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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Aprovechamiento del Jacinto de Agua (Eichhornia crassipes) para la síntesis de carboximetilcelulosa]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Carboxymethylcellulose (CMC) was synthesized from cellulose obtained from water hyacinth (Eichhornia crassipes). Cellulose content between 24 and 27 % was found in stems and leaves, respectively. The cellulose was obtained by alkaline treatment with 6, 8 and 10 % w/v NaOH solutions. The amount of cellulose in the black liquor was proportional to the concentration of the solution. The obtained cellulose was characterized by FTIR infrared spectroscopy, which made possible to obtainits structural characterization. This synthesis of CMC was carried out with isopropanol, NaOH at 15 % w/v and monochloroacetic acid. The functional groups of this compound were identified in the FTIR of the synthesized CMC in the commercial and non commercial one. Water hyacinth ( Eichhornia crassipes ) is considered a good precursor to obtained CMC.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font face="Verdana" size="2"><b>ARTICULOS</b></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="left"><font face="Verdana" size="2"><b><font size="4"><strong> Aprovechamiento del Jacinto de Agua (<em>Eichhornia crassipes</em>) para la s&iacute;ntesis de carboximetilcelulosa</strong></font></b></font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b><font size="3"> Utilization of water hyacinth's (Eichhornia crassipes) for the synthesis of carboxymethylcellulose</font></b></font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p><strong><font size="2" face="verdana">MSc. Candelaria Tejada-Tovar</font><font face="Verdana" size="2"><b><sup>I</sup></b></font><font size="2" face="verdana">, PhD. Isabel Paz-Astudillo</font><font face="Verdana" size="2"><b><sup>I</sup></b></font><font face="Verdana" size="2"><b><sup>I</sup></b></font><font size="2" face="verdana"> MSc. Angel Villabona-Ort&iacute;z</font><font face="Verdana" size="2"><b><sup>I</sup></b></font><font size="2" face="verdana">, Ing. Mar&iacute;a Espinosa-Fortich</font><font face="Verdana" size="2"><b><sup>I</sup></b></font><font size="2" face="verdana">, Ing. Cristina L&oacute;pez-Badel</font><font face="Verdana" size="2"><b><sup>I</sup></b></font></strong></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana" size="2"> <sup>I</sup>Universidad de Cartagena, Facultad de Ingenier&iacute;a, Cartagena, Colombia, </font><font size="2" face="verdana"><a href="mailto:ctejadat@unicartagena.edu.co">ctejadat@unicartagena.edu.co</a></font>, <font size="2" face="verdana"><a href="mailto:avillabonao@unicartagena.edu.co">avillabonao@unicartagena.edu.co</a>, <a href="mailto:cristylopez-09@hotmail.com">cristylopez-09@hotmail.com</a>, <a href="mailto:mpudc@hotmail.com">mpudc@hotmail.com</a> </font><font face="Verdana" size="2">    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>    <sup>II</sup>Universidad Nacional del Tolima, Departamento de Producci&oacute;n y Sanidad Vegetal, Ibagu&eacute; Colombia, </font><font size="2" face="verdana"><a href="mailto:icpaza@ut.edu.co">icpaza@ut.edu.co</a></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> </font><font face="Verdana" size="2"> Se sintetiz&oacute; carboximetilcelulosa (CMC) a partir de celulosa obtenida de Jacinto de agua (<em>Eichhornia crassipes). </em> Inicialmente, se valor&oacute; la composici&oacute;n del material de la biomasa, encontr&aacute;ndose un contenido de celulosa entre 24 y 27 % en tallo y hojas, respectivamente. Se obtuvo la celulosa por tratamiento alcalino con soluciones de NaOH al 6, 8 y 10 % p/v, siendo la cantidad de esta en el licor negro, proporcional a la concentraci&oacute;n de la soluci&oacute;n. La celulosa obtenida se analiz&oacute; por espectroscopia infrarroja (FTIR), identific&aacute;ndose los grupos funcionales caracter&iacute;sticos de la celulosa comercial. La s&iacute;ntesis de CMC se llev&oacute; a cabo con isopropanol, NaOH a 15 % p/v y &aacute;cido monocloroac&eacute;tico. Se identific&oacute; en los FTIR de la CMC sintetizada sin purificar y la comercial la presencia de los grupos funcionales de este compuesto. Se considera el Jacinto de agua (<em>Eichhornia crassipes) </em> un buen precursor para la obtenci&oacute;n de CMC.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> CMC, celulosa, extracci&oacute;n alcalina, Jacinto de agua, <em>Eichhornia crassipes</em>.</font></p> <hr>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <b>ABSTRACT</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> </font><font face="Verdana" size="2"> </font><font face="Verdana" size="2"> Carboxymethylcellulose (CMC) was synthesized from cellulose obtained from water hyacinth (<em>Eichhornia crassipes</em>). Cellulose content between 24 and 27 % was found in stems and leaves, respectively. The cellulose was obtained by alkaline treatment with 6, 8 and 10 % w/v NaOH solutions. The amount of cellulose in the black liquor was proportional to the concentration of the solution. The obtained cellulose was characterized by FTIR infrared spectroscopy, which made possible to obtainits structural characterization. This synthesis of CMC was carried out with isopropanol, NaOH at 15 % w/v and monochloroacetic acid. The functional groups of this compound were identified in the FTIR of the synthesized CMC in the commercial and non commercial one. Water hyacinth (<em>Eichhornia crassipes</em>) is considered a good precursor to obtained CMC.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <b>Keywords:</b> CMC, cellulose, alkaline extraction, water hyacinths, <em>Eichhornia crassipes</em>.</font></p> <hr>     <p align="justify">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p>     <p><b><font face="Verdana" size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">La r&aacute;pida expansi&oacute;n y reproducci&oacute;n de algunas especies de vegetales representa uno de los grandes problemas en los ecosistemas acu&aacute;ticos, ya que genera diferentes impactos que van desde la dificultad para la circulaci&oacute;n y la pesca, hasta la disminuci&oacute;n del ox&iacute;geno disuelto, la eutrofizaci&oacute;n y la poca disponibilidad de agua para potabilizar [1]. Entre las plantas m&aacute;s invasivas se encuentran la <em>Azolla filiculoides </em> (helecho de agua), la <em>Egeria densa </em>(Elodea), y la <em>Eichhornia crassipes </em>(Jacinto de agua), entre otras [2].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">La eutrofizaci&oacute;n es un proceso ambiental que ocurre en grandes cuerpos de agua, donde un exceso de nutrientes principalmente nitr&oacute;geno y f&oacute;sforo produce un crecimiento masivo de algas y de otras formas de vida vegetal. Lo anterior, reduce la calidad del agua, ocasiona una disminuci&oacute;n en el ox&iacute;geno disuelto, e impide el paso de la luz, que por ende genera alteraciones en la flora y la fauna, y como consecuencia, causa un impacto social y econ&oacute;mico negativo [3, 4]. En Colombia diferentes cuerpos de agua han sido afectados por este fen&oacute;meno, el cual es originado por el vertimiento de detergentes, aguas residuales y escurrimientos de &aacute;reas agr&iacute;colas; consider&aacute;ndose el r&iacute;o Bogot&aacute; como el m&aacute;s afectado [5].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">El Jacinto de agua es una especie invasora, y por su alta capacidad adaptativa y reproductiva ha sido catalogada dentro de las 100 malezas m&aacute;s invasoras del mundo [6]. Su crecimiento acelerado contribuye al fen&oacute;meno de eutrofizaci&oacute;n de los cuerpos de agua, y su lenta descomposici&oacute;n genera malos olores y bajo nivel de higiene, ocasionando que dichas aguas no sean aptas para el consumo debido a sus caracter&iacute;sticas deplorables [7].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Varias alternativas han sido planteadas con el objeto de dar tratamiento adecuado a la invasi&oacute;n de plantas acu&aacute;ticas en embalses, que se presenta como consecuencia del gran aporte de nutrientes a los sistemas acu&aacute;ticos, por las malas pr&aacute;cticas en actividades agr&iacute;colas, dom&eacute;sticas e industriales [8]. Se ha sintetizado CMC a partir de diferentes materiales lignocelul&oacute;sicos como tallo de vid tunecino, alga verde <em>Ulva fasciata</em>, mesocarpio de naranja, pulpa de linter de algod&oacute;n, hoja de ma&iacute;z, residuos de papel, entre otros [9-14].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">As&iacute; mismo, el Jacinto de agua es una biomasa rica en material lignocelul&oacute;sico. Mochochoko <em>et al. </em> mediante espectroscop&iacute;a infraroja (FTIR), espectroscop&iacute;a ultravioleta–visible (UV-VIS), microscop&iacute;a electr&oacute;nica de transmisi&oacute;n (TEM) y microscop&iacute;a electr&oacute;nica de transmisi&oacute;n de alta definici&oacute;n (HRTEM), comprobaron la presencia de este biopol&iacute;mero en la planta. Su alto contenido de celulosa, lo convierte en una materia prima potencial para la s&iacute;ntesis de productos de inter&eacute;s industrial, incluyendo CMC [15].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">La carboximetilcelulosa es una sal que se caracteriza por ser soluble en agua, por disolverse en az&uacute;cares, y por tener una alta viscosidad en soluci&oacute;n. Se utiliza ampliamente, seg&uacute;n su grado de pureza, en detergentes, adhesivos, pinturas, y pl&aacute;sticos, en la industria farmac&eacute;utica, papelera, textil, y de la construcci&oacute;n, en fluidos de perforaci&oacute;n, como aditivo alimenticio y como estabilizante de emulsi ones [16, 17]. Se obtiene por medio de la reacci&oacute;n de &aacute;lcali celulosa con cloroacetato de sodio [18, 19].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">La obtenci&oacute;n de CMC de desechos de ma&iacute;z, a partir de alfa-celulosa mediante un proceso de eterificaci&oacute;n, usando NaOH y &aacute;cido monocloro-ac&eacute;tico con etanol como medio de soporte, permite obtener un producto con pureza mayor al 99,99 %, superior a la pureza de la CMC comercial (99,5 %). La carboximetilcelulosa de alta pureza mostr&oacute; un rendimiento de 2,4 g/g con grado de sustituci&oacute;n 2,41, capacidad de retenci&oacute;n de agua de 5,11 g/g, capacidad de retenci&oacute;n de aceite de 1,59 g/g, siendo el producto obtenido adecuado para aditivos farmac&eacute;uticos y alimentarios [20].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Igualmente, Mansouri <em>et al. </em> determinaron que la eficiencia, en cuanto a capacidad de absorci&oacute;n y retenci&oacute;n de derivados de carboximetilcelulosa s&oacute;dica preparada a partir de v&aacute;stago vid de T&uacute;nez, es mayor en comparaci&oacute;n a la de compuestos hom&oacute;logos comerciales [11].</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="justify"><font size="2" face="verdana">Este estudio se enfoca en la s&iacute;ntesis de CMC a partir de celulosa obtenida por tratamiento alcalino de Jacinto de agua. La informaci&oacute;n obtenida complementa la existente en la actualidad, teniendo en cuenta que no se hab&iacute;a realizado investigaci&oacute;n sobre la obtenci&oacute;n de CMC utilizando este material lignocelul&oacute;sico espec&iacute;ficamente como materia prima. Adem&aacute;s, es un aporte a la formulaci&oacute;n de soluciones en beneficio de un importante ecosistema como el Canal del Dique; u bicado en el Departamento de Bol&iacute;var, Municipio Cartagena de Indias Colombia; dicha arteria fluvial tiene las siguientes coordenadas geogr&aacute;ficas 10&deg;05'13&quot; N y 75&deg;24'38&quot; W.</font></div>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><strong><em>Preparaci&oacute;n del material lignocelul&oacute;sico</em></strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">La biomasa, en el mejor estado posible, fue recolectada en la Laguna Juan G&oacute;mez Dolores (Bol&iacute;var-Colombia), ubicada en el mismo ecosistema del Canal del Dique . Se retiraron las ra&iacute;ces y se lav&oacute; con abundante agua destilada, con el fin de eliminar taninos superficiales, resinas de az&uacute;cares reductores y dem&aacute;s impurezas. La eliminaci&oacute;n de taninos se da al usar agua caliente a 60 &deg;C, hasta desaparecer el agua coloreada. Posteriormente se sec&oacute; en un horno de convecci&oacute;n forzada a 105 &deg;C durante 2 h, para su posterior reducci&oacute;n de tama&ntilde;o, mediante un molino de cuchillas [21].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><strong><em>Caracterizaci&oacute;n de la biomasa</em></strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Se realiz&oacute; una caracterizaci&oacute;n qu&iacute;mica de la biomasa seca con el fin de determinar el contenido de celulosa, hemicelulosa y lignina, de acuerdo a las normas TAPPI [9].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><strong><em>Obtenci&oacute;n de Celulosa</em></strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Se prepararon tres soluciones de hidr&oacute;xido de sodio al 6, 8 y 10 % p/v con sus respectivas r&eacute;plicas. Se introdujeron 0,5g de biomasa en cada soluci&oacute;n de NaOH; se realiz&oacute; una cocci&oacute;n a 70 &deg;C durante 5 h en una incubadora tipo Shaking incubator IN-666 con control de temperatura. La disoluci&oacute;n negra resultante se filtr&oacute;. La biomasa obtenida se lav&oacute; con agua destilada y se sec&oacute; en horno durante 24 h a 60 &deg;C [12].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><strong><em>Caracterizaci&oacute;n de la Celulosa </em></strong></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="verdana">Las muestras resultantes fueron analizadas mediante espectroscop&iacute;a infrarroja en un espectrofot&oacute;metro FTIR modelo IRA FFINITY-1 SHIMADZU, con el fin de identificar los grupos funcionales de la celulosa obtenida, y compararla con la celulosa comercial reportada en la literatura. Los resultados permitieron identificar la concentraci&oacute;n de NaOH a la cual se obtuvo la celulosa con mayor similitud a la comercial, de acuerdo a las normas TAPPI. La celulosa se extrajo de las muestras de Jacinto de agua usando una soluci&oacute;n de NaOH al 17,5 % a 25 &deg;C &plusmn; 0,02. Despu&eacute;s de 30 min se a&ntilde;adieron 100 m L de agua destilada a 25 &deg;C, agit&aacute;ndose constantemente con una varilla de vidrio y dej&aacute;ndose en ba&ntilde;o mar&iacute;a por otros 30 min; posteriormente se filtra y colectan 100 mL. Luego se tomaron 25 mL de la muestra extra&iacute;da y se mezclaron con 10 mL de dicromato de potario (K</font><font size="2" face="Verdana"><sub>2</sub></font><font size="2" face="verdana">Cr</font><font size="2" face="Verdana"><sup>2</sup></font><font size="2" face="verdana">O</font><font size="2" face="Verdana"><sub>7</sub></font><font size="2" face="verdana">) 0,5 N; se agregaron 50 mL de &aacute;cido sulf&uacute;rico (H</font><font size="2" face="Verdana"><sub>2</sub></font><font size="2" face="verdana">SO</font><font size="2" face="Verdana"><sub>4</sub></font><font size="2" face="verdana">) concentrado, se dej&oacute; calentar por 15 min y entonces se agregaron 50 mL de agua destilada y se dej&oacute; enfriar hasta temperatura ambiente. Posteriormente, se agregaron de 3 a 4 gotas de indicador de ferro&iacute;n y se titul&oacute; con una soluci&oacute;n de sulfato de amonio ferroso 0,1 N hasta que adquiri&oacute; un color p&uacute;rpura. Una titulaci&oacute;n en blanco se llev&oacute; a cabo con 12,5 m L de NaOH 17,5 % y 12,5 m L de agua.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">El porcentaje de celulosa se calcul&oacute; de acuerdo con la <a href="#e1">ecuaci&oacute;n 1</a>:</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="e1" id="e1"></a><img src="/img/revistas/ind/v30n2/e0103218.gif"></font></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="verdana"><strong><em>Sintesis de Carboximentilcelulosa (CMC)</em></strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Despu&eacute;s de la identificaci&oacute;n de la celulosa, se procedi&oacute; a su extracci&oacute;n. Debido a la escaza informaci&oacute;n de la s&iacute;ntesis de &uacute;ltimo a partir del Jacinto de agua, se parti&oacute; de informaci&oacute;n correspondiente a materiales con contenido lignocelul&oacute;sico [12, 13], lo que permiti&oacute; plantear la metodolog&iacute;a propuesta, y generar un aporte a los estudios sobre aprovechamiento del Jacinto de agua.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">La celulosa extra&iacute;da, a la concentraci&oacute;n de NaOH que garantizara la mayor similitud con la comercial, fue mezclada con isopropanol y se mantuvo con agitaci&oacute;n constante en el shaker a 150 rpm, durante 2 h. Luego, se adicion&oacute; hidr&oacute;xido de sodio (NaOH) con una concentraci&oacute;n de 15 % p/v. Esta soluci&oacute;n fue sometida a agitaci&oacute;n de 250 en el shaker durante un tiempo adicional de 1 h y 30 min. Posteriormente, se adicionaron 6 g de &aacute;cido monocloroac&eacute;tico y se realiz&oacute; una agitaci&oacute;n de 100 rpm durante 30 min. Finalmente, la soluci&oacute;n se mantuvo con agitaci&oacute;n constante a 55 &deg;C, durante 3 h. El producto de la reacci&oacute;n fue filtrado, y el s&oacute;lido se lav&oacute; con etanol al 70 % v/v con el fin de eliminar impurezas y secado a 60 &deg;C.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p><font size="3"><strong><font face="Verdana">RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</font></strong></font></p>     <div align="center">       <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><strong><em>Caracterizaci&oacute;n del Jacinto de agua</em></strong></font></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="verdana">La <a href="#t1">tabla 1</a> muestra el contenido de celulosa, hemicelulosa y lignina, tanto en el tallo como en la hoja del Jacinto de agua.</font></p>       <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="t1"></a><strong>TABLA 1. </strong></font><font size="2" face="verdana"><strong>CARACTERIZACI&Oacute;N QU&Iacute;MICA DE JACINTO DE AGUA</strong></font></p>          <div align="center">     <table width="35%" border="1" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">       <tr>         <td width="27%" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">COMPONENTE </font></p></td>         <td width="21%" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">Tallo </font></p></td>         <td width="21%" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">Hoja </font></p></td>         <td width="29%" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">M&Eacute;TODO </font></p></td>       </tr>       <tr>         <td width="27%" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">Celulosa </font></p></td>         <td width="21%" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">26,94 &plusmn; 0,62 </font></p></td>         <td width="21%" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">24,71 &plusmn; 0,72 </font></p></td>         <td width="29%" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="verdana">TAPPI T 203 os-74 </font></p></td>       </tr>       <tr>         <td width="27%" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">Hemicelulosa </font></p></td>         <td width="21%" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">27,82 &plusmn; 0,54 </font></p></td>         <td width="21%" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">20,42 &plusmn; 0,87 </font></p></td>         <td width="29%" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">TAPPI T 203 os-74 </font></p></td>       </tr>       <tr>         <td width="27%" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">Lignina </font></p></td>         <td width="21%" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">6,18 &plusmn; 0,32 </font></p></td>         <td width="21%" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">12,91 &plusmn; 0,49 </font></p></td>         <td width="29%" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">TAPPI T 203 os-74 </font></p></td>       </tr>     </table>   </div>       <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Los resultados confirmaron el contenido de material lignocelul&oacute;sico reportado por otras investigaciones [9], lo que justifica su uso para la obtenci&oacute;n de derivados de la celulosa. As&iacute; como se encontr&oacute; que los desechos de ma&iacute;z conten&iacute;an 29,1 % de celulosa, 39,7 % de hemicelulosa y 11,4 % de lignina, mientras que una muestra de Jacinto de agua present&oacute; 34,6, 29,3 y 21,4 % de celulosa, hemicelulosa y lignina, respectivamente de acuerdo con lo reportado por Gao <em>et al. </em> [22], Brundu <em>et al. </em> [23] e Istirokhatun <em>et al. </em> [24], valores que se aproximan a los obtenidos en el presente estudio y mostrados en la <a href="#t1">tabla 1</a>.</font></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="verdana"><strong><em>S&iacute;ntesis de carboximetilcelulosa</em></strong></font></p>       <p align="justify"><font size="2" face="verdana">La celulosa fue obtenida tanto del tallo, como de las hojas del Jacinto de agua, mediante tratamiento alcalino de la biomasa a diferentes concentraciones de NaOH (6 %, 8 % y 10 % p/v). La disoluci&oacute;n negra resultante fue caracterizada para corroborar la remoci&oacute;n de lignina y hemicelulosa, y para establecer la concentraci&oacute;n de &aacute;lcali a la cual se produce el menor arrastre de celulosa hacia la fase l&iacute;quida (Ver <a href="#t2">tabla 2</a>).</font></p>       <p align="center"><font size="2" face="verdana"><a name="t2" id="t2"></a><strong>TABLA 2. CARATERIZACI&Oacute;N DE LA SOLUCI&Oacute;N NEGRA RESULTANTE DEL     <br>   TRATAMIENTO ALCALINO DEL JACINTO DE AGUA</strong></font></p>   <table border="1" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">     <tr>       <td width="130" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">Par&aacute;metros </font></p></td>       <td colspan="3" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">Concentraci&oacute;n NaOH </font></p></td>       <td width="146" rowspan="2" valign="top"><font size="2" face="verdana">M&eacute;todos</font> </td>     </tr>     <tr>       <td width="130" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">Muestra </font></p></td>       <td width="113" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">6 % </font></p></td>       <td width="110" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">8 % </font></p></td>       <td width="98" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">10 % </font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="130" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="verdana">Celulosa, % </font></p></td>       <td width="113" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">2,99 &plusmn; 0,06 </font></p></td>       <td width="110" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">4,84 &plusmn; 0,32 </font></p></td>       <td width="98" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">6,01 &plusmn; 0,14 </font></p></td>       <td width="146" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">TAPPI T 203 os-74 </font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="130" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">Hemicelulosa, % </font></p></td>       <td width="113" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">2,48 &plusmn; 0,05 </font></p></td>       <td width="110" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">2,82 &plusmn; 0,14 </font></p></td>       <td width="98" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">3,42 &plusmn; 0,18 </font></p></td>       <td width="146" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">TAPPI T 223 os-70 </font></p></td>     </tr>     <tr>       <td width="130" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="verdana">Lignina, % </font></p></td>       <td width="113" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">0,55 &plusmn; 0,03 </font></p></td>       <td width="110" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">0,71 &plusmn; 0,12 </font></p></td>       <td width="98" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">1,06 &plusmn; 0,09 </font></p></td>       <td width="146" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">TAPPI T 222 os-74 </font></p></td>     </tr>   </table>       <p align="justify"><font size="2" face="verdana">Los resultados mostrados en la <a href="#t2">tabla 2</a> indicaron que con una concentraci&oacute;n de NaOH de 6 % p/v, se removi&oacute; una menor cantidad de celulosa en el licor, en comparaci&oacute;n con las concentraciones de 8 y 10 % p/v, por lo que un mayor porcentaje de celulosa fue retenido en la biomasa. No obstante, lo mismo ocurri&oacute; para la hemicelulosa y la lignina, las cuales fueron extra&iacute;das en mayores proporciones en la medida que se increment&oacute; la concentraci&oacute;n del hidr&oacute;xido de sodio, lo cual coincide con lo reportado por Sarkar <em>et al. </em>en 2017 [25].</font></p>       <p align="justify"><font size="2" face="verdana">La <a href="#f1">figura 1</a> muestra el espectro FTIR de la celulosa obtenida mediante el tratamiento con NaOH a 6 % p/v. Los picos obtenidos identifican los grupos funcionales caracter&iacute;sticos en biomasas lignocelul&oacute;sicas estudiadas previamente [10] y son presentados en la <a href="#t3">tabla 3</a>.</font></p>       <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="f1" id="f1"></a><img src="/img/revistas/ind/v30n2/f0103218.gif"></font></p>       
<p align="center"><font size="2" face="verdana"><a name="t3"></a><strong>TABLA  3. BANDAS Y GRUPOS FUNCIONALES DEL ESPECTRO  FTIR DE LA     <br>   CELULOSA EXTRA&Iacute;DA JACINTO DE AGUA</strong></font></p>          ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">     <table border="1" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">       <tr>         <td width="161" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">Longitud de onda de la banda, cm<sup>-1</sup> </font></p></td>         <td width="246" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">Identificaci&oacute;n </font></p></td>         <td width="95" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">Referencia </font></p></td>       </tr>       <tr>         <td width="161" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">3 488 a 3 175 </font></p></td>         <td width="246" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">Frecuencia de tensi&oacute;n del grupo – OH enlaces de hidr&oacute;geno (intramoleculares e intermoleculares) </font></p></td>         <td width="95" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">[25] </font></p></td>       </tr>       <tr>         <td width="161" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">2 918 </font></p></td>         <td width="246" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">Frecuencia de vibraci&oacute;n de tensi&oacute;n CH de la celulosa y grupos OH - en la lignina. </font></p></td>         <td width="95" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">[27] </font></p></td>       </tr>       <tr>         <td width="161" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="verdana">1 734 </font></p></td>         <td width="246" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">Presencia de acetilo y &eacute;ster en la cadena del grupo carboxilo del &aacute;cido p-koumeril, indicando la presencia de lignina y hemicelulosa </font></p></td>         <td width="95" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">[24] </font></p></td>       </tr>       <tr>         <td width="161" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">1 635 </font></p></td>         <td width="246" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">Banda de flexi&oacute;n de NH perteneciente a aminas </font></p></td>         <td width="95" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">[25] </font></p></td>       </tr>       <tr>         <td width="161" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">1 519 </font></p></td>         <td width="246" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">Presencia del grupo C = C en el anillo arom&aacute;tico de la lignina. </font></p></td>         <td width="95" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">[24] </font></p></td>       </tr>       <tr>         <td width="161" height="28" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">1 470 </font></p></td>         <td width="246" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="verdana">Flexi&oacute;n del plano – CH<sub>3</sub></font></p></td>         <td width="95" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">[25] </font></p></td>       </tr>       <tr>         <td width="161" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">1 373 </font></p></td>         <td width="246" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">Deformaci&oacute;n del grupo C-H por las vibraciones en la celulosa. </font></p></td>         <td width="95" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">[26] </font></p></td>       </tr>       <tr>         <td width="161" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">1 055 </font></p></td>         <td width="246" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">Tensi&oacute;n C-O perteneciente a alcoholes secundarios y &eacute;teres existentes en la cadena de la celulosa. </font></p></td>         <td width="95" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">[26] </font></p></td>       </tr>       <tr>         <td width="161" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">898 </font></p></td>         <td width="246" valign="top">    <p><font size="2" face="verdana">Estiramiento del grupo C-O y a la vibraci&oacute;n C-H de la celulosa. </font></p></td>         <td width="95" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="verdana">[9] </font></p></td>       </tr>     </table>   </div>         <p align="justify"><font size="2" face="verdana">En la <a href="#t3">tabla 3</a> se muestran las bandas y sus correspondientes grupos funcionales presentes en el Jacinto de agua. Se encuentran vibraciones de estiramiento causados por los grupos O-H, carboxilo, C-C, C = C, seg&uacute;n los picos de las bandas 3 488, 2 918, 1 734, 1 635, 1 519, 1 470, 1 373, 1 055 y 898 cm<sup>-1</sup>, las cuales confirman la presencia en la muestra de celulosa, hemicelulosa y lignina.</font></p>       <p align="justify"><font size="2" face="verdana">La CMC sintetizada fue sometida a un an&aacute;lisis por FTIR y se compara con el espectro de este producto calidad comercial (ver <a href="#f2">figura 2</a>). Se distingue la presencia de los grupos funcionales correspondientes a la carboximetilcelulosa, principalmente la del grupo carboximetileter a una longitud de onda de aproximadamente 1 605 cm<sup>-1</sup>, el cual representa la columna vertebral de la misma. Adem&aacute;s, se evidencian frecuencias de tensi&oacute;n del grupo OH en la banda 3 432 cm<sup>-1</sup>  y el alargamiento de C–H en la longitud de onda de 2 920 cm<sup>-1</sup>  caracter&iacute;stico de la CMC. Se observa una diferencia entre el rango de absorbancia de 3 000 cm<sup>-1</sup>  a 1 750 cm<sup>-1</sup>  la cual posiblemente radica en que a la CMC extra&iacute;da no se le realiz&oacute; un proceso de purificaci&oacute;n, &eacute;ste rango de absorbancia se debe principalmente a la presencia de sustancias contaminantes y agua [13]. En la industria alimenticia se requiere carboximetilcelulosa con un porcentaje de pureza del 99,9 %; por ser un compuesto org&aacute;nico puede ser sometida a procesos de purificaci&oacute;n como sublimaci&oacute;n, cristalizaci&oacute;n o recristalizaci&oacute;n para alcanzar de esta manera el porcentaje de pureza requerido y aumentar su similitud con la carboximetilcelulosa comercial [20].</font></p>       <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="f2" id="f2"></a><img src="/img/revistas/ind/v30n2/f0203218.gif"></font></p> </div>     
<p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>CONCLUSIONES</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> La composici&oacute;n del material lignocelul&oacute;sico que conforma el Jacinto de agua (Eichhorni acrassipes) que crece en el Canal del Dique fue determinada, encontr&aacute;ndose porcentajes significativos de celulosa tanto en las hojas, como en el tallo. Lo anterior, sumado a la producci&oacute;n masiva de esta planta en los cuerpos de agua, conlleva a considerarla como una fuente potencial de celulosa y de materia prima para la obtenci&oacute;n de CMC. Los resultados de la investigaci&oacute;n indicaron la posibilidad de obtener celulosa mediante tratamiento alcalino con NaOH 6 % p/v. Asimismo, se plante&oacute; un procedimiento para la s&iacute;ntesis de CMC a partir de la celulosa extra&iacute;da, con caracter&iacute;sticas qu&iacute;micas semejantes a la comercial, lo cual pudo verificarse mediante espectroscopia infrarroja. Nuevos estudios deben desarrollarse con el fin optimizar las condiciones de obtenci&oacute;n y purificaci&oacute;n del producto para garantizar su calidad.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</strong></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">1. </font><font size="2" face="verdana">YOU, W. Yum D <em>. </em>; XIE, D.; YU, L.; HAN, C. &quot;Responses of the invasive aquatic plant water hyacinth to altered nutrient levels under experimental warming in China&quot;. <em>Aquatic Botany</em>. 2014, 119 (1), 51–56. ISSN 0304-3770.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">2. WANG, R.; SHIN, C. H.; KIM, D.; RYU. M.; PARK, J. S. &quot;Adsorption of heavy metals and organic contaminants from aqueous stream with chemically enhanced kapok fibers&quot;. <em>Environmental Earth Sciences</em>. 2016, 75(4), 338. ISSN 1866-6280.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">3. ZHANG, Z. <em>et al. </em>&quot;Effects of engineered application of <em>Eichhornia crassipes </em> on the benthic macroinvertebrate diversity in Lake Dianchi, an ultra-eutrophic lake in China&quot; . <em>Environmental Science and Pollution Research</em>. 2016, 23(9), 8388–8397. ISSN 0944-1344.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">4. COSME, N. M. D.; KOSKI, M.; HAUSCHILD, M. Z. &quot;Exposure factors for marine eutrophication impacts assessment based on a mechanistic biological model&quot;. <em>Ecological Modelling</em>. 2015, 317(1), 50–63. ISSN 0304-3800.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">5. BATT, A.; FURLONG, E. T.; MASH, H. E.; GLASSMEYER, S. T.; KOLPIN, D. W. &quot;The importance of quality control in validating concentrations of contaminants of emerging concern in source and treated drinking water samples&quot;. <em>Science of the Total Environment</em>. 2017, 579(1), 1618–1628. ISSN 0048-9697.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">6. NESSLAGE, G. M.; WAINGER, L. A.; HARMS, N. E.; COFRANCESCO, A. F. &quot;Quantifying the population response of invasive water hyacinth, <em>Eichhornia crassipes</em>, to biological control and winter weather in Louisiana, USA&quot;. <em>Biological Invasions</em>. 2016, 18(7), 2107–2115. ISSN 1387-3547.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">7. GAERTNER, M. ; LARSON, B.M.H.; IRLICH, U.M.; HOLMES, P.M.; STAFFORD, L.; VAN WILGEN, B.; RICHARDSON, D. &quot;Managing invasive species in cities: A framework from Cape Town, South Africa&quot;. <em>Landscape and Urban Planning</em>. 2016, 151(1), 1–9. ISSN 0169-2046.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">8. BHATTACHARYA, A.; HALDAR, S.; CHATTERJEE, P. K. &quot;Geographical distribution and physiology of water hyacinth ( <em>Eichhornia crassipses </em>) the invasive hydrophyte and a biomass for producing xylitol&quot;. <em>International Journal of ChemTech Research</em>. 2015, 7(4), 1849–1861. ISSN 0974-4290.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">9. KAMPEERAPAPPUN, P. &quot;Extraction and characterization of cellulose nanocrystals produced by acid hydrolysis from corn husk&quot;. <em>Journal of Metals, Materials and Minerals</em>. 2015, 25(1), 19–26. ISSN 1047-4838.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">10. OUN, A. A.; RHIM, J. W. &quot;Preparation and characterization of sodium carboxymethylcellulose/cotton linter cellulose nanofibril composite films&quot;. <em>Carbohydrate Polymers</em>. 2015, 127(1), 101–109. ISSN 0144-8617.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">11. MANSOURI, S.; KHIARI, R.; BETTAIEB, F.; EL-GENDY, A. A.; MHENNI, F. &quot;Synthesis and Characterization of Carboxymethyl Cellulose from Tunisian Vine Stem: Study of Water Absorption and Retention Capacities&quot; . <em>Journal of Polymers and the Environment</em>. 2015, 23(2), 190–198. 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