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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Tetrapterys heterophylla (Griseb.) W.R. Anderson (Malpighiaceae) is one of the best natural sources of vitamin C. In this research, friedeline, lupeol, &#945;- and &#946;-amyrine, caryophyllene &#946;-oxide, b-sitosterol, b-sitosteryl-b-D-glucopyranoside, glucose, quercetin 3-O-b-D-glucopyranoside, quercetin 3-O-b-D-galactopyranoside, 5,7,2&#8217;,3&#8217;,4&#8217;-pentahydroxyflavonol 3-O-b-D-glucopyranoside, 5,7,3&#8217;,5&#8217;-tetrahydroxyflavonol 3-O-b-D-glucopyranoside, and 5,7,2&#8217;,3&#8217;,4&#8217;-pentahydroxyflavone, were isolated from the acetone extract of this plant. All these compounds were identified by comparison of their spectral data in EM, ¹H and 13C NMR with those reported in the literature.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="left">Centro de Investigaciones  Qu&iacute;micas<br />   Universidad Aut&oacute;noma del Estado  de Morelos, M&eacute;xico</p> <h2>Terpenos y flavonoides glicos&iacute;dicos de <em>Tetrapterys heterophylla </em> (Griseb.) W.R. Anderson (Malpighiaceae)  </h2>     <p><a href="#cargo">Dra. A.  Berenice Aguilar-Guadarrama<span class="superscript">1</span> y  Dra. Mar&iacute;a Yolanda R&iacute;os<span class="superscript">2</span></a><a name="autor" id="autor"></a> </p> <h4>Resumen</h4>     <p align="left">  <em>Tetrapterys heterophylla </em>(Griseb.) W.R. Anderson (Malpighiaceae)  es una especie que se caracteriza por un alto contenido de vitamina C en sus  frutos.  En su estudio fitoqu&iacute;mico,  se obtuvo como resultado el aislamiento y la  identificación de 13 metabolitos  secundarios: friedelina, lupeol, &#945;- y  &#946;-amirina,&nbsp;  ep&oacute;xido de cariofileno, &#946;-sitosterol,  &#946;-D-glucópiranosido de &#946;-sitosterilo, glucosa, 3-<em>O</em>-<span class="Estilo1">b</span>-D-glucopiranosilquercetina, 3-<em>O</em>-<span class="Estilo1">b</span>-D-galactopiranosilquercetina, 3-<em>O</em>-&#946;-D-glucopiranosil-5,7,2&rsquo;,3&rsquo;,4&rsquo;-pentahidroxiflavonol,  3-<em>O</em>-<span class="Estilo1">b</span>-D-glucopiranosil-5,7,3&rsquo;,5&rsquo;-tetrahidroxiflavonol,  y 5,7,2&rsquo;,3&rsquo;,4&rsquo;-pentahidroxiflavona.    </p>     <p><em>Palabras clave</em>: <em>Tetrapterys heterophylla</em>, Malpighiaceae,  terpenos, flavonoides glicos&iacute;dicos.</p>     <p align="justify">Las especies del g&eacute;nero <em>Tetrapterys </em>(sin&oacute;nimo<em> Malpighia</em>) son com&uacute;nmente denominadas &ldquo;acerola&rdquo;. Por lo general crecen en climas tropicales y su  importancia radica en que son una buena fuente natural de vitamina C. En  estudios previos realizados a diferentes especies de este g&eacute;nero se han identificado  compuestos vol&aacute;tiles<span class="superscript"> 1 </span>y un alto contenido de polifenoles y  antocianinas, las cuales fueron evaluadas por sus propiedades asociadas a diabetes mellitus y sus implicaciones,  principalmente sus propiedades antioxidantes.<span class="superscript">2</span> En M&eacute;xico han sido utilizadas  en la medicina tradicional para la cura de empacho, diarrea, disenter&iacute;a, dolor  de est&oacute;mago y para desinfectar heridas. Los frutos son comestibles y utilizados  para preparar jaleas.<span class="superscript">3   </span></p> <h4>M&eacute;todos    </h4> <h6>Material vegetal </h6>     <p>  Las partes a&eacute;reas de  <em>Tetrapterys heterophylla </em>(Griseb.)  W.R. Anderson fueron colectadas en Chilpancingo Guerrero, M&eacute;xico e identificadas por Biol. <em>Esther Le&oacute;n</em>. Un ejemplar (voucher No. 1121480) se encuentra  depositado en el Herbario Nacional del Instituto de Biolog&iacute;a de la UNAM, M&eacute;xico (MEXU).</p> <h6>Extracci&oacute;n</h6>     <p>  Las flores y hojas de<em> Tetrapterys heterophylla</em>&nbsp;  fueron deshidratadas a temperatura ambiente para obtener 4 kg de planta seca, los cuales fueron extra&iacute;dos con acetona por 3 d&iacute;as  (12 L), al t&eacute;rmino de los cuales el disolvente de maceraci&oacute;n fue recuperado  por destilaci&oacute;n a presi&oacute;n reducida con ayuda de un evaporador rotatorio.  </p> <h6>Aislamiento de los  metabolitos secundarios</h6>     <p align="justify">El extracto de acetona 200 g fue adsorbido  en la misma cantidad de s&iacute;lica gel y aplicado en una columna cromatogr&aacute;fica empacada  con 373 g de la misma s&iacute;lica gel (fase estacionaria), suspendida en <em>n</em>-hexano al 100 %, que se utiliz&oacute; como  disolvente inicial, se aument&oacute; la polaridad del mismo mediante adiciones  graduales de acetona (fase m&oacute;vil). Se obtuvo un total de 261 fracciones de 500  mL, las cuales se reunieron en 7 grupos, para su posterior purificaci&oacute;n de  acuerdo a la similitud que presentaron en su an&aacute;lisis de cromatograf&iacute;a en capa  delgada. Los compuestos fueron visualizados mediante el revelado con luz  ultravioleta y con (NH<sub><span class="subscript"><font size="2" face="Arial">4</font></span></sub>)<sub>4</sub>Ce(SO<sub><span class="subscript"><font size="2" face="Arial">4</font></span></sub>)<sub>4</sub>.H<sub><span class="subscript"><font size="2" face="Arial">2</font></span></sub>O  en H<sub><span class="subscript"><font size="2" face="Arial">2</font></span></sub>SO<sub><span class="subscript"><font size="2" face="Arial">4</font></span></sub> 2N.  </p> <h6>Identificaci&oacute;n de los  constituyentes qu&iacute;micos</h6>     <p align="justify">La determinaci&oacute;n de la estructura molecular de los compuestos  aislados de esta especie se efectu&oacute; mediante el an&aacute;lisis de los datos obtenidos  en RMH<sup>1</sup>H y  <sup>13</sup>C, &nbsp;se utilizaron equipos Varian XR-300A y Varian-Gemini 200A. Los espectros  fueron obtenidos en CDCl<sub>3</sub>, CD<sub>3</sub>OD y CD<sub>3</sub>SOCD<sub>3</sub>,  utilizando TMS como referencia interna. Adicionalmente, cada compuesto fue analizado mediante espectrometr&iacute;a de masas,  utilizando un equipo Hewlett-Packard  5985-B mediante la t&eacute;cnica de impacto electr&oacute;nico a 70 eV.</p> <h4>Resultados</h4>     <p align="justify">Despu&eacute;s de sucesivos procesos cromatogr&aacute;ficos efectuados a los 7  grupos de fracciones (G1-G7) obtenidos del proceso cromatogr&aacute;fico inicial, se  aislaron los siguientes metabolitos secundarios: G1 [friedelina<span class="superscript">4</span> (<em>n</em>-hexano  100%, cristales blancos, 18,2 mg) y ep&oacute;xido de cariofileno<span class="superscript">5</span> (<em>n</em>-hexano  100 %, aceite, 14,6 mg)]; G2 [lupeol<span class="superscript">6</span> (<em>n</em>-hexano:acetato de  etilo 9:1, cristales blancos, 15,7mg),  &#945;- y &#946;-amirina<span class="superscript">7-9</span>  (<em>n</em>-hexano:acetato de etilo 9:1, polvo blanco, 25,8 mg),]; G3 [&#946;-sitosterol<span class="superscript">10</span>  (<em>n</em>-hexano:acetato de etilo 9:1, cristales blancos, 36,3 mg)]; G4 [&#946;-D-glucopiranósido  de <span class="Estilo1">b</span>-sitosterol<span class="superscript">11</span> (<em>n</em>-hexano:acetona 1:1, polvo blanco, 73,2 mg), G5 [3-<em>O</em>-<span class="Estilo1">b</span>-D-glucopiranosilquercetina<span class="superscript">12</span> (<em>n</em>-hexano:acetona 1:1, cristales amarillos, 50,4 mg) y 3-<em>O</em>-<span class="Estilo1">b</span>-D-galactopiranosidoquercetina<span class="superscript">13</span> (<em>n</em>-hexano-acetona 4:6, cristales  amarillos, 36,8 mg)]; G6 [glucosa<span class="superscript">14</span> (cloroformo-etanol 7:3, cristales  amarillos, &nbsp;46,3 mg) y 3-<em>O</em>-&#946;-D-glucopiranosil-5,7,2&rsquo;,3&rsquo;,4&rsquo;-pentahidroxiflavonol<span class="superscript">15</span> (cloroformo-etanol 7:3, cristales amarillos, 25,2 mg)]; y G7 [3-<em>O</em>-<span class="Estilo1">b</span>-D-glucopiranosil-5,7,3&rsquo;,5&rsquo;-tetrahidroxiflavonol<span class="superscript">16</span> (cloroformo-etanol 7:3, cristales amarillos, 15,7 mg), y 5,7,2&rsquo;,3&rsquo;,4&rsquo;-pentahidroxiflavone<span class="superscript">17</span> (cloroformo-etanol 7:3, cristales amarillos, 17,2 mg)]. </p> <h4>Discusi&oacute;n  </h4>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Este es el primer estudio  fitoqu&iacute;mico realizado a la planta medicinal <em>Tetrapterys </em><em>heterophylla</em>. Como resultado del mismo, se aislaron e identificaron 13 productos  naturales cuya estructura se encuentra reportada previamente en la literatura.  De ellos 4 son triterpenos, 1 es sesquiterpeno, 2 son esteroles, 3 son flavonas  (2 glicos&iacute;dicas), 2 son flavonoles glucos&iacute;dicos y uno es un az&uacute;car. De acuerdo  con los antecedentes descritos en la bibliograf&iacute;a, los constituyentes qu&iacute;micos  mayoritarios presentes en este g&eacute;nero son los flavonoides, y los resultados  obtenidos del presente estudio demuestran que <em>T. </em><em>heterophylla</em> no es la excepci&oacute;n, ya que 5 de los compuestos aislados pertenecen a esta  categor&iacute;a de productos naturales. Los flavonoides son metabolitos secundarios importantes  debido a sus actividades biol&oacute;gicas, particularmente en relaci&oacute;n con sus  propiedades antioxidantes.<span class="superscript">2</span></p> <h6>&nbsp;Agradecimientos  </h6>     <p>A <em>Enrique Salazar Leyva</em> por su  asistencia t&eacute;cnica. Este trabajo fue financiado por el CONACyT (Proyecto No. 48358-Q).<strong></strong></p> <h4>Summary </h4> <h6>Terpenes and glycoside flavonoids from <em>Tetrapterys&nbsp; heterophylla </em>&nbsp;(Malpighiaceae) </h6>     <p align="left"><em>Tetrapterys&nbsp; heterophylla </em>(Griseb.) W.R. Anderson (Malpighiaceae) is one of the best natural sources of vitamin C. In this  research, friedeline,  lupeol,  &#945;- and &#946;-amyrine, caryophyllene &#946;-oxide, <span class="Estilo1">b</span>-sitosterol, <span class="Estilo1">b</span>-sitosteryl-<span class="Estilo1">b</span>-D-glucopyranoside, glucose, quercetin 3-<em>O</em>-<span class="Estilo1">b</span>-D-glucopyranoside, quercetin 3-<em>O</em>-<span class="Estilo1">b</span>-D-galactopyranoside,  5,7,2&rsquo;,3&rsquo;,4&rsquo;-pentahydroxyflavonol 3-<em>O</em>-<span class="Estilo1">b</span>-D-glucopyranoside,  5,7,3&rsquo;,5&rsquo;-tetrahydroxyflavonol 3-<em>O</em>-<span class="Estilo1">b</span>-D-glucopyranoside, and 5,7,2&rsquo;,3&rsquo;,4&rsquo;-pentahydroxyflavone, were isolated from the acetone  extract of this  plant. All these compounds were identified by comparison of their  spectral data in EM,  <sup>1</sup>H and <sup>13</sup>C NMR with those reported in the  literature. </p>     <p><em>Key  words</em>: <em>Tetrapterys heterophylla</em>, Malpighiaceae, terpenes,  flavonoids-glucosides.</p> <h4>Referencias &nbsp;bibliogr&aacute;ficas</h4>     <!-- ref --><p> 1. Pino JA, Marbot R. Volatile flavor constituents of acerola (<em>Malpighia    emarginata</em> DC.) fruit. J. Agric. Food Chem.2001;49:5880-2.<!-- ref --><p> 2. Hanamura T, Hagiwara T, Kawagishi H. Structural and functional characterization    of polyphenols isolated from acerola (<em>Malpighya emarginata</em> DC.) fruit.    Biosci. Biotechnol. Biochem. 2005;69(2):280-6.<!-- ref --><p> 3. Gonz&aacute;lez M. Especies vegetales de importancia econ&oacute;mica en    M&eacute;xico. M&eacute;xico: Ed. Porrua; 1984. <!-- ref --><p> 4. Patra A, Chaudhuri SK, Acharyya AK. Applications of two-dimensional NMR    in spectral assignments in some friedelanes and secofriedelanes. Magn Reson    Chem. 1990;28(1): 85-9. <!-- ref --><p> 5. Bohlman F, Zdero Ch. Neue Furanoeremophylene und andere sesquiterpene aus    vertrtern der gattung <em>Euryops</em>. Phytochemistry 1978;17(7):1135-53.<!-- ref --><p> 6. Tomasaka H, Koshino H, Tajika T, Omata S. Lupeol esters from the twig bark    of Japanese pear (<em>Pyrus serotina</em> Rehd.) cv shinko. Biosci Biotechnol    Biochem 2001;1198-1201.<!-- ref --><p> 7. Heupel RC. Varietal similarities and differences in polycyclic isopentenoid    composition of sorghum. Phytochemistry. 1985;24(12):2929-37.<!-- ref --><p> 8. Tanaka R, Matsunaga S. Loliolide and olean-12-en-3b, 9a, 11a-triol from    <em>Euphorbia supina</em>. Phytochemistry. 1989; 28(6):1699-1702.<!-- ref --><p> 9. Ngounou FN, Lontsi D, Sondegam BL. A pentacyclic triterpene diacid from    <em>Myrianthus arboreous</em>. Phytochemistry. 1988; 27(7): 2287-9.<!-- ref --><p> 10. Aldrich Library of 13C and 1H FT NMR Spectra. Milwaukee WI, USA<strong>,    </strong>1992, 3, 569A. <strong></strong><!-- ref --><p> 11. Aldrich Library of 13C and 1H FT NMR Spectra. Milwaukee WI, USA<strong>,    </strong>1992, 3, 569B. <!-- ref --><p> 12. Markham KR, Ternai B, Stanley R, Geiger H, Mabry TJ. Carbon-13 NMR Studies    of flavonoid-III. Naturally occurring flavonoid glycosides and their acylated    derivatives. Tetrahedron. 1978;34:1389-97.<!-- ref --><p> 13. Yasukawa K, Takido M. A flavonol glycoside from <em>Lysimachia mauritiana</em>.    Phytochemistry. 1987;26(4):1224-6.<!-- ref --><p> 14. Agraval PK. NMR Spectroscopy in the structural elucidation of oligosaccharides    and glicosides. Phytochemistry 1992; 31(10):3307-30. <p> 15. D&rsquo;Adostino M, De Feo V, Pizza C, De Simone F. Isolation of 3,5,7,2',3',4'-hexahydroxyflavone-3-<em>O</em>-b-D-glucopyranoside    from <em>Eupatorium sternbergianum</em>. Fitoterapia. 1994;65(5): 472-3.</p>     <!-- ref --><p> 16. Ali M, Ravinder E, Ramachandram R. A new flavonoid from the aerial parts    of <em>Tridax procumbens</em>. Fitoterapia. 2001;72(3): 313-5.<!-- ref --><p> 17. Cotelle N, Bernier J, Catteau J, Pommery J, Wallet J, Gaydou E. Antioxidant    properties of hydroxy-flavones. Free Radical Biology &amp; Medicine. 1996;20(1):35-43.<p>Recibido: 20 de diciembre de 2006. Aprobado: 17 de junio de 2007.<br />   Dra. <em>A. Berenice  Aguilar-Guadarrama</em>. Avenida Universidad 1001, Chamilpa 62209, Cuernavaca,  Morelos, M&eacute;xico.    Tel&eacute;fono: +(777)  3297000 ext. 6024, Fax: +(777) 3297997. E-mail: <a href="mailto:baguilar@uaem.mx">baguilar@uaem.mx</a></p>     <p><span class="superscript"><a href="#autor">1</a></span><a href="#autor">Doctora en Ciencias (Qu&iacute;mica).<br />   2Doctora en Ciencias (Qu&iacute;mica Org&aacute;nica). </a><a name="cargo" id="cargo"></a></p>      ]]></body><back>
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