<?xml version="1.0" encoding="ISO-8859-1"?><article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance">
<front>
<journal-meta>
<journal-id>1028-4796</journal-id>
<journal-title><![CDATA[Revista Cubana de Plantas Medicinales]]></journal-title>
<abbrev-journal-title><![CDATA[Rev Cubana Plant Med]]></abbrev-journal-title>
<issn>1028-4796</issn>
<publisher>
<publisher-name><![CDATA[ECIMED]]></publisher-name>
</publisher>
</journal-meta>
<article-meta>
<article-id>S1028-47962012000300003</article-id>
<title-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de Rhizophora mangle L. sobre la producción de anión superóxido en macrófagos murinos RAW 264.7]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Effect of Rhizophora mangle L. on the superoxide anion production in RAW 264.7 murine macrophages]]></article-title>
</title-group>
<contrib-group>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sánchez Calero]]></surname>
<given-names><![CDATA[Janet]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Faure García]]></surname>
<given-names><![CDATA[Roberto]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Mitjavila Cors]]></surname>
<given-names><![CDATA[Maria Teresa]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A02"/>
</contrib>
</contrib-group>
<aff id="A01">
<institution><![CDATA[,Centro Nacional de Sanidad Agropecuaria  ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Mayabeque ]]></addr-line>
<country>Cuba</country>
</aff>
<aff id="A02">
<institution><![CDATA[,Universidad de Barcelona  ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Barcelona ]]></addr-line>
<country>España</country>
</aff>
<pub-date pub-type="pub">
<day>00</day>
<month>09</month>
<year>2012</year>
</pub-date>
<pub-date pub-type="epub">
<day>00</day>
<month>09</month>
<year>2012</year>
</pub-date>
<volume>17</volume>
<numero>3</numero>
<fpage>223</fpage>
<lpage>232</lpage>
<copyright-statement/>
<copyright-year/>
<self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S1028-47962012000300003&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S1028-47962012000300003&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S1028-47962012000300003&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Introducción: el extracto acuoso de la corteza de Rhizophora mangle L. (mangle rojo) posee varias propiedades farmacológicas: en el tratamiento de la mastitis bovina, la curación de heridas,las infecciones uterinas y las úlceras gastroduodenales; debido a sus propiedades antiséptica, cicatrizante, antiinflamatoria y antioxidante. Sin embargo, no se han completado los estudios de la actividad antioxidante a todos los niveles de complejidad para dilucidar los mecanismos de acción involucrados en este efecto farmacológico. Objetivo: determinar el efecto del extracto acuoso de Rhizophora mangle y su fracción polifenólica sobre la producción de anión superóxido en una línea celular de macrófagos murinos RAW 264.7, estimulados con forbol 12-myristato 13-acetato o lipopolisacárido. Métodos: la evaluación de la actividad antioxidante del extracto de Rhizophora mangle y su fracción polifenólica sobre la producción de anión superóxido en macrófagos RAW 264.7, activados con lipopolisacárido o forbol 12-myristato 13-acetato, se determinó mediante el método de reducción del ferricitocromo c. Resultados: el extracto de Rhizophora mangle y su fracción polifenólica, inhibieron la producción de anión superóxido en macrófagos RAW 264.7, activados con ambos tipos de agentes de forma dependiente de la concentración de taninos. La comparación de las líneas de regresión reveló diferencias significativas (p< 0,05), resultando este efecto superior en la fracción para ambos tipos de agentes, y en presencia de lipopolisacárido para ambas muestras. Conclusiones: el extracto acuoso de Rhizophora mangle mostró actividad antioxidante a nivel celular, evidenciada por la reducción del estrés oxidativo en macrófagos mediante la inhibición de la producción de anión superóxido. A su vez se demostró que los compuestos polifenólicos presentes en el extracto fueron los principales responsables de los efectos antioxidantes observados en este estudio.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: the aqueous extract of Rhizophora mangle L. (red mangrove) bark has some pharmacological properties, that is, the treatment of bovine mastitis, wound healing, uterine infections and stomach ulcers, due to its antiseptic, healing, antiinflammatory and antioxidant properties. However, the studies of antioxidant activity at all complexity levels have not been completed in order to elucidate the mechanisms of action involved in this pharmacological effect. Objective: to determine the effect of Rhizophora mangle aqueous extract and its polyphenolic fraction on superoxide anion production in a cellular line of RAW 264.7 murine macrophages, stimulated with phorbol 12-myristate 13-acetate or lipopolysaccharide. Methods: the evaluation of the antioxidant activity of Rhizophora mangle extract and its polyphenolic fraction on superoxide anion production in RAW 264.7 macrophages activated with lipopolysaccharide or phorbol 12-myristate 13-acetate was made using the C ferricytochrome reduction method. Results: Rhizophora mangle extract and its polyphenolic fraction inhibit the superoxide anion production in RAW 264.7 macrophages activated with both types of agents depending on tannin concentration. The comparison of the regression lines showed significant differences (p< 0.05), resulting this effect higher in the fraction for both types of agents, and the presence of lipopolysaccharide for both samples. Conclusions: Rhizophora mangle aqueous extract showed antioxidant activity at cellular level, evidenced by reduction of oxidative stress in macrophages, through the inhibition of superoxide anion production. At the same time, it was shown that polyphenolic compounds, present in the extract, were the main responsible for the antioxidant effects observed in this study.]]></p></abstract>
<kwd-group>
<kwd lng="es"><![CDATA[actividad antioxidante]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[anión superóxido]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[macrófagos RAW 264.7]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[Rhizophora mangle L]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[compuestos polifenólicos]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[antioxidant activity]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[superoxide anion]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[RAW 264.7 macrophages]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[Rhizophora mangle L]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[polyphenolic compounds]]></kwd>
</kwd-group>
</article-meta>
</front><body><![CDATA[ <div align="right">       <p><font face="Verdana" size="2"><B>ART&Iacute;CULO ORIGINAL</B> </font> </p>       <p>&nbsp;</p> </div>     <P>      <P><font size="4"><b><font face="Verdana">Efecto de<I> Rhizophora mangle</I> L.    sobre la producci&oacute;n de ani&oacute;n super&oacute;xido en macr&oacute;fagos    murinos RAW 264.7</font></b></font>     <P>&nbsp;     <P><b><font face="Verdana" size="3">Effect of <I>Rhizophora mangle</I> L. on the    superoxide anion production in RAW 264.7 murine macrophages</font></b>     <P>&nbsp;     <P>&nbsp;     <P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>      <P><b><font face="Verdana" size="2">Dra. Janet S&aacute;nchez Calero,<SUP>I</SUP>    Dr. Roberto Faure Garc&iacute;a,<SUP>I</SUP> Dra. C. Maria Teresa Mitjavila    Cors</font><font face="Verdana" size="2"><SUP>II </SUP></font></b>     <P>&nbsp;     <p> <font face="Verdana" size="2"><SUP>I </sup>Centro Nacional de Sanidad Agropecuaria.    San Jos&eacute; de Las Lajas, Mayabeque, Cuba.    <br>   </font><font face="Verdana" size="2"><sup>I</sup><sup>I</sup> Universidad de    Barcelona. Barcelona, Espa&ntilde;a. </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp; </p> <hr size="1" noshade> <font face="Verdana" size="2"><B>RESUMEN</B></font>      <P><font face="Verdana" size="2"><B>Introducci&oacute;n:</b> el extracto acuoso    de la corteza de <I>Rhizophora mangle </I>L. (mangle rojo) posee varias propiedades    farmacol&oacute;gicas: en el tratamiento de la mastitis bovina, la curaci&oacute;n    de heridas,<SUP> </SUP>las infecciones uterinas y las &uacute;lceras gastroduodenales;    debido a sus propiedades antis&eacute;ptica, cicatrizante, antiinflamatoria    y antioxidante. Sin embargo, no se han completado los estudios de la actividad    antioxidante <FONT  COLOR="#231d1d">a todos los niveles de complejidad para dilucidar los mecanismos    de acci&oacute;n involucrados en este efecto farmacol&oacute;gico.</FONT></font>    <font face="Verdana" size="2"><B>    <br>   Objetivo:</B> determinar el efecto del extracto acuoso de <I>Rhizophora mangle</I>    y su fracci&oacute;n polifen&oacute;lica sobre la producci&oacute;n de ani&oacute;n    super&oacute;xido en una l&iacute;nea celular de macr&oacute;fagos murinos RAW    264.7, estimulados con forbol 12-myristato 13-acetato o lipopolisac&aacute;rido.    <B>    <br>   M&eacute;todos:</B> la evaluaci&oacute;n de la actividad antioxidante del extracto    de <I>Rhizophora mangle</I> y su fracci&oacute;n polifen&oacute;lica sobre la    producci&oacute;n de ani&oacute;n super&oacute;xido en macr&oacute;fagos RAW    264.7, activados con lipopolisac&aacute;rido o forbol 12-myristato 13-acetato,    se determin&oacute; mediante el m&eacute;todo de reducci&oacute;n del ferricitocromo    c. <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Resultados:</B> el extracto de <I>Rhizophora mangle</I> y su fracci&oacute;n    polifen&oacute;lica, inhibieron la producci&oacute;n de ani&oacute;n super&oacute;xido    en macr&oacute;fagos RAW 264.7, activados con ambos tipos de agentes de forma    dependiente de la concentraci&oacute;n de taninos. La comparaci&oacute;n de    las l&iacute;neas de regresi&oacute;n revel&oacute; diferencias significativas    (p&lt; 0,05), resultando este efecto superior en la fracci&oacute;n para ambos    tipos de agentes, y en presencia de lipopolisac&aacute;rido para ambas muestras.    <B>    <br>   Conclusiones:</B> el extracto acuoso de<I> Rhizophora mangle </I>mostr&oacute;    actividad antioxidante a nivel celular, evidenciada por la reducci&oacute;n    del estr&eacute;s oxidativo en macr&oacute;fagos mediante la inhibici&oacute;n    de la producci&oacute;n de ani&oacute;n super&oacute;xido. A su vez se demostr&oacute;    que los compuestos polifen&oacute;licos presentes en el extracto fueron los    principales responsables de los efectos antioxidantes observados en este estudio.    </font> <B></B>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><B>Palabras clave: </B>actividad antioxidante,    ani&oacute;n super&oacute;xido, macr&oacute;fagos RAW 264.7, <I><FONT  COLOR="#231d1d">Rhizophora mangle</FONT></I><FONT  COLOR="#231d1d"> L.</FONT>, compuestos polifen&oacute;licos. </font> <hr size="1" noshade> <font face="Verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font>      <p> <B> </B><font face="Verdana" size="2"><B>Introduction: </b>the<B> </B><FONT  COLOR="#231d1d">aqueous extract of <I>Rhizophora mangle</I> L. (red mangrove)    bark has some pharmacological </FONT>properties, that is, the treatment of bovine    mastitis, wound healing, uterine infections and stomach ulcers, due to its antiseptic,    healing, antiinflammatory and antioxidant properties. However, the studies of    antioxidant activity at all complexity levels have not been completed in order    to elucidate the mechanisms of action involved in this pharmacological effect.    <B>    <br>   Objective: </B>to determine the effect of <I><FONT COLOR="#231d1d">Rhizophora    mangle</FONT></I><FONT  COLOR="#231d1d"> aqueous extract and its </FONT>polyphenolic fraction on superoxide    anion production in a cellular line of RAW 264.7 murine macrophages, stimulated    with phorbol 12-myristate 13-acetate or lipopolysaccharide. <B>    <br>   Methods: </B>the evaluation of the antioxidant activity of <I><FONT COLOR="#231d1d">Rhizophora    mangle</FONT></I><FONT  COLOR="#231d1d"> extract and its </FONT>polyphenolic fraction on superoxide anion    production in RAW 264.7 macrophages activated with lipopolysaccharide or phorbol    12-myristate 13-acetate was made using the C ferricytochrome reduction method.    <B>    <br>   Results: </B><I><FONT  COLOR="#231d1d">Rhizophora mangle</FONT></I><FONT  COLOR="#231d1d"> extract </FONT>and its polyphenolic fraction inhibit the superoxide    anion production in RAW 264.7 macrophages <FONT  COLOR="#231d1d">activated with both types of agents depending on tannin concentration.    </FONT>The comparison of the regression lines showed significant differences    (p&lt; 0.05), resulting this effect higher in the fraction for both types of    agents, and the presence of lipopolysaccharide for both samples. <B>    <br>   Conclusions: </B><I><FONT COLOR="#231d1d">Rhizophora mangle</FONT></I><FONT  COLOR="#231d1d"> aqueous extract </FONT>showed antioxidant activity at cellular    level, <FONT COLOR="#231d1d">evidenced by reduction of oxidative stress in macrophages,    through the </FONT>inhibition of superoxide anion production.<FONT  COLOR="#231d1d"> </FONT>At the same time, it was shown that polyphenolic compounds,    present in the extract, were the main responsible for the antioxidant effects    observed in this study. </font> </p> <B></B>      <P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2"><B>Key words:</B><FONT COLOR="#231d1d"> antioxidant    activity, superoxide anion, RAW 264.7 macrophages, <I>Rhizophora mangle</I>    L., polyphenolic compounds.</FONT></font>  <hr size="1" noshade>     <P>&nbsp;     <P>&nbsp;      <P>      <P><font face="Verdana" size="3"><B>INTRODUCCI&Oacute;N</B> </font>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2">El estr&eacute;s oxidativo surge en sistemas    biol&oacute;gicos despu&eacute;s de una prolongada exposici&oacute;n a oxidantes,    o debido a una disminuci&oacute;n de la capacidad antioxidante del sistema;    y est&aacute; asociado con la generaci&oacute;n de especies reactivas del ox&iacute;geno    (ERO), las cuales est&aacute;n implicadas en el origen de numerosas enfermedades    como el c&aacute;ncer, enfermedades cardiacas, arterosclerosis, enfermedades    cerebrales y el envejecimiento.<SUP>1</SUP> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Varios estudios han demostrado que las plantas    producen potentes antioxidantes y representan una importante fuente natural.    En tal sentido, la caracterizaci&oacute;n qu&iacute;mica del extracto acuoso    de la corteza de <I>Rhizophora mangle</I> (L) revel&oacute; la presencia de    polifenoles (54,78 %), representados en su mayor&iacute;a por taninos polim&eacute;ricos    (80 %) y taninos hidrolizables (20 %), se destaca la presencia en estos &uacute;ltimos    de epicatequina, catequina, &aacute;cido clorog&eacute;nico, &aacute;cido g&aacute;lico    y &aacute;cido el&aacute;gico, adem&aacute;s se encontraron galotaninos y elagitaninos.    De las estructuras no t&aacute;nicas, se refiere la presencia de carbohidratos    (17,5 %) libres y enlazados; &aacute;cidos grasos (4,0 %) de cadena larga, saturados    e insaturados; fitoesteroles (0,0285 %); componentes vol&aacute;tiles o semivol&aacute;tiles    (70 compuestos) (0.0205 %) y aromas o aceites esenciales no vol&aacute;tiles.<SUP>2</SUP>    </font>     <P><font face="Verdana" size="2">A esta planta se le atribuyen varias propiedades    en medicina tradicional, se ha utilizado para el tratamiento de enfermedades    de la garganta y en la tuberculosis pulmonar,<SUP>3</SUP> as&iacute; como contra    la lepra, el asma, el envenenamiento por pescados contaminados, la &uacute;lcera    p&eacute;ptica, los trastornos digestivos, las infecciones de la piel y las    enfermedades ven&eacute;reas.<SUP>4</SUP> Adem&aacute;s se report&oacute; que    tiene actividad antif&uacute;ngica.<SUP>5</SUP> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">En la &uacute;ltima d&eacute;cada se demostraron    varias propiedades farmacol&oacute;gicas del extracto acuoso de la corteza de    <I>R. mangle</I>, que incluyen, prevenci&oacute;n de la mastitis bovina,<SUP>6</SUP>    eficacia en la curaci&oacute;n de las heridas,<SUP>7,8</SUP> as&iacute; como    propiedades antimicrobianas;<SUP>9,10 </SUP>a su vez result&oacute; exitoso    en el tratamiento de las infecciones uterinas<SUP>11</SUP> y las &uacute;lceras    gastroduodenales,<SUP>12</SUP> tambi&eacute;n se demostraron sus propiedades    antiinflamatorias.<SUP>13</SUP> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2">Aunque algunas propiedades antioxidantes han    sido demostradas previamente, tanto para el extracto acuoso de <I>R. mangle</I>    como para su fracci&oacute;n mayoritaria constituida por compuestos polifen&oacute;licos,    como son la actividad secuestradora de radicales DPPH (1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl)    y ani&oacute;n super&oacute;xido,<SUP>14</SUP> la capacidad de neutralizar los    radicales hidroxilo y propiedades quelantes de iones de hierro,<SUP>15</SUP>    el efecto protector a las principales biomol&eacute;culas expuestas a da&ntilde;o    oxidativo,<SUP>16</SUP> la inhibici&oacute;n de la peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica    en cerebro de rata, as&iacute; como la reducci&oacute;n del riesgo de hemolisis    inducida por radicales libres.<SUP>17</SUP> En un modelo de curaci&oacute;n    de heridas abiertas as&eacute;pticas en ratas, durante el proceso de reparaci&oacute;n    de las lesiones, increment&oacute; los indicadores antioxidantes como super&oacute;xido    dismutasa, catalasa, glutati&oacute;n reducido y redujo los biomarcadores prooxidantes    como el malonildialdeh&iacute;do,<SUP>18</SUP> pero a&uacute;n no existe informaci&oacute;n    acerca de sus efectos sobre otras ERO a nivel celular, como por ejemplo, el    ani&oacute;n super&oacute;xido producido en fagocitos activados, un aspecto    que es importante conocer para completar el estudio de las propiedades antioxidantes    de esta planta a todos los niveles de complejidad y dilucidar los mecanismos    de acci&oacute;n involucrados en este efecto farmacol&oacute;gico. El objetivo    del presente trabajo estuvo en determinar el efecto del extracto acuoso de <I>Rhizophora    mangle</I> L. y su fracci&oacute;n polifen&oacute;lica sobre la producci&oacute;n    de ani&oacute;n super&oacute;xido en una l&iacute;nea celular de macr&oacute;fagos    murinos RAW 264.7, estimulados con forbol 12-myristato 13-acetato (PMA) o lipopolisac&aacute;rido    (LPS).</font>     <P>&nbsp;      <P>      <P><font face="Verdana" size="3"><B>M&Eacute;TODOS</B> </font>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><I><FONT COLOR="#231d1d">Material vegetal</FONT></I>    </font>     <P>      <P><font face="Verdana" size="2">Las cortezas de <I>Rhizophora mangle </I>L. se    colectaron en la zona de la Playa Caimito, La Habana. A un esp&eacute;cimen    se le realiz&oacute; la identificaci&oacute;n taxon&oacute;mica en el Herbario    del Jard&iacute;n Bot&aacute;nico Nacional (La Habana, Cuba). </font>     <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><I><FONT COLOR="#231d1d">Preparaci&oacute;n del    extracto </FONT></I> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>      <P><font face="Verdana" size="2">El material vegetal fresco se sec&oacute; al    aire, a temperatura ambiente (25 &#176;C). El extracto de <I>R. mangle</I> se    obtuvo a partir de la decocci&oacute;n acuosa de las cortezas previamente molinadas,    en una proporci&oacute;n 1:7,5 (p/v) durante 30 min a 95 &#176;C. El extracto    se concentr&oacute; hasta 24 mg/mL de materia seca y mostr&oacute; un contenido    de taninos superior a 12 mg/mL. </font>     <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Preparaci&oacute;n de la fracci&oacute;n polifen&oacute;lica</I>    </font>     <P>      <P><font face="Verdana" size="2">La fracci&oacute;n polifen&oacute;lica se obtuvo    a partir del extracto acuoso de <I>R. mangle</I>, a una concentraci&oacute;n    de 24 mg/mL, mediante la precipitaci&oacute;n con NaCl, en una proporci&oacute;n    1:2,8 (p/v).<SUP>19</SUP> El NaCl se a&ntilde;adi&oacute; lentamente al extracto,    en condiciones de agitaci&oacute;n y calentamiento a 70 &#176;C durante 10 min.    El sobrenadante se decant&oacute; y las muestras se centrifugaron a 3 500 rpm    durante 15 min a temperatura ambiente. El precipitado obtenido se disolvi&oacute;    en agua desionizada y se le realizaron 3 extracciones con n-butanol 1:2 (v/v)    para eliminar las sales contaminantes. La fase butan&oacute;lica se colect&oacute;    y se efectu&oacute; rotoevaporaci&oacute;n hasta sequedad para la eliminaci&oacute;n    del solvente org&aacute;nico. El material obtenido se liofiliz&oacute; y se    conserv&oacute; a - 20 &#176;C. </font>     <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Determinaci&oacute;n del contenido de taninos</I>    </font>     <P>      <P><font face="Verdana" size="2">El contenido de taninos en el extracto acuoso    de <I>R. mangle</I> y su fracci&oacute;n polifen&oacute;lica se determin&oacute;    como se describi&oacute; antes.<SUP>20 </SUP>Con este m&eacute;todo colorim&eacute;trico    se midi&oacute; la cantidad de taninos precipitados por una prote&iacute;na    est&aacute;ndar, la alb&uacute;mina de suero bovino (BSA). La mezcla de reacci&oacute;n    conten&iacute;a extracto de <I>R. mangle</I>, su fracci&oacute;n polifen&oacute;lica    o &aacute;cido t&aacute;nico como est&aacute;ndar <FONT COLOR="#231d1d">(1 mL)    y BSA (1 mg/mL), los cuales inicialmente se mezclaron y despu&eacute;s se dejaron    en reposo durante 15 min a temperatura ambiente. A continuaci&oacute;n, se centrifug&oacute;    a 3 000 <I>g </I>durante 15 min, el sobrenadante se desech&oacute; y el pellet    se disolvi&oacute; en 15 mL de lauryl sulfato de sodio (1 %) y a 1 mL se le    a&ntilde;adieron 3 mL de una soluci&oacute;n que conten&iacute;a lauryl sulfato    de sodio (1 %) y trietanolamina (7 %) y 1 mL de FeCl<SUB>3</SUB> (0,01 M en    HCl 0,1 N) e inmediatamente la mezcla se agit&oacute;. Despu&eacute;s de 15    min, se midi&oacute; la absorbancia a 510 nm y la concentraci&oacute;n de taninos    se calcul&oacute; usando una curva patr&oacute;n de &aacute;cido t&aacute;nico.</FONT></font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Ensayo de generaci&oacute;n de ani&oacute;n    super&oacute;xido </I> </font>     <P>      <P><font color="#231d1d" face="Verdana" size="2">La producci&oacute;n de ani&oacute;n    super&oacute;xido en macr&oacute;fagos estimulados con 2 tipos de agentes: PMA    o LPS, se midi&oacute; empleando el m&eacute;todo de reducci&oacute;n del ferricitocromo    c.<SUP>21</SUP> Macr&oacute;fagos cultivados en medio DMEM completo (DMEM con    L-glutamina 2 mM, piruvato 1 mM, Hepes 20 mM, suero fetal bovino 10 %) se sembraron    en placas de 12 pocillos (1&#183;10<SUP>6</SUP> c&eacute;lulas/pocillo) y se    incubaron durante 3 h a 37 &#186;C, en atm&oacute;sfera de CO<SUB>2</SUB> 5    %, para lograr la adhesi&oacute;n de las c&eacute;lulas a la placa. Transcurrido    este tiempo, los pocillos se lavaron 3 veces con soluci&oacute;n salina balanceada    de Hanks (HBSS). A continuaci&oacute;n se a&ntilde;adieron 900 &#181;L HBBS,    que conten&iacute;an 110 mg de ferricitocromo c; 1 mL de N5-(1-iminoetil)-L-ornitina    (L-NIO) 1 mM, 100 &#181;L del extracto de <I>R. mangle</I> (5,1; 25,7; 51.4    &#181;g/mL de taninos) o su fracci&oacute;n (2,8; 13,9; 27,8 &#181;g/mL de taninos)    y 10 &#181;L de PMA o LPS (10 mg/mL). La mezcla de reacci&oacute;n se incub&oacute;    durante 2 h a 37 &#186;C, en atm&oacute;sfera de CO<SUB>2</SUB> 5 %. Se utiliz&oacute;    la super&oacute;xido dismutasa (SOD) (6 000 U/mL) como control de la inhibici&oacute;n    de la producci&oacute;n de ani&oacute;n super&oacute;xido. A continuaci&oacute;n    se detuvo la reacci&oacute;n poniendo los tubos en ba&ntilde;o de hielo, se    centrifug&oacute; a 800 <I>g</I>, durante 10 min a 4 &#186;C, se recuper&oacute;    el sobrenadante y se midi&oacute; su absorbancia a 550 nm. La concentraci&oacute;n    de ani&oacute;n super&oacute;xido se calcul&oacute; empleando el coeficiente    de extinci&oacute;n molar (21 mM<SUP>-1</SUP>.cm<SUP>-1</SUP>) del citocromo    c reducido. Los resultados fueron expresados como porcentaje de inhibici&oacute;n    de la producci&oacute;n de ani&oacute;n super&oacute;xido.</font>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2"><I>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</I> </font>     <P>      <P><font face="Verdana" size="2">Los resultados experimentales son expresados    como la media &#177; EEM (error est&aacute;ndar de la media). Todas las mediciones    se realizaron por triplicado. Los datos fueron analizados mediante un an&aacute;lisis    de regresi&oacute;n lineal para obtener las curvas que relacionan la concentraci&oacute;n    de taninos con el efecto de inhibici&oacute;n de la generaci&oacute;n de ani&oacute;n    super&oacute;xido, ejercido por el extracto de <I>R. mangle</I> y su fracci&oacute;n    polifen&oacute;lica, y posteriormente se realiz&oacute; la comparaci&oacute;n    de estas, empleando el paquete estad&iacute;stico <I>Statgraphics</I> versi&oacute;n    4.1 para Windows, considerando valores estad&iacute;sticamente significativos    para p&lt; 0,05. </font>     <P>&nbsp;      <P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="3"><B>RESULTADOS </B></font><font face="Verdana" size="2">    </font>      <P>      <P> <font color="#231d1d" face="Verdana" size="2">En la <a href="#fig1">figura    1A</a> y <a href="#fig1">1B</a> se muestran, respectivamente, el an&aacute;lisis    de regresi&oacute;n de la inhibici&oacute;n de la generaci&oacute;n de ani&oacute;n    super&oacute;xido, en macr&oacute;fagos estimulados con PMA o LPS, en funci&oacute;n    de la concentraci&oacute;n de taninos del extracto acuoso de <I>R. mangle</I>    y su fracci&oacute;n polifen&oacute;lica. Ambas muestras disminuyeron la generaci&oacute;n    de esta ERO en los macr&oacute;fagos estimulados con ambos tipos de agentes.    Este efecto fue dependiente de la concentraci&oacute;n de taninos, con valores    de &iacute;ndice de determinaci&oacute;n (r<SUP>2</SUP>) de 0,995 y 0,995 para    el extracto, y 0,919 y 0,891 para la fracci&oacute;n, en presencia de PMA y    LPS, respectivamente. </font>     <P align="center"><img src="f0103312.jpg" width="420" height="675"><a name="fig1"></a> <FONT COLOR="#231d1d">     <P>&nbsp;     <P><font face="Verdana" size="2">La comparaci&oacute;n de las l&iacute;neas de    regresi&oacute;n obtenidas en presencia de PMA y LPS revel&oacute; diferencias    significativas (p&lt; 0,05) entre estas, tanto en el extracto como en la fracci&oacute;n,    resultando en ambas muestras el efecto inhibitorio en la producci&oacute;n de    ani&oacute;n super&oacute;xido superior en presencia de LPS. </font>      <P><font face="Verdana" size="2">Los valores de la concentraci&oacute;n inhibitoria    media (CI<SUB>50</SUB>) fueron de 168,3 y 96,4 mg taninos/mL para el extracto    y 18,5 y 10,3 mg taninos/mL para la fracci&oacute;n, en presencia de PMA y LPS    respectivamente. La comparaci&oacute;n de las l&iacute;neas de regresi&oacute;n    (extracto <I>vs.</I> fracci&oacute;n) revel&oacute; que eran estad&iacute;sticamente    diferentes (p&lt; 0,05) tanto en presencia de PMA como de LPS. La fracci&oacute;n    result&oacute; m&aacute;s eficaz que el extracto en reducir la generaci&oacute;n    de esta ERO en presencia de ambos agentes.</font>     <P>&nbsp;  </FONT>      <P>      <P><font face="Verdana" size="3"><B>DISCUSI&Oacute;N</B> </font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>      <P> <font color="#231d1d" face="Verdana" size="2">En el presente trabajo el extracto    acuoso de <I>R. mangle</I> y su fracci&oacute;n polifen&oacute;lica mostraron    un efecto inhibitorio sobre la producci&oacute;n de ani&oacute;n super&oacute;xido    en una l&iacute;nea celular de macr&oacute;fagos estimulada con PMA o LPS, resultando    este efecto superior en ambas muestras con el empleo del LPS.</font>     <P><font face="Verdana" size="2">El efecto diferencial de ambas muestras en presencia    de diferentes est&iacute;mulos puede ser debido a que estos agentes activan    los macr&oacute;fagos por diferentes v&iacute;as de se&ntilde;alizaci&oacute;n    intracelular para dar lugar a la generaci&oacute;n de ani&oacute;n super&oacute;xido.<SUP>22,23</SUP>    Estudios previos indican diferentes v&iacute;as de activaci&oacute;n de la NADPH    oxidasa, enzima responsable de la producci&oacute;n de ani&oacute;n super&oacute;xido    en macr&oacute;fagos; se detecta que en los fagocitos estimulados con PMA, la    activaci&oacute;n de la NADPH oxidasa es independiente de calcio y est&aacute;    mediada por la prote&iacute;na quinasa C.<SUP>24,25</SUP> En contraste, cuando    se emplea LPS, las v&iacute;as de transducci&oacute;n de se&ntilde;ales intracelulares    que son importantes en la estimulaci&oacute;n de los macr&oacute;fagos son las    prote&iacute;nas tirosina quinasa y las concentraciones de Ca<SUP>2+</SUP>.<SUP>26</SUP>    </font>  <FONT COLOR="#231d1d"></FONT>      <P><font color="#231d1d" face="Verdana" size="2">Los elevados porcentajes de inhibici&oacute;n    en la producci&oacute;n de ani&oacute;n super&oacute;xido, en presencia de la    fracci&oacute;n polifen&oacute;lica con ambos tipos de est&iacute;mulo, indican    que los compuestos polifen&oacute;licos presentes en el extracto de <I>R. mangle</I>    son los principales responsables de la inhibici&oacute;n de la generaci&oacute;n    de esta ERO. En este sentido, numerosos reportes informan acerca de esta actividad    biol&oacute;gica en extractos de plantas que contienen polifenoles o en compuestos    polifen&oacute;licos puros, tanto por el secuestro directo de ani&oacute;n super&oacute;xido    como regulando la expresi&oacute;n de las enzimas encargadas de la producci&oacute;n    de esta ERO, e interactuando con los mediadores que participan en las v&iacute;as    de transducci&oacute;n de se&ntilde;ales intracelulares para modular la generaci&oacute;n    de esta especie radical. As&iacute;, los polifenoles del t&eacute; verde o negro    como las teaflavinas y la epigalocatequina galato (EGCG),<SUP>27</SUP> as&iacute;    como la fracci&oacute;n polifen&oacute;lica de la cocoa comercial,<SUP>28</SUP>    inhibieron la generaci&oacute;n de ani&oacute;n super&oacute;xido en c&eacute;lulas    HL-60 estimuladas con PMA y TPA (</font><font face="Verdana" size="2">activador    del plasmin&oacute;geno tisular)<FONT  COLOR="#231d1d">, otro &eacute;ster de forbol, respectivamente. Otros estudios    han revelado que tanto los polifenoles del t&eacute; verde como los del t&eacute;    negro disminuyeron la producci&oacute;n de ani&oacute;n super&oacute;xido, por    un mecanismo basado en la regulaci&oacute;n negativa de la expresi&oacute;n    de las subunidades p22phox y p67phox de la enzima NADPH oxidasa.<SUP>29,30</SUP>    Otro trabajo revel&oacute; que los polifenoles del t&eacute; verde inhibieron    la activaci&oacute;n de la prote&iacute;na quinasa C provocada por un inductor    de tumores.<SUP>31</SUP> Tambi&eacute;n se inform&oacute; que los polifenoles    del t&eacute; negro y verde, la teaflavina-3,3'-digalato y la EGCG, respectivamente,    suprimieron la actividad de la prote&iacute;na quinasa C inducida por el </FONT>TPA</font>    <font color="#231d1d" face="Verdana" size="2">, por bloquear la translocaci&oacute;n    de esa prote&iacute;na del citosol a la membrana.<SUP>32</SUP></font>     <p><FONT COLOR="#231d1d"><font face="Verdana" size="2">Estos resultados permiten    concluir que el extracto acuoso de <I>R. mangle</I> redujo el estr&eacute;s    oxidativo a nivel celular, lo cual se evidencia en la disminuci&oacute;n de    la generaci&oacute;n de ani&oacute;n super&oacute;xido en macr&oacute;fagos.    A su vez se demostr&oacute; que los compuestos polifen&oacute;licos presentes    en el extracto fueron los principales responsables de los efectos antioxidantes    observados en este estudio.</font></FONT></p>     <p>&nbsp; </p>     <P>      <P><font face="Verdana" size="3"><B>AGRADECIMIENTOS</B> </font>      <P>      <P><font face="Verdana" size="2">Esta investigaci&oacute;n fue financiada por    una beca del proyecto PIBARTRI-CYTED y la Universidad de Barcelona, Espa&ntilde;a.    </font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>&nbsp;     <P>      <P><font face="Verdana" size="3"><B>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</B> </font>      <P>      <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">1. Kohen R, Nyska A. Oxidation of biological    systems: Oxidative stress phenomena, antioxidants, redox reactions, and methods    for their quantification. Toxicologic Pathology. 2002;30(6):620-50.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">2. S&aacute;nchez LM, Melchor G, Alvarez S, Bulnes    C. Caracterizaci&oacute;n qu&iacute;mica y toxicol&oacute;gica de una formulaci&oacute;n    cicatrizante de <I>Rhizophora mangle</I> L. Rev Salud Anim. 1998;20(2):69-72.        </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">3. Roig JT. Plantas medicinales, arom&aacute;ticas    y venenosas de Cuba. 2<SUP>da </SUP>ed. La Habana: Editorial Cient&iacute;fico-T&eacute;cnica,    1988:606-7.     </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">4. Rojas N, Coto O. Propiedades antimicrobianas    de extractos de <I>Rhizophora mangle</I> L. Rev Cubana Med Tropical<I>.</I>    1978;30(3):181-7.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">5. C&aacute;ceres A, L&oacute;pez B, Ju&aacute;rez    X, del Aguila J, Garc&iacute;a S. Plants used in Guatemala for the treatment    of dermatophytic infections 2: Evaluation of antifungal activity of seven American    plants. J Ethnopharmacol<I>.</I> 1993;40:207-13.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">6. Armenteros M. Evaluaci&oacute;n de un desinfectante    mamario post-orde&ntilde;o de origen natural [Tesis doctoral] La Habana: Centro    Nacional de Sanidad Agropecuaria, Universidad Agraria de La Habana; 1998.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">7. Bulnes C, Fern&aacute;ndez O, Navarro D, Marrero    E, Rueda D, Figueroa O, et al. Healing effect of a red mangrove extract in open    aseptic wounds in rat. Rev Salud Anim<I>.</I> 2001;23(2):102-8.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">8. Fern&aacute;ndez O, Capdevila JZ, Dalla G,    Melchor G. Efficacy of <I>Rhizophora mangle</I> aqueous bark extract in the    healing of open surgical wounds<I>. </I>Fitoterapia<I>.</I> 2002;73:564-8.     </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">9. Montes de Oca N, Rever&oacute;n Y, Gonz&aacute;lez    R. Evaluation of antimicrobial activity of different extracts of <I>Rhizophora    mangle</I> L. using five methods. Rev Salud Anim. 2001;23:1-11.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">10. Melchor G, Armenteros M, Fern&aacute;ndez    O, Linares E, Fragas I. Antibacterial activity of <I>Rhizophora mangle</I> bark.    Fitoterapia. 2001;72:689-91.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">11. Ag&uuml;ero F. Evaluaci&oacute;n de un producto    natural, a base de <I>Rhizophora mangle</I> L. en la terapia de la endometritis    bovina [Tesis doctoral] La Habana: Centro Nacional de Sanidad Agropecuaria,    Universidad Agraria de La Habana; 2004.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">12. S&aacute;nchez LM, Rueda D, G&oacute;mez    BC. Gastric antiulcer effect of <I>Rhizophora mangle</I> L. J Ethnopharmacol<I>.</I>    2001;77:1-3.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">13. Marrero E, S&aacute;nchez J, de Armas E,    Escobar A, Melchor G, Abad MJ, et al. COX-2 and sPLA<SUB>2</SUB> inhibitory    activity of aqueous extract polyphenols of <I>Rhizophora mangle</I> (red mangrove).    Fitoterapia<I>.</I> 2006;77:313-5.     </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">14. S&aacute;nchez J, Faure R, Mitjavila MT.    1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl radical (DPPH) and superoxide anion scavenging    activity of <I>Rhizophora mangle</I> L. Bark. Phcog Res. 2010;2:279-84.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">15. S&aacute;nchez J, Melchor G, Mart&iacute;nez    G, Escobar A, Faure R. Antioxidant activity of <I>Rhizophora mangle</I> bark.    Fitoterapia. 2006;77:141-3.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">16. S&aacute;nchez J, Mart&iacute;nez G, Faure    R. Efecto protector de los polifenoles de <I>Rhizophora mangle</I> L. sobre    el da&ntilde;o oxidativo a prote&iacute;nas y ADN. Rev Cubana Plant Med. 2011;16:1-6.        </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">17. S&aacute;nchez J, Melchor G, Mart&iacute;nez    G, S&aacute;nchez LM, Faure R, Vinardel P. Protective effect of <I>Rhizophora    mangle</I> bark on lipid peroxidation and erythrocyte hemolysis. Phcog Mag.    2005;1(3):101-4.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">18. S&aacute;nchez J, Faure R, Mart&iacute;nez    G, Vega E, Fern&aacute;ndez O. Propiedades antioxidantes de <I>Rhizophora mangle</I>    L. y su relaci&oacute;n con el proceso de curaci&oacute;n de heridas en ratas.    Rev Salud Anim. 2009;31(3):170-5.     </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">19. Matsuo T, McCord SA. Simple and rapid purification    method of condensed tannins from several young fruits. Agric Biol Chem. 1980;45:1885-7.        </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">20. Hagermann AE, Butler LG. Protein precipitation    method for the determination of tannins. J Agric Food Chem. 1978;26:809-12.        </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">21. Johnston RB, Godzik CA, Cohn ZA. Increased    superoxide anion production by immunologically activated and chemically elicited    macrophages. J Exp Med. 1978;148:115-9.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">22. Yagawa K, Kaku M, Ichinose Y, Aida Y, Tomoda    A. Fc receptor-mediated desensitization of superoxide (O<SUP>2-</SUP>) generation    response of guinea-pig macrophages and polymorphonuclear leucocytes. Immunology.    1985;55:629-38.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">23. Sen CK, Packer L. Antioxidant and redox regulation    of gene transcription. FASEB J. 1996;10:709-20.     </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">24. Maridonneau-Parini I, Tringale SM, Tauber    AI. Identification of distinct activation pathways of the human neutrophil NADPH-oxidase.    J Immunol. 1986;137:2925-9.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">25. Fan L, Santoro D, Palicz A, Li L, Lewis EM,    Ledford BG. Activation of protein kinase C via phospholipase D enhances NADPH    oxidase activity.<I> </I>FASEB J<I>. </I>2006;20:484.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">26. Jian ZJ, Yang Z, Mason GL, Slauson DO, Bochsler    PN. Regulation of superoxide anion generation in bovine alveolar macrophages    by bacterial lipopolysaccharide, serum proteins, and modulators of signal transduction.    Inflammation. 1995;19:637-50.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">27. Lin JK, Chen PC, Ho CT, Lin-Shiau SY. Inhibition    of xanthine oxidase and suppression of intracellular reactive oxygen species    in HL-60 cells by theaflavin-3,3'-digallate, epigallocatechin-3-gallate, and    propyl gallate. J Agric Food Chem. 2000;48:2736-43.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">28. Won K, Kumar J, Ok S, Chun KS, Joo H, Surh    YJ. Cocoa polyphenols inhibit phorbol ester-induced superoxide anion formation    in cultured HL-60 cells and expression of cyclooxygenase-2 and activation of    NF-kB and MAPKs in mouse skin <I>in vivo</I>. J Nutr. 2006;136:1150-5.     </font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">29. Ying CJ, Sun XF, Zhang SL, Zhang XP, Mao    LM, Zuo XZ, et al. ROS-related enzyme expressions in endothelial cells regulated    by tea polyphenols. Biomed Environ Sci. 2004;17:33-9.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">30. Ying CJ, Xu JW, Ikeda K, Takahashi K, Nara    Y, Yamori Y. Tea polyphenols regulate nicotinamide adenine dinucleotide phosphate    oxidase subunit expression and ameliorate angiotensin II-induced hyperpermeability    in endothelial cells. Hypertens Res. 2003;26:823-8.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">31. Komori A, Yatsunami J, Okabe S, Abe S, Hara    K, Suganuma M, et al. Anticarcinogenic activity of green tea polyphenols. Jpn    J Clin Oncol. 1993;23:186-90.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">32. Chen YC, Liang YC, Lin-Shiau SY, Ho CT, Lin    JK. Inhibition of TPA-induced protein kinase C and transcription activator protein-1    binding activities by theaflavin-3,3'-digallate from black tea in NIH3T3 cells.    J Agric Food Chem. 1999;47:1416-21.     </font>      <P>&nbsp;     <P>&nbsp;     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>      <P><font face="Verdana" size="2">Recibido: 29 de marzo de 2012.     <br>   Aprobado: 7 de abril de 2012. </font>     <P>&nbsp;     <P>&nbsp;      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Janet S&aacute;nchez Calero</I>. Departamento    de Qu&iacute;mica-Farmacolog&iacute;a-Toxicolog&iacute;a, Centro Nacional de    Sanidad Agropecuaria. San Jos&eacute; de Las Lajas, Mayabeque, Cuba. Correo    electr&oacute;nico: <FONT COLOR="#3366ff"><a href="mailto:jsanchez@censa.edu.cu">jsanchez@censa.edu.cu</a>    </FONT></font>       ]]></body><back>
<ref-list>
<ref id="B1">
<label>1</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Kohen]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Nyska]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Oxidation of biological systems: Oxidative stress phenomena, antioxidants, redox reactions, and methods for their quantification]]></article-title>
<source><![CDATA[Toxicologic Pathology.]]></source>
<year>2002</year>
<volume>30</volume>
<numero>6</numero>
<issue>6</issue>
<page-range>620-50</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B2">
<label>2</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sánchez]]></surname>
<given-names><![CDATA[LM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Melchor]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Alvarez]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bulnes]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Caracterización química y toxicológica de una formulación cicatrizante de Rhizophora mangle L]]></article-title>
<source><![CDATA[Rev Salud Anim.]]></source>
<year>1998</year>
<volume>20</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>69-72</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B3">
<label>3</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Roig]]></surname>
<given-names><![CDATA[JT]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Plantas medicinales, aromáticas y venenosas de Cuba]]></source>
<year>1988</year>
<edition>2</edition>
<page-range>606-7</page-range><publisher-loc><![CDATA[La Habana ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Editorial Científico-Técnica]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B4">
<label>4</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Rojas]]></surname>
<given-names><![CDATA[N]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Coto]]></surname>
<given-names><![CDATA[O]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Propiedades antimicrobianas de extractos de Rhizophora mangle L]]></article-title>
<source><![CDATA[Rev Cubana Med Tropical.]]></source>
<year>1978</year>
<volume>30</volume>
<numero>3</numero>
<issue>3</issue>
<page-range>181-7</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B5">
<label>5</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Cáceres]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[López]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Juárez]]></surname>
<given-names><![CDATA[X]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[del Aguila]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[García]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Plants used in Guatemala for the treatment of dermatophytic infections 2: Evaluation of antifungal activity of seven American plants]]></article-title>
<source><![CDATA[J Ethnopharmacol.]]></source>
<year>1993</year>
<volume>40</volume>
<page-range>207-13</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B6">
<label>6</label><nlm-citation citation-type="">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Armenteros]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Evaluación de un desinfectante mamario post-ordeño de origen natural]]></source>
<year></year>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B7">
<label>7</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Bulnes]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Fernández]]></surname>
<given-names><![CDATA[O]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Navarro]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Marrero]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rueda]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Figueroa]]></surname>
<given-names><![CDATA[O]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Healing effect of a red mangrove extract in open aseptic wounds in rat]]></article-title>
<source><![CDATA[Rev Salud Anim.]]></source>
<year>2001</year>
<volume>23</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>102-8</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B8">
<label>8</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Fernández]]></surname>
<given-names><![CDATA[O]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Capdevila]]></surname>
<given-names><![CDATA[JZ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Dalla]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Melchor]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Efficacy of Rhizophora mangle aqueous bark extract in the healing of open surgical wounds]]></article-title>
<source><![CDATA[Fitoterapia.]]></source>
<year>2002</year>
<volume>73</volume>
<page-range>564-8</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B9">
<label>9</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Montes de Oca]]></surname>
<given-names><![CDATA[N]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Reverón]]></surname>
<given-names><![CDATA[Y]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[González]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Evaluation of antimicrobial activity of different extracts of Rhizophora mangle L. using five methods]]></article-title>
<source><![CDATA[Rev Salud Anim]]></source>
<year>2001</year>
<volume>23</volume>
<page-range>1-11</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B10">
<label>10</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Melchor]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Armenteros]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Fernández]]></surname>
<given-names><![CDATA[O]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Linares]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Fragas]]></surname>
<given-names><![CDATA[I]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antibacterial activity of Rhizophora mangle bark]]></article-title>
<source><![CDATA[Fitoterapia.]]></source>
<year>2001</year>
<volume>72</volume>
<page-range>689-91</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B11">
<label>11</label><nlm-citation citation-type="">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Agüero]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Evaluación de un producto natural, a base de Rhizophora mangle L. en la terapia de la endometritis bovina]]></source>
<year></year>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B12">
<label>12</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sánchez]]></surname>
<given-names><![CDATA[LM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rueda]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gómez]]></surname>
<given-names><![CDATA[BC]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Gastric antiulcer effect of Rhizophora mangle L]]></article-title>
<source><![CDATA[J Ethnopharmacol.]]></source>
<year>2001</year>
<volume>77</volume>
<page-range>1-3</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B13">
<label>13</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Marrero]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sánchez]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[de Armas]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Escobar]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Melchor]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Abad]]></surname>
<given-names><![CDATA[MJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[et]]></surname>
<given-names><![CDATA[al]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[COX-2 and sPLA2 inhibitory activity of aqueous extract polyphenols of Rhizophora mangle (red mangrove)]]></article-title>
<source><![CDATA[Fitoterapia.]]></source>
<year>2006</year>
<volume>77</volume>
<page-range>313-5</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B14">
<label>14</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sánchez]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Faure]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Mitjavila]]></surname>
<given-names><![CDATA[MT.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[11-diphenyl-2-picrylhydrazyl radical (DPPH) and superoxide anion scavenging activity of Rhizophora mangle L. Bark]]></article-title>
<source><![CDATA[Phcog Res.]]></source>
<year>2010</year>
<volume>2</volume>
<page-range>279-84</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B15">
<label>15</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sánchez]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Melchor]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Martínez]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Escobar]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Faure]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antioxidant activity of Rhizophora mangle bark]]></article-title>
<source><![CDATA[Fitoterapia.]]></source>
<year>2006</year>
<volume>77</volume>
<page-range>141-3</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B16">
<label>16</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sánchez]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Martínez]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Faure]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto protector de los polifenoles de Rhizophora mangle L: sobre el daño oxidativo a proteínas y ADN]]></article-title>
<source><![CDATA[Rev Cubana Plant Med.]]></source>
<year>2011</year>
<volume>16</volume>
<page-range>1-6</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B17">
<label>17</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sánchez]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Melchor]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Martínez]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sánchez]]></surname>
<given-names><![CDATA[LM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Faure]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Vinardel]]></surname>
<given-names><![CDATA[P]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Protective effect of Rhizophora mangle bark on lipid peroxidation and erythrocyte hemolysis]]></article-title>
<source><![CDATA[Phcog Mag.]]></source>
<year>2005</year>
<volume>1</volume>
<numero>3</numero>
<issue>3</issue>
<page-range>101-4</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B18">
<label>18</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sánchez]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Faure]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Martínez]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Vega]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Fernández]]></surname>
<given-names><![CDATA[O]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Propiedades antioxidantes de Rhizophora mangle L: y su relación con el proceso de curación de heridas en ratas]]></article-title>
<source><![CDATA[Rev Salud Anim.]]></source>
<year>2009</year>
<volume>31</volume>
<numero>3</numero>
<issue>3</issue>
<page-range>170-5</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B19">
<label>19</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Matsuo]]></surname>
<given-names><![CDATA[T]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[McCord]]></surname>
<given-names><![CDATA[SA]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Simple and rapid purification method of condensed tannins from several young fruits]]></article-title>
<source><![CDATA[Agric Biol Chem.]]></source>
<year>1980</year>
<volume>45</volume>
<page-range>1885-7</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B20">
<label>20</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Hagermann]]></surname>
<given-names><![CDATA[AE]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Butler]]></surname>
<given-names><![CDATA[LG]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Protein precipitation method for the determination of tannins]]></article-title>
<source><![CDATA[J Agric Food Chem.]]></source>
<year>1978</year>
<volume>26</volume>
<page-range>809-12</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B21">
<label>21</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Johnston]]></surname>
<given-names><![CDATA[RB]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Godzik]]></surname>
<given-names><![CDATA[CA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cohn]]></surname>
<given-names><![CDATA[ZA]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Increased superoxide anion production by immunologically activated and chemically elicited macrophages]]></article-title>
<source><![CDATA[J Exp Med.]]></source>
<year>1978</year>
<volume>148</volume>
<page-range>115-9</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B22">
<label>22</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Yagawa]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Kaku]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ichinose]]></surname>
<given-names><![CDATA[Y]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Aida]]></surname>
<given-names><![CDATA[Y]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Tomoda]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Fc receptor-mediated desensitization of superoxide (O2-) generation response of guinea-pig macrophages and polymorphonuclear leucocytes]]></article-title>
<source><![CDATA[Immunology.]]></source>
<year>1985</year>
<volume>55</volume>
<page-range>629-38</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B23">
<label>23</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sen]]></surname>
<given-names><![CDATA[CK]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Packer]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antioxidant and redox regulation of gene transcription]]></article-title>
<source><![CDATA[FASEB J.]]></source>
<year>1996</year>
<volume>10</volume>
<page-range>709-20</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B24">
<label>24</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Maridonneau-Parini]]></surname>
<given-names><![CDATA[I]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Tringale]]></surname>
<given-names><![CDATA[SM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Tauber]]></surname>
<given-names><![CDATA[AI]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Identification of distinct activation pathways of the human neutrophil NADPH-oxidase]]></article-title>
<source><![CDATA[J Immunol.]]></source>
<year>1986</year>
<volume>137</volume>
<page-range>2925-9</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B25">
<label>25</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Fan]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Santoro]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Palicz]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Li]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Lewis]]></surname>
<given-names><![CDATA[EM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ledford]]></surname>
<given-names><![CDATA[BG]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Activation of protein kinase C via phospholipase D enhances NADPH oxidase activity]]></article-title>
<source><![CDATA[FASEB J.]]></source>
<year>2006</year>
<volume>20</volume>
<page-range>484</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B26">
<label>26</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Jian]]></surname>
<given-names><![CDATA[ZJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Yang]]></surname>
<given-names><![CDATA[Z]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Mason]]></surname>
<given-names><![CDATA[GL]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Slauson]]></surname>
<given-names><![CDATA[DO]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bochsler]]></surname>
<given-names><![CDATA[PN]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Regulation of superoxide anion generation in bovine alveolar macrophages by bacterial lipopolysaccharide, serum proteins, and modulators of signal transduction]]></article-title>
<source><![CDATA[Inflammation.]]></source>
<year>1995</year>
<volume>19</volume>
<page-range>637-50</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B27">
<label>27</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Lin]]></surname>
<given-names><![CDATA[JK]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Chen]]></surname>
<given-names><![CDATA[PC]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ho]]></surname>
<given-names><![CDATA[CT]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Lin-Shiau]]></surname>
<given-names><![CDATA[SY]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Inhibition of xanthine oxidase and suppression of intracellular reactive oxygen species in HL-60 cells by theaflavin-3,3'-digallate, epigallocatechin-3-gallate, and propyl gallate]]></article-title>
<source><![CDATA[J Agric Food Chem.]]></source>
<year>2000</year>
<volume>48</volume>
<page-range>2736-43</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B28">
<label>28</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Won]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Kumar]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ok]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Chun]]></surname>
<given-names><![CDATA[KS]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Joo]]></surname>
<given-names><![CDATA[H]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Surh]]></surname>
<given-names><![CDATA[YJ]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Cocoa polyphenols inhibit phorbol ester-induced superoxide anion formation in cultured HL-60 cells and expression of cyclooxygenase-2 and activation of NF-kB and MAPKs in mouse skin in vivo]]></article-title>
<source><![CDATA[J Nutr.]]></source>
<year>2006</year>
<volume>136</volume>
<page-range>1150-5</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B29">
<label>29</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Ying]]></surname>
<given-names><![CDATA[CJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sun]]></surname>
<given-names><![CDATA[XF]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Zhang]]></surname>
<given-names><![CDATA[SL]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Zhang]]></surname>
<given-names><![CDATA[XP]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Mao]]></surname>
<given-names><![CDATA[LM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Zuo]]></surname>
<given-names><![CDATA[XZ]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[ROS-related enzyme expressions in endothelial cells regulated by tea polyphenols]]></article-title>
<source><![CDATA[Biomed Environ Sci.]]></source>
<year>2004</year>
<volume>17</volume>
<page-range>33-9</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B30">
<label>30</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Ying]]></surname>
<given-names><![CDATA[CJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Xu]]></surname>
<given-names><![CDATA[JW]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ikeda]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Takahashi]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Nara]]></surname>
<given-names><![CDATA[Y]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Yamori]]></surname>
<given-names><![CDATA[Y]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Tea polyphenols regulate nicotinamide adenine dinucleotide phosphate oxidase subunit expression and ameliorate angiotensin II-induced hyperpermeability in endothelial cells]]></article-title>
<source><![CDATA[Hypertens Res.]]></source>
<year>2003</year>
<volume>26</volume>
<page-range>823-8</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B31">
<label>31</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Komori]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Yatsunami]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Okabe]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Abe]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hara]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Suganuma]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Anticarcinogenic activity of green tea polyphenols]]></article-title>
<source><![CDATA[Jpn J Clin Oncol.]]></source>
<year>1993</year>
<volume>23</volume>
<page-range>186-90</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B32">
<label>32</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Chen]]></surname>
<given-names><![CDATA[YC]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Liang]]></surname>
<given-names><![CDATA[YC]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Lin-Shiau]]></surname>
<given-names><![CDATA[SY]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ho]]></surname>
<given-names><![CDATA[CT]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Lin]]></surname>
<given-names><![CDATA[JK]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Inhibition of TPA-induced protein kinase C and transcription activator protein-1 binding activities by theaflavin-3,3'-digallate from black tea in NIH3T3 cells]]></article-title>
<source><![CDATA[J Agric Food Chem.]]></source>
<year>1999</year>
<volume>47</volume>
<page-range>1416-21</page-range></nlm-citation>
</ref>
</ref-list>
</back>
</article>
