ARTÍCULO ORIGINAL
Composición química volátil de Satureja brownei (Sw.) Briq. colombiana y determinación de su actividad antioxidante
Volatile chemical composition of the Colombian Satureja brownei (Sw.) Briq. and determination of its antioxidant activity
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Beatriz E. JaramilloI; Elena StashenkoII; Jairo René MartínezIII
IDoctora en Química. Campus de Zaragocilla. Programa de Química, Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Cartagena. Cartagena, Colombia.
IIDoctora en Química. CENIVAM. Escuela de Química, Universidad Industrial de Santander. Bucaramanga, Colombia.
IIIDoctor en Química. CENIVAM. Escuela de Química, Universidad Industrial de Santander. Bucaramanga, Colombia.
INTRODUCCIÓN: las plantas aromáticas son una fuente valiosa de aromatizantes y (o) principios activos en preparados farmacológicos, cosméticos, aditivos en alimentos, entre otros. Satureja brownei (Sw.) Briq., (Lamiaceae) se ha usado en la medicina popular como antigripal, digestiva y carminativa. Especies de Satureja de varios países han mostrado composición variable de su aceite esencial, particularmente, en sus hojas. Así, por la búsqueda de nuevos sabores y efectivos agentes antioxidantes se determinó la composición química volátil de S. brownei colombiana y su actividad antioxidante.
OBJETIVO: establecer la composición química volátil del aceite esencial, extractos y fracciones volátiles de hojas y tallos frescos S. brownei (Sw.) Briq., mediante diferentes técnicas de extracción y evaluar la actividad antioxidante de su aceite esencial.
MÉTODOS: se emplearon técnicas destilativas, extractivas y headspace, para aislar metabolitos secundarios volátiles de hojas y tallos frescos de S. brownei. La actividad antioxidante in vitro del aceite esencial obtenido fue evaluada al determinar hexanal, el principal compuesto carbonílico, liberado por el ácido linoleico sujeto a peroxidación y por cuantificación de este ácido como su metiléster; con el uso de cromatografía de gases acoplada a detector de ionización en llama y de captura de electrones.
RESULTADOS: el principal compuesto encontrado en todos los extractos de S. brownei, fue la pulegona (54-71 %). El aceite esencial presentó actividad antioxidante, pero no más eficiente que la vitamina E y el butilhidroxianisol, ambos ampliamente utilizados como aditivos.
CONCLUSIONES: la caracterización completa de los metabolitos secundarios volátiles de una planta requiere el uso de varias técnicas de extracción. La actividad antioxidante in vitro de S. brownei, hace de esta planta aromática una fuente interesante de antioxidantes naturales y justifica una mayor investigación en el aislamiento de las fracciones y(o) los compuestos responsables de ella.
Palabras clave: Satureja brownei (Sw.) Briq., compuestos volátiles, cromatografía de gases, métodos de extracción, actividad antioxidante.
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ABSTRACT
INTRODUCTION: the aromatic plants are a valuable source of flavoring and/or active principles in pharmacological preparations, cosmetic, food additives, etc. Satureja brownie (Sw.) Brig (Lamiaceae) has been used in the folk medicine as flu remedie, digestive and carminative. Species of Satureja from several countries have shown a variable composition of its essential oil, particularly, in their leaves. Thus, in search of new flavours and antioxidant and effective agents we determined the volatile chemical composition of Colombian S. brownie and its antioxidant activity.
OBJECTIVE: to establish the volatile chemical composition of essential oil, extracts, and volatile fractions of fresh leaves and stems of S. brownie (Sw.) Brig, by different extraction techniques and to assess the antioxidant activity of its essential oil.
METHODS: we used distillation, extraction and headspace techniques to isolate the volatile secondary metabolites from leaves and stems of S. brownie. The in vitro antioxidant activity of essential oil obtained was assessed by determination of hexanal, the main carbonyl compound, released by linoleic acid subject to peroxidation and by quantified method of this acid as its methyl ester using gas chromatography coupled to in flame ionization detector and of electron capture.
RESULTS: the main compound found in all extracts off S. brownie was the pulegona (54-71 %). The essential oil had antioxidant activity but not more efficient than the vitamin E and the butyl-hydroxianisol, both widely used as additives.
CONCLUSIONS: total characterization of volatile secondary metabolites of a plant requires the use of some extraction techniques. The in vitro antioxidant activity of S. brownie becomes interesting source of natural antioxidants and justifies a further research on fractions isolation and(or) compounds accounting for it.
Key words: Satureja brownie (Sw.) Brig, volatile compounds, gas chromatography, extraction methods, antioxidant activity.
INTRODUCCIÓN
Satureja brownei Briq., denominada también Thymus brownei Sw., Clinopodium brownei (Sw.) Kuntze, Micromeria brownei (Sw.) Benth, es una planta autóctona que pertenece a la familia Lamiaceae. Se distribuye desde el sur de los EE. UU. hasta Brasil y Paraguay. Se conoce popularmente como "poleo" y "ajedrea".1,2 Todas las especies de esta familia contienen aceite esencial, en particular, en sus hojas. Se usa como condimento, sobre todo de carnes; en la medicina popular se utiliza como antigripal, carminativo, efecto aperitivo, digestivo, colagogo, espasmolítico, expectorante, diurético, antiséptico, cicatrizante y repelente de insectos. Es una hierba semirrastrera, todas las especies de esta familia, en particular, sus hojas, contienen aceite esencial.1,2
Por ser de origen natural, la composición química de las esencias varía mucho y depende de diferentes factores como el método y la duración de la extracción, la temperatura de este proceso, el estado y la procedencia de la planta, y las condiciones geobotánicas y agrícolas de su cultivo, entre otros.3-5 El valor económico y la aplicación industrial de las esencias están directamente relacionados con su composición química; la que, a su vez, determina todas las propiedades macroscópicas e.g. físico-químicas (olor, color, etc.) y la actividad biológica.6,7 Es por ello, que en esta investigación se emplearon y compararon varias técnicas destilativas y extractivas, como la hidrodestilación (HD), hidrodestilación asistida por la radiación de microondas (MWHD), destilación con vapor-extracción simultánea con solvente (SDE) y extracción con fluido supercrítico (SFE); además, para analizar la composición per se de la fragancia de las plantas se emplearon técnicas de headspace, dinámico (P&T), estático (S-HS) y la microextracción en fase sólida (SPME) en modo headspace.
Muchos aceites esenciales se utilizan en medicina tradicional, aromaterapia, industrias farmacéutica y cosmética no solo por sus fragancias, también por la actividad biológica (bactericida, fungicida, antiparasitaria, etc.) que pueden presentar, entre las cuales se destaca la actividad antioxidante.7-9 La última fue el objeto del presente estudio, se usó un sistema lipídico modelo, para medir el grado de protección, que proporcionan los componentes del aceite esencial de S. brownei contra la oxidación del ácido linoleico, acelerada por Fe2+ en presencia de O2.
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MÉTODOS
Material vegetal: el material vegetal de S. brownei (Sw.) Briq., fue recolectado en el área rural de la ciudad de Bucaramanga, departamento de Santander (Colombia). Se usaron solamente hojas y tallos frescos en las extracciones.
La identificación taxonómica se llevó a cabo en el Instituto de Ciencias Naturales, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia (Bogotá). Los pliegos testigos de cada planta quedaron depositados como muestra permanente en el Herbario Nacional Colombiano (COL 48751) y fue clasificada por el doctor J. L. Fernández.
Extracciones
Hidrodestilación (HD): se realizó con un equipo de destilación tipo Clevenger, según los procedimientos descritos.10,11 Hidrodestilación asistida por radiación de microondas (MWHD): se realizó las misma técnica descrita para HD, pero, en vez de la manta de calentamiento, se usó un horno microondas.12-14
Destilación con vapor- extracción simultánea con solvente (SDE): se empleó un equipo a microescala para solventes de alta densidad.15 Se usaron 10 g del material vegetal, finamente picado; la duración de la extracción fue de 2 h, así como lo describen Stashenko y otros.12-18 ]]>
Extracción con fluido supercrítico (SFE): se empleó un extractor Soxhlet de alta presión (J&W Scientific, Folsom, CA, EE. UU.) y se aplicó la metodología descrita por Stashenko y otros.18,19Para cada una de las extracciones se inyectó 1 µL de extracto al cromatógrafo gaseoso (GC).
Obtención de fracciones volátiles
Purga de espacio de cabeza con N2 y trampa en solvente simultánea (P&T): se realizó en un equipo de extracción headspace dinámico similar al diseñado por Umano y Shibamoto.18
El procedimiento de extracción fue realizado de acuerdo con la metodología descrita por Stashenko y otros.20 1 µL del extracto final se inyectó al GC.
Headspace estático (S-HS): se utilizóun equipo headspace sampler HP 7694 (Hewlett-Packard, Palo Alto, CA, EE. UU.). Se emplearon los parámetros operacionales siguientes: temperatura del termostato 40 ºC, tiempo de equilibrio de 15 min, temperaturas del loop y de la línea de transferencia se mantuvieron a 100 y 110 ºC, respectivamente.
Se usaron 5 g de planta picada, colocada en un frasco de 20 mL; 1 mL de la fase vapor se inyectó a la columna cromatográfica.10-12 ]]>
Microextracción en fase sólida de la fase vapor (headspace) (HS-SPME): se realizó mediante una fibra de polidimetilsiloxano (PDMS, 100 mm de espesor). Se llevó a cabo la extracción de volátiles a 22 ± 1 ºC de la fase vapor de la planta picada (10 g), colocada en un frasco de 50 mL. El tiempo de exposición de la fibra fue de 60 min (la selección de este parámetro se basó en experimentos preliminares). Las sustancias extraídas fueron térmicamente desorbidas a 250 ºC, durante 5 min, en un puerto de inyección del GC, mediante un liner especial para SPME, de volumen reducido.10-12
Determinación de la actividad antioxidante in vitro
Descripción general del sistema modelo lipídico: la oxidación de la emulsión del ácido linoleico fue inducida por iones Fe2+ en presencia de oxígeno, según la metodología descrita por Tamura y otros.21 El hexanal, producto final principal de la degradación oxidativa del ácido linoleico y marcador del avance del proceso de peroxidación,21,22 fue medido por 2 métodos independientes:
1. En solución, después de su derivación con PFPH (pentafluorfenilhidracina) y extracción líquido-líquido de la hidrazona, C6-PFPH, con hexano, según la metodología descrita por Stashenko y otros.13,14
2. En fase vapor, mediante la fibra SPME (PDMS/DVB, 65 µm), saturada previamente con PFPH a temperatura ambiente durante 40 min; y la extracción-derivación directa del hexanal sobre la fibra,23 así como se describe en los trabajos de Stashenko y otros.24,25 Todas las mediciones se hicieron por triplicado; se determinaron parámetros estadísticos, como el promedio (X) y la desviación estándar (DE) de los valores obtenidos.
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Análisis cromatográfico: el análisis cromatográfico de las muestras se realizó en un GC Hewlett-Packard (HP) 5890A Series II, equipado con un puerto de inyección split/splitless (250 ºC, relación de split 1:30) y un detector de ionización en llama (FID) (250 ºC). Los espectros de masas fueron obtenidos por impacto de electrones con energía de 70 eV, en un cromatógrafo de gases Agilent Technologies 6890 Plus acoplado a un detector selectivo de masas Agilent Technologies MSD 5973, equipado con un puerto de inyección split/splitless (250 ºC, relación split de 1:30), Las condiciones cromatográficas usadas se realizaron de acuerdo con la metodología descrita por Stashenko y otros.13,14 Para la identificación de los compuestos se usaron algunos terpenos estándar, analizados bajo las mismas condiciones instrumentales que las muestras, espectros de masas e índices de retención de Kovats de componentes, que se compararon con los reportados en la literatura.26-28La determinación del hexanal, en forma de su derivado hidrazónico, C6-PFPH, se llevó a cabo en un cromatográfo de gases HP 5890 A Series II, equipado con un detector de captura de electrones (ECD), operado a 280 ºC, con una mezcla metano:argón (10 %) como gas auxiliar, a la velocidad lineal de 60 mL min-1; con una columna capilar HP-5 de 30 m x 0,25 mm, DI x 0,25 µm, df, con fase estacionaria de 5 %-fenil-poli(metilsiloxano) y un puerto de inyección split/splitless (250 ºC, relación split 1:10). Se usó helio (99,995 %, Aga-Fano S.A.), con una presión de entrada en la cabeza de la columna de 200 kPa y una velocidad lineal de 26 cm.s-1.
RESULTADOS
En la figura se muestra un perfil cromatográfico de metabolitos secundarios volátiles y semivolátiles del aceite esencial de S. brownei, obtenido por HD.
Como se puede apreciar en la tabla 1, se encontraron 23, 26, 25 y 33 metabolitos secundarios en los aceites esenciales y extractos de S. brownei en concentraciones superiores a 0,1 % aislados por las técnicas HD, MWHD, SDE y SFE, respectivamente.
| Pico No.a | Compuesto | Tipo | Ikb | Cantidad relativac, % | |||||||
| HP-5 | Innowax | HD | MWHD | ]]> SDE | SFE | P&T | S-HS | HS-SPME | |||
| 1 | a-tuyeno | M | 928 | 1 032 | ]]> 0,10 ± 0,04 | 0,10 ± 0,02 | 0,09 ± 0,01 | tr | tr | tr | tr |
| 2 | a-pineno* | M | ]]> 937 | 1 040 | 0,57 ± 0,04 | 0,21 ± 0,01 | 0,72 ± 0,01 | 0,8 ± 0,2 | 3,1 ± 0,4 | 8,7 ± 0,6 | 0,9 ± 0,1 |
| 3 | ]]> Sabineno* | M | 976 | 1 128 | 0,3 ± 0,1 | tr | tr | 0,10 ± 0,01 | tr | 1,10 ± 0,01 | ]]> tr |
| 4 | trans-p-mentano | M | 978 | 1 038 | tr | tr | tr | 0,10 ± 0,02 | ]]> tr | tr | tr |
| 5 | b-pineno* | M | 982 | 1 123 | 0,90 ± 0,01 | 0,66 ± 0,02 | ]]> 0,70 ± 0,01 | 1,1 ± 0,1 | 3,2 ± 0,7 | 8,4 ± 0,2 | 2 ± 1 |
| 6 | 3-octanona | HO | 985 | 1 310 | ]]> 0,60 ± 0,01 | 0,50 ± 0,01 | 0,60 ± 0,01 | 0,7 ± 0,2 | 3,1 ± 0,1 | 2,7 ± 0,4 | tr |
| 7 | b-mirceno* | M | ]]> 990 | 1 154 | 0,50 ± 0,04 | 0,20 ± 0,01 | 0,14 ± 0,01 | 0,4 ± 0,1 | 2,1 ± 0,2 | 0,78 ± 0,02 | tr |
| 8 | ]]> 3-octanol | HO | 995 | 1 515 | 0,10 ± 0,01 | 0,74 ± 0,03 | 0,1 ± 0,1 | 0,20 ± 0,05 | tr | tr | ]]> tr |
| 9 | p-menta-1(7), | M | 1 007 | 1 186 | tr | 0,10 ± 0,01 | tr | ]]> 0,1 ± 0,1 | tr | tr | tr |
| 10 | Limoneno* | M | 1 032 | 1 210 | 0,8 ± 0,1 | ]]> 0,50 ± 0,02 | 0,50 ± 0,01 | 0,50 ± 0,01 | 2,5 ± 0,4 | 2,7 ± 0,5 | 1,0 ± 0,3 |
| 11 | b-felandreno | M | 1 035 | ]]> 1 218 | 0,11 ± 0,02 | tr | 0,10 ± 0,04 | 0,10 ± 0,01 | tr | tr | tr |
| 12 | 1,8-cineol* | ]]> MO | 1 037 | 1 230 | 0,10 ± 0,05 | tr | 0,10 ± 0,05 | 0,10 ± 0,01 | tr | 0,7 ± 0,2 | 0,30 ± 0,01 |
| ]]> 13 | Linalool* | MO | 1 099 | 1 504 | 0,10 ± 0,01 | 0,20 ± 0,02 | 0,4 ± 0,1 | 0,40 ± 0,01 | tr | ]]> 0,4 ± 0,1 | 0,3 ± 0,1 |
| 14 | Mentona | MO | 1 164 | 1 470 | 16,2 ± 0,3 | 17,7 ± 0,5 | 31,5 ± 0,1 | ]]> 27,1 ± 0,9 | 36 ± 4 | 26 ± 3 | 54 ± 3 |
| 15 | Isomentona | MO | 1 171 | 1 465 | 2,5 ± 0,3 | ]]> 5,1 ± 0,2 | 3,80 ± 0,03 | 2,5 ± 0,1 | 3,4 ± 0,5 | 15 ± 2 | 25 ± 2 |
| 16 | Isomentol | MO | 1 181 | ]]> 1 662 | 1,6 ± 0,5 | 2,1 ± 0,2 | 2,10 ± 0,02 | 1,8 ± 0,2 | 2,7 ± 0,2 | 7 ± 1 | 2,5 ± 0,1 |
| 17 | a-terpineol* | ]]> MO | 1 186 | 1 657 | 0,99 ± 0,02 | 1,3 ± 0,2 | 1,1 ± 0,1 | 1,3 ± 0,5 | tr | tr | tr |
| ]]> 18 | Piperitol | MO | 1 201 | 1 660 | 0,1 ± 0,1 | 0,10 ± 0,06 | 0,20 ± 0,02 | 0,3 ± 0,1 | tr | ]]> tr | tr |
| 19 | Pulegona* | MO | 1 235 | 1 663 | 71 ± 2 | 65,5 ± 0,9 | 53,7 ± 0,6 | ]]> 55,5 ± 0,5 | 42 ± 5 | 26 ± 3 | 7 ± 4 |
| 20 | Piperitona | MO | 1 261 | 1 740 | 0,12 ± 0,01 | ]]> 0,30 ± 0,01 | 0,20 ± 0,01 | 0,4 ± 0,1 | tr | tr | tr |
| 21 | Timol | MO | 1 289 | ]]> 2 105 | 0,11 ± 0,01 | 0,35 ± 0,1 | 0,64 ± 0,01 | 0,2 ± 0,1 | tr | tr | tr |
| 22 | p-menten-9-ol* | ]]> MO | 1 292 | 1 736 | tr | tr | 0,10 ± 0,04 | 0,20 ± 0,01 | tr | tr | tr |
| ]]> 23 | Acetato | MO | 1 294 | 1 543 | tr | 0,22 ± 0,02 | 0,22 ± 0,01 | 0,2 ± 0,1 | ]]> tr | tr | tr |
| 24 | Carvacrol | MO | 1 298 | 2 161 | 0,09 ± 0,03 | tr | ]]> 0,20 ± 0,01 | 0,3 ± 0,1 | tr | tr | tr |
| 25 | Acetato de terpinilo | MO | 1 346 | 1 689 | ]]> tr | tr | 0,10 ± 0,02 | 0,2 ± 0,1 | tr | tr | 1,5 ± 0,2 |
| 26 | trans-b- | ]]> S | 1 402 | 1 612 | 2,10 ± 0,05 | 2,20 ± 0,04 | 1,7 ± 0,1 | 2,7 ± 0,1 | 2,0 ± 0,9 | 0,91 ± 0,02 | 3,3 ± 0,9 |
| ]]> 27 | Geranil | MO | 1 447 | 1 655 | 0,52 ± 0,01 | 0,58 ± 0,01 | 0,7 ± 0,2 | 0,5 ± 0,1 | ]]> 0,21 ± 0,06 | tr | 0,6 ± 0,1 |
| 28 | a-humuleno | S | 1 450 | 1 669 | tr | 0,10 ± 0,03 | ]]> tr | 0,3 ± 0,1 | tr | tr | 0,4 ± 0,1 |
| 29 | allo-aroma-dendreno | S | 1 469 | 1 680 | ]]> tr | 0,10 ± 0,01 | tr | 0,10 ± 0,03 | tr | tr | 0,46 ± 0,02 |
| 30 | b-selineno | S | ]]> 1 481 | 1 729 | 0,26 ± 0,05 | 0,72 ± 0,03 | 0,30 ± 0,01 | 0,4 ± 0,1 | tr | tr | 0,55 ± 0,05 |
| 31 | ]]> g-cadineno | S | 1 512 | 1 770 | tr | 0,12 ± 0,01 | tr | 0,13 ± 0,03 | tr | tr | ]]> tr |
| 32 | Óxido de cariofileno | SO | 1 598 | 2 004 | tr | 0,3 ± 0,1 | tr | 0,50 ± 0,02 | ]]> tr | tr | tr |
| 33 | NI | - | - | tr | tr | tr | ]]> 0,10 ± 0,01 | tr | tr | tr | |
| 34 | NI | - | - | tr | 0,1 ± 0,1 | ]]> tr | 0,7 ± 0,5 | tr | tr | tr | |
| HO: hidrocarburos oxigenados | 0,70 ± 0,02 | 1,2 ± 0,1 | 0,7 ± 0,2 | 0,9 ± 0,2 | ]]> 3,1 ± 0,2 | 2,7 ± 0,4 | - | ||||
| M: monoterpenos | 3,3 ± 0,5 | 2,6 ± 0,1 | 1,40 ± 0,02 | 2,8 ± 0,4 | 10,8 ± 0,1 | 21,7 ± 0,7 | ]]> 3,2 ± 1,1 | ||||
| MT: monoterpenonas | 90 ± 2 | 89 ± 1 | 89,2 ± 0,3 | 86 ± 2 | 81 ± 2 | 67 ± 3 | 87 ± 2 | ||||
| MO: monoterpenos oxigenados | ]]> 3,60 ± 0,02 | 4,3 ± 0,9 | 6,5 ± 0,2 | 5 ± 1 | 2,9 ± 0,3 | 8 ± 2 | 5,2 ± 0,4 | ||||
| S: sesquiterpenos | 2,3 ± 0,05 | 3,20 ± 0,04 | ]]> 2,0 ± 0,1 | 4 ± 1 | 2,0 ± 0,1 | 0,90 ± 0,02 | 5 ± 1 | ||||
| SO: sesquiterpenos oxigenados | - | 0,4 ± 0,2 | - | 0,50 ± 0,02 | ]]> - | - | - | ||||
HD: hidrodestilación; MWHD: hidrodestilación asistida por la radiación de microondas; SDE: destilación con vapor-extracción simultánea con solvente; SFE: extracción con fluido supercrítico; P&T: técnicas de headspace dinámico; S-HS: técnicas de headspace estático; SPME: microextracción en fase sólida; a: número del pico en la figura 1; b: índice de Kovats determinados experimentalmente en las columnas HP-5 e Innowax; c: porcentajes calculados sobre la base de las áreas de los picos, promedio de 3 extracciones; *: identificado por espectrometría de masas usando compuesto estándar; NI: no identificado; tr: trazas.
Los aceites esenciales obtenidos por HD y MWHD, contenían 23 y 26 compuestos; con un rendimiento de 0,35 y 0,27 %, respectivamente; la gran ventaja que presentó la extracción por MWHD resultó en un menor tiempo de destilación (30 min), en comparación con el requerido por HD (2 h), para obtener la misma cantidad de esencia.
El principal compuesto encontrado en todos los extractos de S. brownei fue la pulegona (54-71 %), identificada por comparación de su espectro de masas con el del compuesto patrón. Otros compuestos encontrados en alta proporción fueron mentona (16 -32 %), isomentona (3-5 %), isomentol (ca. 2 %) y trans-b-cariofileno (2-3 %).
Los extractos de HD, MWHD, SDE y SFE fueron constituidos por hidrocarburos oxigenados (0,7-1,3 %), monoterpenos, C10H16, (2-4 %); monoterpenos oxigenados (91-95 %), sesquiterpenos, C15H24 (2-4 %) y sesquiterpenos oxigenados (< 0,5 %).
En la tabla 1 se muestra también la composición química de las fracciones volátiles aisladas de las hojas y tallos frescos de S. brownei (Sw.) Briq., mediante las técnicas de headspace (P&T, S-HS, HS-SPME). En ellas, 11, 13 y 15 metabolitos secundarios volátiles fueron detectados en concentraciones superiores a 0,1 %. Los compuestos fueron a-pineno (0,9-9 %), sabineno (<1 %), b-pineno (1-8 %), limoneno (1-2 %), mentona (26-54 %) isomentona (3-25 %), pulegona (7-42 %) y trans-b-cariofileno (0,9-3 %). ]]>
En la tabla 1 se aprecia que las monoterpenonas resultaron los compuestos predominantes en todos los extractos.
DISCUSIÓN
Varias investigaciones han mostrado la variabilidad composicional del aceite esencial de esta especie. Rojas y otros29 analizaron el aceite esencial de S. brownei de Venezuela, reportaron un rendimiento de 0,12 % del aceite esencial y como compuestos mayoritarios la pulegona (64,3 %), mentona (20,2 %), isomentona (3,4 %) e isopulegona (2,4 %). Pino y otros30 estudiaron el aceite esencial de S. brownei cubana, en este, la pulegona (54,6 %) y la mentona (32,9 %) fueron los compuestos mayoritarios obtenidos. El principal compuesto encontrado en el aceite esencial de S. parvifolia, procedente de Argentina31 fue el óxido de piperitona (69,8 %), los de S. boliviana, también de Argentina31, fueron g-terpineno (15,4 %), trans-b-cariofileno (10,2 %), germacreno D (8,9 %) y biciclogermacreno (8,3 %). Mientras que para otras especies peruanas como la S. boliviana y S. brevicalix, los compuestos mayoritarios fueron la mentona (24 y 36 %) e isomentona (30 y 25 %), respectivamente.32
Existen diferentes mecanismos por los que se da la actividad antioxidante: atrapamiento de radicales (scavenging), la interrupción de la reacción en cadena de la peroxidación, la formación de quelatos de iones metálicos, aceleradores de la reacción, entre otros.12,33-37
La acción protectora del S. brownei se puede explicar sobre la base en la naturaleza química de los componentes presentes en él. Como ya se mencionó, generalmente, la protección de un sustrato contra el deterioro oxidativo, se atribuye a la presencia de compuestos fenólicos. Sin embargo, teniendo en cuenta que en este caso, fenoles como el eugenol y el timol se encuentran en cantidades muy bajas, y que los compuestos mayoritarios son hidrocarburos monoterpénicos y sesquiterpénicos; se puede suponer que estos también pueden actuar como "antioxidantes", aunque por mecanismos distintos a los que operan los compuestos fenólicos. ]]>
En resumen, la actividad antioxidante del aceite esencial de S. brownei, se debe a que los terpenos presentes en ellos, se oxidan más rápidamente que el ácido linoleico, es decir, "se sacrifican" primero, de esta manera "protegiendo" el sustrato lipídico.
AGRADECIMIENTOS
Al Grupo de Investigaciones Agroquímicas de la Universidad de Cartagena y CENIVAM de la Universidad Industrial de Santander.
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
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Recibido: 10 de diciembre de 2009.
Dra. Beatriz E. Jaramillo. Campus de Zaragocilla, Programa de Química, Facultad de Ciencias Exactas y Naturales, Universidad de Cartagena. Cartagena, Colombia. Telefax: 57-5-6698180. Correo electrónico: beatrizjaramilloc@yahoo.com ]]>
