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<journal-title><![CDATA[Revista Cubana de Plantas Medicinales]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Actividad antioxidante in vitro y toxicidad de extractos hidroalcohólicos de hojas de Citrus spp. (Rutaceae)]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antioxidant activity in vitro and toxicity of hydroalcoholic extracts from Citrus spp. (Rutaceae) leaves]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad Central Marta Abreu  ]]></institution>
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<self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S1028-47962012000400008&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S1028-47962012000400008&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S1028-47962012000400008&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Introducción: los cítricos constituyen un género de plantas rico en contenido de fenoles y flavonoides, metabolitos secundarios que debido a su efecto antioxidante y baja toxicidad, han recibido en los últimos años mucha atención como potenciales fármacos. Objetivos: determinar la actividad antioxidante in vitro y la toxicidad frente a Artemia salina L. de extractos hidroalcohólicos de hojas de Citrus aurantium L. var. sinensis L.; Citrus aurantium L.; Citrus aurantiifolia (Christm.) Swingle; Citrus latifolia (Tanaka ex Yu. Tanaka) Tanaka; Citrus reticulata Blanco (Rutaceae). Métodos: los extractos etanólicos y metanólicos se obtuvieron mediante extracción por ultrasonido y se caracterizaron fitoquímicamente; se determinó la concentración total de fenoles y flavonoides. La actividad antioxidante se halló mediante la capacidad atrapadora de radicales libre y el poder reductor. La toxicidad se evaluó mediante el bioensayo de letalidad sobre Artemia salina. Resultados: en los extractos etanólicos se encontró mayor presencia de compuestos químicos que en los extractos metanólicos. La mayor concentración de fenoles totales se obtuvo en el extracto metanólico de Citrus reticulata y de flavonoides totales en el extracto etanólico de Citrus aurantifolia y Citrus reticulata, en ambos solventes. Todos los extractos mostraron actividad antioxidante mediante las 2 pruebas ensayadas. Los extractos presentaron toxicidad moderada frente Artemia salina, siendo el extracto metanólico de Citrus latifolia el de menor toxicidad (LC50 = 464,24 µg/mL). Conclusiones: se evidenció la presencia de fenoles y clases de flavonoides, la actividad antioxidante de los extractos hidroalcohólicos de Citrus spp. y su moderada toxicidad frente a Artemia salina.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: citrus fruits constitute an important source of flavonoids and phenols. The latter are secondary metabolites extensively studied in the last few years on account of their antioxidant effect and low toxicity and of their potentialities as pharmaceuticals. Objectives: to determine the in vitro antioxidant activity and toxicity against Artemia salina of hydroalcoholic extracts obtained from leaves of Citrus aurantium L. var. sinensis L.; Citrus aurantium L.; Citrus aurantiifolia (Christm.) Swingle; Citrus latifolia (Tanaka ex Yu. Tanaka) Tanaka, Citrus reticulata Blanco (Rutaceae). Methods: the ethanol and methanol extracts were obtained by ultrasound-assisted extraction method, and characterized using phytochemistry assays; the total amount of phenols and flavonoids was also determined. The antioxidant activity was estimated by the free radical scavenging activity and reducing power. The toxicity of the extracts was evaluated against Artemia salina. Results: the amount of chemical compounds was higher in ethanol than in methanol extracts. The highest concentration of total phenols was found in methanol extract from Citrus reticulate where that of total flavonoids was seen in the ethanolic extracts from Citrus aurantiifolia and Citrus reticulate, in both solvents. The extracts showed antioxidant activity after the two tests. All the extracts presented moderate toxicity against Artemia salina, being the methanol extract from Citrus latifolia the least toxic (LC50= 464.24 µg/mL). Conclusions: this study showed the existence of phenols and flavonoids, the antioxidant activity of hydroalcoholic extracts from Citrus spp. leaves and their moderate toxicity against Artemia salina.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[actividad antioxidante]]></kwd>
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<kwd lng="es"><![CDATA[cítricos]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <div align="right">     <p><font size="2" face="Verdana"><B>ART&Iacute;CULO ORIGINAL</B>  </font></p>    <p>&nbsp; </p></div>    <P>     <P><font size="2" face="Verdana"><b><font size="4">Actividad  antioxidante <I>in vitro</I> y toxicidad de extractos hidroalcoh&oacute;licos  de hojas de <I>Citrus</I> spp. (Rutaceae)</font></b> </font>     <P>&nbsp;     <P>     <P><font size="2" face="Verdana"><B><font size="3">Antioxidant  activity <I>in vitro</I> and toxicity of hydroalcoholic extracts from<I> Citrus</I>  spp. (Rutaceae) leaves</font></B> </font>     <P>&nbsp;     <P>&nbsp;     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>     <P><b><font size="2" face="Verdana">MSc.  Katia Ojito Ramos, Lic. Yamila Herrera S&aacute;nchez, Lic. Nadine Vega P&eacute;rez,  Dr. C. Orelvis Portal Villafa&ntilde;a </font></b>     <P>     <P><font size="2" face="Verdana">Universidad  Central &quot;Marta Abreu&quot; de Las Villas. Villaclara, Cuba. </font>     <P>&nbsp;     <P>&nbsp;  <hr size="1" noshade> <font size="2" face="Verdana"><b>RESUMEN</b></font><B></B>      <P><font size="2" face="Verdana"><B>Introducci&oacute;n: </b>los c&iacute;tricos  constituyen un g&eacute;nero de plantas rico en contenido de fenoles y flavonoides,  metabolitos secundarios que debido a su efecto antioxidante y baja toxicidad,  han recibido en los &uacute;ltimos a&ntilde;os mucha atenci&oacute;n como potenciales  f&aacute;rmacos. <B>    <br> Objetivos: </B>determinar la actividad antioxidante <I>in  vitro </I>y la toxicidad frente a <I>Artemia salina </I>L. de extractos hidroalcoh&oacute;licos  de hojas de <I>Citrus aurantium </I>L. var.<I> sinensis</I> L.; <I>Citrus aurantium</I>  L.; <I>Citrus aurantiifolia </I>(Christm.) Swingle<I>; Citrus latifolia </I>(Tanaka  ex Yu. Tanaka) Tanaka; <I>Citrus reticulata </I>Blanco (Rutaceae). <B>    <br> M&eacute;todos:</B>  los extractos etan&oacute;licos y metan&oacute;licos se obtuvieron mediante extracci&oacute;n  por ultrasonido y se caracterizaron fitoqu&iacute;micamente; se determin&oacute;  la concentraci&oacute;n total de fenoles y flavonoides. La actividad antioxidante  se hall&oacute; mediante la capacidad atrapadora de radicales libre y el poder  reductor. La toxicidad se evalu&oacute; mediante el bioensayo de letalidad sobre  <I>Artemia salina.</I> <B>    <br> Resultados:</B> en los extractos etan&oacute;licos  se encontr&oacute; mayor presencia de compuestos qu&iacute;micos que en los extractos  metan&oacute;licos. La mayor concentraci&oacute;n de fenoles totales se obtuvo  en el extracto metan&oacute;lico de <I>Citrus reticulata </I>y de flavonoides  totales en el extracto etan&oacute;lico de <I>Citrus aurantifolia</I> y <I>Citrus  reticulata, </I>en ambos solventes. Todos los extractos mostraron actividad antioxidante  mediante las 2 pruebas ensayadas. Los extractos presentaron toxicidad moderada  frente <I>Artemia salina</I>, siendo el extracto metan&oacute;lico de <I>Citrus  latifolia </I>el de menor toxicidad (LC<SUB>50 </SUB>= 464,24 &micro;g/mL). <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>  Conclusiones: </B>se evidenci&oacute; la presencia de fenoles y clases de flavonoides,  la actividad antioxidante de los extractos hidroalcoh&oacute;licos de <I>Citrus</I>  spp. y su moderada toxicidad frente a <I>Artemia salina</I>. </font>     <P>     <P><font size="2" face="Verdana"><B>Palabras  clave:</B> actividad antioxidante, <I>Artemia salina,</I> c&iacute;tricos<I>,</I>  flavonoides.</font> <hr size="1" noshade> <font size="2" face="Verdana"><b>ABSTRACT</b></font>      <p><B> </B><font size="2" face="Verdana"><B>Introduction: </b>citrus fruits constitute  an important source of flavonoids and phenols. The latter are secondary metabolites  extensively studied in the last few years on account of their antioxidant effect  and low toxicity and of their potentialities as pharmaceuticals. <B>    <br> Objectives:</B>  to determine the <I>in vitro</I> antioxidant activity and toxicity against <I>Artemia  salina</I> of hydroalcoholic extracts obtained from leaves of <I>Citrus aurantium  </I>L. var.<I> sinensis</I> L.; <I>Citrus aurantium</I> L.; <I>Citrus aurantiifolia  </I>(Christm.) Swingle<I>; Citrus latifolia </I>(Tanaka ex Yu. Tanaka) Tanaka,  <I>Citrus reticulata </I>Blanco (Rutaceae). <B>    <br> Methods:</B> the ethanol and  methanol extracts were obtained by ultrasound-assisted extraction method, and  characterized using phytochemistry assays; the total amount of phenols and flavonoids  was also determined. The antioxidant activity was estimated by the free radical  scavenging activity and reducing power. The toxicity of the extracts was evaluated  against <I>Artemia salina</I>. <B>    <br> Results: </B>the amount of chemical compounds  was higher in ethanol than in methanol extracts. The highest concentration of  total phenols was found in methanol extract from <I>Citrus reticulate </I>where  that of total flavonoids was seen in the ethanolic extracts from <I>Citrus aurantiifolia  </I>and <I>Citrus reticulate</I>, in both solvents. The extracts showed antioxidant  activity after the two tests. All the extracts presented moderate toxicity against  <I>Artemia salina</I>, being the methanol extract from <I>Citrus latifolia </I>the  least toxic (LC<SUB>50</SUB>= 464.24 &micro;g/mL). <B>    <br> Conclusions:</B> this  study showed the existence of phenols and flavonoids, the antioxidant activity  of hydroalcoholic extracts from <I>Citrus</I> spp. leaves and their moderate toxicity  against <I>Artemia salina. </I> </font> </p><B></B>     <P>     <P><font size="2" face="Verdana"><B>Keywords:</B>  antioxidant activity, <I>Artemia salina</I>, citrus fruits<I>, </I>flavonoids.  </font> <hr size="1" noshade>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>     <P>     <P>&nbsp;     <P>&nbsp;     <p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b>  </font>     <P>     <P><font size="2" face="Verdana">Muchas enfermedades que se presentan  con frecuencia en la actualidad como el c&aacute;ncer, la aterosclerosis, la diabetes  mellitus, las enfermedades glomerulares renales, cardiovasculares, coronarias  y enfermedades cerebrales asociadas al envejecimiento, entre otras, son producidas  por estr&eacute;s oxidativo. Recientemente, se ha dirigido gran atenci&oacute;n  hacia el desarrollo de medicamentos de origen vegetal con el fin de tratar diversas  enfermedades relacionadas con el estr&eacute;s oxidativo, para ello se precisa  de investigaciones acerca de plantas con alto poder antioxidante y baja toxicidad.  </font>     <P><font size="2" face="Verdana">En Cuba, el empleo de las plantas medicinales  se ha extendido en los &uacute;ltimos a&ntilde;os, sin embargo a pesar de que  han existido avances en este sentido, a&uacute;n hay d&eacute;ficit de investigaciones  sobre la extracci&oacute;n de compuestos bioactivos de las plantas y la demostraci&oacute;n  de su actividad fisiol&oacute;gica, de manera que se faciliten los estudios farmacol&oacute;gicos,  as&iacute; como la s&iacute;ntesis de medicamentos. En correspondencia con la  evaluaci&oacute;n farmacol&oacute;gica de las plantas medicinales se encuentra  su estudio toxicol&oacute;gico, el cual permite rechazar o avalar la continuidad  del proceso investigativo y el uso de un medicamento de origen vegetal.<SUP>1</SUP>  Uno de los bioensayos m&aacute;s utilizados con este fin es el ensayo con <I>Artemia  salina </I>L., debido a que sus nauplios son muy sensibles a gran variedad de  sustancias y se considera &uacute;til, r&aacute;pido y simple para predecir la  toxicidad de extractos de plantas.<SUP>2</SUP> </font>     <P><font size="2" face="Verdana">El  g&eacute;nero <I>Citrus, </I>perteneciente a la familia Rutaceae, se considera  un g&eacute;nero cosmopolita, con abundante representaci&oacute;n en la regi&oacute;n  tropical. Las plantas pertenecientes a este g&eacute;nero son bien conocidas por  el hombre, no solo por el consumo de sus frutos, de alta demanda a nivel mundial,  sino tambi&eacute;n por sus propiedades curativas. Los c&iacute;tricos deben su  actividad biol&oacute;gica, en gran medida, a la presencia de fenoles; entre ellos,  los flavonoides, metabolitos secundarios que se oxidan f&aacute;cilmente, por  lo que constituyen potentes antioxidantes.<SUP>3-5</SUP> La mayor&iacute;a de  los trabajos publicados sobre las propiedades antioxidantes de los c&iacute;tricos  se centran en extractos obtenidos a partir de los frutos, son pocos los estudios  sobre las propiedades de otros &oacute;rganos a&eacute;reos de la planta como  las hojas. Estas plantas fructifican solo una vez al a&ntilde;o, sin embargo,  presentan hojas durante todo este tiempo que como parte de las estrategias de  cultivo muchas veces son podadas y constituyen un material de desecho. ser&iacute;a  de gran utilidad la obtenci&oacute;n de extractos a partir de las hojas de estas  especies, con el prop&oacute;sito de desarrollar un producto farmacol&oacute;gico  con actividad biol&oacute;gica demostrada, de poca toxicidad y bajo costo de producci&oacute;n.  El objetivo del presente trabajo radic&oacute; en determinar la actividad antioxidante  <I>in vitro </I>y la toxicidad frente a <I>Artemia salina </I>de extractos de  hojas de cinco especies de c&iacute;tricos naturalizados en Cuba. </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>&nbsp;      <P><font size="3" face="Verdana"><b>M&Eacute;TODOS</b></font><font size="2" face="Verdana"></font>      <P>     <P><font size="2" face="Verdana"><I>Preparaci&oacute;n de los extractos</I>  </font>     <P>     <P><font size="2" face="Verdana">Las hojas de naranjo dulce<I> </I>(<I>Citrus  aurantium </I>L. var.<I> sinensis</I> L.), naranjo agrio (<I>Citrus aurantium</I>  L.), lim&oacute;n criollo<I> </I>(<I>Citrus aurantiifolia </I>(Christm.) Swingle),  lima persa (<I>Citrus latifolia </I>(Tanaka ex Yu. Tanaka) Tanaka) y mandarina  (<I>Citrus reticulata </I>Blanco) se recolectaron en &aacute;reas del Centro de  Estudio Jard&iacute;n Bot&aacute;nico de la Universidad Central &quot;Marta Abreu&quot;  de Las Villas, se identificaron taxon&oacute;micamente y una muestra de cada especie  se deposit&oacute; en el herbario de la instituci&oacute;n<FONT  COLOR="#ff0000"> </FONT>(O. M&eacute;ndez No. 9882, 9878, 9884, 9885, 9883 (UCLV)).  El material vegetal se lav&oacute; con agua destilada, se sec&oacute; a 60 &#176;C  durante 12 h y se pulveriz&oacute; en molino de cinco pulgadas (Chrisly &amp;  Norris, Chelmesford, Gran Breta&ntilde;a). </font>     <P><font size="2" face="Verdana">A  1 g del material pulverizado se le adicion&oacute; 20 mL de etanol o metanol 70  %. Las soluciones se sometieron a ultrasonido (<I>Ultrasonic Cell Crusher</I>,  Scientz-llD, China), durante 20 min y se filtraron al vac&iacute;o. Se obtuvieron  5 extractos en etanol 70 %: naranjo agrio (NA-et), naranjo dulce (ND-et), lim&oacute;n  criollo (LMN-et), lima persa (LMA-et), mandarina (MAN-et); y 5 en metanol 70 %:  naranjo agrio (NA-met), naranjo dulce (ND-met), lim&oacute;n criollo (LMN-met),  lima persa (LMA-met) y mandarina (MAN-met). </font>     <P>     <P><font size="2" face="Verdana"><I>Caracterizaci&oacute;n  fitoqu&iacute;mica</I> </font>     <P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font size="2" face="Verdana">Se realiz&oacute;  acorde al m&eacute;todo descrito por <I>Schabra</I> y otros.<SUP>5</SUP> Se evalu&oacute;  la presencia de saponinas, fenoles, taninos, amino&aacute;cidos, aminas, coumarinas,  quinonas, alcaloides, triterpenos, esteroides y flavonoides. Todas las determinaciones  se hicieron por triplicado. </font>     <P>     <P><font size="2" face="Verdana"><I>Cuantificaci&oacute;n  de compuestos fen&oacute;licos</I> </font>     <P>     <P><font size="2" face="Verdana">Se  realiz&oacute; seg&uacute;n el m&eacute;todo descrito por <i>Tuberoso</i> y otros<SUP>6</SUP>,  con modificaciones. El contenido de fenoles totales se determin&oacute; mediante  extrapolaci&oacute;n en una curva de calibraci&oacute;n, empleando como patr&oacute;n  &aacute;cido g&aacute;lico a diferentes concentraciones y se expres&oacute; en  mg de &aacute;cido g&aacute;lico/mL extracto. Todas las determinaciones se hicieron  por triplicado. </font>     <P><font size="2" face="Verdana">La cuantificaci&oacute;n  del contenido de flavonoides totales se realiz&oacute; empleando el m&eacute;todo  NaNO<SUB>2 </SUB>- AlCl<SUB>3</SUB>,<SUP>7</SUP> con modificaciones. El contenido  de flavonoides total se determin&oacute; por extrapolaci&oacute;n en una curva  de calibraci&oacute;n, utilizando como patr&oacute;n quercetina a diferentes concentraciones  y se expres&oacute; en mg de quercetina/mL extracto. Las determinaciones se hicieron  por triplicado. </font>     <P>     <P><font size="2" face="Verdana"><I>Determinaci&oacute;n  de la actividad antioxidante in vitro</I> </font>     <P>     <P><font size="2" face="Verdana">La  capacidad atrapadora de radicales libres de los extractos se determin&oacute;  mediante el m&eacute;todo con ABTS [2,2'-azinobis-(3-etilbezotiazoline-6-&aacute;cido  sulf&oacute;nico)],<SUP>8</SUP> usando &aacute;cido asc&oacute;rbico y quercetina  como patrones antioxidantes. Se evaluaron los extractos a diferentes concentraciones  de flavonoides totales (0,5, 1,0, 1,5 mg/mL). El porcentaje de inhibici&oacute;n  de la absorbancia se calcul&oacute; seg&uacute;n la f&oacute;rmula [(A<SUB>0</SUB>  A)/A<SUB>0</SUB>] x 100), donde A<SUB>0</SUB> es la absorbancia de ajuste de la  soluci&oacute;n de ABTS<B>.</B>+ y A es la absorbancia despu&eacute;s de trascurrir  1 min de adicionada la muestra. Seg&uacute;n el porcentaje de inhibici&oacute;n  de la absorbancia se consider&oacute; la capacidad de atrapar radicales libres  de cada extracto. Cada determinaci&oacute;n se hizo por triplicado. </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font size="2" face="Verdana">La  determinaci&oacute;n del poder reductor de los extractos vegetales y de los patrones  antioxidantes de quercetina y &aacute;cido asc&oacute;rbico se realiz&oacute;  seg&uacute;n el m&eacute;todo descrito por <I>Pan</I> y otros<SUP>9</SUP>. Se  evaluaron los extractos a diferentes concentraciones de flavonoides totales (12,5;  25; 50; 200 y 400 &#181;g/mL). Se consider&oacute; el aumento de la absorbancia  como indicador del poder reductor de los extractos. Cada determinaci&oacute;n  se realiz&oacute; por triplicado. </font>     <P><font size="2" face="Verdana"><I>Letalidad  frente a Artemia salina</I> </font>     <P>     <P><font size="2" face="Verdana">Se valor&oacute;  la toxicidad <I>in vitro</I> mediante el ensayo de letalidad frente a <I>A. salina</I>.<SUP>2</SUP>  Se evaluaron 3 concentraciones de los extractos: 10, 100 y 1 000 &micro;g/mL.  Se emplearon como controles los solventes metanol y etanol 70 % y se realiz&oacute;  por triplicado. La toxicidad de los extractos se expres&oacute; como porcentaje  de mortalidad de los nauplios de <I>A. salina </I>y<I> </I>se interpret&oacute;  de la forma siguiente: 0-10 % no t&oacute;xico, 11-50 % moderadamente t&oacute;xico,  51-90 % altamente t&oacute;xico y 100 % extremadamente t&oacute;xico. Los porcentajes  de mortalidad se graficaron en funci&oacute;n de la concentraci&oacute;n utilizada,  se obtuvo la l&iacute;nea de tendencia potencial, a partir de la ecuaci&oacute;n  de la gr&aacute;fica obtenida se determin&oacute; la concentraci&oacute;n letal  para 50 % de la poblaci&oacute;n expuesta (CL<SUB>50</SUB>). </font>     <P>     <P><font size="2" face="Verdana"><I>Procesamiento  estad&iacute;stico</I> </font>     <P>     <P><font size="2" face="Verdana">Los datos  se analizaron con el paquete estad&iacute;stico PASW <I>Statistics</I> para Windows  versi&oacute;n 18.0, verific&aacute;ndose los supuestos de normalidad mediante  Sapiro Wilk. Se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de varianza (ANOVA) y pruebas  de comparaciones m&uacute;ltiples (HSD de Tukey), en variables con distribuci&oacute;n  normal. Los datos que no segu&iacute;an distribuci&oacute;n normal se procesaron  mediante an&aacute;lisis de varianza para dos variables no relacionadas, U de  Mann Whitney, y varias muestras independientes, Kruskal Wallis. Los an&aacute;lisis  de correlaci&oacute;n entre variables se hicieron mediante el c&aacute;lculo del  coeficiente de correlaci&oacute;n de Pearson. En todos los casos las diferencias  se consideraron significativas para un valor de p&lt; 0,05.</font>     <P>&nbsp;     <P><font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">RESULTADOS</font></b></font><font size="2" face="Verdana">  </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>     <P><font size="2" face="Verdana">En todos los extractos se encontraron  abundante presencia de quinonas y amino&aacute;cidos, taninos, fenoles, flavonoides  y dihidroflavonoles, con los amino&aacute;cidos y aminas como los de mayor presencia  (<a href="/img/revistas/pla/v17n4/t0108412.gif">tabla 1</a>). Solo la mandarina  mostr&oacute; presencia de esteroides y triterpenos en ambos solventes de extracci&oacute;n.  Las coumarinas no se presentaron en ning&uacute;n extracto de tipo etan&oacute;lico  y en los metan&oacute;licos se encontr&oacute; en todos excepto en la lima persa.  </font>     
<P><font size="2" face="Verdana">En los extractos ensayados se obtuvieron  concentraciones de fenoles totales superiores a los 25 mg de &aacute;cido g&aacute;lico/mL  de extracto y a los 4 mg de quercetina/mL de extracto de flavonoides totales (<a href="/img/revistas/pla/v17n4/t0208412.gif">tabla  2</a>). </font>     
<P><font size="2" face="Verdana">Los extractos MAN-met y LMN-et  mostraron las mayores concentraciones de fenoles y flavonoides totales. No se  encontraron diferencias significativas en la concentraci&oacute;n de fenoles totales  entre los diferentes solventes de extracci&oacute;n en ninguna de las plantas  analizadas. Solo se encontraron diferencias significativas en la concentraci&oacute;n  de flavonoides totales entre los diferentes solventes de extracci&oacute;n para  el lim&oacute;n criollo. </font>     <P><font size="2" face="Verdana">Todos los extractos  mostraron capacidad de atrapar radicales libres a diferentes concentraciones de  flavonoides totales (<a href="#fig1">Fig. 1</a>), la cual fue dependiente de la  concentraci&oacute;n de flavonoides totales en los extractos etan&oacute;licos.  Con excepci&oacute;n de ND-et y LMA-et, existieron diferencias significativas  entre los valores de absorbancia a diferentes concentraciones de flavonoides totales,  lo cual muestra buena relaci&oacute;n lineal entre ambos factores, con coeficientes  de correlaci&oacute;n de <I>Pearson</I> superiores a 0,942. </font>     <P>&nbsp;     <P align="center"><img src="/img/revistas/pla/v17n4/f0108412.jpg" width="580" height="670"><a name="fig1"></a>      
<P>&nbsp;     <P><font size="2" face="Verdana">En los extractos metan&oacute;licos, aunque  existieron diferencias significativas entre los valores de absorbancia seg&uacute;n  la concentraci&oacute;n de flavonoides totales, no hubo relaci&oacute;n lineal  entre estas variables; se obtuvieron los mayores valores de absorbancia a 0,5  mg/mL de flavonoides totales. </font>     <P><font size="2" face="Verdana">Los extractos  ensayados mostraron poder reductor a diferentes concentraciones de flavonoides  totales (<a href="#fig2">Fig. 2</a>). </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>&nbsp;     <P align="center"><img src="/img/revistas/pla/v17n4/f0208412.jpg" width="580" height="642"><a name="fig2"></a>      
<P>&nbsp;     <P><font size="2" face="Verdana">En todas las concentraciones de flavonoides  totales probadas se encontraron diferencias significativas entre el poder reductor  de todos de los extractos ensayados. </font>     <P><font size="2" face="Verdana">Los  extractos NA-et, NA-met, ND-met y LMA-met, mostraron diferencias significativas  en el poder reductor a diferentes concentraciones de flavonoides totales, a mayor  concentraci&oacute;n mayor poder reductor, que muestra buena relaci&oacute;n lineal  entre ambos factores, con coeficiente de correlaci&oacute;n de <I>Pearson</I>  superiores a 0,851. En el resto de los extractos hubo diferencias significativas  entre el poder reductor a las diferentes concentraciones empleadas pero no cumplieron  una relaci&oacute;n lineal entre estos factores. </font>     <P><font size="2" face="Verdana">El  ensayo de letalidad con <I>A. salina </I>demostr&oacute; que<I> </I>la toxicidad  de los extractos fue dependiente de la concentraci&oacute;n, no siendo t&oacute;xico  a concentraciones menores que 10 &#181;</font><font size="2" face="Verdana">g/mL,  sin embargo mostraron toxicidad moderada a concentraciones entre 100 y 1 000 &micro;g/mL.  En la <a href="/img/revistas/pla/v17n4/t0308412.gif">tabla 3</a> se muestra  la CL<SUB>50</SUB> para todos los extractos hidroalcoh&oacute;licos ensayados.  </font>     
<P><font size="2" face="Verdana">El extracto LMA-met mostr&oacute; el  mayor valor de CL<SUB>50 </SUB>(464,24 &micro;g/mL) y la menor toxicidad, mientras  que el extracto de lim&oacute;n criollo en metanol 70 % mostr&oacute; menor valor  de CL<SUB>50 </SUB>(74,78 &#181;</font><font size="2" face="Verdana">g/mL) y mayor  toxicidad. </font>     <P>&nbsp;     <P>     <p><font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">DISCUSI&Oacute;N</font></b></font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>     <P>     <P><font size="2" face="Verdana">En la &uacute;ltima d&eacute;cada ha  existido un marcado inter&eacute;s biom&eacute;dico sobre los c&iacute;tricos,  debido a sus efectos antioxidantes, que han sido atribuidos a la abundancia de  flavonoides, metabolitos secundarios muy activos en estas plantas.<SUP>10,11</SUP>  </font>     <P><font size="2" face="Verdana">Las flavonas y flavonoles, son clases  de flavonoides que contienen en su estructura qu&iacute;mica grupos 3' y 5' OH  en los anillos fen&oacute;licos A y C necesarios para ejercer el m&aacute;ximo  potencial antioxidante.<SUP>8</SUP> En los extractos de hojas de c&iacute;tricos  obtenidos en este trabajo se encontraron estas clases de flavonoides; otros autores  tambi&eacute;n han encontraron diferentes flavonas, flavonas polimetoxiladas,  flavonoles y flavanonas en hojas<SUP>10,12 </SUP>y frutos<SUP>11-14 </SUP>de varias  especies de c&iacute;tricos con actividad antioxidante, por lo que esta actividad  pudiera estar mediada por esos compuestos. </font>     <P><font size="2" face="Verdana">El  hecho de que la composici&oacute;n de flavonoides sea similar en hojas y frutos  de c&iacute;tricos, puede deberse a las funciones fisiol&oacute;gicas de estos  metabolitos de contribuir al desarrollo y crecimiento de la planta, as&iacute;  como a la defensa contra infecciones y radiaciones ultravioleta. </font>     <P><font size="2" face="Verdana">En  todos los extractos de hojas de los c&iacute;tricos obtenidos se cuantificaron  valores de fenoles y flavonoides totales superiores a los publicados por otros  autores para extractos de frutos y jugos de estas especies.<SUP>4,11-15</SUP>  Solo <I>Guimar&atilde;es</I>, en las fracciones vol&aacute;tiles de aceites esenciales  de frutos de lim&oacute;n y lima obtuvieron valores de fenoles y flavonoides totales  superiores a los presentados en este estudio.<SUP>16</SUP> Estos resultados demuestran  que las hojas pueden utilizarse como fuente de ese tipo de compuestos bioactivos  en estas plantas. </font>     <P><font size="2" face="Verdana">Para evaluar la capacidad  antioxidante <I>in vitro</I> de muestras biol&oacute;gicas se han empleado varias  t&eacute;cnicas anal&iacute;ticas, pero a&uacute;n no existe un m&eacute;todo  universal que pueda determinar esta capacidad total cuantitativamente,<SUP>16</SUP>  por tanto, es recomendable realizar esta evaluaci&oacute;n por varios m&eacute;todos.<SUP>14</SUP>  En este trabajo se utilizaron dos m&eacute;todos y como patrones antioxidantes  &aacute;cido asc&oacute;rbico y quercetina, compuestos con probada capacidad de  atrapar radicales libres,<SUP>17</SUP> poder reductor<SUP>18</SUP> y ser abundantes  en estas plantas.<SUP>10,15</SUP> </font>     <P><font size="2" face="Verdana">Para  determinar la capacidad de atrapar radicales libres en compuestos coloreados,  como son estos extractos de hojas de c&iacute;tricos, se recomienda el radical  ABTS&#149;+,<SUP>17</SUP> porque presenta un m&aacute;ximo de absorci&oacute;n  cerca de la regi&oacute;n infrarroja que reduce las posibilidades de interferencias  por compuestos coloreados que absorban en la regi&oacute;n visible del espectro.<SUP>9</SUP>  </font>     <P><font size="2" face="Verdana">La capacidad de atrapar radicales libres  de extractos obtenidos a partir de frutos de diferentes especies de c&iacute;tricos  ha sido demostrada,<SUP>3,14 </SUP>no as&iacute; en extractos obtenidos a partir  de hojas. Las actividades antioxidantes de frutos de c&iacute;tricos est&aacute;n  en correspondencia con la concentraci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos.<SUP>13</SUP>  Varios estudios han demostrado una relaci&oacute;n lineal entre el contenido de  fenoles totales y la alta actividad antioxidante,<SUP>2,4</SUP> lo que coincide  con los resultados mostrados en este trabajo, en la mayor&iacute;a de los extractos  etan&oacute;licos. Sin embargo, esta correlaci&oacute;n no se cumpli&oacute; para  los extractos metan&oacute;licos, resultados que coincide con los obtenidos en  extractos de corteza y frutos de <I>C. sinensis</I>, donde a pesar de que las  fracciones metan&oacute;licas mostraron una significativa capacidad de atrapar  radicales libres y un alto contenido de compuestos fen&oacute;licos, no se obtuvieron  buenos &iacute;ndices de correlaci&oacute;n.<SUP>3</SUP> Otros autores encontraron  correlaciones negativas entre estas variables.<SUP>13 </SUP>Esos resultados podr&iacute;an  deberse al establecimiento de relaciones antag&oacute;nicas entre las diferentes  clases de flavonoides o con otros metabolitos presentes en los extractos.<SUP>19</SUP>  No obstante, a concentraciones de 1,5 mg/mL de flavonoides totales, se obtuvieron  porcentajes de inhibici&oacute;n de la absorbancia superiores a 60 % en todos  los extractos empleados. </font>     <P><font size="2" face="Verdana">El poder reductor  de un compuesto sirve como indicador significativo de su actividad antioxidante.  Todos los extractos de c&iacute;tricos ensayados mostraron poder reductor similares  a los obtenidos en diferentes fracciones de extractos de corteza de lim&oacute;n,  naranja y lima.<SUP>16</SUP> En este m&eacute;todo tambi&eacute;n se ha encontrado  correlaci&oacute;n entre la concentraci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos  en los extractos vegetales y el incremento del poder reductor.<SUP>20</SUP> </font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font size="2" face="Verdana">El hecho de que todos los extractos de hojas  de c&iacute;tricos estudiados mostraron capacidad de atrapar radicales libres  y poder reductor iguales o superiores a los publicados en estudios realizados  en extractos obtenidos a partir de frutos de estas plantas, demuestra su potencial  para emplearlos como antioxidantes. </font>     <P><font size="2" face="Verdana">La  evaluaci&oacute;n de la toxicidad de extractos vegetales es indispensable con  el objetivo de considerar un tratamiento seguro, permite la definici&oacute;n  de la toxicidad intr&iacute;nseca de la planta y los efectos de una sobredosis  aguda. Pocos son los estudios sobre evaluaci&oacute;n de la toxicidad frente a  <I>A. salina</I> de extractos de especies de c&iacute;tricos. En la literatura  consultada solo se encontr&oacute; un estudio en extractos de corteza del fruto  de <I>C. aurantium</I>, donde los resultados se compararon con estudios de toxicidad  realizados en ratones, que mostraron una buena correlaci&oacute;n entre los mismos,  demostrando la confiabilidad de este m&eacute;todo. La toxicidad mostrada por  extractos de corteza del fruto de <I>C. aurantium</I> fue similar a la mostrada  por los extractos obtenidos en este trabajo. </font>     <P><font size="2" face="Verdana">Estos  resultados demuestran el potencial de los extractos hidroalcoh&oacute;licos de  hojas de c&iacute;tricos para su empleo como potentes antioxidantes, aunque ser&iacute;a  necesario realizar estudios de estabilidad y formulaci&oacute;n qu&iacute;mica,  as&iacute; como la evaluaci&oacute;n de la toxicidad y seguridad del extracto  en animales experimentales para proponer su uso como producto farmacol&oacute;gico.  </font>     <P>&nbsp;     <P>     <P><font size="3" face="Verdana"><B>AGRADECIMIENTOS</B> </font>      <P>     <P><font size="2" face="Verdana">Por el apoyo financiero para el trabajo a  la Facultad de Ciencias Agropecuarias. Universidad Central &quot;Marta Abreu&quot;  de Las Villas. </font>     <P>&nbsp;     <P><font size="3" face="Verdana"><b>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</b></font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">1. Khairunnuur FA, Zulkairi A, Azrina A,  Moklas MAM, Khairullizam S, Zamree MS, et al. Nutritional composition, <I>in vitro</I>  antioxidant activity and <I>Artemia salina</I> L. Lethality of pulp and seed of  <I>Tamarindus indica</I> L. extracts. Malays J Nutr. 2009;15(1):65-75.     </font>      <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">2. Lagarto A, Silva R, Guerra L, Iglesias L.  Comparative study of the assay of <I>Artemia salina </I>L.<I> </I>and the estimate  of the medium lethal dose (LD50 value) in mice, to determine oral acute toxicity  of plant extracts. Phytomedicine. 2001;8(5):395-400.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">3.  Amin I, Norazaidah Y, Hainida KIE. Antioxidant activity and phenolic content of  raw and blanched amaranthus species. Food Chem. 2006;94(1):47-52.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">4.  Anagnostopoulou MA, Kefalas P, Apageorgiou VP, Assimopoulou AN, Boskou D. Radical  scavenging activity of various extracts and fractions of sweet orange peel (<I>Citrus  sinensis</I>). Food Chem. 2006;94(1):19-25.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">5.  Schabra SC, Ulso FC, Mshin EN. Phytochemical screening of Tanzanian medical plants.  J Etnopharmacol. 1984;11(2):157-9.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">6.  Tuberoso CIG, Montoro P, Piacenteb S, Coronac G, Deianac M, Dess&igrave;c MA,  et al. Flavonoid characterization and antioxidant activity of hydroalcoholic extracts  from <I>Achillea ligustica </I>All. J Pharm Biomed Anal. 2009;50(3):440-8.     </font>      <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">7. Liu B, Zhu Y. Extraction of flavonoids from  flavonoid-rich parts in tartary buckwheat and identification of the main flavonoids.  J Food Eng. 2007;78(2):584-7.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">8. Re R,  Pellegrini N, Proteggente A, Pannala A, Yang M, Rice-Evans C. Antioxidant activity  applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. Free Radic Biol  Med. 1999;26(9/10):1231-7.     </font>     <P><font size="2" face="Verdana">9. Pan Y,  Wang K, Huang S, Wang H, Mu X, He Ch, et al. Huang.Antioxidant activity of microwave-assisted  extract of longan (<I>Dimocarpus Longan</I> Lour.) peel. Food Chem. 2008;106(3):1264-70.  </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">10. Djoukeng JD, Arbona V, Argamasilla  R, G&oacute;mez-Cadenas A. Flavonoid pro&ucirc;ling in leaves of citrus genotypes  under different environmental situations. J Agric Food Chem. 2008;56(23):11087-97.      </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">11. Peterson JJ, Dwyer JT, Beecher GR,  Bhagwat SA, Gebhardt SE, Haytowitz DB, et al. Flavonones in oranges, tangerines  (mandarins), tangors, and tangelos: a compilation and review of the data from  the analytical literature. J Food Compos Anal. 2006;19(1):S66-S73.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">12.  Kawaii S, Tomono Y, Katase E, Ogawa K, Yano M, Koizumi M, et al. Quantitative  study of flavonoids in leaves of <I>Citrus</I> plants. J Agric Food Chem. 2000;48(9):3865-71.      </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">13. Ghafar MFA. Prasad KN, Weng KK, Ismail  A. Flavonoid, hesperidine, total phenolic contents and antioxidant activities  from citrus species. Afr J Biotechnol. 2010;9(3):326-30.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">14.  Khan MK, Abert-Vian M, Fabiano-Tixier A-S, Dangles O, Chemat F. Ultrasound-assisted  extraction of polyphenols (&ucirc;avanone glycosides) from orange (<I>Citrus sinensis</I>  L.) peel. Food Chem. 2010;119(2):851-8.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">15.  Moriguchi T, Kita M, Hasegawa S, Omura M. Molecular approach to citrus flavonoid  and limonoid biosynthesis. Food Agric Environ. 2003;1(1):22-5.     </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font size="2" face="Verdana">16.  Guimar&atilde;es R, Barros L, Barreira JCM, M. Sousa AJ, Carvalho AM, Ferreira  IC. Targeting excessive free radicals with peels and juices of citrus fruits:  grapefruit, lemon, lime and orange. Food Chem Toxicol. 2010;48(1):99-106. </font>      <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">17. Dae-Ok K, Lee KW, Hyong JL, Chang Y. Vitamin  C equivalent antioxidant capacity (VCEAC) of phenolic phytochemicals. J<I> Agric  Food Chem.</I> 2002;50(13):3713-7.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">18.  Kim NY, Jang MK, Lee DG, Yu KH, Jang H, Kim M, et al. Comparison of methods for  proanthocyanidin extraction from pine (<I>Pinus densiflora</I>) needles and biological  activities of the extracts. Nutr Res Pract. 2010;4(1):16-22.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">19.  Escamilla C, Cuevas E, Guevara J. Flavonoides y sus acciones antioxidantes. Rev  Fac Med UNAM. 2009;52(2):73-5.     </font>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana">20. Chang  HY, Ho YL, Sheu MJ, Lin YH, Tseng MC, Wu SH, et al. Antioxidant and free radical  scavenging activities of <I>Phellinus merrillii </I>extracts. Botanical Studies.  2007;48(4):407-17.    </font>     <P>&nbsp;     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>&nbsp;     <P>     <P><font size="2" face="Verdana">Recibido:  12 de enero de 2012.     <br> Aprobado: 19 de junio de 2012. </font>     <P>&nbsp;     <P>&nbsp;     <P><font size="2" face="Verdana"><I>Katia  Ojito Ramos</I>. Departamento de Biolog&iacute;a. Facultad de Ciencias Agropecuarias.  Universidad Central &quot;Marta Abreu&quot; de Las Villas. Carretera a Camajuan&iacute;  km 5.5. Santa Clara 54 830. Villaclara, Cuba. Tel&eacute;f.: 281692; 201002. Correo  electr&oacute;nico: <U><FONT  COLOR="#0000ff"><a href="mailto:kojito@uclv.edu.cu">kojito@uclv.edu.cu</a></FONT></U>  </font>       ]]></body><back>
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