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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Bioactividad del aceite esencial de Ocimum micranthum Willd, recolectado en el departamento de Bolívar, Colombia]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Laboratorio de Productos Naturales Vegetales Facultad de Ciencias Universidad Nacional de Colombia]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: Ocimum micranthum Willd is a herbaceous plant of the family Lamiaceae native to tropical and subtropical regions of America and grown for medicinal and/or ornamental purposes. Infusion of this plant is used for gastrointestinal conditions such as ulcers, gastritis, intestinal fever, inflammation, dysentery, vomiting, stomach pain and as vermifuge. Objectives: determine the volatile chemical composition of essential oil from Ocimum micranthum Willd and evaluate its in vitro antifungal, repellent, insecticidal and antioxidant activities. Methods: essential oil (EO) from O. micranthum fresh leaves was obtained by hydrodistillation. Volatile chemical composition was determined by gas chromatography coupled to a mass spectrometric detector (GC-MS). The fumigant activity assay (insecticidal) was performed against Sitophilus zeamais . Antifungal activity was determined against pathogenic fungus Fusarium oxysporum f. sp. Dianthi, and repellent activity against Tribolium castaneum Herbst. Antioxidant capacity was analyzed with the DPPH radical decolorization assay. Results: the most abundant compound found in O. micranthum EO was eugenol (60.37 %), followed by eucalyptol (12.09 %), cis-terpineol (4.25 %), a-terpineol (4.43 %), and &#948;-cadinene (1.27 %). O. micranthum EO was active against F. oxysporum, with a mycelial inhibition of 98.8 % at 176.5 uL EO / L air, read at 72 hours, and a mortality rate of 66.7 % against S. zeamais at 500 uL EO / L air, after 24 hours of exposure. Repellent activity was 92.5 % and 93.3 % at 2 and 4 hours of exposure, respectively. DPPH radical inhibition was 93.92 %. Conclusions: Essential oil from O. micranthum showed significant antifungal, repellent and fumigant activities. Thus it could become an alternative to replace synthetic fungicides and insecticides.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"> <font size="2" face="Verdana"><b>ART&Iacute;CULO ORIGINAL</b></font></p>     <p align="right">&nbsp;</p>     <p> <font size="2" face="Verdana"><b><font size="4">Bioactividad del aceite esencial    de <i>Ocimum micranthum </i>Willd, recolectado en el departamento de Bol&#237;var,    Colombia</font></b> </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p> <font size="2" face="Verdana"><font size="3"><b>Bioactivity of essential oil    from <i>Ocimum micranthum </i>Willd collected from Bolivar department, Colombia</b></font>    </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p> <font size="2" face="Verdana"><b>Dra. Beatriz Eugenia Jaramillo C,<sup>I</sup>    MSc. Edisson Duarte R,<sup>I </sup>MSc. Wilman Delgado<sup>II</sup></b> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><sup>I </sup> Grupo de Investigaciones Agroqu&#237;micas,    Programa de Qu&#237;mica, Facultad de Ciencias Exactas y Naturales, Universidad    de Cartagena, Campus de Zaragocilla, Cartagena, Colombia.    <br>   </font><font size="2" face="Verdana"><sup>II </sup> Laboratorio de Productos    Naturales Vegetales, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia,    Ciudad Universitaria, Bogot&#225;, Colombia. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr size="1" noshade>     <p><font size="2" face="Verdana"><b>RESUMEN </b> </font></p>     <p> <font size="2" face="Verdana"><b>Introducci&#243;n:</b> <i>Ocimum micranthum    </i>Willd, es una planta herb&#225;cea, perteneciente a la familia de las Lami&#225;ceas,    originaria de las regiones tropicales y subtropicales de Am&#233;rica, cultivada    con fines medicinales y/o ornamentales. La infusi&#243;n de esta planta es usada    para enfermedades de tipo gastrointestinal como &#250;lceras, gastritis, fiebre    intestinal, inflamaci&#243;n; disenter&#237;a, v&#243;mito, dolor de est&#243;mago    y verm&#237;fugo.    <br>   </font><font size="2" face="Verdana"><b>Objetivos:</b> determinar la composici&#243;n    qu&#237;mica vol&#225;til del aceite esencial de <i>Ocimum micranthum </i>Willd    y evaluar <i>in vitro</i> las actividades antif&#250;ngica, repelente, insecticida    y antioxidante.    <br>   </font><font size="2" face="Verdana"><b>M&#233;todos</b> : el aceite esencial    (AE) fue obtenido de hojas frescas de <i>O. micranthum </i>por hidrodestilaci&#243;n,    la composici&#243;n qu&#237;mica vol&#225;til fue determinada mediante cromatograf&#237;a    de gases acoplada a detector de espectrometr&#237;a de masas (GC-MS). El ensayo    de actividad fumigante (insecticida) del AE se realiz&#243; sobre <i>Sitophilus    zeamais.</i> La <i>a</i>ctividad antif&#250;ngica sobre el hongo fitopat&#243;geno    ( <i>Fusarium oxysporum</i>f. sp. <i>Dianthi</i>), la actividad repelente contra    el <i>Tribolium castaneum </i>Herbst y la capacidad antioxidante se efectu&#243;a    trav&#233;s del ensayo de decoloraci&#243;n del radical DPPH.    <br>   </font><font size="2" face="Verdana"><b>Resultados:</b> el compuesto mayoritario    encontrado en el AE de <i>O. micranthum </i>fue el eugenol (60,37 %), seguido    de eucaliptol (12,09 %), <i>cis </i>b-terpineol (4,25 %) y a-terpineol (4,43    %), a-cadineno (1,27 %). El AE de <i>O. micranthum </i>fue activo contra <i>F.    oxysporum</i> con un porcentaje de inhibici&#243;n micelar de 98,8 % a 176,5    &#181;L de AE/L aire, le&#237;do a las 72 horas; y un porcentaje de mortalidad    contra <i>S. zeamais </i>de 66,7 % a 500 &#181;L de AE/L de aire, despu&#233;s    de 24 horas de exposici&#243;n. La actividad repelente fue de 92,5 % y 93,3    % a las 2 y 4 horas de exposici&#243;n, respectivamente. El porcentaje de inhibici&#243;n    del radical DPPH<sup>&#8226;</sup> fue de 93,92 %.    <br>   </font><font size="2" face="Verdana"><b>Conclusiones:</b> El aceite esencial    de <i>O. micranthum</i> mostr&#243; una significativa actividad fungicida<i>,    </i>repelente y fumigante<i>,</i> por lo cual puede llegar a ser una alternativa    en reemplazo de fungicidas e insecticidas sint&#233;ticos. </font></p>     <p> <font size="2" face="Verdana"><b>Palabras clave:</b> <i>Ocimun micranthum</i>,    aceite esencial, antif&#250;ngicos, insecticidas, antioxidante, cromatograf&#237;a    de gases. </font></p> <hr size="1" noshade>     <p><font size="2" face="Verdana"><b>ABSTRACT</b> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana"> <b>Introduction:</b> <i>Ocimum micranthum </i>Willd    is a herbaceous plant of the family <i>Lamiaceae</i> native to tropical and    subtropical regions of America and grown for medicinal and/or ornamental purposes.    Infusion of this plant is used for gastrointestinal conditions such as ulcers,    gastritis, intestinal fever, inflammation, dysentery, vomiting, stomach pain    and as vermifuge.    <br>   <b>Objectives:</b> determine the volatile chemical composition of essential    oil from <i>Ocimum micranthum </i>Willd and evaluate its <i>in vitro</i> antifungal,    repellent, insecticidal and antioxidant activities.    <br>   <b>Methods:</b> essential oil (EO) from <i>O. micranthum</i> fresh leaves was    obtained by hydrodistillation. Volatile chemical composition was determined    by gas chromatography coupled to a mass spectrometric detector (GC-MS). The    fumigant activity assay (insecticidal) was performed against <i>Sitophilus zeamais</i>    . Antifungal activity was determined against pathogenic fungus <i>Fusarium oxysporum</i>    f. sp. <i>Dianthi</i>, and repellent activity against <i>Tribolium castaneum    </i>Herbst. Antioxidant capacity was analyzed with the DPPH radical decolorization    assay.    <br>   </font><font size="2" face="Verdana"><b>Results:</b> the most abundant compound    found in <i>O. micranthum</i> EO was eugenol (60.37 %), followed by eucalyptol    (12.09 %), cis-terpineol (4.25 %), a-terpineol (4.43 %), and &#948;-cadinene    (1.27 %). <i>O. micranthum</i> EO was active against <i>F. oxysporum</i>, with    a mycelial inhibition of 98.8 % at 176.5 uL EO / L air, read at 72 hours, and    a mortality rate of 66.7 % against <i>S. zeamais</i> at 500 uL EO / L air, after    24 hours of exposure. Repellent activity was 92.5 % and 93.3 % at 2 and 4 hours    of exposure, respectively. DPPH radical inhibition was 93.92 %.    <br>   </font><font size="2" face="Verdana"><b>Conclusions</b><b>:</b> Essential oil    from <i>O. micranthum</i> showed significant antifungal, repellent and fumigant    activities. Thus it could become an alternative to replace synthetic fungicides    and insecticides. </font></p>     <p> <font size="2" face="Verdana"><b>Key words:</b> <i>Ocimum micranthum,</i>    essential oil, antifungal, insecticide, antioxidant, gas chromatography. </font></p> <hr size="1" noshade>     <p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp;</p>     <p> <font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">INTRODUCCI&#211;N</font></b>    </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> La planta <i>Ocimum micranthum </i>Willd, conocida    com&#250;nmente como albahaca de monte, albahaca cimarrona, albahaca de gallina    y albahaca silvestre, pertenece a la familia Lamiaceae y se encuentra ampliamente    distribuida en Am&#233;rica tropical, es nativa y com&#250;n en tierras templadas,    su altura var&#237;a entre los 30 - 60 cm<sup>1</sup>. En medicina popular se    utiliza para infecciones catarrales y bronquiales, tambi&#233;n es usada como    calmante, estom&#225;quica, diur&#233;tica y carminativa. Se le han reportado    usos para el dolor de o&#237;dos, cabeza, muelas, vientre; calentura, regulador    menstrual, mal de or&#237;n, diabetes, dolor de pecho, flujo, v&#243;mitos,    c&#243;licos y lombrices.<sup>1,2</sup> El fruto sirve para curar la nube de    los ojos.<sup>3</sup> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana"> Estudios realizados, han demostrado que el AE    de esta planta es repelente de mosquitos, activo contra pat&#243;genos humanos    y hongos, insectos, y larvas, y ha presentado actividad antimicrobiana, antioxidante,    antiprotozoaria, anticonceptivo y antiinflamatoria.<sup>4-8</sup> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Por lo tanto, el prop&#243;sito de este estudio    fue determinar la composici&#243;n qu&#237;mica vol&#225;til del AE de <i>O.    micranthum </i>Willd y evaluar su bioactividad contra el <i>Sitophilus zeamais,    </i>sobre el hongo fitopat&#243;geno (<i>Fusarium oxysporum</i>f. sp. Dianthi),    la actividad repelente usando el gorgojo de la harina <i>Tribolium castaneum    </i>Herbst. Tambi&#233;n determinar su capacidad antioxidante usando el ensayo    de decoloraci&#243;n del radical DPPH. </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p> <font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">M&#201;TODOS</font></b> </font></p>     <p>    <br>   <font size="2" face="Verdana"><b>Material vegetal<i> </i></b> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Las hojas frescas de <i>O. micranthum</i>, fueron    recolectadas en la ciudad de Cartagena de Indias, departamento de Bol&#237;var,    Colombia. La identificaci&#243;n taxon&#243;mica se llev&#243; a cabo en el    Instituto de Biolog&#237;a de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales, de    la Universidad de Antioquia, los pliegos testigo de cada planta quedaron depositados    como muestra permanente en el Herbario Universidad de Antioquia (HUA); <i>O.    micranthum. </i>(Nombre com&#250;n: albahaca de monte) HUA 167359. La clasificaci&#243;n    de las plantas fue realizada por el Dr. Francisco J. Rold&#225;n Palacios. </font></p> <h2><font size="2" face="Verdana">     <br>   Hidrodestilaci&#243;n (HD) </font></h2>   <font face="Verdana" size="2">Esta fue realizada en un equipo de destilaci&#243;n  tipo Clevenger, seg&#250;n los procedimientos descritos por Jaramillo.<sup>9,10</sup>  Se usaron 500 g de hojas y tallos frescos, finamente picados, sumergidos en agua,  la duraci&#243;n de la hidrodestilaci&#243;n fue de 2 horas. El AE se separ&#243;  del agua por decantaci&#243;n y se le adicion&#243; Na<sub>2</sub>SO<sub>4 </sub>anhidro.  Una al&#237;cuota del aceite (30 &#181;L) se diluy&#243; en 1 mL de diclorometano  para el an&#225;lisis cromatogr&#225;fico. </font>      <p> <font size="2" face="Verdana"> <b>    <br>   An&#225;lisis cromatogr&#225;fico </b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana"> El an&#225;lisis cromatogr&#225;fico de las    muestras se realiz&#243; en un GC Hewlett-Packard (HP) 5890A Series II, equipado    con un puerto de inyecci&#243;n <i>split/splitless </i>(250 <sup>o</sup>C, relaci&#243;n    de <i>split</i> 1:30) y un detector de ionizaci&#243;n en llama (FID) (250 &#176;C).    Los espectros de masas fueron obtenidos por impacto de electrones con energ&#237;a    de 70 eV, en un cromat&#243;grafo de gases <i>Agilent Technologies </i>6890    <i>Plus </i>acoplado a un detector selectivo de masas <i>Agilent Technologies    </i>MSD 5973, equipado con un puerto de inyecci&#243;n <i>split/splitless </i>(250    &#176;C, relaci&#243;n <i>split</i>de 1:30), un inyector autom&#225;tico <i>Agilent</i>    7863, un sistema de datos (HP <i>ChemStation</i> 1.05), incluyendo las bases    de datos NBS 75K, WILEY 138K y NIST 98. Se us&#243; una columna capilar de s&#237;lice    fundida, HP-5MS de 50 m x 0.25 mm D.I., con fase estacionaria de 5 %-fenil-poli    (metilsiloxano) de 0,25 &#181;m de grosor. El gas de arrastre fue helio (99,    995 %,<i> Aga Fano, S.A.)</i>, con una velocidad lineal de 35 cm.s<sup>-1</sup>.    La temperatura del horno fue programada de 40 &#176;C (15 min) hasta 250 <sup>o</sup>C    (15 min) @ 5 &#176;C min<sup>-1</sup> de acuerdo con la metodolog&#237;a descrita.<sup>9,10</sup>    Para la identificaci&#243;n de los compuestos se usaron algunos terpenos est&#225;ndar,    analizados bajo las mismas condiciones instrumentales que las muestras, espectros    de masas e &#237;ndices de retenci&#243;n de <i>Kov&#225;ts</i> de componentes,    que se compararon con los reportados en la literatura.<sup>11,12</sup> </font></p>     <p> <font size="2" face="Verdana"><b>     <br>   Insectos</b> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Para los experimentos se utilizaron adultos    de <i>Sitophilus zeamais</i> M. (<i>Cole&#243;ptera: Curculionidae</i>), los    cuales se mantuvieron sobre un sustrato de granos de ma&#237;z. Los cultivos    de insectos se mantuvieron en la oscuridad a 25 &#177; 1 &#176;C y 70 &#177;    5 % de humedad relativa. </font></p>     <p> <font size="2" face="Verdana"><b>    <br>   Actividad fumigante vol&#225;til</b> </font></p>     <p> <font size="2" face="Verdana"><b> Toxicidad vol&#225;til</b> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> El AE se aplic&#243; en dosis de 500, 350, 250,    150 y 50 &#181;L de AE/L de aire sobre discos de papel de filtro de 2 cm de    di&#225;metro colocados en el interior de un vial de cristal de 4 mL de volumen,    colocado a su vez en el interior de otro vial de mayor tama&#241;o (15 mL),    tapado con tap&#243;n de rosca, junto con 10 insectos de <i>S. zeamais</i>.    El control se realiz&#243; de la misma manera pero sin la aplicaci&#243;n de    aceites esenciales.<sup>13</sup> El ensayo se hizo bajo condiciones controladas    de temperatura y humedad (25 &#177; 1 &#176;C and 70 &#177; 5 % r.h.) y se efectu&#243;    por triplicado. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Con los resultados obtenidos se calcul&#243;    el porciento de mortalidad para cada concentraci&#243;n de acuerdo con la siguiente    <a href="#for1">f&#243;rmula</a>: </font></p>     <p align="center"><img src="img/revistas/pla/v19n2/for0107.gif" width="303" height="56"> <a name="for1"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <font size="2" face="Verdana"><b> Actividad antif&#250;ngica in vitro</b>    </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Se utilizaron placas de PDA (potato dextrosa    agar) de acuerdo con la metodolog&#237;a descrita por Prieto <i>et al.</i><sup>13</sup>    </font></p>     <p> <font size="2" face="Verdana"><i>Montaje del ensayo</i> : se esteriliz&#243;    el material y el medio gelificado en cajas de <i>Petri.</i> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Se cortaron discos del micelio del hongo con    ayuda de pitillos, y se ubicaron en el centro de las cajas de <i>Petri</i>.    </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> a. Los discos de papel filtro se colocaron a    2 cm del disco de micelio, para esto se tuvo en cuenta lo siguiente: </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> -Para la dosis mayor, correspondiente a 15 &#181;L    de aceite (176,5 &#181;L AE/L aire) se ubicaron 3 papeles de filtro formando    un tri&#225;ngulo. Se aplicaron 5 &#181;L en cada disco. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> -Dosis de 10 &#181;L de AE (117,7 &#181;L AE/L    aire) y 7 &#181;L de AE (82,4 &#181;L AE/L aire) se colocaron 2 papeles de filtro.    </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> -Dosis de 2 &#181;L (58,8 &#181;L AE/L aire)    y 5 &#181;L de aceite (23,5 &#181;L AE/L aire) se ubic&#243; s&#243;lo 1 papel    de filtro. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> b. Se aplic&#243; el AE sobre los papeles de    filtro. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> c. Para el control se dej&#243; una caja de    <i>Petri</i> con el micelio y papeles de filtro pero no se aplic&#243; ninguna    sustancia sobre los papeles. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana"> d. Las cajas se sellaron con Vinipel<sup>&#174;</sup>    y fueron incubadas por un per&#237;odo de 72 horas a 27 &#177; 1 &#176;C. El    ensayo se realiz&#243; por triplicado. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> e. Pasadas las 72 horas se midi&#243; el di&#225;metro    del micelio, haciendo dos medidas: una de arriba a abajo y otra de izquierda    a derecha. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> f. Para determinar el porciento de inhibici&#243;n    de crecimiento miceliar se compar&#243; el di&#225;metro de crecimiento del    control con los de los ejemplares tratados, empleando la siguiente f&#243;rmula:    </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> % ICM = 100 - ((100 x dT)/dC) </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> ICM = inhibici&#243;n de crecimiento miceliar    </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> dT = Di&#225;metro del tratamiento </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> dC = Di&#225;metro del control </font></p>     <p> <font size="2" face="Verdana"><b>     <br>   Actividad repelente </b> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Fue medida la actividad repelente utilizando    la t&#233;cnica de &#225;rea de preferencia.<sup>14,15</sup> Para realizar el    ensayo se colocaron un total de 20 insectos adultos de <i>T. castaneum </i>Herbts    en el interior de una caja de <i>Petri</i> con papel filtro cortado a la mitad,    resultando dos &#225;reas de trabajo, una tratada con vol&#250;menes iguales    de diferentes concentraciones de AE disuelto en acetona (0,00002, 0,0002, 0,002,    0,02 y 0,2 &#956;L/cm <sup>2</sup>), y la otra con acetona &#250;nicamente.    Para identificar el &#225;rea tratada con el aceite del &#225;rea no tratada,    fue colocado un punto en el centro de una de las mitades del papel filtro, luego    de esto, se contaron los organismos presentes en cada mitad del papel filtro    despu&#233;s de dos y cuatro horas de exposici&#243;n. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana"> El porcentaje de repelencia (PR) en los diferentes    tiempos de exposici&#243;n fue hallado utilizando la formula PR= [(ANT-AT)/    (AT+ANT)*100], donde ANT Y AT corresponden al n&#250;mero de insectos de las    &#225;reas no tratadas con el aceite y tratadas con el mismo, respectivamente.    Cada concentraci&#243;n fue evaluada 5 veces y el ensayo se realiz&#243; por    duplicado. Durante el ensayo se tuvo en cuenta que el di&#225;metro del papel    filtro coincidiera con el tama&#241;o de las cajas de <i>Petri</i> y hacer las    mediciones en oscuridad absoluta con el fin de obtener resultados veraces. </font></p>     <p> <font size="2" face="Verdana"> <b>    <br>   An&#225;lisis estad&#237;stico</b> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Los datos se presentan como la media &#177;    error est&#225;ndar. La significaci&#243;n estad&#237;stica fue determinada    por los test de <i>Duncan</i> y <i>Tukey</i>. El an&#225;lisis de varianza determin&#243;    si los resultados obtenidos para los ensayos de actividad antif&#250;ngica e    insecticidas son estad&#237;sticamente diferentes. La significaci&#243;n estad&#237;stica    se fij&#243; en p &lt; 0,05. </font></p>     <p> <font size="2" face="Verdana"><b> </b><b>    <br>   Evaluaci&#243;n de la actividad antioxidante</b> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> La actividad antioxidante se evalu&#243; como    una medida de la capacidad de atrapar radicales, al hacer reaccionar el radical    DPPH<sup>&#8226; </sup> (1,1-difenil-2-picril- hidracilo) con vitamina C (sustancia    patr&#243;n) y los posibles agentes antioxidantes (aceite esencial). El procedimiento    desarrollado se describe a continuaci&#243;n.<sup>16</sup> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Se tomaron al&#237;cuotas (0,71, 0,57, 0,43,    0,28 y 0,14 mL) de una soluci&#243;n metan&#243;lica de DPPH<sup>&#8226;</sup>    al 1,37 mM a las cuales se adicion&#243; metanol, para obtener concentraciones    de 0,25, 0,20, 0,15, 0,10 y 0,05 mM respectivamente. La reacci&#243;n se realiz&#243;    empleando 3,9 mL de estas soluciones de DPPH<sup>&#8226;</sup> y adicionando    0,1 mL de aceites esenciales los cuales se sometieron a un per&#237;odo de incubaci&#243;n    en la oscuridad durante 90 minutos, luego se ley&#243; la absorbancia a 517    nm en un espectrofot&#243;metro UV - VIS. La actividad antioxidante se expresa    como porcentaje de inhibici&#243;n lo cual corresponde a la cantidad de radical    DPPH<sup>&#8226;</sup> neutralizado por los aceites esenciales, de acuerdo a    la siguiente <a href="#for2">f&#243;rmula</a>: </font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><img src="img/revistas/pla/v19n2/for0207.gif" width="219" height="53"><a name="for2"></a></font></p>     <p> <font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">RESULTADOS</font></b> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <font size="2" face="Verdana"><b>     <br>   Composici&#243;n qu&#237;mica vol&#225;til</b> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> El rendimiento de AE de obtenido por hidrodestilaci&#243;n    fue de 0,5 %. La <a href="img/revistas/pla/v19n2/t0107214.gif">tabla 1</a> muestra los principales    componentes hallados en el AE. Fueron identificados 30 metabolitos secundarios    en concentraciones superiores al 0,1 %. El compuesto mayoritario encontrado    fue eugenol (60,37 %), identificado por comparaci&#243;n de su espectro de masas    con el del compuesto patr&#243;n. Adem&#225;s de Eucaliptol (12,09 %), cis-b-terpineol,    (4,25 %) a<i>-</i> terpineol (4,43 %), <i>cis-</i>ocimeno (1,17 %),<i> </i>a-cariofileno    (1,12 %), a-selineno (1,15 %), a-cadineno (1,27 %). </font></p>     <p align="center">&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;    <img src="img/revistas/pla/v19n2/t0107214.gif" width="488" height="747" align="bottom"><a name="tab1"></a></p>     <p><font size="2" face="Verdana">     <br>   a. N&#250;mero del pico en la <a href="#fig1">figura 1. </a></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> b. &#205;ndices de Kov&#225;ts determinados    experimentalmente en Columna HP-5. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> c. Promedio de tres extracciones &#177; ts/&#8730;<i>n    </i>(<i>n </i>= 4, 95 % confidencia).</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> La <a href="#fig1">figura 1</a> muestra un perfil    cromatogr&#225;fico de metabolitos secundarios vol&#225;tiles y semivol&#225;tiles    del AE de <i>O. micranthum.</i> </font></p>     <p align="center"><img src="img/revistas/pla/v19n2/f0107214.jpg" width="558" height="359"> <a name="fig1"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="left"> <font size="2" face="Verdana">    <br>   El AE mostr&#243; una mortalidad significativa (100 %) en dosis de 500 &#181;L    AE/L aire, despu&#233;s de 24 horas de exposici&#243;n contra el <i>S. zeamais</i>.    Por otra parte, inhibi&#243; el crecimiento micelar del <i>F. oxysporum</i>    en un 97,3 % en dosis de 117,7 &#181;L AE/L aire, le&#237;do a 72 horas de iniciado    el ensayo, como se observa en la <a href="#tab2">tabla 2</a>. </font></p>     <p> <font size="2" face="Verdana"> <i>Actividad antioxidante</i> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Se realiz&#243; una comparaci&#243;n con el    &#225;cido asc&#243;rbico (sustancia antioxidante utilizada como referencia),    cuyo porcentaje de inhibici&#243;n frente al radical DPPH<sup>&#8226; </sup>fue    de 96,5 %, frente a la del AE, el cual fue de 85,0 % (<a href="#tab2">tabla    2</a>). </font></p>     <p align="center"><img src="img/revistas/pla/v19n2/t0207214.gif" width="571" height="365"> <a name="tab2"></a></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><i>Actividad repelente</i> </font></p>     <p> <font size="2" face="Verdana"> Los resultados de la actividad repelente del    AE de <i>O. micranthum</i> son presentados en la <a href="img/revistas/pla/v19n2/t0307214.gif">Tabla    3</a>. Este aceite present&#243; la mejor actividad repelente a una concentraci&#243;n    de 0,01 &#956;L/cm<sup>2 </sup>a 2 y 4 horas de exposici&#243;n (92,5 % y 93,3    %, respectivamente). </font></p>     <p>&nbsp; </p>     <p> <font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">DISCUSI&#211;N</font></b>    </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Los compuestos mayoritarios encontrados al determinar    la composici&#243;n qu&#237;mica vol&#225;til del AE de <i>O. micranthum</i>    colombiano, recolectado en el departamento de Bol&#237;var, Colombia, fueron    similares a los reportados por otros investigadores, <i>Ie, </i>Sachetti y col.,    reportaron el eugenol como compuesto mayoritario encontrado en el AE de <i>O.    micranthun </i>amaz&#243;nico y del noreste de Brasil.<sup>4,6</sup> Mientras    que Rosas y colaboradores encontraron en el AE de <i>O. micranthum</i> recolectado    en Par&#225; Brasil, compuestos mayoritarios diferentes como cinamato de metilo-(<em>E</em>)    (34,6-56,7 %), carvona (10,4-16,1 %), limoneno (8,1-10,3 %) y linalol (4,1-9,4    %). Los resultados respecto la composici&#243;n qu&#237;mica de los aceites    esenciales difieren en el tipo y/o proporci&#243;n de los compuestos encontrados,    esto puede ser debido a las condiciones geobot&#225;nicas del medio, al m&#233;todo    de cultivo, a la t&#233;cnica de extracci&#243;n, estado vegetativo de la especie    utilizada, a la &#233;poca de recolecci&#243;n, entre otras.<sup>17</sup> Un    estudio realizado por Rosas y colaboradores en el cual determinaron la variaci&#243;n    en la composici&#243;n qu&#237;mica de los aceites esenciales producidos a partir    de <i>O. micranthum</i> obtenido de plantas que crecen en el noreste de Brasil,    en diferentes etapas de desarrollo y durante todo el d&#237;a, encontraron una    proporci&#243;n mayor de eugenol en las plantas recolectadas en la ma&#241;ana    (6 a.m), respecto a las de la tarde (6 p.m).<sup>17</sup> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana"> Varias especies de plantas pertenecientes al    g&#233;nero <i>Ocimum </i>(Lamiaceae), se han utilizado en la medicina tradicional    en tratamientos para convulsiones, sordera, la diarrea, la epilepsia, la gota,    hipo, impotencia, n&#225;useas, dolor de garganta,dolores de muelas, y la tosferina,    en enfermedades bronquiales y gastrointestinales, diabetes, efectos antimicrobiales    y repelente.<sup>5,7,8,18</sup> El efecto repelente del AE de <i>O. micranthum    obtenido</i> en el presente trabajo contra <i>T. castaneum </i>fue de 93,3 %    con un tiempo de protecci&#243;n de 4h. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Poco se conoce acerca del mecanismo de acci&#243;n    de los repelentes, se cree que interfieren con los receptores olfatorios de    atracci&#243;n hacia la fuente de alimento del insecto. La actividad repelente    de una planta se debe principalmente a sus componentes, tales como los fenoles,    terpenos o alcaloides; sin embargo, son necesarios futuros estudios para identificar    su papel y los diversos mecanismos fisiol&#243;gicos del insecto involucrados    en la atracci&#243;n hacia el hospedador.<sup>8</sup> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> El AE present&#243; marcada actividad fumigante    y antif&#250;ngica, esto puede ser atribuido a la presencia de a-terpineno (0,41    %) o la mezcla de este compuesto con otros metabolitos que son t&#243;xicos    para el insecto y est&#225; presente en el AE, ya que seg&#250;n varias investigaciones,    este compuesto ha mostrado 100 % de mortalidad en insectos del g&#233;nero <i>Sitophilus</i>    despu&#233;s de 12 horas de exposici&#243;n.<sup>19-22 </sup> Bravo-Luna <i>et    al.</i>, reportaron una total inhibici&#243;n del crecimiento micelial de <i>Fusarium    moniliforme </i>con eugenol, aldeh&#237;do cin&#225;mico, timol y linalol a    dosis de 1000 ppm.<sup>23</sup> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> La actividad antioxidante de los aceites esenciales    puede ser atribuida a diversas razones, como son: la presencia de compuestos    fen&#243;licos como el eugenol, timol y carvacrol que aunque est&#225;n en peque&#241;as    proporciones en el AE pueden ejercer una actividad antioxidante como captadores    de radicales.<sup>24,25</sup> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> El AE de <i>O.micranthum</i> puede ser una alternativa    atractiva para el control de enfermedades causadas por <i>Fusarium </i>e insectos.    </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p> <font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">AGRADECIMIENTOS</font></b>    </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> A la Universidad de Cartagena y su Grupo de    Investigaciones Agroqu&#237;micas. Al Dr. Wilman Delgado, Laboratorio de Productos    Naturales Vegetales, Universidad Nacional de Colombia. A la Dra. Maritza Villalobos    Becerra, QF, Msc; Dr. Francisco J. Rold&#225;n Palacios; Irina P. Martelo, Rosa    Cuadro y Mar&#237;a Gonz&#225;lez. </font></p>     <p>&nbsp; </p>     <p> <font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">REFERENCIAS BIBLIOGR&#193;FICAS</font></b>    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 1. Gupta, MP. Doscientas Setenta Plantas Medicinales    Iberoamericanas. Bogot&#225;, Colombia: 1&#170; ed. Talleres de Editorial Presencia.    1995, p. 320 - 321.     </font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 2. Charles DJ, Simon JE, Wood JV. Essential    oil constituents of <i>Ocimum micranthum</i> Willd. J Agric and FoodChem. 1990;38(1):120-122.        </font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 3. Garc&#237;a, BH. Flora Medicinal de Colombia.    Bogot&#225;: Tercer Mundo; 1992, Tomo I, Tomo II, p. 501.     </font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 4. Sacchetti G, Medici A, Maietti S, Radice    M, Muzzoli M, Manfredini S, Braccioli E, Bruni R. Composition and functional    properties of the essential oil of Amazonian basil,<i> Ocimum micranthum</i>    Willd., Labiatae in comparison with commercial essential oils. J Agric and Food    Chem. 2004;52(11):3486-91.     </font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 5. Narwal S, Rana AC, Tiwari V, Gangwani S,    Sharma R. Review on Chemical Constituents &amp; Pharmacological Action of <i>Ocimum    kilimandscharicum</i>. Indo-Global J Pharmaceut Sci. 2011;1(4):287-93.     </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 6. Lino CS, Gomes PB, Lucetti DL, Di&#243;genes    JP, Sousa FC, Silva MG, et al. Evaluation of antinociceptive and antiinflammatory    activities of the essential oil (EO) of <i>Ocimum micranthum</i> Willd. from    Northeastern Brazil. Phytother Res. 2005;19(8):708-12.     </font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 7. Navarro MC, Montilla MP, Cabo MM, Galisteo    M, C&#225;ceres A, Morales C, et al. Antibacterial, antiprotozoal and antioxidant    activity of five plants used in lzabal for infectious diseases. Phytother Res.2003;17(4):325-29.        </font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 8. Silva LL, Heldwein CG, Reetz LGB, H&#246;rner    R, Mallmann CA, Heinzmann BM. Chemical composition, antibacterial activity in    vitro and brine-shrimp toxicity of the essential oil from inflorescences of    <i>Ocimum gratissimum</i> L. Braz J Pharmacog. 2010;20(5):700-05.     </font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 9. Jaramillo Colorado BE, Martelo IP, Duarte    E. Antioxidant and repellent activities of the essential oil from Colombian    <i>Triphasia trifolia</i> (Burm. f) P. Wilson. J Agric and Food Chem. 2012;    60(25):6364-8.     </font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 10. Jaramillo BE, Duarte E, Delgado W. Bioactivity    of essential oil from Colombian <i>Chenopodium</i>. Rev Cubana Plant Med. 2012;17(1):54-4.        </font></p>     ]]></body>
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