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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Valorización de Residuos Agroindustriales Ricos en Pectinas por Fermentación]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The search of the biotechnological ways to the integral use of the wastes generated by the coffee and citric agroindustries, is a current problem. The biotransformation of coffee pulp and orange mesocarp during aerobic and anoxic fermentation with the pectinolític yeast Kluyveromyces marxianus CCEBI 2011 was studied in this research. It was found that coffee pulp is a better substrate to yeast growth, which was evidenced throughout a better conversion of the carbon and energy source. The yeast used in 24 h the reducing and neutral sugars from substrates efficiently, either under aerobic or oxygen-limited cultures. The excretion of the polygalacturonase enzyme by the yeast lead to the increasing in the pectic substances extraction, which reached the 225 % and 33 % for coffee pulp and orange mesocarp, respectively, compared with the amounts which were extracted during substrates sterilization. The enzyme production by the microorganism presented not significantly differences in relation to the substrate used, but the contrary occurred with respect to glucose concentration in the medium. These results point to the promissory use of the K. marxianus CCEBI 2011 yeast strain in the valorization of pectin-rich agricultural wastes by means of their conversion in potential plant elicitors and prebiotics oligogalacturonides-based.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>ARTICULO    ORIGINAL</b></font></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="left"><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>&nbsp;Valorizaci&oacute;n de Residuos Agroindustriales  Ricos en Pectinas por Fermentaci&oacute;n</strong></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="left"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Valorization of Pectin-rich Agroindustrial Wastes by  Fermentation</strong></font></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Dr.C. Manuel Serrat D&iacute;az, Lic.  Cassamo Ussemane Mussagy, MSc. Miladis Isabel Camacho Pozo, MSc. Abelardo All&aacute;n  M&eacute;ndez Hern&aacute;ndez, Dra. C. Rosa Catalina Berm&uacute;dez</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Centro de Estudios de  Biotecnolog&iacute;a Industrial. Facultad de Ciencias Naturales. Universidad de  Oriente. Santiago de Cuba. Cuba. <a href="mailto:mserrat@cebi.uo.edu.cu">mserrat@cebi.uo.edu.cu</a></font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p> <hr>     <p align="justify"><strong><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">RESUMEN</font></strong></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La b&uacute;squeda de alternativas biotecnol&oacute;gicas  para el aprovechamiento integral de los residuales generados en el  procesamiento agroindustrial del caf&eacute; y los frutos c&iacute;tricos constituye una  problem&aacute;tica actual. En el presente trabajo se eval&uacute;a la biotransformaci&oacute;n de  la pulpa de caf&eacute; y el mesocarpo de naranja, sometidos a fermentaci&oacute;n en  condiciones aerobias y an&oacute;xicas con la levadura pectinol&iacute;tica <em>Kluyveromyces  marxianus</em> CCEBI 2011. Se encontr&oacute; que pulpa de caf&eacute; aporta condiciones m&aacute;s  favorables para el crecimiento de la levadura, reflejado en una mejor  conversi&oacute;n de la fuente de carbono y energ&iacute;a. La levadura utiliz&oacute; eficazmente  los az&uacute;cares reductores y neutros de los sustratos en 24 h, tanto en cultivos  aerobios como limitados de ox&iacute;geno. La excreci&oacute;n de la enzima  endopoligalacturonasa por la levadura facilit&oacute; la extracci&oacute;n de las sustancias  p&eacute;cticas contenidas en la pulpa de caf&eacute; y el residual de naranja, produciendo  incrementos del 225 % y 33 %, respectivamente, con respecto a las cantidades  extra&iacute;das durante la esterilizaci&oacute;n de los sustratos. La producci&oacute;n de esta  enzima por el microorganismo no present&oacute; diferencias significativas con  respecto al sustrato empleado, pero s&iacute; con respecto a la concentraci&oacute;n de  glucosa en el medio. Estos resultados apuntan al empleo promisorio de <em>K.  marxianus</em> CCEBI 2011 en la valorizaci&oacute;n de residuales agr&iacute;colas ricos en  pectinas a trav&eacute;s de su conversi&oacute;n en fuentes potenciales de estimuladores  vegetales y prebi&oacute;ticos basados en oligogalacturonidos.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Palabras clave: </strong><em>kluyveromyces marxianus</em>,  levadura pectinol&iacute;tica, pulpa de caf&eacute;, mesocarpo de naranja, valorizaci&oacute;n de  residuos.</font></p> <hr>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>&nbsp;</strong></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>ABSTRACT</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">The search of  the biotechnological ways to the integral use of the wastes generated by the  coffee and citric agroindustries, is a current problem. The biotransformation  of coffee pulp and orange mesocarp during aerobic and anoxic fermentation with  the pectinol&iacute;tic yeast <em>Kluyveromyces marxianus </em>CCEBI 2011 was studied in  this research. It was found that coffee pulp is a better substrate to yeast  growth, which was evidenced throughout a better conversion of the carbon and  energy source. The yeast used in 24 h the reducing and neutral sugars from  substrates efficiently, either under aerobic or oxygen-limited cultures. The excretion of the polygalacturonase enzyme by the  yeast lead to the increasing in the pectic substances extraction, which reached  the 225 % and 33 % for coffee pulp and orange mesocarp, respectively, compared  with the amounts which were extracted during substrates sterilization. The  enzyme production by the microorganism presented not significantly differences  in relation to the substrate used, but the contrary occurred with respect to  glucose concentration in the medium. These results point to the promissory use  of the <em>K. marxianus</em> CCEBI 2011 yeast strain in the valorization of  pectin-rich agricultural wastes by means of their conversion in potential plant  elicitors and prebiotics oligogalacturonides-based.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Keywords: </strong><em>kluyveromyces marxianus</em>, pectinolytic yeast, coffee pulp, orange mesocarp,  wastes valorization.</font></p> <hr>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="left"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>INTRODUCCION</strong></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Una problem&aacute;tica actual con respecto a la  conservaci&oacute;n medioambiental radica en c&oacute;mo otorgarle utilidad a los residuos  ocasionados por la actividad industrial y social del  hombre. Actualmente, los procesos de reciclaje de desechos constituyen una v&iacute;a  muy utilizada para paliar las consecuencias ambientales derivadas del  vertimiento incontrolado de estos al medio ambiente. Sin embrago, estos m&eacute;todos  no siempre pueden ser aplicados, sobre todo en el caso de los subproductos y  residuos generados por la agricultura y el procesamiento industrial de los  productos agr&iacute;colas, debido a muchas peculiaridades inherentes a estos, como su  heterogeneidad, dispersi&oacute;n en espacio y tiempo y alto contenido de humedad,  fundamentalmente.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En la provincia Santiago de Cuba, los  procesos agroindustriales de beneficiado del caf&eacute; y los c&iacute;tricos generan  considerables vol&uacute;menes de desechos s&oacute;lidos, caracterizados por un alto poder  contaminante como consecuencia de su elevado contenido de humedad y az&uacute;cares  fermentables. Estos desechos representan una fracci&oacute;n importante en peso con  respecto al fruto beneficiado, que llega a ser de aproximadamente el 40 % o  m&aacute;s. Ambos residuales comparten tambi&eacute;n como caracter&iacute;sticas, su alto contenido  en pectinas y su escaso o nulo aprovechamiento [1].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La pulpa del caf&eacute;, debido a su composici&oacute;n  qu&iacute;mica, presenta potencialidades para ser empleada como materia prima en la  obtenci&oacute;n de biog&aacute;s, alimento animal y como sustrato en la producci&oacute;n de setas  comestibles. Estas tecnolog&iacute;as permiten utilizarla como subproducto, eliminar  la contaminaci&oacute;n y, a su vez, generar beneficios en el orden econ&oacute;mico, social  y ambiental [2]. Para el muc&iacute;lago y las aguas de lavado del caf&eacute; la digesti&oacute;n  anaerobia para la obtenci&oacute;n de biog&aacute;s parece ser la opci&oacute;n m&aacute;s atractiva [3].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La corteza y hollejos de naranja, constituyen  subproductos que tambi&eacute;n resultan interesantes desde el punto de vista de la posibilidad  de explotarlos comercialmente. Ejemplos de lo antes se&ntilde;alado son la extracci&oacute;n  de aceites esenciales de la corteza externa o flavedo y la obtenci&oacute;n de pectina  del mesocarpo (hollejos o albedo), ambos productos de inter&eacute;s alimentario y  farmac&eacute;utico y con elevados precios de comercializaci&oacute;n [4, 5].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El presente trabajo tiene como objetivo  evaluar la biotransformaci&oacute;n de la pulpa de caf&eacute; y el mesocarpo de naranja,  cuando son sometidos a fermentaci&oacute;n en condiciones aerobias y anaerobias con la  levadura pectinol&iacute;tica <em>Kluyveromyces marxianus</em> CCEBI 2011, atendiendo  principalmente a aquellos aspectos relevantes desde el punto de vista de su  aprovechamiento, valorizaci&oacute;n y disminuci&oacute;n de su impacto ambiental, como son  la producci&oacute;n de la enzima <em>endo</em>poligalacturonasa, la extracci&oacute;n de las  sustancias p&eacute;cticas y la disminuci&oacute;n del contenido de az&uacute;cares fermentables.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><strong><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">MATERIALES Y METODOS</font></strong></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Dise&ntilde;o experimental</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se utilizaron las siguientes variables y  niveles:</font></p> <ul>       <li><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" align="justify">Sustratos  ricos en pectina: Pulpa de caf&eacute; (P) y mesocarpo de naranja (M).</font></li>       ]]></body>
<body><![CDATA[<li><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" align="justify">Oxigenaci&oacute;n  de los cultivos/Concentraci&oacute;n de la fuente de carbono:</font>     <ul>           <li><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" align="justify">Cultivos est&aacute;ticos (glucosa 20 g/L y 100  g/L).</font></li>           <li><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" align="justify">Cultivos agitados (glucosa 20 g/L).</font></li>         </ul>   </li>     </ul>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Como invariantes de los experimentos se  consideraron las siguientes:</font></p> <ul>       <li><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" align="justify">Microorganismo: Se emple&oacute; la cepa de levadura <em>Kluyveromyces marxianus</em> CCEBI 2011,  suministrada y conservada por la Colecci&oacute;n de Cultivos del CEBI, Universidad de  Oriente.</font></li>       <li><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">In&oacute;culo:  Se utiliz&oacute; una suspensi&oacute;n de la levadura en agua destilada a raz&oacute;n del 0,2 %  (v/v).</font></li>       <li><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Medio  de cultivo base: Se trabaj&oacute; con un medio mineral suplementado con extracto de  levadura y conteniendo glucosa como fuente de carbono y energ&iacute;a. La composici&oacute;n  del medio, en gramos por litro, fue la siguiente: extracto de levadura 5,  cloruro de calcio dihidratado 0,1, sulfato de magnesio heptahidratado 0,5,  hidr&oacute;genofosfato de potasio 5 y sulfato de amonio 5, pH 5; glucosa 20 &oacute; 100,  seg&uacute;n el experimento.</font></li>       <li><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Concentraci&oacute;n  del sustrato: 1% (m/v) base seca.</font></li>       ]]></body>
<body><![CDATA[<li><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Temperatura:  32 &ordm;C.</font></li>       <li><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Tiempo  de fermentaci&oacute;n: 24 h.</font></li>     </ul>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se utilizaron dos r&eacute;plicas por cada variante  y dos controles sin inocular.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Propagaci&oacute;n del in&oacute;culo</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La levadura se propag&oacute; en frascos c&oacute;nicos de  250 mL de capacidad, conteniendo 100 mL de medio YPD (extracto de levadura 1 %,  peptona 2 %, glucosa 2 %) durante 18 h. Se tomaron entonces 30 mL del cultivo,  se centrifugaron (5000 rpm, durante 5 min) y se desech&oacute; el sobrenadante. La  biomasa se resuspendi&oacute; en 6 mL de agua destilada est&eacute;ril, quedando as&iacute; cinco  veces m&aacute;s concentrada que en el cultivo de propagaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Fermentaci&oacute;n</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los ensayos de fermentaci&oacute;n se efectuaron en  frascos c&oacute;nicos de 100 mL conteniendo 75 mL (cultivos est&aacute;ticos) o 25  mL (cultivos agitados) del medio de cultivo basal, a los cuales se a&ntilde;adi&oacute; el  sustrato correspondiente. Los frascos se inocularon e incubaron por 24 h a 32 &ordm;C.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Procesamiento de los cultivos</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Despu&eacute;s de 24 h de fermentaci&oacute;n, los cultivos  se homogenizaron, se tomaron 10 mL de la suspensi&oacute;n y se centrifugaron a 3000  rpm por 30 min a 4&deg;C. Se llev&oacute; el sobrenadante a tubos termorresistentes  provistos de tapa con cierre herm&eacute;tico y el sedimento se lav&oacute; dos veces con 5  mL de agua destilada, se resuspendi&oacute; y se homogeniz&oacute; en 5 mL de agua destilada.  Se tomaron tres al&iacute;cuotas de 1 mL de esta suspensi&oacute;n para la realizaci&oacute;n del  conteo celular. Todos los cultivos se conservaron en congelaci&oacute;n (-20 &ordm;C).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Determinaci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de biomasa  microbiana</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La concentraci&oacute;n de biomasa se determin&oacute;  mediante conteo directo al microscopio &oacute;ptico (400X) utilizando una c&aacute;mara de  conteo celular F&uuml;chs-Rosenthal (altura capilar de 0.2 mm y 1/16 mm<sup>2</sup>  de &aacute;rea del cuadrante). La concentraci&oacute;n celular (en c&eacute;l/mL) se convirti&oacute; a  concentraci&oacute;n m&aacute;sica multiplicando por el factor de conversi&oacute;n 1,41x10-9  mg/cel, determinado experimentalmente en el laboratorio.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>C&aacute;lculo del rendimiento microbiano</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se calcul&oacute; seg&uacute;n la siguiente expresi&oacute;n:</font></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/rtq/v36n1/i0101116.jpg"> </p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>M&eacute;todos anal&iacute;ticos</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se utilizaron los siguientes  m&eacute;todos:</font></p> <ul>       <li><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" align="justify">Determinaci&oacute;n de az&uacute;cares reductores: M&eacute;todo  de Somogyi-Nelson [6].</font></li>       <li><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Determinaci&oacute;n de &aacute;cidos ur&oacute;nicos: Ensayo del  carbazol [7].</font></li>       <li><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Determinaci&oacute;n de az&uacute;cares neutros: Ensayo de  la antrona [8].</font></li>     ]]></body>
<body><![CDATA[</ul>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Determinaci&oacute;n de la actividad enzim&aacute;tica poligalacturonasa</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Previo a la determinaci&oacute;n de la actividad  enzim&aacute;tica, el sobrenadante de los cultivos conteniendo la enzima se clarific&oacute;  mediante precipitaci&oacute;n con etanol. Para ello se utiliz&oacute; 1 mL del sobrenadante  del cultivo, se enfri&oacute; en ba&ntilde;o de hielo y se precipit&oacute; con tres vol&uacute;menes de  etanol absoluto helado. Se homogeniz&oacute; r&aacute;pidamente por inversi&oacute;n y se incub&oacute; en  hielo nuevamente por espacio de 10 minutos. Se centrifug&oacute; durante 10 minutos y  se desech&oacute; el sobrenadante, el precipitado se lav&oacute; dos veces con etanol absoluto  helado y por &uacute;ltimo se disolvi&oacute; en 4 mL de buffer acetato 50 mM (pH 5). Se  conserv&oacute; en congelaci&oacute;n (aproximadamente -10 &ordm;C).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Como sustrato para el ensayo enzim&aacute;tico se  utiliz&oacute; &aacute;cido poligalactur&oacute;nico (Sigma) a 5 g&middot;L<sup>-1</sup>, en tamp&oacute;n acetato  de sodio 50 mM (pH 5). La mezcla de reacci&oacute;n estuvo conformada de 0,1 mL de la enzima y 0,4 mL de  sustrato, para un volumen total de 0,5 mL. La reacci&oacute;n se desarroll&oacute; por  espacio de 10 min a 37 &ordm;C. La actividad enzim&aacute;tica se estim&oacute; de la pendiente de  la recta de regresi&oacute;n correspondiente a la curva de avance de la reacci&oacute;n  enzim&aacute;tica, dada como concentraci&oacute;n de extremos reductores <em>vs.</em> Tiempo de  reacci&oacute;n. Una unidad de actividad enzim&aacute;tica se defini&oacute; como la cantidad de  enzima que cataliza el incremento del poder reductor de la mezcla de reacci&oacute;n  en 1 &micro;mol&middot;min-1, expresado como &aacute;cido galactur&oacute;nico, bajo las  condiciones de ensayo especificadas.</font></p>     <p align="justify"><strong><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">An&aacute;lisis estad&iacute;stico</font></strong></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El an&aacute;lisis estad&iacute;stico se realiz&oacute; con ayuda  del paquete estad&iacute;stico Statgraphics Centurion XV (Stat Point, Inc., USA).</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><strong><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">RESULTADOS Y DISCUSION</font></strong></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Comportamiento del  crecimiento microbiano durante la fermentaci&oacute;n de la pulpa de caf&eacute; y el  mesocarpo de naranja</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El crecimiento microbiano es un elemento  fundamental a considerar en un proceso fermentativo ya que, como consecuencia  de &eacute;l, tiene lugar las transformaciones bioqu&iacute;micas del sustrato debido a la  actividad metab&oacute;lica de las c&eacute;lulas microbianas. Este proceso puede ser  caracterizado por dos par&aacute;metros b&aacute;sicos: uno relacionado con la velocidad a  que tiene lugar, que es la velocidad especifica de crecimiento (&micro;) y otro  relacionado con la estequiometria del proceso, o sea, con la eficacia en que es  aprovechado el contenido energ&eacute;tico del sustrato, que es el rendimiento de  crecimiento o rendimiento biomasa/sustrato (Yx/s).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La concentraci&oacute;n celular y de biomasa a las  24 h de fermentaci&oacute;n fue menor en el residual pulpa de caf&eacute; para los cultivos  est&aacute;ticos (an&oacute;xicos), independientemente de la concentraci&oacute;n de glucosa inicial  en el medio de cultivo (20 &oacute; 100 g/L), no siendo as&iacute; para el caso de los  cultivos agitados, donde la concentraci&oacute;n de biomasa fue significativamente  superior en los medios con pulpa de caf&eacute; (<a href="#t0101116">tabla</a>). Esto sugiere una mayor  velocidad de crecimiento de la levadura, en condiciones de oxigenaci&oacute;n y en  presencia de pulpa de caf&eacute;, lo cual se corresponde con el metabolismo  preferentemente respiratorio de la especie <em>Kluyveromyces marxianus</em> [9] y  al origen de la cepa utilizada en este estudio, la cual fue aislada de  residuales del beneficio h&uacute;medo del caf&eacute;, mediante enriquecimiento en presencia  de un extracto de pulpa de caf&eacute; [10].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Ver a continuaci&oacute;n la <a href="/img/revistas/rtq/v36n1/f0101116.jpg">figura 1</a>.</font></p>     
<p align="center"><a name="t0101116"></a><img src="/img/revistas/rtq/v36n1/t0101116.jpg"></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Para los cultivos est&aacute;ticos o an&oacute;xicos, se  obtuvo un menor crecimiento en los medios donde la concentraci&oacute;n de glucosa fue  de 20 g/L, comparado a los de 100 g/L, en correspondencia con la mayor  disponibilidad de la fuente de carbono y energ&iacute;a el medio de cultivo. Este  resultado indica que la levadura tolera bien concentraciones de etanol del  orden del 4 % (v/v) (considerando un 40 % de rendimiento alcoh&oacute;lico), sin  inhibici&oacute;n apreciable del crecimiento.  Serrat y col. [11] plantearon la posibilidad de producir concomitantemente  alcohol enzima poligalacturonasa con esta levadura, utilizando concentraciones  de glucosa de 100 g/L.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Seg&uacute;n puede observarse en la <a href="/img/revistas/rtq/v36n1/f0101116.jpg">figura 1</a>, los  cultivos agitados presentan un mayor rendimiento de biomasa, alrededor de 10  veces mayor que el de los cultivos est&aacute;ticos. Esto se corresponde con la mayor  eficiencia energ&eacute;tica de los procesos respiratorios con respecto a los  fermentativos. Sin embargo, resulta notable que para el caso de los cultivos  est&aacute;ticos en presencia de pulpa de caf&eacute; como sustrato, el rendimiento de  biomasa aumenta casi cuatro veces cuando la concentraci&oacute;n de glucosa inicial se  incrementa de 20 a 100 g/L. Aunque en primera instancia resulta dif&iacute;cil  explicar este comportamiento, debido a los m&uacute;ltiples factores que pueden estar  implicados, podr&iacute;a suponerse la acumulaci&oacute;n intracelular de compuestos  energ&eacute;ticos de almacenamiento (p.e, glic&oacute;geno) ante el exceso de fuente de  carbono y la limitaci&oacute;n de fuente de nitr&oacute;geno [12] o de sustancias  intracelulares con efecto protector, como la trehalosa, ante el incremento de  la concentraci&oacute;n de etanol en el medio [13].</font></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Cambios en la composici&oacute;n de az&uacute;cares  solubles en los medios de fermentaci&oacute;n</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La concentraci&oacute;n de az&uacute;cares reductores  inicial en los cultivos fue, aproximadamente, un 50 % superior en los medios  conteniendo mesocarpo de naranja con respecto a los que conten&iacute;an pulpa de caf&eacute;  (ver <a href="/img/revistas/rtq/v36n1/f0201116.jpg">figuras 2</a> y <a href="/img/revistas/rtq/v36n1/f0301116.jpg">3</a>). Este incremento es causado por la extracci&oacute;n de az&uacute;cares  solubles presentes en el mesocarpo durante el proceso de esterilizaci&oacute;n, lo  cual se corresponde con el elevado contenido de az&uacute;cares en este material [4].</font></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Entre estos az&uacute;cares que contribuyen al incremento  del poder reductor se encuentran la glucosa y la fructosa, presentes en  cantidades importantes [4]; tambi&eacute;n las sustancias p&eacute;cticas aportan al  incremento del poder reductor, aunque en menor grado debido a su elevado grado  de polimerizaci&oacute;n. En todos los cultivos donde la concentraci&oacute;n de glucosa fue  de 20 g/L, independientemente del nivel de oxigenaci&oacute;n, se produjo un consumo  casi total de los az&uacute;cares reductores inicialmente presentes (<a href="/img/revistas/rtq/v36n1/f0201116.jpg">figuras 2</a> y <a href="/img/revistas/rtq/v36n1/f0301116.jpg">3</a>).  Estos az&uacute;cares, constituidos por la glucosa presente en el medio basal y los  az&uacute;cares incorporados al medio por los sustratos, son utilizados por el  microorganismo como fuente de carbono y energ&iacute;a para su crecimiento. Este  resultado es importante, desde el punto de vista pr&aacute;ctico, pues nos indica la  eficacia de proceso fermentativo conducido por <em>K. marxianus</em> CCEBI 2011,  que en apenas 24 h agot&oacute; la fuente de carbono presente en el medio del cultivo.  Esto tambi&eacute;n se traduce en un impacto ambiental mucho menor de los sustratos  fermentados, debido a su bajo contenido de az&uacute;cares potencialmente  fermentables.</font></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En la <a href="/img/revistas/rtq/v36n1/f0201116.jpg">figura 2</a> se presenta&nbsp; la concentraci&oacute;n de az&uacute;cares reductores y  neutros en cultivos con pulpa de caf&eacute; (P) y mesocarpo de naranja (M) a  concentraciones de glucosa (G) de 20g/L en cultivos agitados (A) y est&aacute;ticos  (E).</font></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En la <a href="/img/revistas/rtq/v36n1/f0301116.jpg">figura 3</a> se presenta la  concentraci&oacute;n de az&uacute;cares reductores y neutros en cultivos con pulpa de caf&eacute;  (P) y mesocarpo de naranja (M) a concentraciones de glucosa (G) de 100g/L en  cultivos agitados (A) y est&aacute;ticos (E).</font></p>     
]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En los cultivos donde est&aacute; presente el  residual de naranja y la concentraci&oacute;n de glucosa inicial fue de 20 g/L, se  apreci&oacute; un menor consumo de az&uacute;cares y, por ende, la existencia de una mayor  cantidad de az&uacute;cares neutros residuales con respecto a los medios conteniendo  pulpa de caf&eacute; (ver <a href="/img/revistas/rtq/v36n1/f0201116.jpg">figura 2</a>). Este hecho sugiere la existencia, en el mesocarpo  de naranja, de az&uacute;cares neutros no asimilables por esta cepa de levadura. El  contenido de az&uacute;cares neutros residuales fue siempre mayor en los cultivos agitados  que en los est&aacute;ticos, lo que pudiera estar asociado a la s&iacute;ntesis de alguna  enzima glucohidrolasa (por ej, endoglucanasas) por la levadura, capaza de  hidrolizar los polisac&aacute;ridos estructurales de los sustratos. En levaduras del  g&eacute;nero <strong>Kluyveromyces</strong> ha sido descrita la s&iacute;ntesis de &beta;-(1,3)-glucanasas  [14] e inulinasas [15], entre otras.</font></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En el caso de los cultivos est&aacute;ticos, donde  la concentraci&oacute;n de glucosa inicial fue de 100 g/L, se apreci&oacute; un mayor consumo  aparente de az&uacute;cares reductores y neutros en los medios con mesocarpo de  naranja con respecto a los que conten&iacute;an pulpa de caf&eacute; (<a href="/img/revistas/rtq/v36n1/f0301116.jpg">figura 3</a>). Este  resultado, aparentemente contradictorio con lo observado en los cultivos  agitados y en los cultivos est&aacute;ticos, cuando la concentraci&oacute;n de glucosa fue de  20 g/L, podr&iacute;an ser el resultado de la acci&oacute;n hidrol&iacute;tica de la  poligalacturonasa de la levadura, la cual solo se produce en condiciones de  anoxia y en proporci&oacute;n directa con las concentraciones de glucosa en el medio  [10]. Se conoce tambi&eacute;n que esta enzima act&uacute;a preferentemente sobre pectinas de  bajo grado de esterificaci&oacute;n [10], como es el caso de la pectina de caf&eacute; [16];  de modo, que el elevado contenido de az&uacute;cares reductores al final de la  fermentaci&oacute;n pudiera atribuirse, fundamentalmente, a la existencia de  olig&oacute;meros p&eacute;cticos (oligogalactur&oacute;nidos) en el medio, extra&iacute;dos de la matriz  del sustrato. En tanto, el mayor contenido de az&uacute;cares neutros residuales  observado en los medios con pulpa de caf&eacute;, se corresponde muy bien con el menor  crecimiento de la levadura en este medio (<a href="#t0101116">tabla</a>). El sustrato pulpa de caf&eacute;  se caracteriza por presentar determinados factores de inhibici&oacute;n del  crecimiento microbiano, como la cafe&iacute;na y el &aacute;cido cafeico [17].</font></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Influencia de los sustratos  pulpa de caf&eacute; y mesocarpo de naranja en la producci&oacute;n de endopoligalacturonasa  y en la extracci&oacute;n de sustancias p&eacute;cticas</strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Uno de los productos biotecnol&oacute;gicos de mayor  significaci&oacute;n que puede obtenerse con la levaduras <em>K. marxianus</em> CCEBI  2011 es la enzima <em>endo-</em>poligalacturonasa [18]. En este estudio se  eval&uacute;an las potencialidades de los residuales pulpa de caf&eacute; y mesocarpo de  naranja como sustratos para la producci&oacute;n de esta enzima, lo cual resulta de  gran inter&eacute;s pr&aacute;ctico, por constituir una v&iacute;a para la valorizaci&oacute;n de estos  residuos. En este estudio se consider&oacute; solamente a los cultivos est&aacute;ticos  (an&oacute;xicos), pues la levadura <em>K. marxianus</em> CCEBI 2011 solo produce la  enzima endopoligacturonasa en ausencia de ox&iacute;geno [10].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">A continuaci&oacute;n la <a href="#f0401116">figura 4</a>.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="f0401116"></a><img src="/img/revistas/rtq/v36n1/f0401116.jpg">     
<br> </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">  Como puede observarse en la <a href="#f0401116">figura 4 (A y B)</a>,  la producci&oacute;n de la enzima por la levadura, para ambos sustratos, fue mayor  cuando la concentraci&oacute;n inicial de glucosa fue de 20 g/L, no existiendo  diferencia significativas (p&lt;0,05) entre los sustratos. Estos resultados no  est&aacute;n en concordancia con el car&aacute;cter <em>pseudo</em>constitutivo de la s&iacute;ntesis  de esta enzima por esta cepa de levadura [10]. Si se tiene en cuenta la  complejidad que le confiere al sistema la introducci&oacute;n de sustratos de  naturaleza qu&iacute;mica compleja, como son la pulpa de caf&eacute; y el mesocarpo de  naranja, podr&iacute;a suponerse la existencia de factores inhibitorios o inactivantes  sobre la enzima producida.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La concentraci&oacute;n de sustancias p&eacute;cticas,  expresada como &aacute;cidos ur&oacute;nicos totales, fue significativamente mayor en los  medios que contienen el residual de naranja con respecto a los que se  formularon con la pulpa de caf&eacute; (<a href="#f0401116">figura 4, A y B</a>). Esto guarda una estrecha  relaci&oacute;n con la composici&oacute;n informada para estos sustratos [16, 19], donde al  mesocarpo de naranja corresponde una mayor concentraci&oacute;n de pectina, lo cual es  la base de su empleo como una de las materias primas principales en la  obtenci&oacute;n de este polisac&aacute;rido a escala comercial. El microorganismo utilizado  en este estudio no consume pectinas ni su mon&oacute;mero, el &aacute;cido galactur&oacute;nico  [10], por lo que los valores observados son el resultado del aporte de cada uno  de los sustratos al medio.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En los cultivos est&aacute;ticos se observ&oacute; un mayor  acumulado de sustancias p&eacute;cticas que en los cultivos agitados, siendo superior  cuando la concentraci&oacute;n de glucosa fue de 100 g/L. Esto se relaciona con el  hecho de que en los cultivos limitados de ox&iacute;geno, la levadura excreta la  enzima endopoligalacturonasa, siendo mayores los acumulados de enzima a medida  que se incrementa la concentraci&oacute;n de glucosa en el medio. Es decir, el  incremento observado en el contenido de sustancias p&eacute;cticas en los cultivos  est&aacute;ticos puede atribuirse al rol desempe&ntilde;ado por las enzimas p&eacute;cticas en la  extracci&oacute;n de las pectinas presentes en los sustratos. Debe destacarse que se  logran incrementos en el contenido de sustancias p&eacute;cticas del 33 % (mesocarpo  de naranja) y 225 % (pulpa de caf&eacute;) en los cultivos est&aacute;ticos con respecto a  los agitados, como consecuencia de la acci&oacute;n de enzima endopoligalacturonasa.  La menor extracci&oacute;n de pectinas en el residual de naranja se corresponde con la  naturaleza altamente esterificada de estas pectinas [10].</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><strong><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">CONCLUSIONES</font></strong></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">1. Se demuestra la factibilidad del empleo de  las fermentaciones aerobia o an&oacute;xica, con la levadura pectinol&iacute;tica <em>K.  marxianus</em> CCEBI 2011, como alternativa para la valorizaci&oacute;n de dos residuos  agroindustriales ricos en pectina y de gran impacto ambiental: la pulpa de caf&eacute;  y el mesocarpo de naranja.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">2. La pulpa de caf&eacute; aporta condiciones m&aacute;s  favorables para el crecimiento de la levadura, lo cual se refleja en una mejor  conversi&oacute;n de la fuente de carbono y energ&iacute;a en biomasa.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">3. En ambos sustratos se logra un consumo  eficaz de los az&uacute;cares reductores y neutros del medio de cultivo en 24 h, tanto  en cultivos aerobios como limitados de ox&iacute;geno. Bajo condiciones an&oacute;xicas se  logra producir la enzima endopoligalacturonasa, increment&aacute;ndose la extracci&oacute;n  de sustancias p&eacute;cticas de los residuos s&oacute;lidos en un 225 y 33 %, para la pulpa  de caf&eacute; y el residual de naranja, respectivamente.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">4. Los caldos fermentados, ricos en levadura,  enzima poligalacturonasa y sustancias p&eacute;cticas, en forma de olig&oacute;meros  p&eacute;cticos, poseen un gran atractivo desde el punto de vista de sus potenciales  aplicaciones en el sector agropecuario, como estimuladores del crecimiento  vegetal y en la formulaci&oacute;n de prebi&oacute;ticos para la alimentaci&oacute;n animal.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><strong><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">BIBLIOGRAFIA</font></strong></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">1. GARC&Iacute;A,  N. Producci&oacute;n de Setas Comestibles <em>Pleurotus  ostreatus </em>sobre Subproductos del Caf&eacute; y del Cacao. Tesis de  Maestr&iacute;a. Facultad de Ciencias Naturales, Universidad de Oriente, Santiago de  Cuba, Cuba. 1999.    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">2. BERM&Uacute;DEZ, R. C., GARC&Iacute;A, N., GROSS, P., SERRANO, M. &quot;Cultivation of <em>Pleurotus </em>on agricultural substrates in Cuba&quot;. Micolog&iacute;a Aplicada Internacional. 2001, 13, 1, 25-29.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">3. RODR&Iacute;GUEZ, S., P&Eacute;REZ, M., FERN&Aacute;NDEZ, M. &quot;Estudio de la biodegradabilidad de las aguas de residuales del beneficio h&uacute;medo del caf&eacute;&quot;.<em>Interciencia. </em>2000, 25, 8, 386-390.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">4. ALB&Aacute;N, D. Y., FREIRE, D. Obtenci&oacute;n de Bioetanol a partir de Residuos de Naranja &quot;<em>Citrus sinensis</em>&quot; Provenientes del Proceso Agroindustrial en la Provincia de Bol&iacute;var. Informe T&eacute;cnico de Proyecto de Investigaci&oacute;n. Escuela Polit&eacute;cnica del Ej&eacute;rcito, Quito, Ecuador. 2009.    </font></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">5. SAVAL, S.&quot;Aprovechamiento de residuos agroindustriales: Pasado, presente y futuro&quot;. BioTecnolog&iacute;a. 2012, 16, 2, 14-46.    </font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">6. SOMOGYI, M. &quot;Notes on sugar determination&quot;. <em>J. Biol. Chem.</em>1952, 195, 19-23.    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">7. BITTER, T., MUIR, H. M.<em> Analytical Biochemistry. </em>1962, 4, 330.    </font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">8. HODGE, J. D., HOFREITER, B. T.<em>Methods Carbohyd. Chem.</em> 1962, 1, 380.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">9. LANE, M., MORRISSEY, J. &quot;<em>Kluyveromyces marxianus</em>: a yeast emerging from its sister's shadow&quot;. <em>Fungal Biology Reviews. </em>2010, 24, 1, 7-26.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">10. SERRAT, M., BERM&Uacute;DEZ, R. C., VILLA, T. G. &quot;Production, purification and characterization of a polygalacturonase from a new strain of <em>Kluyveromyces marxianus</em> isolated from coffee wet-processing wastewater&quot;. <em>App Biochem. Biotech.</em> 2002, 97, 193-208.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">11. SERRAT, M., BERM&Uacute;DEZ, R. C., VILLA, T. G. &quot;Polygalacturonase and ethanol production in <em>Kluyveromyces marxianus</em>: Potential use of polygalacturonase in foodstuffs. <em>App. Biochem. Biotech.</em>2004, 117, 49-64.    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">12. BARRERA, I. C. Modelaci&oacute;n Metab&oacute;lica de  Compuestos de Reserva de <em>Saccharomyces  cerevisiae</em>. Tesis Doctoral.  Unidad Profesional Interdisciplinaria de Biotecnolog&iacute;a-Instituto  Polit&eacute;cnico Nacional, M&eacute;xico, D. F. 2010.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">13. PATARO C., GUERRA, J. B., GOMES, F. C. O., NEVES, M. J., PATR&Iacute;CIA, F., PIMENTEL, P. F., ROSA, C. A. &quot;Trehalose accumulation, invertase activity and physiological characteristics of yeasts isolated from 24 h fermentative cycles during the production of artisanal brazilian <em>cacha&ccedil;a&quot;</em>. Braz. J. Microbiol.</em> 2002, 33, 3, 202-208.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">14. LOPES, M., DE SOUZA, C., RODRIGUES, M., COSTA, D., DOS SANTOS, A., DE OLIVEIRA, L., RAMOS, H., GUIMARAES, V., SILVEIRA, W., PASSOS, F., FIETTO, L. &quot;Production and characterization of &#946;-glucanase secreted by the yeast <em>Kluyveromyces marxianus</em><em></em>&quot;. <em>Applied Biochemistry and Biotechnology</em>. 2014, 172, 5, 2412-2424.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">15. SILVA, M., RIGO, D., MOSSI, V., GOLUNSKI, S., KUHN, G. D. E. O., DI LUCCIO, M., DALLAGO, R., DE OLIVEIRA, D., OLIVEIRA, J. Y., TREICHEL, H. &quot;Enzymatic synthesis of fructooligosaccharides by inulinases from <em>Aspergillus niger</em> and <em>Kluyveromyces marxianus</em> NRRL Y-7571 in aqueous-organic medium&quot;. Food  Chemistry</em><em>. 2013. 138, 1, 148-153.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">16. GARC&Iacute;A, R., ARRIOLA, D., DE ARRIOLA, C., DE PORRES, E. Y., ROLZ, C. &quot;Characterization of coffee pectin&quot;. <em>Lebensm.-Wiss. u. -Technol.</em>1991, 24, 125-129.    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">17. SERRAT, M. Potencialidades  de las Levaduras en el Aprovechamiento de los Residuales del Caf&eacute;. Tesis de  Maestr&iacute;a. Universidad de Oriente, Santiago  de Cuba, Cuba. 1998.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">18. RODRIGU&Eacute;Z, O., SERRAT, M. &quot;Poligalacturonasas de levaduras: un producto biotecnol&oacute;gico de grandes potencialidades&quot;.<em>Tecnolog&iacute;a Qu&iacute;mica.</em> 2008, 28, 1, 80-90.    </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">19. DEVIA, J. E. &quot;Proceso para   producir pectinas c&iacute;tricas&quot;. Revista Universidad EAFIT. 2003, 129, 21-29.    </font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Recibido: Septiembre 2015    <br>   Aprobado: Diciembre 2015</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><em>Dr.C. Manuel Serrat D&iacute;az. </em>Centro de Estudios de  Biotecnolog&iacute;a Industrial. Facultad de Ciencias Naturales. Universidad de  Oriente. Santiago de Cuba. Cuba. <a href="mailto:mserrat@cebi.uo.edu.cu">mserrat@cebi.uo.edu.cu</a></font></p>      ]]></body><back>
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