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Revista Cubana de Higiene y Epidemiología
versión On-line ISSN 1561-3003
Rev Cubana Hig Epidemiol v.34 n.2 Ciudad de la Habana Mayo-ago. 1996
Instituto Nacional de Higiene, Epidemiología y Microbiología
Método para el análisis de cadmio en tejidos biológicos por espectrometría de absorción atómica
Lic. Olivia Sardiñas Peña1 y Dra. Maricel García Melián22 Doctora en Ciencias Químicas. Investigadora Titular. Jefa del Departamento de Química y Toxicología.
RESUMEN
Palabras clave: ESPECTROFOTOMETRIA POR ABSORCION ATOMICA; CADMIO/análisis; BOVINOS; HIGADO.
INTRODUCCION
El cadmio (Cd) se encuentra en el aire, suelo y agua debido a la actividad humana. Las mayores fuentes de contaminación son la producción de metales no ferrosos y la disposición de desechos que lo contienen.1Este elemento ingresa al organismo fundamentalmente a través de los alimentos, el agua y el cigarro2 y tiene un tiempo de vida media de más de 10 años en el hombre. No se encuentra distribuido uniformemente en el cuerpo humano y se almacena mayormente en hígado y riñón. Es altamente tóxico.
El Cd es considerado como un elemento cardiotóxico, el cual posee carácter competitivo cuando se encuentra en el mismo tejido que el Zn.3
Debido a la importancia de este metal para la salud se han desarrollado diversos métodos para su análisis a fin de cuantificar sus niveles en muestras biológicas. El método más ampliamente utilizado es la espectrometría de absorción atómica.1
Generalmente los tejidos se someten a una digestión con ácidos fuertes para la destrucción de la materia orgánica presente y se han obtenido valores de recuperación y precisión aceptables.4,5
El propósito del presente trabajo fue evaluar un método de análisis de Cd en tejidos biológicos por espectrometría de absorción atómica con atomización electrotérmica, para ser empleado en la estimación de la exposición humana al metal.
MATERIAL Y METODO
Para el análisis de Cd en material biológico se empleó un método de digestión húmeda: ácido nítrico concentrado, ácido sulfúrico concentrado y peróxido de hidrógeno al 30 %, en una proporción 10:1:4.Las mediciones de Cd fueron realizadas en un espectrómetro de absorción atómica Pye Unicam con sistema de atomización electrotérmica PU 9095, mediante el empleo de cubetas pirolíticas de grafito. Se utilizó el control de voltaje en todas las fases y como gas de purga argón.
El programa para el horno de grafito se elaboró a partir de la curva de atomización-incineración de Cd (tabla 1). Las condiciones instrumentales fueron fijadas empíricamente a partir de las recomendaciones del fabricante (tabla 2). La absorbancia fue medida como altura de pico, en triplicado.
TABLA 1. Programa para el análisis de Cd en tejidos biológicos por el método de espectrometría de absorción atómica con atomización electrotérmica
Fase | | | |
Secado | | | |
Incineración | | | |
Atomización | | | |
Limpieza | | | |
TABLA 2. Condiciones instrumentales para el análisis de cadmio en tejido biológico por el método de espectrometría de absorción atómica con atomización electrotérmica
Parámetros | |
Línea de resonancia (nm) | |
Paso de banda (nm) | |
Corriente de la lámpara (mA) | |
Corrección de fondo | |
Gas de purga | |
Las mediciones de Cd se realizaron mediante el método de adición de estándar. Se prepararon soluciones de referencia acuosas por dilución volumétrica de patrones de referencia concentrados (Sigma, St. Louis, MO, EE.UU.) en agua desionizada. El intervalo lineal fue de 0,001 a 0,002 m g/mL.
Con el propósito de validar el método se analizaron 5 réplicas de 0,25 g de material de referencia certificado de hígado de bovino 1577a del Instituto Nacional de Normalización y Tecnología (anteriormente Buró Nacional de Patrones).
El límite de detección se calculó a partir de 10 mediciones del blanco de reactivos procesado de igual forma que las muestras y se expresó como 3 veces la desviación típica de las mediciones.
El límite de cuantificación se obtuvo a partir de las mismas mediciones que el límite de detección y se estimó como 10 veces la desviación típica de éstas.
La limpieza de la cristalería se realizó con HNO3 (1:1), durante 24 horas y se enjuagó con agua desionizada.6
RESULTADOS
La concentración obtenida del análisis del material de referencia certificado de hígado de bovino 1577a por el método propuesto fue de 0,46 ± 0,02 m g/g.El límite de detección y cuantificación fue de 0,0001 y 0,0004 m g/g, respectivamente.
DISCUSION
El valor de la concentración obtenida del análisis del material de referencia fue similar al certificado para el Cd (0,44 ± 0,06 m g/g). Estos resultados indican que el método empleado fue satisfactorio para el análisis de este metal en tejidos biológicos.Para evitar errores sistemáticos relacionados con el instrumento de medición y sesgo en la calibración, las muestras fueron adecuadamente diluidas y todas las mediciones se realizaron en el intervalo lineal del gráfico de calibración.
El empleo del método de adición de estándar permitió reducir las interferencias de la matriz.
CONCLUSIONES
El método empleado para análisis de Cd en órganos por espectrometría de absorción atómica con atomización electrotérmica se considera aceptable ya que presenta límites de detección y cuantificación, precisión y sesgo satisfactorio.SUMMARY
A method for the analysis of Cd in biological tisues by atomic absorption spectrometry is presented. The Cd was analyzed by using the electrothermic atomization with buckets of pyrolytic graphite, previous mineralization of samples with strong acids. The accuracy of the method was evaluated by analyzing as a reference material bovine liver 1557a certificated by the National Institute of Standardization and Technology (former National Bureau of Patterns) with a concentration of Cd of 0,44 " 0,02 mg/g. The concentration of Cd obtained through our analysis of the reference material was of 0,46 " 0,02 mg/g. The limits of quantification and detection were of 0,0004 mg/g and of 0,0001 mg/g, respectively.Key words: SPECTROMETRY, ATOMIC ABSORPTION; CADMIUM/analysis; BOVINE; LIVER.
REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS
- WHO. Cadmium. Geneva, 1992:1-50. (Environmental Health Criteria;134).
- Koji N. Critical concentration of cadmiun in kidney cortex of humans exposed to environmental cadmium. Environ Res 1986;40:251-60.
- Anderson AR. Trace elements and cardiovascular diseases. Acta Pharmacol Toxicol 1986;59:317.
- Friel JK, Chau DN. Dry and wet-ashing tecniques compared in analysis for zinc, copper, manganese and iron in hair. Clin Chem 1986;32:739-41.
- Alcok WN, A hidrogen peroxide digestion system for tissue trace metal analysis. Biol Trace Element Res 1987;13:366.
- APHA, AWWA, WPC. Standard methods for the examination of water and wastewater. 18 ed. Washington, DC:APHA, 1992.
Lic. Olivia Sardiñas Peña. Instituto Nacional de Higiene, Epidemiología y Microbiología. Infanta No. 1158, entre Llinás y Clavel, Centro Habana, Ciudad de La Habana 10300, Cuba.