bloquean intensamente las sinapsis a nivel central,  mientras que los no narc&oacute;ticos act&uacute;an con un componente perif&eacute;rico  mayor.<span class="superscript">3</span>     <br> </p>    <p>En los 3 ensayos referidos  con anterioridad, se encontr&oacute; que el producto tiene propiedades analg&eacute;sicas  en el modelo de analgesia del plato caliente y en el ensayo de foco calor&iacute;fico  (m&eacute;todos t&eacute;rmicos) y contorsiones por &aacute;cido ac&eacute;tico  (m&eacute;todo qu&iacute;mico).    <br>     <br> Una v&iacute;a &uacute;til de clasificaci&oacute;n  del dolor para la comparaci&oacute;n de analg&eacute;sicos es distinguir entre  el dolor visceral y som&aacute;tico. El dolor visceral es percibido como una sensaci&oacute;n  difusa, mediada por fibras C polimodales. El dolor som&aacute;tico es localizado  y mediado por fibras delta A. La prueba de contorsiones por &aacute;cido ac&eacute;tico  representa un tipo de dolor visceral, mientras que el de la cola ocurre como respuesta  a un dolor som&aacute;tico. El ensayo del plato caliente combina elementos de  ambos tipos de dolor.    <br>     <br> Probablemente el extracto acuoso liofilizado de  <i>O. tenuiflorum</i> ejerce su poder analg&eacute;sico sobre las 2 v&iacute;as  que median el dolor, con mayor afinidad por las del dolor visceral, ya que la  dosis de 250 mg/kg ejerci&oacute; un efecto analg&eacute;sico de 64,5 % en el  m&eacute;todo qu&iacute;mico mientras que esta misma dosis en la prueba del foco  calor&iacute;fico s&oacute;lo mostr&oacute; un 33,3 % de actividad analg&eacute;sica.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>      <br> Por otra parte, los efectos antiinflamatorios demostrados al extracto acuoso  liofilizado de <i>O. tenuiflorum</i> <span class="superscript">5</span> podr&iacute;an  ayudar a justificar los resultados obtenidos, ya que las prostaglandinas inciden  de manera significativa en la aparici&oacute;n del dolor y los f&aacute;rmacos  antiinflamatorios inhiben la s&iacute;ntesis de las mismas.    <br>     <br> Los resultados  obtenidos permiten concluir que el extracto acuoso liofilizado de <i>O. tenuiflorum</i>  mostr&oacute; efectos analg&eacute;sicos en el ensayo de plato caliente en ratones  a la dosis de 1 000 mg/kg, en el ensayo de contorsiones inducidas por &aacute;cido  ac&eacute;tico en ratones a las dosis ensayadas y en el modelo del foco calor&iacute;fico  en ratas. </p><h4>Summary </h4><h6>Analgesic effect of the freeze-dried aqueous  extract of <i>Ocimum tenuiflorum</i> L. </h6>    <p>Drugs with the capacity of inhibiting  the synthesis or action of mediators such as eikosanoids, histamine, bradycine,  and others, hinder the sensitizing action of them on the nociceptive nervous terminationes.  Taking into account the shown antiinflammatory activity of the freeze-dried aqueous  extract of <i>Ocimum tenuiflorum</i> L., it was the objective of this paper to  evaluate the analgesic properties of it in animal models. Doses of <i>O. tenuiflorum</i>  of 250, 500 and 1 000 mg/kg were evaluated in pain-induction models by chemical  and thermic ways. As a result of this study it was observed that the freeze-dried  aqueous extract of <i>O. tenuiflorum. </i>had an analgesic effect in the hot dish  model at a dose of 1 000 mg/kg, and in that of contortions by acetic acid in mice  and calorific focus in rats at doses of 250, 500 and 1 000 mg/kg. These results  indicated that the freeze-dried aqueous extract of <i>O. tenuiflorum</i> has an  antinociceptive effect, mainly on the peripheral pathway. </p>    <p><b><i>Key words</i></b>:  <i>Ocimum tenuiflorum </i>L., Lamiaceae, analgesic activity, contortions caused  by acetic acid, hot dish, hypnoanalgesia.    <br> </p><h4>Referencias bibliogr&aacute;ficas  </h4>    <!-- ref --><P> 1. Le Bars D, Gozariu M, Cadden S. Animal models of nociception. Pharmacol  Rev. 2001;53:597-652.    <br> </P>    <!-- ref --><P> 2. Feria M. F&aacute;rmacos analg&eacute;sicos-antit&eacute;rmicos  y antiinflamatorios no esteroideos. Antiartr&iacute;ticos. En: Fl&oacute;rez J,  Armijo JA, Mediavilla A, editores. Farmacolog&iacute;a Humana. 3ra ed. Barcelona:  Masson; 1998.p.355-88.    <br> </P>    <!-- ref --><P> 3. Gupta MP, editor. 270 Plantas Medicinales  Iberoamericanas. Santa Fe de Bogot&aacute;: CYTED-SECAB;1995.p. 99-324.    <br> </P>    <!-- ref --><P>  4. Laakso I, Sepp&auml;nen-Laakso T, Herrmann-Wolf B, K&uuml;hnel N, Knobloch  K. Biology and chemistry of active natural substances. Plant Med. 1990;56(6):  493-698.    <br> </P>    <!-- ref --><P> 5. Barzaga PG, N&uacute;&ntilde;ez Y, Carrillo C, Ch&aacute;vez  I, Gonz&aacute;lez ML, Gonz&aacute;lez R, et al. Evaluaci&oacute;n del efecto  antiinflamatorio del extracto acuoso liofilizado de <i>Ocimum tenuiflorum</i>  L. en ratas. Rev Cubana Farm. 2002;36 (Suplemento Especial No. 2): 74-7.    <br> </P>    <!-- ref --><P>  6. Koster R, Anderson M, De Beer EJ. Acetic acid for analgesic screening. Fed  Proc. 1959;18: 412.    <br> </P>    <!-- ref --><P> 7. Woolfe G, MacDonald LA. The evaluation of  the analgesic action of pethidine hydrochloride. J Pharmacol Exp Ther. 1944; 80:300-7.    <br>  </P>    <!-- ref --><P> 8. Janssen PAJ, Niemegeers CJY, Dony GH. The inhibitory effect of phentanyl  and other morphine-like analgesics on the warm water induced tail withdrawal reflex  in rats. Arzneim Forsch/Drug Res. 1963;13:502-7.    <br> </P>    <!-- ref --><P> 9. Grotto M, Sulman  FG. Modified receptacle method for animal analgesimetry. Arch Int Pharmacodyn.  1967;165:152-9.    <br> </P>    <!-- ref --><P> 10. Sigarroa A. Biometr&iacute;a y Dise&ntilde;o Experimental.  La Habana: Editorial Pueblo y Educaci&oacute;n;1985.p.430.    <br> </P>    <!-- ref --><P> 11. Safayhi  H, Rall B, Sailer E, Ammon H. Inhibition of boswellic acids of human leucocyte  elastase. J Pharmacol Experim Therap. 1997; 281(10): 460-3.    <br> </P>    <!-- ref --><P> 12. Najid  A, Simon A, Cook J, Chable-Rabinovitch H, Delage C, Chulia A, et al. Characterization  of ursolic acid as a lipoxygenase and cyclooxygenase inhibitor using macrophages,  platelets and differentiated HL60 leukemic cells. FEBS.1992;299(3): 213-17.    <br>  </P>    <!-- ref --><P> 13. Tsuruga T, Chun YT, Ebizuka Y, Sankawa U. Biologically active constituents  of <i>Melaleuca leucadendron</i>: inhibitors of induced histamine release from  rat mast cells. Chem Pharm Bull (Tokyo). 1991; 39(12):3276-8.    <br> </P>    <!-- ref --><P> 14.  Dewey WL. Pain control with opioid analgesics. In: Brody TM, Lamer J, Minnemann  KP, Neu HC, editors. Human Pharmacology. 2nd ed. St Louis: Mosby;1994.p. 373-88.<p>Recibido:  21 de julio de 2004. Aprobado: 31 de enero de 2005.    <br> Lic. <i>Pedro Barzaga  Fern&aacute;ndez</i>. Centro de Investigaci&oacute;n y Desarrollo de Medicamentos  (CIDEM).Calle 17 No. 6208 e/ 62 y 64. Playa, La Habana, Cuba. Telef: 202 2591  e-mail:<a href="mailto:cidem@infomed.sld.cu">cidem@infomed.sld.cu</a> Fax: (537)  33 5556</p>    <p></p>    <p></p>    <p></p>    <p></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><a href="#cargo"><span class="superscript">1</span></a></b><a href="#cargo">  Licenciado en Ciencias Farmac&eacute;uticas. Investigador Aspirante.     <br> <span class="superscript"><b>2</b></span>  T&eacute;cnico en Procesos Biol&oacute;gicos.     <br> <span class="superscript"><b>3</b></span>  M&aacute;ster en Ciencias en Tecnolog&iacute;a y Control de Medicamentos.     <br>  <span class="superscript"><b>4</b></span> T&eacute;cnico en Qu&iacute;mica.    <br>  <span class="superscript"><b>5</b></span> T&eacute;cnico en Qu&iacute;mica Industrial.</a><a name="autor"></a></p>      ]]></body><back>
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