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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Validación a microescala del método de ensayo 4-aminoantipirina para cuantificar compuestos fenólicos en cultivos microbianos]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The validation of assay methods to small scale constitutes nowadays very important due to the advantages economic and environmental that they possess, that constitutes a premise for the realization of services and a guaranty of the quality of the results to heated bread to client. The present work show the validation to small scale to spectrophotometric method (direct method) of 4-aminoantipirina to determine phenols compound in mixed culture. For the validation were evaluate the parameters linearity, precision, regression, accuracy, detection limits, limit of quantification and robustness. Besides to assay comparison whit the no standardized method to determine poly-phenols (Folin Ciocalteu), the results evidenced that both methods are feasible for the determination of phenols.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font face="Verdana" size="2"><b>ARTICULOS</b></font></p>     <p align="right">&nbsp;</p>     <p align="left"><b><font size="4" face="Verdana">Validaci&oacute;n a microescala del m&eacute;todo de ensayo 4-aminoantipirina para cuantificar compuestos fen&oacute;licos en cultivos microbianos</font></b></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="left"><font size="3" face="Verdana">  <b>Validation to Small Scale of 4-Amineantipirine Assay Methods for Quantification of Phenolic Compound in Mixed Cultures</b></font></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="left"><font size="2" face="Verdana">  <b>Lic. Ibrah&iacute;n Justiz-Mendoza<sup>I</sup>, Lic. Isabel Aguilera-Rodr&iacute;guez<sup>II</sup>, MSc. Irasema P&eacute;rez-Portuondo<sup>II</sup>, Dra. C. Arelis &Aacute;balos-Rodr&iacute;guez<sup>II</sup>, Dra. C. Rosa M. P&eacute;rez-Silva<sup>II</sup></b>    <br>       <br>   <sup>I</sup>Unidad Empresarial de Base de Elaboraci&oacute;n de la Empresa Cervecera &quot;Hatuey&quot;, Santiago de Cuba, Cuba    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   <sup>II</sup>Centro de Estudios de Biotecnolog&iacute;a Industrial. Facultad de Ciencias Naturales, Universidad de Oriente, Santiago de Cuba, Cuba. <a href="mailto:isabel@cebi.uo.edu.cu">isabel@cebi.uo.edu.cu</a>; <a href="mailto:iperez@cebi.uo.edu.cu">iperez@cebi.uo.edu.cu</a>; <a href="mailto:aabalos@cebi.uo.edu.cu">aabalos@cebi.uo.edu.cu</a>; <a href="mailto:rmaria@cebi.uo.edu.cu">rmaria@cebi.uo.edu.cu</a></font></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="left">&nbsp;</p> <hr>     <p align="left"><font size="2" face="Verdana"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  La validaci&oacute;n de m&eacute;todos de ensayos a microescala es, actualmente, de mucha importancia debido a las ventajas econ&oacute;micas y ambientales que posee, lo que constituye una premisa para la realizaci&oacute;n de servicios y una garant&iacute;a de la calidad de los resultados para brindar al cliente. El presente trabajo aborda la validaci&oacute;n a escala micro del m&eacute;todo espectrofotom&eacute;trico 4-aminoantipirina para la cuantificaci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos en medio de cultivo, para lo cual se evaluaron los par&aacute;metros linealidad, precisi&oacute;n, regresi&oacute;n, exactitud, l&iacute;mites de detecci&oacute;n, de cuantificaci&oacute;n y robustez; adem&aacute;s del ensayo de comparaci&oacute;n con un m&eacute;todo no estandarizado para determinar polifenoles (Folin Ciocalteu). Los resultados mostraron que ambos m&eacute;todos son factibles para la determinaci&oacute;n de fenoles. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  <b>Palabras clave:</b> compuestos fen&oacute;licos, validaci&oacute;n de m&eacute;todos anal&iacute;ticos, 4-aminoantipirina, medio de cultivo.</font></p> <hr align="JUSTIFY">     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  The validation of assay methods to small scale constitutes nowadays very important due to the advantages economic and environmental that they possess, that constitutes a premise for the realization of services and a guaranty of the quality of the results to heated bread to client. The present work show the validation to small scale to spectrophotometric method (direct method) of 4-aminoantipirina to determine phenols compound in mixed culture. For the validation were evaluate the parameters linearity, precision, regression, accuracy, detection limits, limit of quantification and robustness. Besides to assay comparison whit the no standardized method to determine poly-phenols (Folin Ciocalteu), the results evidenced that both methods are feasible for the determination of phenols.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  <b>Keywords: </b>phenolic compound, validation of analytic methods, 4-amineantipirine, mixed culture.</font></p> <hr align="JUSTIFY">     <p align="justify">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><b><font size="3" face="Verdana">INTRODUCCI&Oacute;N</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Los fenoles y sus derivados clorados son contaminantes t&oacute;xicos que se presentan en varios efluentes industriales como resultado de la fabricaci&oacute;n de pulpa de papel, preservaci&oacute;n de madera, fabricaci&oacute;n y utilizaci&oacute;n de insecticidas, manufactura de pl&aacute;sticos, pinturas, colorantes, desinfectantes, residuos de refiner&iacute;as, entre otros. Esta contaminaci&oacute;n constituye un problema, sobre todo si el destino final de los desechos obtenidos es vertido a cuerpos receptores de inter&eacute;s sin un tratamiento previo adecuado antes de su descarga<sup>1, 2</sup>. Su aparici&oacute;n en m&uacute;ltiples ambientes y su peligrosidad hacen necesario el establecimiento de t&eacute;cnicas anal&iacute;ticas sencillas y fiables que permitan, de manera r&aacute;pida, su control y monitoreo. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Muchos microorganismos son capaces de metabolizar completamente o mineralizar estos contaminantes org&aacute;nicos medioambientales, los que pueden ser degradados bajo condiciones aerobias y/o anaerobias<sup>3</sup>. Destacan los g&eacute;neros Bacillus y Pseudomonas por su demostrada habilidad para degradar estos compuestos de manera eficaz<sup>4, 5</sup>. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Para la cuantificaci&oacute;n de la degradaci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos pueden emplearse varios m&eacute;todos anal&iacute;ticos, cuya selecci&oacute;n depende de la matriz para analizar; entre estos se encuentran las t&eacute;cnicas colorim&eacute;tricas Folin Ciocalteau, descritas fundamentalmente para muestras de f&aacute;rmacos<sup>6, 7</sup>, el m&eacute;todo Folin Denis<sup>8</sup> y el m&eacute;todo de la 4-aminoantipirina, definido para el estudio de muestras de aguas y aguas residuales, por medio de extracci&oacute;n con cloroformo (m&eacute;todo directo) o por medio del m&eacute;todo indirecto<sup>9</sup>. Adem&aacute;s puede ser determinado por t&eacute;cnicas cromatogr&aacute;ficas como la cromatograf&iacute;a l&iacute;quida de alta resoluci&oacute;n (HPLC)<sup>10</sup> y la cromatograf&iacute;a l&iacute;quida acoplada a espectrometr&iacute;a de masas (LC-MS)<sup>11</sup>, las cuales son utilizadas, tambi&eacute;n, para la caracterizaci&oacute;n estructural de estos compuestos.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  El m&eacute;todo 4-aminoantipirina, es el establecido como m&eacute;todo est&aacute;ndar para la cuantificaci&oacute;n de fenoles totales en muestras ambientales; se caracteriza como un m&eacute;todo r&aacute;pido y sencillo, ya que no requiere de instrumental sofisticado<sup>10</sup>. Su validaci&oacute;n conducir&aacute; a la obtenci&oacute;n de resultados precisos y exactos, con un alto grado de seguridad dentro de las especificaciones y atributos de calidad previamente establecidos. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  La qu&iacute;mica a microescala ha demostrado su gran utilidad en la pr&aacute;ctica experimental de la qu&iacute;mica general y sint&eacute;tica tanto org&aacute;nica como inorg&aacute;nica, en cambio, en la qu&iacute;mica anal&iacute;tica no ha sido desarrollada al mismo ritmo, ya que la instrumentaci&oacute;n para el trabajo anal&iacute;tico con cantidades de muestras peque&ntilde;as y adecuada exactitud y precisi&oacute;n tiene, por lo general, altos costos de adquisici&oacute;n y mantenimiento, cuesti&oacute;n que limita su uso en la investigaci&oacute;n formal; no obstante, dadas las ventajas que deriva el trabajo a escala micro, en ocasiones es ventajoso su uso, fundamentalmente cuando se trabaja con reactivos altamente t&oacute;xicos y de elevado costo econ&oacute;mico<sup>12, 13</sup>. Por tanto, la certificaci&oacute;n de laboratorios competentes no tiene funcionalidad con procedimientos anal&iacute;ticos no validados, siendo un prerrequisito para los laboratorios trabajar en la validaci&oacute;n interna de m&eacute;todos, seg&uacute;n lo establecido en las normativas vigentes<sup>14</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  El ofrecer servicios competitivos y fiables, teniendo en cuenta el creciente aumento de las investigaciones relacionadas con el medio ambiente por las universidades y organizaciones gubernamentales, es un objetivo central. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  El presente trabajo tiene como prop&oacute;sito validar, por verificaci&oacute;n, el m&eacute;todo de ensayo espectrofotom&eacute;trico de la 4-aminoantipirina a micro escala, para determinar fenoles y sus derivados en muestras de cultivos microbianos, previo y luego del tratamiento biotecnol&oacute;gico para su depuraci&oacute;n. </font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="justify"><b><font size="3" face="Verdana">MATERIALES Y M&Eacute;TODOS </font></b> </div>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Equipos y materiales</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Las determinaciones fueron realizadas utilizando equipos y cristaler&iacute;a calibrada y validada por la Oficina Territorial de Normalizaci&oacute;n (OTN). Los reactivos utilizados fueron de calidad apropiada para los ensayos realizados.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Las determinaciones se realizaron en un espectrofot&oacute;metro Spectroquant Pharo 300 Merck UV-visible a 500 nm con celda de vidrio con paso de luz de 1,0 cm. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  <b>Reactivo 4-aminoantipirina</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  El reactivo 4-aminoantipirina se prepar&oacute; en el momento de realizar el an&aacute;lisis. Durante su empleo se conserv&oacute; en frasco &aacute;mbar y protegido de la luz<sup>8</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>M&eacute;todo 4-aminoantipirina</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  El m&eacute;todo de la 4-aminoantipirina seleccionado para la cuantificaci&oacute;n de fenol fue el indirecto, seg&uacute;n se reporta en el Est&aacute;ndar Methods, pero a un volumen de 5 mL. Para ello, las muestras y patrones fueron ajustados a 7,9 &plusmn; 0,1 unidades de pH, a las cuales se hace reaccionar con la 4-aminoantipirina en presencia de ferricianuro de potasio, formando un compuesto antipirina coloreado que es mantenido en soluci&oacute;n acuosa.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  El ensayo se realiz&oacute; seg&uacute;n procedimiento descrito por APHA (2012)<sup>8</sup>. Se tomaron 125 &micro;L de hidr&oacute;xido de amonio y se a&ntilde;adieron a tubo de ensayo con 2,5 mL, de muestra y blanco, posteriormente se adicion&oacute; soluci&oacute;n de tamp&oacute;n fosfato hasta lograr pH de 7,90 &plusmn; 0,1 unidades, luego se adicionaron 50 &micro;L de reactivo 4-aminoantipirina al 2 % y 50 &micro;L de reactivo ferrocianuro de potasio al 8 %; se homogeneiz&oacute; la mezcla y se esper&oacute; aproximadamente 15 min.Transcurrido el tiempo de reacci&oacute;n, se realiz&oacute; la lectura en espectrofot&oacute;metro a 500 nm contra blanco de reactivos.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  La determinaci&oacute;n de la concentraci&oacute;n se evalu&oacute; mediante curva de calibraci&oacute;n. Para ello se utiliz&oacute; una soluci&oacute;n patr&oacute;n del fenol a 1 mg &middot; mL<sup>-1</sup>, a partir de la cual se prepararon patrones de 1-5 &micro;g &middot; mL-1, los cuales recibieron el mismo tratamiento que las muestras.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Las muestras fueron centrifugadas previo la cuantificaci&oacute;n, a 5 000 rpm durante 10 min. El sobrenadante obtenido fue disuelto para ajustar la concentraci&oacute;n dentro del rango de la curva de calibraci&oacute;n, posteriormente se realiz&oacute; la cuantificaci&oacute;n como mismo se procedi&oacute; en patrones. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  <b>Metodolog&iacute;a para la validaci&oacute;n del m&eacute;todo anal&iacute;tico 4-aminoantipirina</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Linealidad: Se construy&oacute; una curva de calibraci&oacute;n y para ello se prepararon soluciones tomando de la soluci&oacute;n patr&oacute;n, al&iacute;cuotas correspondientes a 500, 1 000, 1 500, 2 000, 2 500 &micro;L, realizando el mismo tratamiento para n = 10 de un patr&oacute;n de referencia de fenol. Se determin&oacute; el coeficiente de variaci&oacute;n del factor respuesta; se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de varianza en todos los niveles de concentraci&oacute;n estudiados, as&iacute; como el an&aacute;lisis de regresi&oacute;n simple entre las variables cantidad recuperada contra cantidad a&ntilde;adida. Adem&aacute;s se calcularon los porcentajes de recuperaci&oacute;n en cada nivel de concentraci&oacute;n. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Precisi&oacute;n: Se realiz&oacute; por determinaci&oacute;n de la desviaci&oacute;n est&aacute;ndar y coeficiente de variaci&oacute;n (CV) de los resultados del an&aacute;lisis de muestras sint&eacute;ticas para n = 10 a 5 niveles de concentraci&oacute;n en condiciones de repetitividad.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Exactitud o veracidad: Para determinar el grado de exactitud de un m&eacute;todo anal&iacute;tico existen varias pruebas seg&uacute;n la disponibilidad o no de un material o m&eacute;todo de referencia. Cuando no se dispone de materiales de referencia, debe determinarse el porcentaje de recuperaci&oacute;n<sup>15</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Para esto, se tom&oacute; la muestra determinando la concentraci&oacute;n inicial de fenol previo al an&aacute;lisis de adici&oacute;n de est&aacute;ndar, posteriormente se adicion&oacute; una cantidad conocida de fenol en correspondencia con la cantidad de fenol presente en la muestra. El porcentaje de recuperaci&oacute;n del analito a&ntilde;adido se calcul&oacute; como cien veces la diferencia entre las medias de las series dividida entre la cantidad de analito a&ntilde;adida: </font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana">  <img src="/img/revistas/ind/v26n2/e0103214.jpg"></font></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">donde: C.A = cantidad ensayada (muestra con analito a&ntilde;adido); S.A = cantidad original en la muestra (sin analito a&ntilde;adido) y A = cantidad de analito a&ntilde;adido.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Para determinar el porcentaje de recuperaci&oacute;n, se realizaron cinco determinaciones en muestras patr&oacute;n, a&ntilde;adiendo 1,1; 2,1 y 3,1 de analito. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Robustez: Se realiz&oacute; un dise&ntilde;o factorial 2<sup>2</sup>. Para esto se tomaron factores que pueden influir en el resultado final del m&eacute;todo de an&aacute;lisis, en este caso se evaluaron cantidad del buffer a a&ntilde;adir y cantidad del reactivo 4-aminoantipirina. Se realizaron cuatro determinaciones.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  L&iacute;mite de cuantificaci&oacute;n: Se realizaron determinaciones del blanco en muestras para blanco con n = 20.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  L&iacute;mite de detecci&oacute;n: Se realizaron determinaciones del blanco en muestras blanco para n = 20.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  <b>Determinaci&oacute;n de fenoles por el m&eacute;todo Folin-Ciocalteu</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Para la cuantificaci&oacute;n de fenoles en las muestras estudiadas se emple&oacute; el m&eacute;todo de Folin Ciocalteu como m&eacute;todo de comparaci&oacute;n no normalizado, la cual se llev&oacute; a cabo seg&uacute;n lo descrito por Rodr&iacute;guez y col. (2011)<sup>15</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  <b>Procesamiento estad&iacute;stico</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Se realizaron pruebas de hip&oacute;tesis, para comparaci&oacute;n de muestras, y pruebas de Fisher para la comparaci&oacute;n de varianzas; adem&aacute;s de pruebas de regresi&oacute;n y correlaci&oacute;n. Para lo cual, se emple&oacute; el programa computacional STARGRAPHIC TM.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <div align="justify"><b><font size="3" face="Verdana">RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</font></b> </div>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  La presencia de especies qu&iacute;micas t&oacute;xicas en las muestras medioambientales da lugar a serios problemas cuya soluci&oacute;n compete a la Qu&iacute;mica Anal&iacute;tica del Medio Ambiente, puesto que la toxicidad de una especie qu&iacute;mica est&aacute; determinada por su concentraci&oacute;n y por su forma qu&iacute;mica, cuesti&oacute;n que puede dar origen a dos problemas de importancia inmediata: la determinaci&oacute;n de la concentraci&oacute;n total y/o de la forma qu&iacute;mica de las especies t&oacute;xicas en las muestras medio ambientales y el control de la contaminaci&oacute;n, es decir la disminuci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de especies t&oacute;xicas hasta niveles tolerables para la salud. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Ejemplo de lo anterior es la presencia de fenol y sus derivados en aguas y aguas residuales producto de la actividad antropog&eacute;nica, las cuales pueden ser tratadas por v&iacute;a biotecnol&oacute;gica para minimizar y/o eliminar su impacto al ambiente. Por tanto, para su estudio es necesario contar con m&eacute;todos anal&iacute;ticos r&aacute;pidos y fiables, de bajo costo y amigables del ambiente. Como garant&iacute;a, deben ser validados siguiendo los requerimientos establecidos por la normas actuales<sup>16</sup>, los cuales son m&aacute;s factibles si se logra su validaci&oacute;n a escala micro, por las ventajas que refiere al medioambiente, dado por un menor costo de operaci&oacute;n, menor espacio de almacenamiento, menor cantidad de desechos, menor riesgo de operaci&oacute;n y, por tanto, menor gasto de agua, disolventes y reactivos qu&iacute;micos. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  La validaci&oacute;n de un m&eacute;todo permite aportar resultados fiables mediante par&aacute;metros como la linealidad, precisi&oacute;n exactitud y robustez, entre otros; su verificaci&oacute;n no es m&aacute;s que la acci&oacute;n realizada en el laboratorio previo a la introducci&oacute;n de un m&eacute;todo en la rutina de trabajo, para comprobar y documentar que es competente para un estudio dado; es decir, es el proceso a trav&eacute;s del cual se obtiene evidencia documentada de que el m&eacute;todo elegido es el adecuado<sup>17</sup>. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Seguidamente se valora la validaci&oacute;n del m&eacute;todo espectrofotom&eacute;trico 4-aminoantipirina, estandarizado a escala convencional, pero en el presente estudio se eval&uacute;a a escala micro. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  <b>Linealidad</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> La linealidad del m&eacute;todo se determin&oacute; por la recta de mejor ajuste, por medio del an&aacute;lisis de regresi&oacute;n de los m&iacute;nimos cuadrados. La <a href="#1">figura 1</a> representa la curva de calibraci&oacute;n a trav&eacute;s de la cual se determina la linealidad del m&eacute;todo al aplicar la regresi&oacute;n lineal para n = 10 que dio origen a la recta de mejor ajuste. Se ensayaron muestras de concentraciones desde 1-5 &micro;g &middot; mL<sup>-1</sup>. </font></p>     <p align="center"><a name="1"></a><img src="/img/revistas/ind/v26n2/f0103214.jpg"></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Los resultados reflejan un coeficiente de correlaci&oacute;n y de regresi&oacute;n lineal por encima de los l&iacute;mites establecidos (r &sup3; 0,998 9 y r2 &sup3; 0,997 8) cuesti&oacute;n que indica una alta correspondencia entre la concentraci&oacute;n y la respuesta anal&iacute;tica para las diez determinaciones realizadas, con 99 % de confiabilidad.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> El estad&iacute;stico r<sup>2</sup> (coeficiente de determinaci&oacute;n) indica que el modelo ajustado explica el 99,89 % de la variabilidad observada, y el coeficiente de correlaci&oacute;n con un valor de 0,997 8, demuestra que existe una dependencia lineal entre la concentraci&oacute;n y la se&ntilde;al anal&iacute;tica en el intervalo evaluado.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La linealidad del m&eacute;todo es corroborada por el gr&aacute;fico de los residuos (diferencia entre los valores experimentales y los predichos por el modelo ajustado) en funci&oacute;n de la concentraci&oacute;n (<a href="#2">figura 2</a>). La figura revela que los puntos est&aacute;n distribuidos al azar alrededor del eje X, indicando que la curva es realmente lineal hasta los 5 &micro;g &middot; mL<sup>-1</sup> de fenol, valor que est&aacute; en correspondencia con lo reportado en otros trabajos<sup>18, 19</sup>, en los que se describe un comportamiento de linealidad hasta los 8 &micro;g &middot; mL<sup>-1</sup>. </font></p>     <p align="center"><a name="2"></a><img src="/img/revistas/ind/v26n2/f0203214.jpg"></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> La <a href="#3">tabla 1</a> muestra el an&aacute;lisis de varianza (Anova) del modelo de regresi&oacute;n; se observa que el Fcalculado = 207,72 y el Ftabulado (P= 0,05) = 4,7E<sup>-3</sup> por lo que Fcalculado &gt; Ftabulado, lo que demuestra que existe una buena correlaci&oacute;n entre la absorbancia y la concentraci&oacute;n, lo que permite evaluar la concentraci&oacute;n de fenol por los valores de la absorbancia obtenidos.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana"><b><a name="3"></a></b></font><img src="/img/revistas/ind/v26n2/t0103214.jpg"></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Precisi&oacute;n y exactitud</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> La precisi&oacute;n de un m&eacute;todo solo depende de la distribuci&oacute;n de los errores aleatorios, que no est&aacute; asociada con el valor verdadero y se expresa generalmente como la desviaci&oacute;n t&iacute;pica del resultado anal&iacute;tico. Tiene como objetivo conocer la variabilidad y los factores susceptibles de influir sobre los resultados de un ensayo, los que no pueden ser siempre controlados (analista, equipo, instrumental, reactivos, tiempo, etc&eacute;tera)<sup>16</sup>. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> En este estudio, la precisi&oacute;n fue determinada a trav&eacute;s de la repetibilidad, evaluando la variabilidad del m&eacute;todo operado para el an&aacute;lisis a escala micro sobre la muestra, en las mismas condiciones de ensayo (analista, equipo y reactivos) y laboratorio. La determinaci&oacute;n fue realizada a trav&eacute;s de la desviaci&oacute;n t&iacute;pica relativa (CV) para cinco niveles de concentraci&oacute;n, que abarcaron el intervalo de concentraci&oacute;n en que se encuentran las muestras a partir de una soluci&oacute;n Stock de fenol (1 mg &middot; mL<sup>-1</sup>) y en condiciones de repetitividad (<a href="#4">tabla 2</a>). </font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><b><a name="4"></a></b></font><img src="/img/revistas/ind/v26n2/t0203214.jpg"></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> El coeficiente de variaci&oacute;n obtenido para los cinco niveles de concentraci&oacute;n evaluados fue de 0,02, mucho menor que lo permitido como l&iacute;mite para m&eacute;todos espectrofotom&eacute;tricos (&lt; 3 %), lo que evidencia que el m&eacute;todo estandarizado a escala micro es preciso para las concentraciones establecidas en las condiciones de trabajo ensayadas.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  La exactitud indica que los resultados que se obtienen con un m&eacute;todo anal&iacute;tico est&aacute;n pr&oacute;ximos al valor verdadero o al que se acepta convencionalmente como valor verdadero. Para determinar si el m&eacute;todo es exacto se realiz&oacute; la prueba de recuperaci&oacute;n a tres muestras con concentraciones iniciales de 1,06; 2,07 y 3,08 &micro;g &middot; mL<sup>-1</sup>, a las cuales se les a&ntilde;adi&oacute; una cantidad conocida del analito (<a href="#5">tabla 3</a>). </font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><b><a name="5"></a></b></font><img src="/img/revistas/ind/v26n2/t0303214.jpg"></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Los porcentajes de recuperaci&oacute;n obtenidos, oscilan entre 99,1 y 100,9 %, sugiriendo que el m&eacute;todo tiene buena exactitud. Para comprobar que la recuperaci&oacute;n es satisfactoria se realiz&oacute; una prueba-t, donde se compar&oacute; la media de recobrado obtenida con respecto al 100 % (recobrado te&oacute;rico). Debido a que el p-valor para esta prueba es mayor o igual a 0,05 (p = 0,064 1), no se rechaza la hip&oacute;tesis nula, con un nivel de confianza del 95,0 % y, por tanto, se concluye que el porcentaje de recuperaci&oacute;n obtenido (100,01) representa el 100 % de recuperaci&oacute;n. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  La veracidad del m&eacute;todo fue evaluada para cada concentraci&oacute;n estudiada con un tama&ntilde;o de muestra de n = 10 (<a href="#3">tabla 3</a>). </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>L&iacute;mites de detecci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n </b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> El l&iacute;mite de detecci&oacute;n (LD) ha sido definido como la menor cantidad de analito detectable, pero no cuantificable por el m&eacute;todo de an&aacute;lisis en una muestra, mientras que el l&iacute;mite de cuantificaci&oacute;n o de determinaci&oacute;n (LC) es el valor m&iacute;nimo de analito cuantificable por el m&eacute;todo en una muestra<sup>10</sup>. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Para determinar los l&iacute;mites de cuantificaci&oacute;n y de detecci&oacute;n del m&eacute;todo espectrofotom&eacute;trico 4-aminoantipirina, se realiz&oacute; la determinaci&oacute;n de veinte muestras blanco de agua destilada. Los resultados se muestran en la <a href="#6">tabla 4</a>.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><b><a name="6"></a></b></font><img src="/img/revistas/ind/v26n2/t0403214.jpg"></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> El l&iacute;mite de detecci&oacute;n calculado fue de 0,052 &micro;g &middot; mL<sup>-1</sup> y el l&iacute;mite de cuantificaci&oacute;n fue 0,62 &micro;g &middot; mL<sup>-1</sup>. Ambos resultados confirman la utilidad del m&eacute;todo para cuantificar peque&ntilde;as cantidades de fenoles en medio de cultivo. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  <b>Robustez</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> La robustez se define como la medida de la capacidad que posee un m&eacute;todo anal&iacute;tico para permanecer inalterado ante peque&ntilde;as, pero deliberadas variaciones en ciertos par&aacute;metros; es decir, capacidad que demuestra el procedimiento de an&aacute;lisis para proporcionar resultados v&aacute;lidos en presencia de peque&ntilde;os cambios respecto a las condiciones descritas en el m&eacute;todo, susceptibles de producirse durante su utilizaci&oacute;n<sup>14</sup>, lo que proporciona idea de su fiabilidad o &quot;estabilidad&quot; durante su empleo en an&aacute;lisis de rutina.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Dado que el m&eacute;todo de la 4-aminoantipirina se fundamenta en una reacci&oacute;n, donde el ajuste de pH es fundamental para garantizar la formaci&oacute;n del complejo coloreado entre el reactivo 4-aminoantipirina y el fenol presente en la muestra, condiciones significativas para la obtenci&oacute;n de un buen resultado anal&iacute;tico; se comprob&oacute; la robustez del m&eacute;todo por medio de un dise&ntilde;o factorial 2<sup>2</sup>, donde se evaluaron los factores volumen de buffer a&ntilde;adido y cantidad de reactivo, como factores dependientes para el m&eacute;todo ensayado, cuya variable de respuesta fue la concentraci&oacute;n de fenoles totales. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Con los resultados del an&aacute;lisis ANOVA (<a href="#7">tabla 5</a>), se pudo comprobar que ninguno de los factores estudiados, ni la combinaci&oacute;n de estos, influye significativamente en los resultados anal&iacute;ticos del m&eacute;todo (p-valor &gt; 0,05) con un nivel de confianza del 95 %, lo que demuestra que el m&eacute;todo de la 4-aminoantipirina es robusto frente a los factores estudiados. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Tambi&eacute;n el m&eacute;todo se ha empleado con varias modificaciones en cuanto a concentraci&oacute;n del reactivo precursor (4-aminoantipirina)<sup>20</sup>.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana"><b><a name="7"></a></b></font><img src="/img/revistas/ind/v26n2/t0503214.jpg"></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> <b>Comparaci&oacute;n del microm&eacute;todo 4-aminoantipirina con el Folin Ciocalteu </b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> La determinaci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos en muestras de aguas puede ser cuantificado mediante varias variantes (3) descritas en la literatura. En este trabajo se eval&uacute;an dos que resultan similares para la determinaci&oacute;n de fenoles totales.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Si bien el m&eacute;todo de la 4-aminoantipirina (m&eacute;todo 1), es el conocido como m&eacute;todo espectrofotom&eacute;trico est&aacute;ndar para la cuantificaci&oacute;n de fenoles en muestras de aguas y aguas residuales, se procedi&oacute; a la comparaci&oacute;n con el m&eacute;todo establecido para la cuantificaci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos en extractos de plantas por el m&eacute;todo de Folin Ciocalteu (m&eacute;todo 2) ya estandarizado por Rodr&iacute;guez y col. (2011), teniendo en cuenta que en el m&eacute;todo estudiado, de escala convencional fue ajustado a microescala en cuanto a tama&ntilde;o de muestra y reactivos utilizados. Los resultados obtenidos se muestran en la <a href="#8">tabla 6</a>.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><b><a name="8"></a></b></font><img src="/img/revistas/ind/v26n2/t0603214.jpg"></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> El an&aacute;lisis estad&iacute;stico realizado refleja que no existen diferencias significativas entre los valores alcanzados en ambos m&eacute;todos de cuantificaci&oacute;n, lo que evidencia que ambos pueden determinar el contenido de fenoles en muestras ambientales. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> <b>Determinaci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos en muestras de medio de cultivo</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Los compuestos fen&oacute;licos son t&oacute;xicos para la mayor&iacute;a de los microorganismos en concentraciones superiores a los 80 &micro;g &middot; mL<sup>-1</sup>, de ah&iacute; que se considere un &eacute;xito encontrar bacterias que degraden completamente concentraciones cercanas a estas. Lo anterior justifica la b&uacute;squeda de bacterias degradadoras de estos compuestos y su ensayo en concentraciones entre los 100 y 300 &micro;g &middot; mL<sup>-1</sup> <sup>19-22</sup>. Por tanto, para el estudio se debe contar con m&eacute;todos precisos que permitan de manera r&aacute;pida y sencilla el monitoreo del proceso de degradaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Partiendo de lo anterior, para la evaluaci&oacute;n de la efectividad del m&eacute;todo 4-aminoantipirina a escala micro, se procedi&oacute; a cuantificar los fenoles en muestras incubadas en medio mineral salino con 80,8 &micro;g &middot; mL<sup>-1</sup> de 2-clorofenol e inoculada con cultivo de cepa RS-11 y RS-13. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> La <a href="#9">tabla 7</a> muestra los valores de concentraci&oacute;n antes y despu&eacute;s del proceso de degradaci&oacute;n, cuantificado a trav&eacute;s del m&eacute;todo evaluado. La cuantificaci&oacute;n fue realizada mediante evaluaci&oacute;n de muestras de cultivo en tiempo cero y transcurridas 48 h de experimentaci&oacute;n. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana"><b><a name="9"></a></b></font><img src="/img/revistas/ind/v26n2/t0703214.jpg"></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Pasadas 48 h la concentraci&oacute;n del 2-clorofenol descendi&oacute; a 40 y 30 % para RS-11 y RS-13, respectivamente. Ello demuestra que las cepas no adaptadas a un compuesto t&oacute;xico necesitan m&aacute;s tiempo para que su maquinaria enzim&aacute;tica degrade el compuesto org&aacute;nico evaluado, minimizando as&iacute; su toxicidad o utiliz&aacute;ndolo como fuente de carbono. Resultados similares obtuvo Magdolna (2013) cuando observ&oacute; que a medida que aumentaba la concentraci&oacute;n de 4-CF (10, 100 y 1 000 &micro;g &middot; mL<sup>-1</sup>) disminu&iacute;a el porcentaje de degradaci&oacute;n (88, 50 y 15 %, respectivamente), durante un tiempo de incubaci&oacute;n de 164 h <sup>23, 24</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  El coeficiente de variaci&oacute;n de las determinaciones fue de 0,004 1 y 0,003 8 % para los cultivos con RS-11 y RS-13, respectivamente; lo que demuestra que el m&eacute;todo es efectivo para la cuantificaci&oacute;n de fenoles totales en cultivos bacterianos, los cuales requieren de t&eacute;cnicas precisas y poco volumen de muestra. </font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p> <b><font size="3" face="Verdana">CONCLUSIONES</font></b>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Los resultados del estudio de la validaci&oacute;n por verificaci&oacute;n a microescla del m&eacute;todo de la 4-aminoantipirina para la determinaci&oacute;n de fenoles totales en muestras de cultivo microbiano indican que el mismo es adecuado y proporciona datos confiables para ser utilizado como an&aacute;lisis de rutina en la cuantificaci&oacute;n de estas mol&eacute;culas, con menor gasto de reactivos y por tanto m&iacute;nima generaci&oacute;n de residuos, lo que proporciona ventajas econ&oacute;micas y medioambientales. </font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p> <b><font size="3" face="Verdana">BIBLIOGRAF&Iacute;A</font></b>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> 1. CHAUDHRY, M. Q.; SCHROEDER, P.; WERCK-REICHHART, D.; GRAJEK, W.; MARECIK , R.  &quot;Prospects and Limitations of Phytoremediation for the   Removal of Persistent Pesticides in the Environment&quot;. Environmental Science and Pollution Research. 2002, 9, 1, p. 4&ndash;17.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  2. DEBARATI, P.; GUNJAN, P.; JANMEJAY, P.; RAKESH,   K. J. &quot;Accesing Microbial Diversity for Bioremediation   and Environmental Restoration&quot;. TRENDS in Biotechnology. 2005, 23, 3, p. 135-142.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  3. AGARRY, S. E.; DUROJAIYE, A. O.; SOLOMON, B. O.&quot;Microbial Degradation of Phenols: a Review&quot;. Int. J. Environment and Pollution. 2008,32, 1, p. 12-28.    </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  4. JING, Li; YI, Li; WANG, Ch.; WANG, P. &quot;Growth   Kinetics and Phenol Biodegradation of Psychrotrophic   Pseudomonas putidaLY1&quot;. Elsevier. Bioresource Technology. 2010, 101, p. 6740&ndash;6744.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  5. AL-THANI, R.; ABD-EL-HALEEM, D.; AL-SHAMMRI,   M. &quot;Isolation, Biochemical and Molecular Characterization   of 2-Chlorophenol Degrading BacillusIsolates&quot;. African J. of Biotechnol.2007, 6, 23, p. 2675-2681.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  6. United State Pharmacopeia. United State Pharmacopeia   Convention. 30   th Edition. USA: 2007.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  7. ICH Topic Q1 A. Stability Testing Guidelines. Stability   Testing of New Drug Substances and Product. N.Y. , U S A: 2004.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  8. American Public Health Association / American Water Works   Association / Water Pollution Control Federation. APHA   Standard Methods for the Examination of Water and   Wastewater. 20   th ed. Washington DC: 2012.    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  9. Mattila, P.; Kumpulainen, J. &quot;Determination of Free and Total Phenolic Acids in Plant-Derived Foods by HPLC with Diode-Array Detection&quot;. J. Agric. Food Chem. 2002, 50, p. 3660-366.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  10. INDU-NAIR, C.; JAYACHANDRAN, K.; SHASHIDHAR,   Sh. &quot;Biodegradation of Phenol&quot;. African Journal of Biotechnology. 2008,7, 25, p. 4951-4958.    </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  11. YANG, R.; HUMPHREY, A. &quot;Dynamics and Steady   State Studies of Phenol Degradation in Pure and Mixed Cultures&quot;. Biotechnol Bioeng. 1975, 17, p. 1211&ndash;1235.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  12. MAINERO, R. &quot;&iquest;Por qu&eacute; microescala?&quot;. Educaci&oacute;n Qu&iacute;mica&quot;. 1997, 8, 3, p. 166-167.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  13. VILLAR, M. C.; RODR&Iacute;GUEZ, M.; MIRABAL, L.&quot;Adaptaci&oacute;n de m&eacute;todos de an&aacute;lisis a microescala para   bebidas alcoh&oacute;licas&quot;. Educaci&oacute;n Qu&iacute;mica.2001, 12, 2, p. 113-115.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  14. AGUIRRE, L., et al. &quot;Generalidades, materias primas y   especialidades farmac&eacute;uticas&quot;. Validaci&oacute;n de m&eacute;todos anal&iacute;ticos. AEFI. 2001, p. 45-130.    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  15. RODR&Iacute;GUEZ AMADO, J. R.; ESCALONA ARRANZ,   J. C; RODR&Iacute;GUEZ ROMERO, R.; RODR&Iacute;GUEZ   BATISTA, Y. &quot;Validaci&oacute;n del m&eacute;todo de cuantificaci&oacute;n de polifenoles en el extracto fluido de Tamarindus indica L.&quot;.  Revista Cubana de Qu&iacute;mica. 2011, XXIII, 1, p. 42-52.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  16. NORMA CUBANA. TS 368:2010. Gu&iacute;a para la validaci&oacute;n de m&eacute;todos de ensayos qu&iacute;micos para alimentos. 2010.    </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  17. BANDEIRA, R., et al. &quot;Development and Validation of   a Method for the Analysis of Ochratoxin a in Roasted   Coffee by Liquid Chromatography/Electrospray-Mass   Spectrometry in Tandem (lc/esi-ms/ms)&quot;. Quim. Nova. 2012, 35, 1, p. 66-7.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  18. FONTMORIN, J. M., et al.&quot;Combined Process for 2,4-Dichlorophenoxyacetic Acid Treatment-Coupling of an   Electrochemical System with a biological treatment&quot;. Biochemical Engineering Journal. 2013, 70, p. 17-22.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  19.BANERJEE, A.; GHOSHAL, A. K. &quot;Isolation and   Characterization of Hyper Phenol Tolerant Bacillussp.   from Oil Refinery and Exploration Sities&quot;. Journal of Hazardous Materials. 2010, 176, p. 85-91.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  20. BOTR&Eacute;, C.; BOTR&Eacute;, F.; MAZZEI, F.; PODEST&Aacute;, E.&quot;Inhibition-Based Biosensors for the Detection of Environmental Contaminants: Determination of 2,4-Dichlorophe Noxyacetic Acid&quot;. Environmental Toxicology and Chemistry.2009, 19, p. 2876-2881.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  21. EL-SAYED, W.; ISMAEIL, M.; EL-BEIH, F. &quot;Isolation of   4-Chlorophenol Degrading Bacteria Bacillus subtilis OS1 and   Alcaligenessp OS2 from Petroleum Oil-Contaminated Soil   and Characterization of its Catabolic Pathway&quot;. Australian   Journal of Basic and Applied Sciences. 2009, 3, 2, p. 776-783.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  22. FERREIRA GUEDES, S. &quot;Estudo da biodegrada&ccedil;&atilde;o do &aacute;cido   2,4-diclorofenoxiac&eacute;tico, um herbicida selectivo amplamente   utilizado na agricultura, por uma estirpe de Penicillium&quot;. Tesis en opci&oacute;n al grado de Maestro en Tecnolog&iacute;a y seguridad alimentaria. Universidad de S&atilde;o Paulo, 2010.    </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  23. MAGDOLNA, Z.; GRUIZ, K.; MOLN&Aacute;R, M.;   FENYVESI, E. &quot;Comparative Evaluation of Microbial and   Chemical Methods for Assessing 4-Chlorophenol   Biodegradation in Soil&quot;. Chemical Engineering. 2013, 57, 1&ndash;2, p. 25&ndash;35.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  24. SINGH, S.; BAHADUR, B.; CHANDRA , R.&quot;Biodegradation of Phenol in Batch Culture and Mixed   Strains of Paenibacillus spand Bacillus cereus&quot;. Polish J.   of Microbiol.2009, 58, 4, p. 319-325.    </font></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="left">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana">Recibido: 05/12/2013    <br>   Aceptado: 20/02/2014</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><i>Ibrah&iacute;n Justiz-Mendoza</i>, Unidad Empresarial de Base de Elaboraci&oacute;n de la Empresa Cervecera &quot;Hatuey&quot;, Santiago de Cuba, Cuba</font></p>      ]]></body><back>
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