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<journal-title><![CDATA[Revista Cubana de Plantas Medicinales]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Actividad antimicrobiana y toxicidad frente a Artemia salina del extracto diclorometánico de raíces de Morinda royoc L.]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antimicrobial action and toxicity against Artemia salina of the dichlormethane extract from Morinda royoc L. roots]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Centro de Bioplantas Laboratorio Ingeniería Metabólica Universidad de Ciego de Ávila]]></institution>
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<institution><![CDATA[,Departamento Química Analítica Departamento de Química Analítica Facultad de Medicina, U.A.N.L]]></institution>
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<self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S1028-47962011000100004&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S1028-47962011000100004&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S1028-47962011000100004&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Introducción: las plantas son una fuente de diversidad natural por la gran variedad de compuestos que sintetizan. Particularmente las antraquinonas resultan un importante grupo de metabolitos secundarios con actividad antimicrobiana y antioxidante. Objetivos: evaluar la actividad antimicrobiana del extracto diclorometánico de raíces de Morinda royoc L., así como su toxicidad contra Artemia salina. Métodos: la actividad antimicrobiana se determinó utilizando el método de microdilución en placa de 96 pozos. Se evaluó la actividad del extracto frente a 7 aislados clínicos de Candida spp. y frente a las bacterias Staphylococcus aureus resistente a meticilina, Staphylococcus aureus ATCC 12598, Enterococus faecales, Escherichia coli, Acinetobacter baumanii, Pseudomonas aeruginosa y Klebsiella pneumoniae. La toxicidad del extracto se evaluó mediante el ensayo de letalidad con A. salina. Resultados: el extracto crudo fue activo frente a todas las especies de Candida evaluadas. La concentración mínima inhibitoria más baja fue 1,95 µg/mL. El extracto mostró fuerte actividad inhibitoria contra S. aureus, E. faecales, y E. coli. El valor más bajo de concentración mínima inhibitoria obtenido fue 31,25 µg/mL. El extracto presentó una toxicidad moderada hacia A. salina. Conclusiones: los resultados obtenidos demuestran el potencial del extracto diclorometánico de raíces de M. royoc L. en el tratamiento de infecciones causadas por bacterias y hongos.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: plants are a source of natural diversity because of the great variety of compounds that they synthesize. Anthraquinones in particular are an important group of secondary metabolites characterized by their antimicrobial and antioxidant action. Objectives: to evaluate the antimicrobial action of dichloromethane extract from Morinda royoc L. roots as well as its toxicity against Artemia salina. Methods: the antimicrobial action was determined by using the brooth microdilution in 96-well plate. The extract action against 7 Candida spp clinical isolates and against bacteria such as methicillin-resistant Staphylococcus aureus, Staphylococcus aureus ATCC 12598, Enterococus faecales, Escherichia coli, Acinetobacter baumanii, Pseudomonas aeruginosa and Klebsiella pneumoniae was evaluated. The extract toxicity was measured using brine shrimp (Artemia salina) lethality test. Results: the crude extract proved to be active against all the tested Candida species. The lowest minimal inhibitory concentration was 1.95 µg/mL. The extract showed strong inhibitory action against S. aureus, E. faecales, and E. coli. The lowest minimal inhibitory concentration was 31.25 µg/mL. The extract presented moderate toxicity against A. salina. Conclusions: the results showed the potentialities of dichloromethane extract from M. royoc L. roots for the treatment of bacterial and fungal infections.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <div align="right">       <p><font face="Verdana" size="2"> <b>ART&Iacute;CULO ORIGINAL </b></font> </p>       <p>&nbsp;</p> </div>     <P>      <P><font size="4"><b><font face="Verdana">Actividad antimicrobiana y toxicidad    frente a <I>Artemia salina</I> del extracto dicloromet&aacute;nico de ra&iacute;ces    de <I>Morinda royoc</I> L. </font></b></font>     <P>     <P><b><font face="Verdana" size="3">Antimicrobial action and toxicity against    <I>Artemia salina</I> of the dichlormethane extract from <I>Morinda royoc</I>    L. roots </font></b>     <P>     <P>     <P><b><font face="Verdana" size="2">Janetsy Borroto,<SUP>I</SUP> Reinaldo Trujillo,<SUP>II</SUP>    Yael C. de la Torre,<SUP>II</SUP> Noem&iacute; Waksman,<SUP>IV</SUP> Martha    Hern&aacute;ndez,<SUP>V</SUP> Ricardo Salazar<SUP>VI </SUP></font> </b>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2"><SUP>I</sup> M&aacute;ster en Biotecnolog&iacute;a    Vegetal. Investigador Agregado. Centro de Bioplantas. Laboratorio Ingenier&iacute;a    Metab&oacute;lica. Universidad de Ciego de &Aacute;vila. Ciego de &Aacute;vila,    Cuba.    <br>   <SUP>II</SUP> Doctor en Ciencias Biol&oacute;gicas. Investigador Titular. Centro    de Bioplantas. Laboratorio Ingenier&iacute;a Metab&oacute;lica. Universidad    de Ciego de &Aacute;vila, Cuba.    <br>   </font><font face="Verdana" size="2"><SUP>III</SUP> M&aacute;ster en Ciencias.    Investigador. Departamento Qu&iacute;mica Anal&iacute;tica. Departamento de    Qu&iacute;mica Anal&iacute;tica, Facultad de Medicina, U.A.N.L. Monterrey, M&eacute;xico.    <br>   </font><font face="Verdana" size="2"><SUP>IV</SUP> Doctor en Qu&iacute;mica    Org&aacute;nica. Profesor-Investigador. Jefe del Departamento Qu&iacute;mica    Anal&iacute;tica. Departamento de Qu&iacute;mica Anal&iacute;tica, Facultad    de Medicina, U.A.N.L. Monterrey, M&eacute;xico.    <br>   </font><font face="Verdana" size="2"><SUP>V</SUP> Doctor en Ciencias Biol&oacute;gicas.    Investigador Titular. Centro de Bioplantas. Laboratorio Ingenier&iacute;a Metab&oacute;lica.    Centro de Bioplantas, Universidad de Ciego de &Aacute;vila, Cuba.    <br>   </font><font face="Verdana" size="2"><SUP>VI</SUP> Doctor en Ciencias. Profesor-Investigador.    Departamento de Qu&iacute;mica Anal&iacute;tica, Facultad de Medicina, U.A.N.L.    Monterrey, M&eacute;xico. </font>      <P>     <P>  <hr size="1" noshade> <font face="Verdana" size="2"><B>RESUMEN </B> </font>      <P><font face="Verdana" size="2"><B>Introducci&oacute;n</b>: las plantas son una    fuente de diversidad natural por la gran variedad de compuestos que sintetizan.    Particularmente las antraquinonas resultan un importante grupo de metabolitos    secundarios con actividad antimicrobiana y antioxidante. <B>    <br>   Objetivos</B>: evaluar la actividad antimicrobiana del extracto dicloromet&aacute;nico    de ra&iacute;ces de <I>Morinda royoc</I> L., as&iacute; como su toxicidad contra    <I>Artemia salina</I>. <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   M&eacute;todos</B>: la actividad antimicrobiana se determin&oacute; utilizando    el m&eacute;todo de microdiluci&oacute;n en placa de 96 pozos. Se evalu&oacute;    la actividad del extracto frente a 7 aislados cl&iacute;nicos de <I>Candida    </I>spp. y frente a las bacterias <I>Staphylococcus aureus </I>resistente a    meticilina, <I>Staphylococcus aureus </I>ATCC 12598, <I>Enterococus faecales</I>,    <I>Escherichia coli, Acinetobacter baumanii</I>, <I>Pseudomonas aeruginosa</I>    y <I>Klebsiella pneumoniae</I>. La toxicidad del extracto se evalu&oacute; mediante    el ensayo de letalidad con <I>A. salina</I>. <B>    <br>   Resultados</B>: el extracto crudo fue activo frente a todas las especies de    <I>Candida</I> evaluadas. La concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria    m&aacute;s baja fue 1,95 &#181;g/mL. El extracto mostr&oacute; fuerte actividad    inhibitoria contra <I>S. aureus, E. faecales</I>, y <I>E. coli</I>. El valor    m&aacute;s bajo de concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria obtenido fue    31,25 &#181;g/mL. El extracto present&oacute; una toxicidad moderada hacia <I>A.    salina</I>. <B>    <br>   Conclusiones</B>: los resultados obtenidos demuestran el potencial del extracto    dicloromet&aacute;nico de ra&iacute;ces de <I>M. royoc</I> L. en el tratamiento    de infecciones causadas por bacterias y hongos. </font>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><B>Palabras clave: </B><I>Morinda royoc</I> L.,    antraquinonas, antimicrobiana, <I>Artemia salina</I>. </font> <hr size="1" noshade> <font face="Verdana" size="2"><B>ABSTRACT </B></font>      <P><font face="Verdana" size="2"><B>Introduction</b>: plants are a source of natural    diversity because of the great variety of compounds that they synthesize. Anthraquinones    in particular are an important group of secondary metabolites characterized    by their antimicrobial and antioxidant action. <B>    <br>   Objectives</B>: to evaluate the antimicrobial action of dichloromethane extract    from <I>Morinda royoc</I> L. roots as well as its toxicity against <I>Artemia    salina</I>. <B>    <br>   Methods</B>: the antimicrobial action was determined by using the brooth microdilution    in 96-well plate. The extract action against 7 <I>Candida spp</I> clinical isolates    and against bacteria such as methicillin-resistant <I>Staphylococcus aureus</I>,    <I>Staphylococcus aureus </I>ATCC 12598, <I>Enterococus faecales</I>, <I>Escherichia    coli, Acinetobacter baumanii</I>, <I>Pseudomonas aeruginosa</I> and <I>Klebsiella    pneumoniae</I> was evaluated. The extract toxicity was measured using brine    shrimp (<I>Artemia salina</I>) lethality test. <B>    <br>   Results</B>: the crude extract proved to be active against all the tested <I>Candida    </I>species. The lowest minimal inhibitory concentration was 1.95 &#181;g/mL.    The extract showed strong inhibitory action against <I>S. aureus, E. faecales</I>,    and <I>E. coli</I>. The lowest minimal inhibitory concentration was 31.25 &#181;g/mL.    The extract presented moderate toxicity against <I>A. salina</I>. <B>    <br>   Conclusions</B>: the results showed the potentialities of dichloromethane extract    from <I>M. royoc</I> L. roots for the treatment of bacterial and fungal infections.    </font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>      <P><font face="Verdana" size="2"><B>Key words</B>: <I>Morinda royoc</I> L., anthraquinones,    antimicrobial, <I>Artemia salina</I>. </font> <hr size="1" noshade>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <P><font face="Verdana" size="2"><B><font size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></B>    </font>      <P><font face="Verdana" size="2">Las plantas constituyen una fuente importante    de diversidad natural por la multitud de compuestos que ellas sintetizan. Algunos    han demostrado ser &uacute;tiles como terap&eacute;uticos para el tratamiento    de varias afecciones.<SUP>1</SUP> Las enfermedades infecciosas constituyen uno    de los principales problemas de morbilidad y mortalidad en pa&iacute;ses en    v&iacute;as de desarrollo. Algunos antibi&oacute;ticos disponibles actualmente    tienen efectos secundarios indeseables, son ineficaces contra pat&oacute;genos    nuevos o re-emergentes, y(o) conducen al r&aacute;pido desarrollo de resistencia.<SUP>2</SUP>    Debido a las serias limitaciones de los medicamentos actuales es necesario disponer    de nuevos agentes antimicrobianos, preferiblemente con nuevos mecanismos de    acci&oacute;n y menores efectos t&oacute;xicos. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">La especie <I>Morinda royoc</I> L., que pertene    a la familia Rubiaceae<I>,</I> es una planta silvestre de manigua costera que    est&aacute; distribuida en toda la isla de Cuba. Esta planta presenta propiedades    medicinales informadas por diferentes autores.<SUP>3,4</SUP> Actualmente, en    Cuba, las ra&iacute;ces de <I>M. royoc</I> se utilizan para la elaboraci&oacute;n    de un producto que tiene acci&oacute;n estimulante, revitalizadora, antiestr&eacute;s    e incrementa la libido. Este producto se obtiene a partir de un extracto alcoh&oacute;lico    que se emplea como suplemento diet&eacute;tico y se comercializa como PV-2.<SUP>3</SUP>    </font>     <P><font face="Verdana" size="2">En investigaciones previas se demostr&oacute;    que los extractos dicloromet&aacute;nicos obtenidos de ra&iacute;ces de campo    y de ra&iacute;ces cultivadas <I>in vitro</I> de <I>M. royoc </I>son ricos en    antraquinonas,<SUP>5,6</SUP> metabolitos para los cuales se ha descrito que    poseen actividad antimicrobiana, anticancer&iacute;gena, antioxidante y antituberculosis,    entre otras.<SUP>7-10</SUP> Sin embargo, hasta el momento no se ha realizado    la evaluaci&oacute;n de la actividad antimicrobiana de extractos dicloromet&aacute;nicos    de ra&iacute;ces de <I>M. royoc</I>. El objetivo de la presente investigaci&oacute;n    fue evaluar la actividad antif&uacute;ngica y antibacteriana del extracto dicloromet&aacute;nico    de ra&iacute;ces de <I>M. royoc</I> y su toxicidad preliminar frente a larvas    de <I>A. salina</I>. </font>     <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><B><font size="3">M&Eacute;TODOS</font></B> </font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2"><I>Material vegetal</I> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">La colecta de ra&iacute;ces de <I>M. royoc</I>    se realiz&oacute; en enero de 2009 en la costa norte de la provincia Ciego de    &Aacute;vila, Cuba. Las ra&iacute;ces se lavaron con agua corriente e inmediatamente    se utilizaron para la extracci&oacute;n. </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Obtenci&oacute;n del extracto</I> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Para la extracci&oacute;n se utilizaron 25 g    de ra&iacute;ces a las cuales se adicionaron 250 mL de diclorometano y se mantuvieron    en la oscuridad por 72 h. El extracto se filtr&oacute; y se llev&oacute; a sequedad    por evaporaci&oacute;n a presi&oacute;n reducida con una temperatura controlada    de 45 &#186;C. El extracto seco se coloc&oacute; en frascos &aacute;mbar y se    mantuvo en refrigeraci&oacute;n (4 &#186;C) hasta su uso. </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Actividad antif&uacute;ngica y antibacteriana</I>    </font>     <P><font face="Verdana" size="2">La actividad antif&uacute;ngica y antibacteriana    se evalu&oacute; por el m&eacute;todo de microdiluci&oacute;n en placa descrito    por el <I>National Committee for Clinical Laboratory Standards </I>(<I>NCCLS</I>).<SUP>11,12</SUP>    En una placa de 96 pocillos se colocaron en cada uno 100 &#181;L del medio RPMI-1640    (levaduras) o <I>M&uuml;eller Hilton</I> (bacterias). Se a&ntilde;adieron 100    &#181;L de la soluci&oacute;n del extracto al primer pocillo y a partir de este    primer pocillo se realizaron 5 diluciones seriadas. Por &uacute;ltimo se agreg&oacute;    a cada pozo 100 &#181;L de la suspensi&oacute;n del microorganismo diluida.    </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Para realizar el ensayo, el extracto crudo de    ra&iacute;ces<I> </I>se diluy&oacute; hasta tener una concentraci&oacute;n de    4 mg/mL tanto en medio de cultivo RPMI-1640 (Sigma Aldrich) como en medio <I>M&uuml;eller-Hinton</I>    (<I>Becton, Dickinson &amp; Company</I>) para levaduras y bacterias, respectivamente.    Se utilizaron 50 &#181;L de dimetil sulf&oacute;xido (DMSO) para disolver el    extracto. Se realizaron diluciones seriadas hasta obtener concentraciones entre    1 000 y 0,95 &#181;g/mL. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">En todos los ensayos se colocaron controles de    esterilidad de medio, control de crecimiento y controles positivos. Para el    bioensayo de la actividad antif&uacute;ngica, se utiliz&oacute; como control    positivo el fluconazol (Diflucan<SUP>&#174;</SUP>) y para el bioensayo de la    actividad antibacteriana se utilizaron: cefalotina (<I>Keflin Lilly</I>), oxacillina    (<I>BioChemika</I>), y vancomicina (<I>Eli Lilly</I>). Las concentraciones finales    de los controles utilizados resultaron de 250 a 0,488 &#181;g/mL. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Todas las cepas tanto de levaduras como de bacterias    las proporcion&oacute; el Departamento de Microbiolog&iacute;a de la Facultad    de Medicina de la UANL, M&eacute;xico. Se utilizaron 7 aislados cl&iacute;nicos    de las levaduras: <I>Candida albicans</I> No. 501, <I>Candida albicans</I> No.    53, <I>Candida albicans</I> No. 498, <I>Candida tropicalis</I> No. 166, <I>Candida    glabrata</I> No. 84, <I>Candida krusei</I> No. 168, <I>Candida parasilosis</I>    No. 96. Adem&aacute;s se utilizaron 7 cepas de bacterias: <I>Staphylococcus    aureus resistente a meticilina</I>, <I>Staphylococcus aureus ATCC 12598</I>    <I>Enterococcus faecales</I>, <I>Escherichia coli</I>, <I>Acinetobacter baumanii</I>,    <I>Pseudomonas aeruginosa</I>, <I>Klebsiella pneumoniae</I>. Para la preparaci&oacute;n    de los in&oacute;culos se obtuvieron cultivos j&oacute;venes de las cepas de    bacterias y levaduras en el medio s&oacute;lido de M&uuml;eller-Hinton y papa    dextrosa <I>Sabouroud</I> (<I>Becton, Dickinson and Company</I>), respectivamente.    Las placas se incubaron a 37 &#186;C por 24 h. Para las levaduras se prepar&oacute;    una suspensi&oacute;n de cada una de las cepas a 0,5 de <I>McFarland</I> y se    realizaron diluciones 1:100 y 1:20 en medio RPMI-1640. Para las bacterias se    prepar&oacute; una suspensi&oacute;n de cada una de las cepas a 0,5 en la escala    de <I>McFarland</I> y se realiz&oacute; una diluci&oacute;n 1:50 con medio l&iacute;quido    <I>M&uuml;eller Hilton</I>. </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Evaluaci&oacute;n de la toxicidad del extracto    mediante el ensayo de letalidad con Artemia salina</I> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2">Se valor&oacute; la actividad t&oacute;xica <I>in    vitro</I> del extracto mediante el ensayo de letalidad con <I>Artemia salina</I>.<SUP>13</SUP>    Se evaluaron 3 concentraciones del extracto: en un vaso de precipitado, con    un volumen total de 10 mL de agua de mar artificial se colocaron 10 larvas de    <I>A. salina</I> y el extracto a concentraci&oacute;n final de 1 000, 100 y    10 &#181;g/mL. Despu&eacute;s de 24 h de contacto, se contaron las larvas que    sobrevivieron. La toxicidad se expres&oacute; en porcentaje de mortalidad y    se interpret&oacute;: 0-10 % no t&oacute;xico, 11-50 % moderadamente t&oacute;xico,    51-90 % altamente t&oacute;xico y 100 % extremadamente t&oacute;xico. Los ensayos    se realizaron por triplicado. Los porcentajes de mortalidad se llevaron a gr&aacute;ficos    en funci&oacute;n de la concentraci&oacute;n utilizada y la l&iacute;nea de    tendencia potencial fue obtenida. A partir de la ecuaci&oacute;n de la gr&aacute;fica    se calcul&oacute; la concentraci&oacute;n que es letal para 50 % de la poblaci&oacute;n    expuesta (CL<SUB>50</SUB>). </font>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><B><font size="3">RESULTADOS</font></B> </font>      <P><font face="Verdana" size="2">La actividad antif&uacute;ngica del extracto    de ra&iacute;ces de <I>M. royoc</I> se muestra en la tabla 1. El extracto mostr&oacute;    fuerte actividad a bajas concentraciones (1,95-15,6 &#181;g/mL), contra las    levaduras utilizadas. El fluconazol que se utiliz&oacute; como control positivo    de inhibici&oacute;n del crecimiento; mostr&oacute; valores de concentraci&oacute;n    m&iacute;nima inhibitoria (CMI) entre 31,25 &#181;g/mL (101,8 &#181;M) para    <I>C. glabrata</I> (HU84) y 0,5 &#181;g/mL (1,6 &#181;M) para <I>C. albicans</I>    (HU501). Por el contrario, el extracto inhibi&oacute; el crecimiento de las    levaduras ensayadas con valores de CMI de 15,6 &#181;g/mL, en la mayor&iacute;a    de los casos. La cepa m&aacute;s susceptible fue <I>C. glabrata</I> con CMI    de 1,95 &#181;g/mL, la cual result&oacute; menor que la obtenida con el fluconazol    (31,25 &#181;g/mL) (<a href="/img/revistas/pla/v16n1/t0104111.gif">tabla 1</a>). </font>      
<P><font face="Verdana" size="2">La actividad antibacteriana del extracto se muestra    en la <a href="/img/revistas/pla/v16n1/t0204111.gif">tabla 2</a>. De los resultados obtenidos se puede    notar que las bacterias grampositivas: <I>S. aereus </I>resistente a oxacillina,    <I>S. aereus </I>ATCC 12598 y <I>E. faecales</I>, resultaron las m&aacute;s    sensibles con valores de CMI entre 31,25 y 62,5 &#181;g/mL. El extracto no fue    activo contra <I>A. baumanii</I>, <I>P. aeruginosa</I> y <I>K. pneumoniae</I>,    incluso a la concentraci&oacute;n m&aacute;s alta de 1 000 &#181;g/mL, solo    fue activo contra la bacteria gramnegativa <I>E. coli</I> con valores de CMI    de 250 &#181;g/mL. </font>      
<P><font face="Verdana" size="2">En el bioensayo de actividad antibacteriana se    utilizaron 3 medicamentos diferentes como controles positivos. La cepa <I>S.    aureus </I>resistente a oxacillina fue resistente a oxacillina (CMI 125 &#181;g/mL    o 283,2 &#181;M) y cefalotina (CMI 62,5 &#181;g/mL o 149,4 &#181;M), pero fue    susceptible a vancomicina (CMI 1,9 &#181;g/mL o 1,3 &#181;M). La vancomicina    fue el mejor medicamento contra todas las bacterias grampositivas. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">El bioensayo de letalidad con <I>A. salina</I>    demostr&oacute; que la toxicidad del extracto de ra&iacute;ces de <I>M. royoc    </I>es dependiente de la concentraci&oacute;n, es decir,<I> </I>no fue t&oacute;xico    a concentraciones menores que 10 &#181;g/mL; sin embargo, mostr&oacute; una    toxicidad moderada a concentraciones entre 100 y 1 000 &#181;g/mL, la CL<SUB>50</SUB>    fue 395,4 &#181;g/mL (<a href="/img/revistas/pla/v16n1/f0104111.gif">fig.</a>). </font>      
<P>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2">La viabilidad de las larvas en el grupo control    (sin extracto) fue de 100 % y no se observaron alteraciones en su motilidad    (<a href="/img/revistas/pla/v16n1/t0304111.gif">tabla 3</a>). </font>     
]]></body>
<body><![CDATA[<P>     <P><font face="Verdana" size="3"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font>  <B></B>      <P><font face="Verdana" size="2">Cl&iacute;nicamente se desea tener un medicamento    (extracto o compuesto) con potencial para inhibir el crecimiento de varias cepas    de <I>Candida</I>, porque varias especies de este g&eacute;nero pueden provocar    candidiasis; la cual se conoce es la cuarta de las infecciones sist&eacute;micas    m&aacute;s comunes y en la mayor&iacute;a de los casos es causada por <I>C.    albicans </I>(50-60 %)<I>, C. glabrata </I>(15-20 %)<I>, C. parapsilosis </I>(10-20    %),<I> C. tropicalis </I>(6-12 %), y <I>C. krusei </I>(1-3 %).<SUP>14</SUP>    En este contexto, es muy interesante que el extracto crudo mostr&oacute; una    excelente actividad contra aislados cl&iacute;nicos de las especies causantes    de candidiasis. Su tratamiento a menudo requiere la combinaci&oacute;n de estos    agentes, sin embargo, se ha observado resistencia y efectos adversos en el tratamiento    con estos antif&uacute;ngicos.<SUP>15</SUP> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">En un estudio sobre actividad antic&aacute;ndidas    de extractos de plantas medicinales canadienses se inform&oacute; que valores    por debajo de 1 000 &#181;g/mL de CMI deben aceptarse como extractos con fuerte    potencial antif&uacute;ngico. Los autores informan CMI de 800 &#181;g/mL para    <I>Epilobium augustifolium </I>contra <I>C. albicans </I>ATCC 90028.<SUP>16</SUP>    Teniendo en cuenta este planteamiento, el extracto de ra&iacute;ces de <I>M.    royoc</I> tiene un fuerte potencial para utilizarse como antif&uacute;ngico.    </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Varios autores informan que las bacterias grampositivas    son m&aacute;s susceptibles que las gramnegativas;<SUP>17,18</SUP> lo cual coincide    con los resultados obtenidos para el extracto de ra&iacute;ces de <I>M. royoc</I>.    La pared celular de las bacterias grampositivas es menos compleja y carecen    de una filtraci&oacute;n efectiva contra grandes mol&eacute;culas, debido al    tama&ntilde;o de los poros en su envoltura celular, son menos selectivas.<SUP>19</SUP>    En este contexto, el extracto de ra&iacute;ces transformadas de <I>Maytenus    senegalensis</I> mostraron actividad solo frente a las bacterias grampositivas    <I>Bacillus subtilis</I> y <I>S. aureus</I> y no fue activo frente a las bacterias    gramnegativas <I>E. coli</I> y <I>K. pneumoniae</I>.<SUP>20</SUP> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">El m&eacute;todo para la evaluaci&oacute;n de    la letalidad en <I>A. salina</I> es considerado un instrumento &uacute;til para    la evaluaci&oacute;n preliminar de toxicidad. Por la simplicidad del procedimiento    se utiliza para el monitoreo de toxicidad en extractos de planta, as&iacute;    como en fraccionamientos biodirigidos.<SUP>13</SUP> El extracto dicloromet&aacute;nico    de ra&iacute;ces de <I>M. royoc</I> result&oacute; moderadamente t&oacute;xico    contra <I>A. salina</I> con un CL<SUB>50</SUB> de 395,4 &#181;g/mL, aunque experimentos    de citotoxidad son necesarios para comprobarlo. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Los resultados obtenidos demuestran el potencial    de este extracto en el tratamiento de infecciones causadas por bacterias y hongos    que afectan al hombre. Es necesario realizar otros estudios para evaluar la    toxicidad del extracto en animales experimentales y establecer su seguridad    para proponer su uso como agente antimicrobiano. </font>     <P>      <P>      <P><font face="Verdana" size="3"><B>AGRADECIMIENTOS</B> </font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Apoyo financiero o de otra naturaleza que    sustenta el trabajo </I> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Proyecto CITMA nacional No. 266: Producci&oacute;n    de metabolitos secundarios (antraquinonas [AQs]) a trav&eacute;s de la aplicaci&oacute;n    de las t&eacute;cnicas de cultivo en c&eacute;lulas y tejidos en <I>Morinda    royoc</I> L. y <I>Morinda citrifolia</I> L. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Beca de posgrado ofertadas por la subsecretaria    de Educaci&oacute;n Superior e Investigaci&oacute;n de la Secretar&iacute;a    de Educaci&oacute;n de M&eacute;xico. </font>     <P>      <P>      <P><font face="Verdana" size="3"><B>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS </B></font><font face="Verdana" size="2">    </font>      <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">1. Kolewe ME, Gaurav V, Roberts SC. Pharmaceutically    Active Natural Product Synthesis and Supply via Plant Cell Culture Technology.    Mol Pharmaceutics. 2008;5(2):243-56. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">2. White TC, Marr KA, Bowden R. Factors that    contribute to antifungal drug resistance. Clinical, Cellular, and Molecular.    Clinical Microbiology Reviews. 1998;11(2):382-402. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">3. Scull I, Cabrera MY, Cabrera I. Suplemento    alimenticio de origen natural y su procesamiento de obtenci&oacute;n. Instituto    polit&eacute;cnico &#168;Villenas Revoluci&oacute;n&#168; La Habana. Cuba Patente    N<SUP>o </SUP>CU22628 A1 2000. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">4. Hern&aacute;ndez J, Volpato G. Herbal mixtures    in the traditional medicine of Eastern Cuba. J Ethnopharmacol. 2004;90(2):293-316.    </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">5. Rivas M. Determinaci&oacute;n de compuestos    fen&oacute;licos en plantas de <I>Morinda royoc</I> L.: Actividad antioxidante    [Tesis de Maestr&iacute;a]. Centro de Bioplantas, Universidad de Ciego de &Aacute;vila,    Cuba; 2006. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">6. Borroto J, Coll J, Rivas M, Blanco M, Concepci&oacute;n    O, Tandr&oacute;n YA, et al. Anthraquinones from <I>in vitro</I> root culture    of <I>Morinda royoc</I> L. Plant Cell Tissue Organ Culture. 2008;94(2):181-7.    </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">7. Mishra BB, Kishore N, Tiwari VK, Singh DD,    Tripathi V, Hidalgo JA, Vazquez JA. A novel antifungal anthraquinone from seeds    of <I>Aegle marmelos</I> Correa (family Rutaceae). Fitoterapia. 2010;81(2):104-7.    </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">8. Kamiya K, Hamabe W, Tokuyama S, Hirano K,    Satake T, Kumamoto-Yonezawa Y, et al. Inhibitory effect of anthraquinones isolated    from the Noni (<I>Morinda citrifolia</I>) root on animal A-, B- and Y-families    of DNA polymerases and human cancer cell proliferation. Food Chemistry. 2010;118(3):725-30.    </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">9. Galindo F, Kabir N, Gavrilovic J, Russell    DA. Spectroscopic studies of 1,2-diaminoanthraquinone (DAQ) as a fluorescent    probe for the imaging of nitric oxide in living cells. Photochem Photobiol Sci.    2008;7(1):126-30. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">10. Kanokmedhakul K, Kanokmedhakul S, Phatchana    R. Biological activity of Anthraquinones and Triterpenoids from <I>Prismatomeris    fragrans</I>. J Ethnopharmacol. 2005;100(3):284-8. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">11. Wayne PA. National for Committee Clinical    Laboratory Standards. Reference method for broth dilution antifungal susceptibility    testing of yeast, approved standard 2002a; NCCLS document M27-A. </font>    <P><font face="Verdana" size="2">12. Wayne PA. National for Committee Clinical    Laboratory Standards. Performance standards for antimicrobial susceptibility    testing. In 12<SUP>th</SUP> informational Supplement M100S12. 2002b; NCCLS document    M100S12. </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">13. Carballo JL, Hern&aacute;ndez-Inda ZL, P&eacute;rez    P, Garc&iacute;a-Gr&aacute;valos MD. A comparison between two brine shrimp assays    to detect <I>in vitro</I> cytotoxicity in marine natural products. BMC Biotechnology.<I>    </I>2002;2:17-21. </font>    <P><font face="Verdana" size="2">14. Hidalgo JA, Vazquez JA. Candidiasis, emedicine    from WebMD, 2008 [cited Sep 2010]. Available in: <font color="#000000"><a href="http://emedicine.medscape.com/article/213853-overview" target="_blank">http://emedicine.medscape.com/article/213853-overview</a></font></font>      <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">15. Carrillo-Mu&ntilde;oz AJ, Giusiano G, Ezkurra    PA, Quind&oacute;s G. Antifungal agents. Mode of action in yeast cells. Rev    Espa&ntilde;ola Quimioterapia. 2006;19(2):130-9. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">16. Carmeli Y, Troillet N, Eliopoulos GM, Samore    MH. Emergence of antibiotic-resistant <I>Pseudomonas aeruginosa</I>: comparison    of risks associated with different antipseudomonal agents. Antimicrobial Agents    Chemotherapy. 1999;43(6):1379-82. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">17. Krolicka A, Szpitter A, Gilgenast E, Romanik    G, Kaminski M, Lojkowska E. Stimulation of antibacterial naphthoquinones and    flavonoids accumulation in carnivorous plants grown <I>in vitro </I>by addition    of elicitors. Enzyme Microbial Technology. 2008;42(3):216-21. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">18. Chouna JP, Nkeng-Efouet PA, Lenta BN, Devkota    KP, Neumann B, Stammler HG; et al. Antibacterial endiandric acid derivatives    from Beilschmiedia anacardioides. Phytochemistry. 2009;70(5):684-8. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">19. Gould D, Booker C. Applied Microbiology for    Nurses. Aardvark Editorial, Mcndham, Suffolk, London 2000. pp: 75-94. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">20. Jain N, Light M, van Staden J. Antibacterial    activity of hairy-root cultures of <I>Maytenus senegalensis</I>. South African    J Botany. 2008;74(1):163-6. </font>    <P>     <P>      <P><font face="Verdana" size="2">Recibido: 9 de marzo de 2010.     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Aprobado: 30 de diciembre de 2010</font>     <P>     <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Janetsy Borroto Blanco</I>. Centro de Bioplantas,    Universidad de Ciego de &Aacute;vila<I>. </I>Carretera a Mor&oacute;n, Km 9.    CP 69450. Ciego de &Aacute;vila, Cuba. Correo electr&oacute;nico: <font color="#000000"><a href="mailto:jborroto@bioplantas.cu" target="_blank">jborroto@bioplantas.cu</a></font>    </font>       ]]></body><back>
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