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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Comparación entre el estado de maduración del fruto de café (Coffee arabica L.), el contenido de antocianinas y su capacidad antioxidante]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Comparison between the level of maturation of the coffee fruit (Coffee arabica L.), and the contents of anthocyanins and their antioxidant capacity]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: the maturity and quality of the coffee beans is defined by the color of its outer and often edible layer (pericarp), and this tissue is mainly lignocellulose without any commercial value; however it could be considered as a source of important antioxidant compounds, mostly anthocyanins. Objectives: to compare the antioxidant potential of the pericarp of the coffee bean at different states of maturation in terms of the content of anthocyanins. Methods: lyophilized and powered pericarp of Coffee arabica on different stages of maturation underwent solid-liquid extractions with acidulated methanol and total anthocyanins content was determined by pH differential method; the antioxidant potential was evaluated by using DPPH (radical cathion a-a-diphenyl-ß-picrylhydrazyl, ORAC (oxygen radical absorbance capacity) and FRAP (ferric reducing/antioxidant power) tests. Results: the sample from over-matured coffee beans showed a content of anthocyanins equal to 63.14 mg cyanidin-3-glucoside/L, which is 2 to 18 times higher than that of other maturation states. Nevertheless, the "pintón" stage demonstrated the highest antioxidant capacity (³ 2-5 times) in all the evaluated methods. This indicates the presence of additional components with antioxidant power during this maturation stage. Conclusions: all the extracts showed significant antioxidant capacity, therefore, the undesired fruits to coffee industry may be used as a source of antioxidant compounds regardless of their maturity stage.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[antioxidantes naturales]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <div align="right">     <p><font size="2" face="Verdana"><B>ART&Iacute;CULO ORIGINAL</B></font></p>    <p>&nbsp;  </p></div>    <P>     <P><b><font size="4" face="Verdana">Comparaci&oacute;n entre el  estado de maduraci&oacute;n del fruto de caf&eacute; (<I>Coffee arabica </I>L.),  el<I> </I>contenido de antocianinas y su capacidad antioxidante</font></b>     <P>&nbsp;      <P>     <P><font size="3" face="Verdana"><B>Comparison between the level of maturation  of the coffee fruit (<I>Coffee arabica </I>L.), and the contents of anthocyanins  and their antioxidant capacity</B> </font>     <P>&nbsp;     <P>&nbsp;     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>     <P>     <P><font size="2" face="Verdana"><b>Dr.  Miguel A. Puertas-Mej&iacute;a,<SUP>I</SUP> Lic. Felix Rivera-Echeverry,<SUP>I</SUP>  Lic. Paola Villegas-Guzm&aacute;n,<SUP>I</SUP> Dr. C. Benjam&iacute;n Alberto  Rojano,<SUP>II</SUP> Dr. Carlos Pelaez-Jaramillo</b></font><b><font size="2" face="Verdana"><SUP>I</SUP></font></b>      <P><font size="2" face="Verdana"><SUP>I</sup> Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n,  Colombia. </font>     <br> <font size="2" face="Verdana"><SUP>II</SUP> Universidad  Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n. Medell&iacute;n, Colombia.</font>      <P>&nbsp;     <P>&nbsp; <hr size="1" noshade> <font size="2" face="Verdana"><B>RESUMEN</B></font>      <p><B> </B><font size="2" face="Verdana"><B>Introducci&oacute;n:</b> la piel o  pericarpio del caf&eacute; que define su estado de madurez y calidad, es pr&aacute;cticamente  lignocelulosa y no tiene ning&uacute;n valor comercial, no obstante podr&iacute;a  considerarse como una fuente importante de compuestos antioxidantes, sobre todo  de antocianinas. <B>    <br> Objetivos:</B> comparar el potencial antioxidante del  pericarpio del fruto de caf&eacute; en diferentes estados de maduraci&oacute;n  con respecto al contenido de antocianinas. <B>    <br> M&eacute;todos:</B> la piel  del fruto del caf&eacute; liofilizada en cinco estados de maduraci&oacute;n se  someti&oacute; a extracciones s&oacute;lido-l&iacute;quido con metanol acidulado;  se determin&oacute; el contenido de antocianinas por el m&eacute;todo diferencial  de pH y el potencial antioxidante se evalu&oacute; sobre la base de los m&eacute;todos  de DPPH (cati&oacute;n radical <font face="Symbol">a</font>-<font face="Symbol">a</font>-difenil-&szlig;-picrilhidrazilo),  ORAC (<I>oxygen radical absorbance capacity</I>) y FRAP (<I>ferric reducing/antioxidant  power</I>). <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Resultados:</B> la muestra de granos sobremaduros present&oacute;  un contenido de antocianinas 63,14 mg cianidin-3-gluc&oacute;sido/L. Este valor  resulta de 2 a 18 veces mayor con respecto a los otros estados de maduraci&oacute;n.  No obstante, el estado &quot;pint&oacute;n&quot; fue el que mostr&oacute; una  mayor capacidad antioxidante (<font face="Symbol">&sup3;</font> 2-5 veces), en  todos los m&eacute;todos evaluados, lo cual sugiere una mayor presencia de otros  componentes con actividad antioxidante durante esta etapa de maduraci&oacute;n.  <B>    <br> Conclusiones:</B> todos los extractos presentaron buena capacidad antioxidante,  por lo tanto, aquellos frutos que no sean empleados para la industria de consumo  de caf&eacute; pueden ser usados como fuente de antioxidantes, independiente de  su estado de maduraci&oacute;n. </font> </p><B></B>     <P>     <P><font size="2" face="Verdana"><B>Palabras  clave:</B> antioxidantes naturales, antocianinas, caf&eacute;, <I>Coffee arabica</I>  L., estados de maduraci&oacute;n, pericarpio. </font> <hr size="1" noshade> <font size="2" face="Verdana"><B>ABSTRACT</B></font>      <p><B> </B><font size="2" face="Verdana"><B>Introduction: </b>the maturity and  quality of the coffee beans is defined by the color of its outer and often edible  layer (pericarp), and this tissue is mainly lignocellulose without any commercial  value; however it could be considered as a source of important antioxidant compounds,  mostly anthocyanins. <B>    <br> Objectives:</B> to compare the antioxidant potential  of the pericarp of the coffee bean at different states of maturation in terms  of the content of anthocyanins. <B>    <br> Methods:</B> lyophilized and powered pericarp  of <I>Coffee arabica </I>on different stages of maturation underwent solid-liquid  extractions with acidulated methanol and total anthocyanins content was determined  by pH differential method; the antioxidant potential was evaluated by using DPPH  (radical cathion <font face="Symbol">a</font>-<font face="Symbol">a</font>-diphenyl-&szlig;-picrylhydrazyl,  ORAC (oxygen radical absorbance capacity) and FRAP (ferric reducing/antioxidant  power) tests. <B>    <br> Results:</B> the sample from over-matured coffee beans showed  a content of anthocyanins equal to 63.14 mg cyanidin-3-glucoside/L, which is 2  to 18 times higher than that of other maturation states. Nevertheless, the &quot;<I>pint&oacute;n</I>&quot;  stage demonstrated the highest antioxidant capacity (<font face="Symbol">&sup3;</font>  2-5 times) in all the evaluated methods. This indicates the presence of additional  components with antioxidant power during this maturation stage.<B>    <br> Conclusions:</B>  all the extracts showed significant antioxidant capacity, therefore, the undesired  fruits to coffee industry may be used as a source of antioxidant compounds regardless  of their maturity stage. </font> </p><B></B>     <P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font size="2" face="Verdana"><B>Key  words:</B> natural antioxidants, anthocyanins, coffee, <I>Coffee arabica</I> L.,  maturity stages, pericarp. </font> <hr size="1" noshade>     <P>&nbsp;     <P>&nbsp;     <P>     <P>     <P><font size="3" face="Verdana"><B>INTRODUCCI&Oacute;N</B>  </font>     <P>     <P><font size="2" face="Verdana">El caf&eacute; en Colombia se destaca  por su amplia adaptabilidad a los diversos agroecosistemas y condiciones climatol&oacute;gicas  del pa&iacute;s y puede encontrarse desde alturas cercanas al nivel del mar hasta  los 2 000 m de altitud. Adem&aacute;s, los arbustos de caf&eacute; por sus caracter&iacute;sticas  de &aacute;rea cultivada constituyen h&aacute;bitat apropiado para muchas especies  de la fauna y flora nativas, favoreciendo la conservaci&oacute;n de los suelos  y la biodiversidad. Por otro lado, en los cafetales colombianos es posible encontrar  en cualquier &eacute;poca del a&ntilde;o ramas con frutos desde totalmente verdes  hasta sobremaduros e incluso con flores. Lo anterior implica que la calidad del  caf&eacute; cosechado puede variar en dependencia del m&eacute;todo de recolecci&oacute;n  y es necesario que los frutos en estado maduro se cosechen de manera selectiva  para su posterior proceso de beneficio, porque son estos los que al final impactar&aacute;n  la calidad del cultivo. Por lo tanto, su recolecci&oacute;n depender&aacute; del  estado de madurez de los frutos, que puede determinarse visualmente teniendo en  cuenta la coloraci&oacute;n de las cerezas o mediante presi&oacute;n con los dedos  y constatando una consistencia suave y un f&aacute;cil desprendimiento de su ped&uacute;nculo.  Desde el punto de vista medicinal, el caf&eacute; es considerado como un potente  estimulante y analg&eacute;sico, adem&aacute;s de poseer propiedades epidemiol&oacute;gicas,  afrodis&iacute;acas, contra diferentes enfermedades, entre otras;<SUP>1,2</SUP>  tambi&eacute;n se considera una importante fuente de sustancias funcionales como  las antocianinas, que han demostrado poseer una elevada capacidad antioxidante  en diversas investigaciones.<SUP>3,4</SUP> Estos compuestos se encuentran con  preferencia en la piel (pericarpio) del fruto y son los principales responsables  de su coloraci&oacute;n roja. El caf&eacute; maduro presenta una composici&oacute;n  en la cual el grano, que es la parte aprovechable para el proceso, representa  aproximadamente el 20 % del volumen total de la fruta, de manera tal que, el procesamiento  de beneficio genera 80 % del volumen procesado en calidad de desechos; cada uno  en un grado diferente constituye un riesgo para el medio ambiente si no se reutiliza  de una manera inteligente para otros prop&oacute;sitos. Aunque la piel del caf&eacute;  es pr&aacute;cticamente lignocelulosa y no tiene ning&uacute;n valor como fertilizante,  podr&iacute;a considerarse como una fuente importante de compuestos antioxidantes,  sobre todo antocianinas, pero tambi&eacute;n contiene todos los dem&aacute;s compuestos  polifen&oacute;licos, como el &aacute;cido clorog&eacute;nico y, por supuesto,  cafe&iacute;na. Esas sustancias pueden combinarse de varias maneras para hacer  una serie de aditivos a alimentos que pueden tener inter&eacute;s para la industria  del `alimento saludable'.<SUP>5,6</SUP> Por lo tanto, el objeto de este trabajo  consisti&oacute; en evaluar el contenido de antocianinas en diferentes estados  de maduraci&oacute;n, con el fin de potencializar la utilizaci&oacute;n de los  desechos del proceso de beneficio como potencial fuente de sustancias antioxidantes.  </font>     <P>&nbsp;     <P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font size="3" face="Verdana"><B>M&Eacute;TODOS</B></font><font size="2" face="Verdana">  </font>     <P>     <P><font size="2" face="Verdana"><I>Material vegetal: </I>las semillas  en diferentes estados de maduraci&oacute;n se recolectaron en el municipio de  Fredonia (suroeste del departamento de Antioquia), a 58 km de Medell&iacute;n  y una altitud aproximada de 1 800 m sobre el nivel del mar. El material recogido  se clasific&oacute; como, verde (C1), pint&oacute;n (C2), maduro (C3), sobremaduro  (C4) y pasilla (C5). Al grano se le realiz&oacute; el beneficio por el m&eacute;todo  seco y posteriormente el material se someti&oacute; a liofilizaci&oacute;n. </font>      <P><font size="2" face="Verdana"><I>Obtenci&oacute;n de los extractos</I>: un  gramo (1,0 g) de material liofilizado se macer&oacute; y despu&eacute;s, se realizaron  extracciones s&oacute;lido l&iacute;quido empleando como disolvente metanol acidulado  con &aacute;cido clorh&iacute;drico (99:1), por un periodo de 3 h con agitaci&oacute;n  constante a temperatura ambiente (25 &#186;C) y en ausencia de luz para evitar  la descomposici&oacute;n de las antocianinas. Los extractos obtenidos se filtraron  y se sometieron a rotoevaporaci&oacute;n a sequedad; luego se redisolvieron en  1,0 mL de metanol y se conservaron a 4 &#176;C hasta su posterior an&aacute;lisis.  </font>     <P><font size="2" face="Verdana"><I>Contenido de antocianinas totales  (TAC)</I>:<I> </I>se determin&oacute; de acuerdo con el m&eacute;todo de diferencial  de pH<SUP>7</SUP> con algunas modificaciones. Brevemente, una al&iacute;cuota  de la muestra (c.a. 1,0 mL) se coloc&oacute; en un bal&oacute;n volum&eacute;trico  de 25 mL y se ajust&oacute; el volumen con una soluci&oacute;n buffer de pH 1,0  (0,025 M cloruro de potasio). De manera similar otra al&iacute;cuota de la muestra  se coloc&oacute; en un bal&oacute;n volum&eacute;trico de 25 mL y se ajust&oacute;  el volumen con una soluci&oacute;n <I>buffer</I> de pH 4,5 (0,4 M acetato de sodio).  Posteriormente, la absorbancia se midi&oacute; a 510 y 700 nm, despu&eacute;s  de transcurridos 40 min de reacci&oacute;n para cada una de las soluciones contenidas  en los balones. La absorbancia final se calcul&oacute; con la <a href="#ec1">expresi&oacute;n</a>:  </font>     <P><font size="2" face="Verdana">Abs= [(A510 A700)<SUB>pH 1,0</SUB>] [(A510  A700)<SUB>pH 4,5</SUB>] <a name="ec1"></a></font>     <P>     <P><font size="2" face="Verdana">y  el TAC se hall&oacute; sobre la base de la <a href="#ec2">ecuaci&oacute;n</a>:  </font>     <P><font size="2" face="Verdana">TAC (mg/L)= (Abs&#215;PM&#215;FD&#215;1  000)(<font face="Symbol" size="3">'</font><font face="Symbol"> </font>&#215; 1)  <a name="ec2"></a></font>     <P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font size="2" face="Verdana">Donde, Abs es la  absorbancia, PM el peso molecular (449,2) para la cianidin-3-gluc&oacute;sido,  FD, el factor de diluci&oacute;n y <font size="2" face="Verdana"><font face="Symbol" size="3">'</font></font>,  la constante de absortividad molar (29,600). El resultado se expres&oacute; como  mg de cianidin-3-gluc&oacute;sido por litro de soluci&oacute;n. Los valores de  TAC se normalizaron todos como contenido de cianidin-3-gluc&oacute;sido. Todos  los experimentos se realizaron por triplicado. </font>     <P><font size="2" face="Verdana"><I>Ensayo  de decoloraci&oacute;n del cati&oacute;n radical <font face="Symbol">a</font>-<font face="Symbol">a</font>-difenil-&szlig;-picrilhidrazilo  (DPPH&#183;): </I>la capacidad antioxidante de cada fracci&oacute;n en diferentes  concentraciones se determin&oacute; de acuerdo con la metodolog&iacute;a descrita  por <I>Puertas</I>-<I>Mej&iacute;a</I> y otros,<SUP>8</SUP> con algunas modificaciones  y se determin&oacute; la concentraci&oacute;n efectiva (EC<SUB>50</SUB>) a la  cual el 50 % de DPPH fue removido. En resumen, una al&iacute;cuota (0,080 mL)  de cada muestra (con la diluci&oacute;n necesaria) se adicion&oacute; a 1,920  mL de una soluci&oacute;n etan&oacute;lica de DPPH (80,5 &#181;M). A continuaci&oacute;n,  se midi&oacute; la absorbancia a 514 nm y luego cada 30 s los primeros 2 min,  despu&eacute;s, cada minuto hasta los 5 min, y finalmente en intervalos de 5 min  hasta la obtenci&oacute;n del estado estacionario en la reacci&oacute;n o una  disminuci&oacute;n en la absorbancia menor que 10 %. La concentraci&oacute;n inicial  exacta del DPPH en el medio de reacci&oacute;n se determin&oacute; mediante una  curva de calibraci&oacute;n de soluciones de DPPH (5 a 80 &#181;M) medidas a 514  nm. Todos los experimentos se realizaron por triplicado. </font>     <P><font size="2" face="Verdana"><I>Ensayo  de FRAP (ferric reducing/antioxidant power):</I> se us&oacute; el m&eacute;todo  descrito en <I>Puertas-Mej&iacute;a</I> y otros<SUP>9</SUP> con algunas modificaciones.  Una al&iacute;cuota (0,10 mL) de cada muestra se adicion&oacute; a 0,9 mL de una  soluci&oacute;n que conten&iacute;a el reactivo de FRAP (<I>buffer</I> de acetato  de sodio 0,3 &micro;M, pH 3,6; 10 &micro;M de tripiridiltriazina (TPTZ) en una  soluci&oacute;n 40 mM de HCl y 20 &micro;M FeCl<SUB>3</SUB>6H<SUB>2</SUB>O) y  la mezcla de reacci&oacute;n se incub&oacute; por 30 min a 37 &#176;C. La absorbancia  se determin&oacute; a 593 nm. La capacidad de las muestras de reducir el ion f&eacute;rrico  se calcul&oacute; a partir de la curva de calibraci&oacute;n y la capacidad antioxidante  se expres&oacute; como miligramos de &aacute;cido asc&oacute;rbico por 100 g de  muestra seca. Los an&aacute;lisis se hicieron en cubetas desechables (1 cm x 1  cm x 4,5 cm). Todos los ensayos se realizaron por triplicado. </font>     <P><font size="2" face="Verdana"><I>Ensayo  ORAC</I> (<I>oxygen radical absorbance capacity</I>): se utiliz&oacute; la metodolog&iacute;a  descrita en <I>Ou</I> y otros<SUP>10</SUP> con peque&ntilde;as modificaciones.  Se emplearon soluciones de fluoresce&iacute;na 1x10<SUP>-2</SUP> M en PBS (75  mM), radical AAPH [2,2'-azobis(2-amidino-propane) dihydrochloride] 0,6 M en PBS  (75 mM). Al&iacute;cuotas de 50,0 &#181;L de extracto previamente diluido (1:1  000) se mezclaron con 2,9 mL de una soluci&oacute;n <I>buffer</I> pH= 7,4; 30,0  &micro;L de soluci&oacute;n de fluoresce&iacute;na y finalmente 50,0 &micro;L  de soluci&oacute;n de radical libre AAPH. Las lecturas se realizaron a <font face="Symbol">a</font>  de excitaci&oacute;n de 483 nm, y la toma de datos se realiz&oacute; a <font face="Symbol">a</font>  de emisi&oacute;n de 515 nm, con un tiempo de reacci&oacute;n de 40 min. Como  sustancia de referencia se us&oacute; Trolox. El efecto protector del antioxidante  se calcul&oacute; usando las diferencias de &aacute;reas bajo la curva de decaimiento  de la fluoresce&iacute;na entre el blanco y la muestra, la cual se compar&oacute;  con la curva del Trolox y los datos se expresaron en micromoles equivalentes de  Trolox por gramo de muestra (&#181;mol Trolox/g muestra), de acuerdo con la <a href="#ec3">ecuaci&oacute;n</a>  siguiente: </font>     <P>     <P><font size="2" face="Verdana">ORAC = [(AUC-AUC&#176;)/(AUC<SUB>Trolox-AUC&#176;</SUB>)]x  F x Conc<SUB>Trolox</SUB> </font> <a name="ec3"></a>     <P>     <P><font size="2" face="Verdana">Donde  AUC es el &aacute;rea bajo la curva de la muestra, AUC&#176; &aacute;rea bajo  la curva para el control, AUC<SUB>Trolox</SUB> &aacute;rea bajo la curva para  el Trolox, y <I>F </I>es el factor de diluci&oacute;n de los extractos. Todos  los ensayos se realizaron por triplicado. Todos los experimentos de actividad  antioxidante se hicieron en un espectrofot&oacute;metro <I>ThermoSpectronic Genesis</I>  2. </font>     <P>     <P><font size="2" face="Verdana"><I>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</I>  </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>     <P><font size="2" face="Verdana">Los diferentes valores mostrados  en las tablas y figuras corresponden al promedio &#177; las desviaciones est&aacute;ndares  de tres mediciones en paralelo. </font>     <P>     <P>&nbsp;     <P><font size="2" face="Verdana"><B><font size="3">RESULTADOS  </font></B> </font>     <P>     <P><font size="2" face="Verdana">En la <a href="#fig1">figura</a>  se observan los diferentes estados de maduraci&oacute;n del material recolectado  para el presente estudio. Estos fueron seleccionados de manera manual y de un  mismo cultivo. </font>     <P>&nbsp;     <P align="center"><img src="/img/revistas/pla/v17n4/f0107412.jpg" width="580" height="436"><a name="fig1"></a>      
<P><font size="2" face="Verdana">La obtenci&oacute;n de antocianinas a partir  del pericarpio del fruto de caf&eacute; aument&oacute; durante el proceso de maduraci&oacute;n,  alcanzando un m&aacute;ximo de concentraci&oacute;n en el estado sobremaduro y  una p&eacute;rdida de casi 95 % en el estado pasilla (<a href="/img/revistas/pla/v17n4/t0107412.gif">tabla  1</a>). De acuerdo con los resultados, hay buena correlaci&oacute;n entre el rendimiento  de la extracci&oacute;n y el contenido de antocianinas en todos los extractos  de <I>C. arabica</I> evaluados, como era de esperarse, porque son los principales  responsables de la coloraci&oacute;n de la cereza de caf&eacute; y adicionalmente  son los indicadores de la calidad de los frutos y tambi&eacute;n de la frescura  de sus productos procesados. </font>     
]]></body>
<body><![CDATA[<P><font size="2" face="Verdana">El potencial  antioxidante de los diferentes extractos se indica en la <a href="/img/revistas/pla/v17n4/t0207412.gif">tabla  2</a>. </font>     
<P><font size="2" face="Verdana">Aunque todos presentaron una excelente  capacidad antioxidante, el extracto C2, proveniente de los granos en estado pint&oacute;n  (<I>semimaduro</I>) fue el que present&oacute; mayor actividad, seguido del estado  <I>sobremaduro</I>, disminuyendo esta actividad en los dem&aacute;s extractos.  No obstante, todos los extractos mostraron un alto potencial antioxidante comparado  con sustancias de reconocidas propiedades antioxidantes como el &aacute;cido asc&oacute;rbico  y <font color="#000000">el BHA.</font></font>     <P>&nbsp;     <P>     <P><font size="2" face="Verdana"><B><font size="3">DISCUSI&Oacute;N</font></B>  </font>     <P>     <P><font size="2" face="Verdana">La importancia de identificar y cuantificar  los constituyentes con capacidad antioxidante presentes en las matrices vegetales  se revierte en un mayor valor agregado a estas cuando se considera su importancia  a nivel de la salud y la protecci&oacute;n que pueden ofrecer contra diferentes  enfermedades, lo cual conduce a un creciente inter&eacute;s de los fabricantes  de alimentos y de los consumidores hacia la tendencia por elaborar estos con valores  espec&iacute;ficos para la salud. Por lo tanto, la capacidad antioxidante se utiliza  com&uacute;nmente como un buen indicador de la potencialidad de ciertos alimentos  a ser consumidos con mayor frecuencia. No obstante, es importante tener en cuenta  que para un mismo extracto puede existir o no una correlaci&oacute;n directa entre  la cantidad de estos componentes funcionales y el m&eacute;todo que eval&uacute;a  la capacidad antioxidante. Esta afirmaci&oacute;n se justificar&iacute;a si se  analizan los distintos compuestos fen&oacute;licos que pueden existir en un extracto.  Por ejemplo, el extracto <I>C2</I> con una concentraci&oacute;n de antocianinas  menor comparada con el extracto <I>C4</I>, present&oacute; un mayor efecto antioxidante,  lo cual puede ser explicado por la presencia de compuestos diferentes a las antocianinas,  como el &aacute;cido clorog&eacute;nico y el &aacute;cido cafeico previamente  encontrado y estudiado en el caf&eacute;,<SUP>2,11,12</SUP> que contribuyen a  aumentar el potencial antioxidante. <I>Salgado</I><SUP>13</SUP> y otros realizaron  un estudio similar en las hojas del caf&eacute; y encontraron un mayor contenido  de fenoles en las hojas m&aacute;s j&oacute;venes que en las maduras con fruto  (174,0 mg.g<SUP>-1</SUP> y 138,9 mg.g<SUP>-1</SUP>, respectivamente) y sin formaci&oacute;n  de fruto (186,5 mg.g<SUP>-1</SUP> y 127,6 mg.g<SUP>-1</SUP>, respectivamente).  Luego, al comparar los resultados de diferentes extractos por diversos autores,  se debe considerar que la eficiencia de los compuestos antioxidantes depende fuertemente  de las condiciones de oxidaci&oacute;n, del sustrato oxidable presente y del m&eacute;todo  seleccionado para determinar la capacidad antioxidante. </font>     <P><font size="2" face="Verdana">El  desarrollo de esta investigaci&oacute;n genera un valor agregado importante sobre  un desecho directo originado durante el proceso de beneficio del caf&eacute;,  porque el pericarpio se desecha sobre todo para alimentos de animales. Luego,  los resultados presuponen una potencial utilizaci&oacute;n de este subproducto  con propiedades antioxidantes, que podr&iacute;a ser apto en el desarrollo de  alimentos para consumo humano. Este trabajo es el primer estudio reportado en  Colombia conocido hasta ahora por los autores que comprende la valoraci&oacute;n  de uno de los subproductos de la industria del caf&eacute; como origen de agentes  antioxidantes. En conclusi&oacute;n, los frutos de caf&eacute; desechados durante  su beneficio podr&iacute;an ser usados como fuentes alternativas de compuestos  funcionales con altas posibilidades de ser empleados como aditivos, bien sea en  el incremento del color de los productos (alimentos, cosm&eacute;ticos, etc.)  o como antioxidantes en la industria alimentaria, farmac&eacute;utica, de aromas  y en la medicina tradicional, entre otras.</font>     <P>&nbsp;     <P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font size="3" face="Verdana"><B>AGRADECIMIENTOS</B>  </font>     <P>     <P><font size="2" face="Verdana">Este trabajo fue desarrollado en  el Grupo de Investigaci&oacute;n en Compuestos Funcionales de la Universidad de  Antioquia. Todos los experimentos se realizaron bajo las normas y leyes colombianas.</font>      <P>&nbsp;     <P>     <P><font size="3" face="Verdana"><B>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</B>  </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">1. Higdon JV, Frei B. Coffee and Health:  A review of recent human research. Critical Reviews. Food Science and Nutrition.  2006;46(2):101-23.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">2. Sisodia S, Bisht  S. <i>Coffee arabica</i>: A wonder gift to medical science. J Natural Pharmaceuticals.  2010;1(1):58-65.     </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">3. Segura-Carretero  A, Puertas-Mej&iacute;a MA, Cortacero-Ram&iacute;rez S. Selective extraction,  separation, and identification of anthocyanins from <I>Hibiscus sabdariffa</I>  L. using solid phase extraction-capillary electrophoresis-mass spectrometry (time-of-flight/ion  trap). Electrophoresis. 2008;29(13):2852-61.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">4.  Sun J, Peng H, Su W. Anthocyanins extracted from rambutan (<i>Nephelium lappaceum</i>  L.) pericarp tissues as potential natural antioxidants. J Food Biochemistry. 2011;35(5):1461-7.      </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">5. Orozco AL, P&eacute;rez MI, Guevara  O. Biotechnological enhancement of coffee pulp residues by solid-state fermentation  with Streptomyces. PyGC/MS analysis. J Analytical Applied Pyrolysis. 2008;81(2):247-52.      </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">6. Pandey A, Soccol CR, Nigam P. Biotechnological  potential of coffee pulp and coffee husk for bioprocesses. Biochemical Engineering  J. 2000;6(2):153-62.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">7. Lee J, Durst  RW, Wrolstad RE. Determination of total monomeric anthocyanin pigment content  of fruit juices, beverages, natural colorants, and wines by the pH differential  method: Collaborative study. J AOAC International. 2005;88(5):1269-78.     </font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">8. Puertas MM, Mesa V A, S&aacute;ez V J. <I>In  vitro</I> radical scavenging activity of two Colombian Magnoliaceae. Naturwissenschaften.  2005;92(8):381-4.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">9. Puertas-Mej&iacute;a  M, G&oacute;mez-Chabala L, Rojano B. Capacidad antioxidante in vitro de fracciones  de hojas de Piper peltatum L. Rev Cubana Plant Med. 2009;14(2):1-11.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">10.  Ou B, Hampsch-Woodill M, Prior RL. Development and validation of an improved oxygen  radical absorbance capacity assay using fluorescein as the fluorescent probe.  J Agricultural Food Chemistry. 2001;49(10):4619-26.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">11.  Madhava Naidu M, Sulochanamma G, Sampathu SR. Studies on extraction and antioxidant  potential of green coffee. Food Chemistry. 2008;107(1):377-84.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">12.  Ramalakshmi K, Kubra IR, Rao LJM. Physicochemical characteristics of green coffee:  Comparison of graded and defective beans. J Food Science. 2007;72(5):S333-S7.      </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">13. Salgado PR, Favarin JL, Leandro RA.  Total phenol concentrations in coffee tree leaves during fruit development. Sci  Agric (Piracicaba, Braz). 2008;65(4):354-9.     </font>     <P>&nbsp;     <P>&nbsp;     <P>     <P><font size="2" face="Verdana">Recibido:  14 de febrero de 2012.     <br> Aprobado: 19 de junio de 2012. </font>     <P>&nbsp;     <P>&nbsp;     <P><font size="2" face="Verdana"><I>Miguel  A. Puertas-Mej&iacute;a</I>. Instituto de Qu&iacute;mica, Facultad de Ciencias  Exactas y Naturales, Universidad de Antioquia. A.A. 1226. Medell&iacute;n, Colombia.  Tel&eacute;f.: +57(4) 219 5653; Fax: +57(4) 219 8612. Correo electr&oacute;nico:  <U><FONT  COLOR="#0000ff"><a href="mailto:mpuertas@exactas.udea.edu.co">mpuertas@exactas.udea.edu.co</a></FONT></U>  </font>      ]]></body>
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